植物转录阻遏物,结合其的蛋白质核因子,及它们的应用的制作方法

专利名称：：植物转录阻遏物,结合其的蛋白质核因子,及它们的应用的制作方法相关申请本申请要求2001年7月10日提交的、美国临时申请60/303,780的优先权，其全部内容结合于此作为参考。
背景技术：
：A)发明领域本发明涉及一种植物基因调控元件及其应用，更具体地，涉及一种用于调节植物对病原体、生长素和乙烯应答的沉默元件。本发明还涉及特异结合于本发明的沉默元件的转录阻遏物，其包括以下被称为“SEBF”的一种蛋白质。B)现有技术简述作为对病原体感染的应答，植物会被引发多种防御特异性事件。尽管正在发现信号级联放大的主要成分，但是迄今为止，只鉴定出了极少的在转录水平整合这些信号的转录因子。PR基因是病原体侵入诱导的植物基因。这些基因被细划分为11类。由于PR基因已经被很好的表征，因而它们提供了用于研究防御基因转录调控的优异模型。PR-10基因家族是PR基因类别中的一种。对基因表达进行的研究已经鉴定出了在PR-10a基因调控中涉及的顺式作用元件，其中所述的PR-10a基因是PR-10基因家族中的成员。位于核苷酸-135--105之间的诱导子(elicitor)应答元件(ERE)对于诱导子诱导的PR-10a表达是必要且充分的。PBF-2，一种单链DNA结合因子，其可能在从ERE的PR-10a活化中发挥作用。已经显示，ERE的存在对PR-10a活化是充分的，去除位于-52--27之间的沉默元件(SE)会引起进一步的活化作用，这一情况提示SE和ERE一起，参与了PR-10a的调控(Matton等，1993；Després等.，1995)。但是，全部SE活性所需的正确核酸序列尚未被提出。此外，特异结合于PR-10a的沉默元件(SE)的转录阻遏物的鉴定也并不知晓。因此，需要这样的分离或纯化的核酸，该核酸包含编码全部SE活性的序列，并且其用于调节基因的活性、更具体是在植物应答病原体中涉及的基因，，如PR-10a基因的活性。同样需要这样的方法和这样的遗传修饰植物在其中已经引入了本发明的核酸，或者其中编码全部SE活性的序列已经被突变、删除、或者沉默，从而调节了植物防御机制和对病原体的抗性。同样长期感觉需要这样的转录阻遏物，其能够调节植物防御机制和对病原体的抗性，更具体地需要这样的转录阻遏物，其能够特异结合到本发明的分离或纯化的核酸上。同样需要这样的方法和遗传修饰植物，其中本发明转录阻遏物的水平已经得到了调节。同样还需要这样的有效方法和组合物，以调节植物对病原体的抗性或者耐受性，和/或调节植物对生长素和/或对乙醇的应答。本发明满足了这些需要，本发明还满足了其它的需要，所述的其它需要在本领域技术人员阅读本发明说明书时将是显而易见的。发明简述依照第一方面，本发明涉及分离或者纯化的核酸分子，其包含选自下面的序列a)在SEQIDNO21中列出的序列；b)与SEQIDNO21具有至少96％核苷酸序列同一性的核苷酸序列；和c)与编码SEQIDNO22氨基酸序列的核酸具有至少75％核苷酸序列同一性的核苷酸序列。本发明还涉及转化或者转染的细胞，以及含有这样的核酸的克隆或表达载体。优选地，所述的细胞和载体表达或者能够指导由所述核酸编码的肽的表达。在相关方面，本发明涉及包含选自下列氨基酸序列的分离或者纯化的蛋白a)由先前定义的核酸所编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；d)SEQIDNO22中列出的序列；e)与由SEQIDNO21的核苷酸68-937所编码的氨基酸序列具有至少85％同一性的序列；和f)与由SEQIDNO21的核苷酸68-937所编码的氨基酸序列具有至少87％序列相似性的序列。本发明还涉及包含先前定义的任何核酸或者蛋白质的组合物。在另一方面，本发明涉及植物蛋白质核因子，其特别能够介导对涉及植物防御机制的沉默元件的抑制。优选地，所述的蛋白质核因子是特异结合到BTGTCNC或者YTGTCNC序列上的植物转录阻遏物。最优选的转录阻遏物由此后被称为“SEBF”的蛋白质组成，其中“SEBF”代表沉默元件结合因子的缩写。在一个实施方案中，描述了含有分离或者纯化的SEBF蛋白或其功能性同系物的一种组合物。优选地，所述的SEBF蛋白或同系物包含选自下面的氨基酸序列a)由具有与SEQIDNO21的核苷酸68-937至少85％同一性的序列的核酸编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；和d)SEQIDNO2中提供的序列。更优选地，所述的SEBF蛋白纯化自马铃薯，并且其具有的纯化系数(purificationfactor)为大约90-大约20,700倍。依照另一方面，本发明涉及分离或者纯化的核酸，其含有这样的结合序列，蛋白质核因子如PR-10a的沉默元件(SE)的转录阻遏物特异结合于所述的结合序列。优选地，所述的结合序列含有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)。本发明还涉及分离或者纯化的基因调控元件，其包含对于PR-10a的沉默元件(SE)在植物中的全部活性必需的核酸序列。优选地，所述的基因调控元件由沉默元件组成，并且其包含序列GACTGTCAC(SEQIDNO26)或者序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)。本发明还涉及包含所述基因调控元件的DNA构建体，和包含所述基因调控元件或所述DNA构建体的遗传修饰的植物实体。依照相关方面，本发明涉及用于改变植物中基因表达的方法。该方法包含这样的步骤在植物中改变核DNA结合蛋白结合到序列BTGTCNC。优选的内源性DNA结合蛋白的非限制性实例包括那些与SEBF具有至少48％同一性或者相似性的蛋白。更优选地，所述的DNA结合蛋白由SEBF或具有与SEBF至少90％同一性或者相似性的功能性同系物组成。在另一个优选的实施方案中，描述了一种用于增加目的基因表达的方法，该基因具有包含序列BTGTCNC的启动子区域。所述的方法包含这样的步骤调节该基因的启动子区域以突变或删除序列BTGTCNC。该基因可以是PR基因。在另一个优选的实施方案中，描述了一种降低目的基因表达的方法，该基因具有缺乏序列BTGTCNC的启动子区域。所述的方法包含这样的步骤以可操作连接的方式将序列BTGTCNC导入到启动子区域。在更具体的实施方案中，描述了一种植物性宿主(例如藻类，植物)，所述的植物性宿主被进行了遗传修饰，以使其表现出蛋白质核因子的表达或者生物学活性发生改变，所述的蛋白质核因子对序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、优选为YTGTCNC(SEQIDNO24)具有特异的结合活性，将变化的水平与相应的未被遗传修饰的植物性宿主进行比较，所述的未被遗传修饰的植物性宿主的内源性水平未有变化。优选的蛋白质核因子是那些与SEBF具有至少48％同一性或者相似性的蛋白质核因子。更优选地，所述的蛋白质核因子由SEBF或与SEBF具有至少90％的同一性或者相似性的功能性同系物组成。在一个甚至更具体的实施方案中，SEBF或同系物在植物性宿主中的表达或者生物学活性已经被提高，使其显示出选自下面的表型-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂(auxinicherbicide)的增加的抗性；-降低的乙烯生产；和-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟。在另一个具体的实施方案中，SEBF或同系物在植物性宿主中的表达或者生物学活性已经被降低，使其显示出选自下面的表型-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；和-早期的果实成熟。本发明还包含用来获得具有先前描述表型的植物性宿主的方法。典型地，这些方法包含在植物中调节(典型地，降低或者增加)SEBF或SEBF功能性同系物的表达或生物学活性这一步骤。本发明的另一相关方面涉及含有基因组的遗传修饰的植物性宿主，其中的一种与在启动子区域存在或不存在序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、优选YTGTCNC(SEQIDNO24)相关的基因的转录活性已经被改变了。当然，要将改变的生物学活性与相应的未被遗传修饰的植物性宿主进行比较，所述的未被遗传修饰的植物性宿主的内源性生物学活性未有改变。在一个实施方案中，所述基因的启动子区域包含序列BTGTCNC，并且所述的启动子区域已经被遗传修饰(例如突变、删除)以使与序列BTGTCNC存在相关的抑制转录活性失活。在另一个实施方案中，所述的启动子区域没有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且此区域已经被遗传修饰以在其中以可操作的连接方式插入序列BTGTCNC。在另一方面，本发明涉及在植物中、特别是应用于农业的植物和具有园艺价值的植物中获得特殊表型的方法。在一个实施方案中，描述了用于下述目的的方法-调节植物对病原体的抗性或者耐受性；-调节由生长素控制的植物基因的诱导；-调节由植物生长素控制的基因诱导；-增加植物的生长、生根和/或果实生产；-调节生长素诱导的ACC合酶基因；-调节植物乙烯生产；和-调节植物质体mRNAs的稳定性、表达或活性。所有这些方法都包含这样的步骤在植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。在一个优选的实施方案中，描述了一种用于获得表现出选自下列表型的遗传修饰植物的方法-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；-早期的果实成熟；和-改变的质体mRNAs的稳定性、表达或活性。涉及所述表型的基因的启动子区域包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，将所述植物的表型与相应的未被遗传修饰的植物相比较。所述的方法包含这样的步骤对所述植物的基因组进行遗传修饰，以使与序列BTGTCNC存在相关的内源性生物学活性失活。在一个优选的实施方案中，描述了一种用于获得表现出选自下列表型的遗传修饰植物的方法-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的抗性；-降低的乙烯生产；-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟；和-改变的质体mRNAs的稳定性、表达或活性。涉及所述表型的基因的启动子区域没有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，将所述植物的表型与相应的未被遗传修饰的植物相比较。所述的方法包含这样的步骤对所述植物的基因组进行遗传修饰，以在其中以可操作的连接方式插入序列BTGTCNC。在本发明的另外的实施方案中，描述了植物以及用来获得所述植物的方法，表现出对病原体增加的(或者降低的)抗性或耐受性的植物；对其防御应答的加快的(或者减缓的)诱导作用；对内源性生长素增加的(或者降低的)敏感性；和/或延迟的果实成熟或者提前的果实成熟。在一个具体的实施方案中，提供了一种用来调节植物对病原体的抗性或者耐受性的方法，其包含在植物中调节内源性SEBF蛋白的表达或者生物学活性。更具体地，描述了一种用来增加植物对病原体的抗性或者耐受性的方法，其包含在植物中降低内源性SEBF蛋白的表达或者生物学活性。减少内源性SEBF蛋白的表达或者生物学活性可以通过下列方法来进行，例如，通过在植物中表达SEBF的反义分子；通过表达诱导SEBF水平或者活性的共抑制的蛋白；通过敲除或者化学突变编码SEBF蛋白的基因；或者通过表达切割SEBFmRNA的核酶。该实施方案还描述了一种用来降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，其包含在植物中增加SEBF蛋白的表达或者生物学活性。增加内源性SEBF蛋白的表达或者生物学活性可以通过例如在植物中引入可表达的SEBF编码序列来实现。可以将该SEBF编码序列处于可诱导的或者组成型表达的启动子控制之下。本发明还包含这样的植物，所述的植物被遗传修饰以使其在与相应的未被遗传学修饰的植物相比较时，具有对病原体增加的(或者降低的)抗性或者耐受性，其中，当与相对应的未被遗传修饰植物相比，在所述遗传修饰的植物中的内源性SEBF蛋白的表达或者生物学活性被降低(或者增加)。在另一个具体实施方案中，提供了一种用来调节植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述的植物中改变内源性核DNA结合蛋白对序列BTGTCNC的结合。更具体地说，该实施方案描述了一种用来增加植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述的植物中降低或者阻止内源性核DNA结合蛋白对序列BTGTCNC的结合。该实施方案还描述了一种用来降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，该方法包含在所述的植物中，允许或者增加内源性核DNA结合蛋白对包括序列BTGTCNC(SEQIDNO23)的基因的启动子区域的结合。本发明还包含这样的植物，所述的植物被这些方法进行了遗传修饰，以使其具有对病原体增加的(或者降低的)抗性或者耐受性。在一个更具体的实施方案中，提供了这样一种方法，该方法用来在植物中调节由生长素控制的基因的诱导，所述的方法包含在植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。更具体地说，描述了一种用来增加植物生长、生根和/或果实生产的方法，所述的方法包含在植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。该实施方案还描述了一种用来增加植物对生长素除草剂抗性的方法，此方法包含在植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。本发明还包含被这些方法遗传修饰的植物。在另一个具体实施方案中，提供了一种用来调节植物乙烯生产的方法，该方法包含在植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。更具体地说，描述了一种通过植物增加乙烯生产的方法，该方法包含在植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。该实施方案还描述了一种通过植物降低乙烯生产的方法，该方法包含在植物中增加内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。本发明还包含被这些方法进行了遗传修饰以具有增加的(或者降低的)乙烯生产的植物。在上文中使用的植物性宿主，优选由植物(单子叶植物或者双子叶植物)组成、更优选由蔬菜(vegetable)、豆科植物、树、果树、禾本科植物、谷类组成，甚至更优选由马铃薯、番茄、烟草、棉花、稻属、小麦、谷物、大麦、燕麦、油菜(canola)、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。参照附图，在对以下几个优选实施方案的非限制性描述进行阅读以后，本发明的其它目的和优点将会显而易见。附图简述图1是显示SEBF结合于单链沉默元件的凝胶图片。用10μg粗核制备物和20,000CPM的32P标记的SE编码链(泳道1；CS)或者非编码链(泳道3；NCS)进行EMSA。通过退火放射性标记的非编码和非标记的(cold)编码链来得到双链探针(DS)。CS∶NCS的比率从4-6泳道分别为0.75∶1，1.5∶1和3∶1。在泳道2中没有加入提取物。箭头表明了CS，NCS和DS探针的位置以及SEBF在凝胶中的位移。图2A，2B，2C和2D显示了对马铃薯沉默元件(SE)的突变分析。图2A本研究使用的报告基因构建体(reporterconstruct)和突变寡核苷酸的示意图。报告基因构建体含有来自从-135到+136与编码β-葡糖醛酸糖苷酶(GUS)的细菌基因uidA融合的PR-10a启动子区域。显示了诱导子应答元件(ERE)，沉默元件(SE)和TATA盒的位置。转录起始位点用箭头表示。野生型(WT；SEQIDNO45)和突变寡核苷酸m1-m5(SEQIDNOs1-5)之间的共同序列用虚线表示，突变的核苷酸用小写字母表示。图2B使用10μg的粗马铃薯块茎核制备物和在图2A中给出的、20,000CPM32P标记的单链CS寡核苷酸所进行的EMSA研究。图2C使用10ng的纯化的重组体SEBF和在图2A中给出的20,000CPM32P标记的单链CS寡核苷酸所进行的EMSA研究。图2D融合到uidA基因的PR-10a启动子的从-52到-27的序列被图2A中给出的序列所取代。将所得到的质粒经电穿导入马铃薯叶原生质体中，测定GUS活性。柱状图代表相对于野生型(WT＝1)的活性倍数。通过共电穿荧光素酶报告基因来校正转染效率。结果代表了来自6个单独电穿孔最小值的平均值。误差条线(errorbar)代表所述平均值的标准偏差。图3A，3B和3C所显示的结果确定了共有SEBF结合位点。图3A列出了用来精确描绘SEBF结合位点的寡核苷酸。用虚线表示野生型(SEQIDNO46)和突变体寡核苷酸m6-m20(SEQIDNOS6to20)之间的共同序列。突变的寡核苷酸用小写字母表示。图3B显示SEBF结合到包含两个突变核苷酸的寡核苷酸的EMSA。图3C与图3B一样，只是寡核苷酸含有一个突变。使用10μg的粗核制备物和在图3A中给出的20,000CPM32P标记的单链寡核苷酸进行研究。图4是显示SEBF纯化的凝胶图片。对来自每个SEBF纯化步骤中的蛋白进行考马斯染色(泳道1-4)。将粗核提取物(粗；泳道1)加载到Q-琼脂糖TM柱上。在两轮亲和纯化(Aff.1，Aff.2；泳道3，泳道4)之前，在400mMNaCl(Q-seph；泳道2)洗脱SEBF。泳道5显示了通过使用亲和2纯化的SEBF并将野生型编码链作为放射性标记的探针所进行的southwestern(SW)实验。箭头显示了两个纯化的条带。在左侧显示了分子量标记。图5显示了SEBF的氨基酸序列(SEQIDNO22；GenBankTM登记号NoAF38431)。用箭头表示转运肽切割的预测位点。两个共有序列类型RNA结合结构域(cs-RBD)被加上了下划线。用黑体显示了通过氨基末端测序得到的氨基酸序列。图6显示了SEBF的细胞定位。将马铃薯叶分成胞质、核和叶绿体。用12％的SDS-PAGE分离10μg的每个部分。将蛋白转移到硝化纤维素上并用抗SEBF抗体来显示SEBF的存在。第一泳道(10ng的重组体SEBF)显示了用来免疫家兔的蛋白。将叶绿素(CHL)用作叶绿体标记(数据用μg叶绿素表示[mg蛋白]-1)并将醇脱氢酶(ADH)作为胞质标记(数据表示为增加的OD[mg蛋白]-1[分]-1)。N.D不可检测。图7A，7B和7C显示了SEBF的基因组结构。图7ASEBF的DNA印迹。在每个泳道上加载5μg消化的基因组DNA，并用图7C中所示的来自SEBFcDNA的随机标记的XmnI片段进行探查。在右侧显示了分子量标记。图7B对基因组DNA进行的PCR分析。在图7C中显示了所述cDNA上寡核苷酸的位置(T-Z；泳道1-6)。泳道5和6，泳道3和4，以及泳道2和4的扩增产物之间的大小差别，分别限定了内含子1，2和3的大小。在右侧显示了分子量标记。图7C推导的SEBF基因组结构。cDNA用线表示，编码区用盒表示。氨基末端转运序列显示成黑色。内含子被显示成从cDNA出现的三角。用字母命名在PCR反应中使用的寡核苷酸(T，U，V，W，X，Y，Z；相应于SEQIDNOS38-44)。从PCR分析图7B推断内含子的位置和大小。用箭头显示限制性内切酶位点HinDIII(H)，EcoRI(E)，XmnI(Xn)。图8显示SEBF过表达抑制了PR-10a的表达。将前体SEBF的编码序列(含有推定的转运肽)和对照蛋白的编码序列每个插入质粒pBI223D(效应物质粒(effectorplasmid))。将这些质粒与图2D中所述的报告基因质粒(报告基因质粒)共电穿孔到马铃薯叶原生质体中。柱状图表示与过表达对照蛋白相比(对照＝100)，SEBF过表达对报告基因活性的影响。为了更容易参考图2D给出了相对于野生型SE(WT＝1)的活性倍数。通过共电穿孔荧光素酶报告基因来校正转染效率。结果代表了来自3个单独电穿孔最小值的平均值。误差条线代表所述平均值的标准偏差。图9A和9B显示了SEBF结合其它防御基因的启动子。图9A列出了在此实验中使用的寡核苷酸。用小写字母表示与PR-10a不同的核苷酸(SEQIDNO25和47；相应于GenbankTMacc.No.M29041的核苷酸1426-1450)。在SEBF结合位点处加上了下划线。ChtC2是来自马铃薯的几丁质酶基因(SEQIDNO48，相应于GenbankTMacc.No.AF153195的核苷酸1264-1288)，CHN50是来自烟草的几丁质酶基因(SEQIDNO49，相对于GenbankTMacc.No.X51599的核苷酸1215-1239)。图9B使用0.5μg的400mMQ-琼脂糖凝胶部分和在图9A中给出的20,000CPM32P标记的单链寡核苷酸所进行的EMSA研究。图10显示了SEBF(GenBankTMacc.No.AF38431)的DNA序列(SEQIDNO21)和蛋白序列(SEQIDNO22)。在DNA序列下面显示了被翻译的蛋白序列(见图5；SEQIDNO22)。每个氨基酸都被显示在密码子的第一个核苷酸下面。图11A，11B和11C显示了SEBF结合到出现在大豆GH3启动子中的AuxRE序列。图11AAuxRE(SEQIDNO55)与SEBF结合位点(SEQIDNO23)之间的比较。图11B本研究中使用的寡核苷酸(SEQIDNOS50和51)。图11C使用0.5μg的400mMQ-琼脂糖TM部分和在图11B中给出的20,000CPM32P标记的寡核苷酸所进行的EMSA研究。图12A，12B和12C显示了防御基因CHN50启动子中SE序列的功能性。图12A使用0.5μg的400mMQ-琼脂糖TM部分和在图12C中给出的20,000CPM32P标记的寡核苷酸所进行的EMSA研究。图12B将CHN50启动子或者其在图12C中所示的突变版融合到uidA基因。将所得到的质粒电穿孔入烟草叶原生质体，测定GUS活性。通过共电穿孔荧光素酶报告基因来校正转染效率。结果代表了3个单独电穿孔的最小值。误差条线代表所述平均值的标准偏差。图12C本研究中使用的寡核苷酸(WT＝SEQIDNO52；M1＝SEQIDNO53；M2＝SEQIDNO54)。突变用小写字母表示并且在下面加上了下划线。用粗体字字符显示SEBF结合位点。发明详述A)定义为了更清楚更一致的理解本说明书及权利要求书，包括这里给出的这些术语的范围，在此提供了下列定义反义指的是能够在植物中调控相应基因表达的核酸分子。此处使用的反义分子还可以包括基因构建体，该基因构建体以与相对于它的或另一个启动子相反方向含有结构基因组基因、cDNA基因或其部分。典型地，反义核酸序列不是蛋白合成的模板，但是其与其它分子(如基因或者RNA)中的互补序列相互作用，从而使那些分子的功能受到影响。化学衍生物如在这里使用的那样，当蛋白/多肽包含额外的、通常并非该蛋白/多肽的一部分的化学“部分”时，该蛋白/多肽被称为另一蛋白/多肽的“化学衍生物”，可以使用本领域熟知的技术加入所述的“部分”。这些“部分”可以提高蛋白/多肽的溶解性、吸收性、生物利用度、生物半寿期等等。通过使用这些“部分”，可以减少甚至消除任何不合需要的毒性和副作用。例如，可以将蛋白/多肽共价偶联到生物相容的聚合物(聚乙烯醇，聚乙二醇等)上以提高稳定性或者减少/增加其抗原性。防御基因应答于病原体的挑战而在植物中被诱导和/或涉及的一种基因。片段指的是分子如蛋白/多肽或者核酸的一部分，并且还指氨基酸或者核苷酸序列的任何部分。功能性同系物如通常理解和在此使用的那样，指的是非天然的多肽或者核酸分子，该分子具有与天然多肽或者核酸分子的生物学活性实质上相似的功能性生物学活性。优选的功能性同系物是具有与天然多肽或者核酸分子“实质上等同”(见后)序列的多肽或者核酸分子。所述的功能性同系物可以是天然存在的，或者可以通过使用本领域熟知的方法及原理，涉及天然存在的酶进行一个或者多个氨基酸取代、删除和/或添加而得到。蛋白的功能性同系物可以含有也可以不含有翻译后修饰如共价连接的糖类，只要这样的修饰对特定功能的实施并不是必需的。但是，应该注意到，具有低于上面给出的相似性百分比的核苷酸或者氨基酸序列仍然能够编码具有所需活性的蛋白分子，这样的蛋白分子可以仍然被认为属于本发明所包括的范围内，因为它们具有序列保守区域。术语“功能性同系物”指的是多肽或者核酸分子的“片段”、“区段”、“变体”、“类似物”或者“化学衍生物”。融合蛋白由杂交基因表达形成蛋白，所述的杂交基因由两个基因序列组合而成。典型地，这是通过将cDNA克隆入其框架中具有一个已有基因的表达载体而实现的。遗传修饰当与术语“植物性宿主”或者“植物”一起使用的时候，其指的是将外源核酸引入一个或者多个植物性宿主(植物)细胞以产生遗传修饰的植物性宿主或者植物。用于遗传修饰植物性宿主如植物的方法在本领域为人所熟知。在一些情况中，可以优选永久的遗传修饰，因为这样，被遗传修饰的植物可以被再生为完整的、有性能力的、能存活的遗传修饰植物。被以永久方式遗传修饰的植物优选能够自花授粉或者与其它同种植物之间进行异花授粉，这样，可以将被携带于种系的外源核酸插入或者殖入农业上有用的植物变体中。内源性或者内源性水平指一种特定物质或者一种特定物质的浓度，所述的特定物质通常在特定生长时间和生长阶段被发现于植物中(内在的)。该术语还包括可因突变产生的特定物质或者蛋白的功能性同系物。在这里对化合物内源性水平或者酶活性水平变化作出参照，所述改变涉及在正常的内源性或已有水平之上或之下，所述的化合物水平或者酶活性升高或降低达30％、或者更优选30，35，40，45或50％、或者甚至更优选55，60，65，70或75％，或者还更优选80，85，90，95％或更高。可以使用已知的方法和技术来测定化合物的水平或者酶的活性水平。表达指的是这样过程，通过该过程，编码信息的基因被转化成在细胞中呈现并运作的结构。在cDNAs、cDNA片段和基因组DNA片段的情况下，转录的核酸随后被翻译成肽或蛋白以行使其功能，若有的话。术语“过表达”指的是与基准表达水平相比，所测得的表达水平分别向上偏差，所述的基准表达水平是建立于正常条件和正常功能水平下的表达水平。类似地，术语“过低表达(underpression)”指的是向下的偏差。“定位表达”的意思是使DNA分子被放置于这样一段DNA序列的附近，所述的序列指导该序列的转录和翻译(即有利于其产生，例如，NAIP多肽、重组体蛋白或者RNA分子)。分离的或者纯化的或者实质上纯净的指的是“人工”改变其天然状态，即如果其天然存在，则其已经发生改变或者已经被从原始环境中移出，或者两种情况都发生。例如，天然存在于活有机体中的多核苷酸或者蛋白/多肽不是“分离的”；从其天然状态的共存物质中分离的、通过克隆，扩增和/或化学合成而得到的相同的多核苷酸则如在此所用的术语那样是“分离的”。另外，通过转化、遗传操作或者通过任何其它重组方法被引入到有机体中的多核苷酸或蛋白/多肽是“分离的”，即使它仍然存在于所述的有机体中。调节指的是这样的过程，通过此过程，特定的变量被调节成确定的比例。核酸任何DNA、RNA序列或者具有一个或更多核苷酸的分子，包括编码一个完全基因的核苷酸序列。该术语用来包括所有的核酸，无论是天然存在还是非天然存在于特定细胞、组织或者有机体中的核酸。其包括DNA及其片段、RNA及其片段、cDNAs及其片段、表达的序列标记、包括随机化人工序列在内的人工序列。植物或者植物实体指的是全部植物或者植物的一部分，其包含，例如，植物的细胞、植物的组织、外植体、或者植物的种子。该术语还将包括悬浮培养或者组织培养形式的植物，包括但不限于calli的培养物、原生质体、胚、器官、细胞器等等。多肽指任何超过两个氨基酸的链，不管其有没有翻译后修饰如糖基化作用或磷酸化作用。启动子区域指的是一段在特定基因调控中涉及的核苷酸序列。通常位于转录起始位点的5’位置。典型地，所述的启动子区域包括TATA盒和所有的调控元件(例如为了对特定基因进行正确调控而对基因表达进行负调控的沉默元件)。抗性或者耐受性抗性指的细胞或者有机体(如植物)由于病原体(如病毒、真菌、昆虫等)侵袭，显示出基本上没有表型改变。耐受性指的是细胞或者有机体，尽管由于病原体的侵袭，可能呈现出一些表型改变，但是并不具有本质上减少的生殖能力或者本质上改变的新陈代谢。SEBF核酸指的是任何编码这样的植物多肽的核酸(见上)，在其它事情中，所述的植物多肽能够介导对涉及植物防御机制的沉默元件的抑制并且能够特异地结合到序列BTGTCNC或者YTGTCNC上，所述的植物多肽与SEQ.ID.NO23中所示的氨基酸序列具有至少90％、优选至少95％、特别优选100％的同一性或者相似性。当涉及植物SEBF核酸的时候，更特别地涉及编码SEQ.ID.NO23的SEQ.ID.NO22中阐述的核酸。SEBF蛋白或者SEBF多肽指的是由前述SEBF核酸编码的多肽、其片段、或者功能性SEBF同系物。相似性/互补性在核酸序列的语境中，这些术语指的是在低等的、选择地并且优选中等的、和选则地并且最优选高等严格(如下所定义)的条件下的可杂交相似性。特异结合指的是识别并结合蛋白的抗体，但是该抗体基本上不识别并结合样品如生物学样品中的其它分子，所述的样品天然包含蛋白质。实质上相同指的是多肽或者核酸表现出与参照氨基酸或者核酸序列具有至少50，55，60，65，70，75％、优选80或85％、更优选90，95％、最优选97％或99％同一性或相似性。对于多肽而言，对照序列的长度通常为至少20个氨基酸，优选至少25，30或40个氨基酸，更优选至少50或75个氨基酸，最优选至少100个氨基酸。对于核酸而言，对照序列的长度通常为至少50个核苷酸，优选至少60个核苷酸，更优选至少75个核苷酸，最优选100个核苷酸。典型地，使用具有其中指定的默认参数的序列分析软件(例如.，SequenceAnalysisSoftwarePackageoftheGeneticsComputerGroup，UniversityofWisconsinBiotechnologyCenter，1710UniversityAvenue，Madison，Owl53705)来测定序列同一性。该软件程序通过给各种取代、删除和其它修饰分配相似度来配比类似序列。保守的取代典型包括下列的取代甘氨酸、丙氨酸、缬氨酸擑、异亮氨酸、亮氨酸、天冬氨酸、谷氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、丝氨酸、苏氨酸、赖氨酸、精氨酸和苯丙氨酸、酪氨酸。严格为了定义严格的水平，便利地参照Maniatis等.(1982)第387-389页、尤其是第11段。低等的严格在此被定义为在37-45℃处于4-6XSSC/1％(w/v)SDS中2-3小时。取决于杂交所涉及的核酸的来源及浓度，也可以使用选择的严格条件如中等的严格条件或者高等的严格条件，中等的严格条件在此被认为在大于或等于45℃处于1-4XSSC/0.5-1％(w/v)SDS中2-3小时；高等的严格条件在此被认为在大于或等于60℃处于0.1-1XSSC/0.1-1.0％SDS中1-3小时。转化的或者转染的或者转基因细胞指的是将外源的核酸、典型为基因或者基因调控序列，引入到整个植物或其一部分中。“转化”指的是用于将外源分子引入细胞的任何方法。农杆菌属转化、PEG处理、脂转染、磷酸钙沉淀、电穿孔、和冲击式转染(ballistictransformation)不过是可以使用的几种教导而已。转基因植物任何具有包含这样的DNA序列的细胞的植物，所述的DNA序列已经通过特定的方法被插入到细胞中，并且成为了由此细胞发育而成的植物基因组的一部分，优选的转基因植物是那些用外源核酸转化的转基因植物，通过使用遗传工程的方法，所述的外源核酸被引入到个体植物细胞的基因组中。载体一种自我复制的RNA或者DNA分子，其可被用来将RNA或者DNA片段从一个有机体转移到另一个有机体。载体对于操纵遗传构建体特别有用，而且不同的载体在克隆步骤中可以具有特别适于在接受体中表达蛋白的特性，而且不同的载体可以含有不同的选择性标记。细菌质粒是常用的载体。优选地，本发明的载体能够促进核酸转移到植物细胞和/或促进其整合入植物基因组。植物性宿主指的是包含叶绿体并且能够进行光合作用的细胞、组织、器官或者有机体。该术语意图还将包括被加以修饰以得到这些功能的宿主。藻类和植物是植物性宿主的实例。创伤和应激可诱导的基因由创伤或者非生物的应激如紫外光、干旱、盐度诱导的植物基因。B)发明概述本发明的发明者现已发现，只有9个核苷酸是PR-10a基因的沉默元件(SE)的全部活性所必需的，即序列GACTGTCAC(SEQIDNO26)。本发明的发明者还鉴定了一种核因子(此后确定为“SEBF”)，该核因子显示出与序列BTGTCNC(SEQIDNO23)特异结合的序列。资料库检索显示许多PR基因的启动子中存在此结合序列。本发明的发明者还发现序列BTGTCNC与生长素应答元件的序列显示出高度的序列相似性，这强烈提示该序列与SEBF在由植物激素生长素及其功能类似物所诱导基因的调控中起作用。另外，本发明者已经证明SEBF可以识别并结合相应于大豆GH3基因的AuxRE的序列。本发明的发明者还发现SEBF可以通过生长素的作用参与乙烯合成的调控，这是因为SEBF结合元件出现在ACC合酶基因的启动子中，该基因被生长素所诱导并且编码乙烯生物合成中的一种关键的酶一另一种植物激素。本发明的发明者还已经对SEBF进行了分子表征。SEBF蛋白被纯化均匀、被部分化学测序，而且编码SEBF的cDNA被分离并被测序。推导得到的SEBF氨基酸序列显示出与叶绿体RNA结合蛋白具有高度的序列相似性。叶细胞的亚细胞划分证实SEBF位于叶绿体和核，提示其在这两个细胞区室中均发挥功能。重组体SEBF在瞬时表达系统中的过表达，引起PR-10a-uidA报告基因融合体出现SE-依赖性转录抑制，证实了SEBF作为转录阻遏物的作用。通过使用酵母双杂交系统，本发明的发明者进一步鉴定出了与SEBF相互作用的蛋白。其中的一种蛋白是Pti4，它是在植物病原体诱导的防御应答过程中PR基因的转录调控子。有趣的是，已知Pti4与腈水解酶相互作用，腈水解酶是一种涉及生长素生物合成的酶。此外，Pti4是乙烯应答元件结合蛋白(EREBP)中的一员，已知EREBP涉及植物对乙烯的应答。另外，在双杂交研究中发现，SEBF与Pti4的ERF结构域相互作用。ERF结构域特别令人感兴趣，因为它在所有乙烯应答因子中都是保守的。本发明的发明者还已经证明存在于烟草几丁质酶防御基因CHN50启动子中的SE元件能够结合SEBF，而且在此元件中发生的防止SEBF结合的突变使转录被去阻遏(unblock)。这一结果特别令人感兴趣，因为该启动子含有作为Pti4结合位点的GCC盒，而且乙烯可能通过与乙烯应答因子如Pti4的结合来调控该启动子。C)含有特异结合序列的核酸本发明的第一方面提供了分离或纯化的核酸，所述核酸包含蛋白质核因子特异结合于上面的结合序列。根据优选的实施方案，本发明的结合序列为BTGTCNC(SEQIDNO23)，B相应于任何除了A之外的核苷酸(即T，C或者G)，N相应于A，T，C或者G。更优选地，本发明的结合序列是YTGTCNC(SEQIDNO24)，Y相应于嘧啶(pyridine)(即T或者C)。确切的结合序列可以取决于特定的基因和有机体而变化，如后文表5中所例举。依照本发明的相关方面，提供了这样的分离或纯化的核酸，该核酸包含一段由含有对于PR-10a沉默元件的全部活性必需的核酸序列的基因调控元件组成的序列。根据一个优选的实施方案，所述的基因调控元件由沉默元件组成，而且其包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)。根据另一个优选的实施方案，所述的植物是马铃薯，而且所述的PR-10a沉默元件(SE)的必需序列是CTGTCAC(SEQIDNO25或47)。本发明还涉及包含上述基因调控元件和/或结合序列的DNA构建体，和包含所述基因调控元件、所述结合序列和/或所述DNA构建体的遗传修饰的植物实体。在一个优选的实施方案中，将所述的调控元件有效连接到可诱导的启动子上。如下文中实施例中所示，序列BTGTCNC被发现是称为SEBF的PR-10a沉默元件(SE)的转录阻遏物的特异结合序列。因此，序列BTGTCNC是涉及基因活性调节的重要序列，所述的基因将序列BTGTCNC整合到了它们的启动子区域。因此，本发明还涉及遗传修饰的植物性宿主，其中与在该基因的启动子区域中存在或不存在序列BTGTCNC相关的基因的转录活性已经被改变了。因此，本发明的一个相关方面涉及用于在植物中改变基因表达的方法。所述的方法包含在所述植物中改变核DNA结合蛋白对序列BTGTCNC的结合这一步骤。尽管核DNA结合蛋白优选由SEBF组成，但是，本领域地技术人员应当理解SEBF并不是能够结合到序列BTGTCNC的唯一蛋白质核因子，因为其它蛋白质核因子也可能如此。优选的核DNA结合蛋白的非限制性列表包括与SEBF具有至少48％的同一性或相似性的蛋白，更特别地那些列在下文表6中的蛋白。本发明还包括在低等的、优选中等的、更优选高等严格的条件下，与核酸序列BTGTCNC或与其互补序列杂交的序列。D)SEBF和其它结合到序列BTGTCNC上的多肽根据本发明的另一方面，提供了分离或纯化的核酸分子，该核酸分子编码能够特异结合到序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)上的多肽。本发明还提供了能够特异结合到序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)上的、分离或纯化的多肽。所述多肽以及所述结合序列(见表5)的同一性可以依赖于有机体而变化，而且可以依赖于活性将进行调节的特定基因而变化。根据优选的实施方案，本发明的多肽与图5中所示的氨基酸序列(SEQIDNO22)及其功能类似物具有至少80或85％、更优选至少90或95％和甚至更优选97％，99％或100％的同一性的氨基酸序列。根据另一个实施方案，所述的多肽具有由这样的核酸编码的氨基酸序列，所述的核酸与图10中所示的核酸序列(SEQIDNO21)、与其可读框(核苷酸68-973)、或与其片段具有至少80或85％、更优选至少90，95％和甚至更优选97％，99％或100％的同一性。更优选地，本发明的多肽还能够调节将序列BTGTCNC或者YTGTCNC整合到其启动子区域的基因的活性。不需要做过多的实验，本领域的技术人员就应该能够确定编码本发明多肽的准确的核苷酸序列。根据本发明最优选的实施方案，本发明多肽是被称为“SEBF”的转录阻遏物。该SEBF的cDNA序列和预测的氨基酸序列显示在图10和“序列表”部分中。SEQIDNO21相应于马铃薯的SEBFcDNA，SEQIDNO22相应于所述蛋白的预测的氨基酸序列。马铃薯的SEBF基因编码一种289个氨基酸长度的蛋白。Insilico分析显示，马铃薯SEBF蛋白具有以下特征其分子量为大约30810g/mol，等电点为大约4.6；不稳定指数为大约49；脂肪族指数为大约66.8；总平均的亲水性(grandaverageofhydropathicity)(GRAVY)为大约-0.5。其还包含很多潜在的磷酸化位点(18丝氨酸，3苏氨酸，和5酪氨酸)；还有10个潜在的N-糖基化位点。在变性条件下，在SDSPAGE上，其具有明显的、约为28-约29kDa的分子量。其还具有转录阻遏物的生物学活性。进行胚细胞研究来鉴定SEBF和其它已有序列的序列同一性。下文中的表1提供了显示与SEBF相似的序列的列表(核苷酸对核苷酸)。表2提供了与SEBF同源的蛋白的列表(蛋白对蛋白)，表3提供了显示与SEBF相似的预测蛋白的列表(蛋白对翻译的核苷酸)。可以通过任何适当的方法来制备本发明的多肽和核酸分子、更具体是SEBF和/或是结合序列。例如当条件合适的时候，它们可以通过化学合成来得到。也可以通过使用涉及克隆或者表达载体的生物学方法来制备它们。这些载体应该包含整合目的核酸分子的多核苷酸序列，例如和/或包含编码目的肽的多核苷酸序列。因此，本发明包括这样的克隆或者表达载体，更具体地包括编码SEQIDNO22的那些和包含SEQIDNO21的核苷酸68-937的那些。另外，可以使用诸如聚合酶链式反应(PCR)和DNA杂交这样的标准技术来将额外的SEBF同系物克隆到其它植物物种中。因此，在一个相关的方面，本发明涉及用来体外生产多肽的方法，所述的多肽能够特异结合序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)，并且优选具有转录阻遏物的生物学活性。该方法包括以下步骤1)在合适的培养基中体外培养整合了前述表达载体的细胞，和任选地2)在培养基中收集由这些细胞产生的多肽。用来生产这样的遗传修饰的细胞的方法和用来在蛋白/肽生产中使用这些细胞的方法在本领域为人所熟知，此处将不再进行详述。表1显示与SEBF相似性(核苷酸对核苷酸)的核苷酸序列表2与SEBF相似的蛋白表3显示与SEBF相似性(蛋白对翻译的核苷酸)的预测蛋白E)SEBF抗体本发明的多肽和多核苷酸也可以用来生产能够识别并结合其的多克隆或者单克隆抗体。因此，能够特异结合SEBF蛋白和/或其功能性同系物，如其它植物物种中的SEBF同源蛋白的纯化的抗体(单克隆或多克隆)也是本发明的特征。本发明的实施例部分描述了SEBF抗体的制备。该抗体还被用来测试烟草叶提取物，显现出了28和29kDa的两条浓条带(可能分别相应于cp29A和cp29B)。初步测试还表明所制备的SEBF抗体还识别鼠耳芥(Arabidopsisthaliana)中的同源蛋白。通过使用上述的SEBF蛋白或多肽，许多方法都可以用来制备本发明的抗体。例如，可以将所述的SEBF多肽或其片段给予动物以诱导多克隆抗体的产生。或者，这里使用的抗体可以是通过使用杂交瘤技术(见例如Hammerling等.，InMonoclonalAntibodiesandT-CellHybridomas，Elsevier，NY，1981)制备的单克隆抗体。SEBF抗体可以用于在植物中阻止SEBF的作用。例如，可以制造表达SEBF抗体(单链抗体除外)的转基因植物。该抗体与SEBF的结合将会抑制其活性，从而导致处于SEBF控制下的基因去抑制。因此，优选的抗体是“中和的”抗体。“中和的”抗体指的是能够干扰SEBF多肽一切生物学活性的抗体，特别是能够干扰SEBF抑制基因活性能力的抗体。优选地，所述的中和抗体可以使SEBF多肽的能力降低50，55，60或者65％，更优选为70，75，80或者85％，最优选为90，95，99％或更多。可以使用包括那些在此描述的在内的任何标准测试来评价可能中和的抗体。一旦产生，单克隆的和多克隆的抗体优选通过蛋白印迹、免疫沉淀分析或者任何其它合适的方法来测试特异的SEBF识别。或者，可以将所述的抗体通过与质体转运肽翻译融合而将其特异地靶向质体，从而引起对SEBF的质体功能的特异抑制。可以通过将所述抗体的表达处于可诱导启动子的控制之下来控制其表达的时间，所述的可诱导启动子例如可以通过雌激素处理诱导的启动子。本发明因此还包括这样的抗体和使用其的方法。用来生产抗体的方法在本领域为人所熟知。F)遗传修饰的细胞和植物本发明还涉及植物性宿主，特别是植物，其被遗传修饰以降低(或者增加)与在植物基因的调控/启动子区域存在(或不存在)序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)相关的常规生物学活性。取决于将在下文中加以描述的具体用途，这样的植物是有利的在该植物中，至少有一些细胞已经被遗传修饰而使序列BTGTCNC失活(突变、删除等等)。在其它情况下，优选将序列BTGTCNC或者YTGTCNC插入到所述植物的特定基因中。本发明还涉及被遗传修饰以用来表达较高(或者较低)水平多肽的细胞和有机体，所述的多肽能够特异结合序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)(即细胞或者有机体内源水平的调节)。取决于将在下文中加以描述的具体用途，这样的细胞、特别是植物细胞是有利的所述的细胞已经被遗传修饰而增加了至少一种能够特异结合序列BTGTCNC或者YTGTCNC的多肽的水平，例如SEBF蛋白或功能性SEBF同系物。在其它情况下，可以优选降低这些多肽的水平。在H部分中，描述了如何制备和/或使用这些遗传修饰植物的具体实例。G)组合物本发明还涉及用于下列用途的组合物1)在植物中调节与存在(或不存在)序列BTGTCNC(SEQIDNO23)、更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)相关的常规生物学活性，和/或2)在植物中调节能够特异结合序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，和更优选为序列YTGTCNC(SEQIDNO24)的多肽的表达水平(即所述植物内源性水平的调节)。这样的组合物应包含有效数量的、与稀释剂或载体相结合的、至少一种能够直接或间接实现一种或者全部上述所需效果的化合物。除草剂是能够通过结合和抑制特定植物蛋白的功能来影响植物生理和发育的小分子的实例。在施用本发明的组合物之后，对所述的化合物及其数量进行选择，这样以致当与不存在该组合物的相应植物相比较时，在本发明中所用的植物中至少有一些细胞发生了所需的调节作用。依照本发明合适组合物的更具体的但非限制性实例将在下文的H部分给出。被适当组合物处理过的植物可以表现出对病原体的诱导的抗性。取决于处理的时间，也可以将所述的组合物用于增加果实成熟和数量，或者用来诱导衰老。所述的载体或者稀释剂可以是溶剂如水、油或者醇。所述的组合物还可以包含其它的活性制剂如肥料和生长调节剂。如果需要，也可以在存在或不存在杀真菌剂或杀虫剂的情况下，用乳化剂配制所述的诱导组合物。本发明实践中使用的化合物的精确数量将取决于所需的应答类型、所用的制剂和所处理的植物的类型。H)本发明用途的具体实例以下的实例是对本发明应用的广泛范围进行的描述，不是意图限制了本发明的范围。I-植物对病原体的增加的抗性或耐受性由于SEBF是防御应答的转录阻遏物，而且已经在大量的防御基因中发现了其结合位点，已显示所述防御基因的表达引起或者参与植物中的防御应答，因此，抑制或者减少SEBF累积(和/或功能性SEBF同系物累积)和/或抑制或者减少常规的蛋白生物学活性能够增加植物对病原体的抗性或能够更快地诱导植物的防御机制。许多方法可以用来在所有植物物种中实现这种SEBF内源水平的降低和/或SEBF生物学活性(和/或功能性SEBF同系物的活性或水平)的降低，这些方法包括通过在转基因植物中表达SEBF基因或其部分基因的反义拷贝；通过表达诱导SEBF共抑制机制的正义拷贝(sensecopy)；通过在其中插入外源DNA分子来形成SEBF基因敲除；通过SEBF基因的化学诱变；通过表达切割SEBFmRNA的核酶；或者通过任何其它引起SEBF基因表达降低、SEBFmRNA累积的方法，和其它合适的方法。类似地，也可以遗传修饰SEBF结合位点，使序列BTGTCNC(或者YTGTCNC)失活(移除、突变、删除等)。将序列BTGTCNC(或者YTGTCNC)加入到目的基因的启动子中，会降低该特定基因的表达水平。在一些情况下，例如在内源性SEBF活性非常弱的情况下，除了插入SE序列，可能还需要SEBF的过表达来使SE进行正确的基因调控。另一方面，移除序列BTGTCNC(或者YTGTCNC)将会得到更高的序列表达。这样的启动子改变在SEBF(和/或功能性SEBF同系物)水平无法改变的植物中是非常有用的。例如，从防御基因中移除该序列并在转基因植物中引入该修饰基因，会引起该基因的组成型表达和引起对病原体更高的抗性。SEBF(和/或功能性SEBF同系物)的过表达会导致植物对感染的抗性降低。这一性质对于控制转基因植物传播也可以是有用的。例如，可以进一步遗传修饰已经被设计成表达药用化合物的转基因植物以使其对病原体高度敏感。通过使用已知不会感染野生型植物的病原体来处理这些植物，将会很容易将它们从耕地中除去。II.修饰的植物对生长素和乙烯的应答i)生长素生长素是扩散性生长促进植物激素。存在于大多数植物中的主要生长素是吲哚-3-乙酸(IAA)。生长素在低浓度下有活性，合成类似物2，4-二氯苯氧基乙酸(2，4-D)和萘-1-乙酸(naphtalene-1-aceticacid)(NAA)被应用于农业以诱导生根和促进果实的固定和发育。在高浓度下，生长素抑制植物生长并且通常被用作除草剂。吲哚-3-乙酸主要由L-色氨酸合成，但选择的途径涉及通过腈水解酶的作用来转换吲哚-3-乙腈。由于生长素活化控制乙烯生产的ACC合酶基因，所以高浓度的生长素通常伴随着乙烯生物合成速度的增加。如下文中实施例1中所示，生长素应答元件与SEBF的重叠。这说明SEBF(和/或功能性SEBF同系物)能够结合到生长素应答元件上。因此SEBF及其功能性同系物可以参与由生长素控制的基因抑制。因此，可以通过调节SEBF(和/或功能性SEBF同系物的水平)的内源水平来增加或者降低由生长素控制的基因的诱导。可以通过在上文I部分中描述的一种策略来降低SEBF水平。与其它植物相比，具有较低水平SEBF或者具有较低SEBF活性的植物可能具有对内源性生长素增加的敏感性，并且表现出增加的生长、生根和果实数量，反之亦然。具有较低SEBF(和/或功能性SEBF同系物)内源性水平或者具有较低SEBF活性的植物也可能变得更加敏感于用生长素及其类似物对其进行的外源处理。因此，与其它植物相比，可以使用更少的基于生长素的除草剂来去除这些植物。这一性质对于控制转基因植物传播也是有用的。例如，可以进一步遗传修饰已经被设计成表达药用化合物的转基因植物，以使其对生长素除草剂高度敏感。通过喷雾低剂量的生长素除草剂，将会很容易从耕地中将这些植物去除。或者，具有较高内源性SEBF水平的植物如过表达SEBF基因的转基因植物，可能对生长素及其类似物的敏感性较低，从而给这些植物赋予了生长素除草剂抗性。当然，也可以考虑插入、删除、突变SEBF结合位点序列以增加/降低SEBF的生物学活性并且相应地调节植物生长素应答。ii)乙烯乙烯影响种子萌芽、生根和苗生长、花发育、衰老和花与叶的脱落、和果实成熟。乙烯是引起果实过成熟的原因而且这是在果实收获以后导致果实腐烂的重要原因。生长素诱导的ACC合酶，催化乙烯生物合成过程中的限速步骤。如下文中实施例1中所示，SEBF结合位点存在于马铃薯和许多植物物种的ACC合酶基因的启动子中(见表5)。这强烈提示SEBF调控ACC合酶基因的生长素诱导。如下文实施例中所示，SEBF与Pti4之间的相互作用同样支持该假说，Pti4是乙烯应答元件结合蛋白家族中的一员。因此具有较高内源性SEBF(和/或功能性SEBF同系物)水平的植物，如过表达SEBF的转基因植物应该能够下调ACC合酶并能够降低乙烯生产。乙烯生产的下降又会延迟果实成熟并防止果实过成熟。另一方面，具有较低内源性SEBF水平或者较低SEBF活性的植物，如表达SEBF基因或其部分的反义拷贝的植物，可能表现出果实早熟。将序列BTGTCNC(或者YTGTCNC)加入目的基因的启动子中将会降低该特定基因的表达水平。相反，去除序列BTGTCNC(或者YTGTCNC)将会得到较高的序列表达。这样的启动子改变在那些SEBF水平无法被改变的植物中是有用的。例如，从ACC合酶基因的启动子移除BTGTCNC(或者YTGTCNC)序列会增加乙烯产量。在经过修饰作用以后，被修饰的启动子和编码序列将被引入植物以生成转基因植物。III.叶绿体功能降低SEBF在叶绿体中的浓度或者降低该细胞器中SEBF的生物学活性会导致该植物明显的表型改变。如下文实施例1中所示，已经显示SEBF同系物在质体中与RNA相互作用并稳定RNA。因此，通过调节SEBF水平(和/或功能性SEBF同系物水平)来调节SEBF结合于其上的质体mRNAs的表达应该是可能的。这可能会使植物具有更好的光合速度或固碳速度，或者使植物能够更好地适应其环境。IV.蛋白模块和其它研究手段如下文实施例中所示的那样，SEBF可以被定位于两个不同的区室中核和质体。这说明SEBF氨基酸序列包含含有定位信息的第一“标记”(SEQIDNO22的氨基酸1-59)，该标记可以指导SEBF到达质体，和指导SEBF到达核的第二“标记”。通过在所述的标记和要被靶向这些细胞区室中的蛋白之间制造翻译融合体，这些标记可以被用来指导其它蛋白到达质体或者核。初步证据还提示在植物受到创伤或者病原体激发的时候，SEBF从其DNA结合元件上释放下来。可以利用这一特征来产生在不存在诱导事件的情况下严格调控的启动子系统。这可以通过将SEBF结合序列插入到已知的可诱导启动子中来实现。然后这样的遗传修饰的启动子就会需要两个诱发事件(其中一个是新引入的SEBF结合序列)来活化相关基因的表达。V.筛选调节SEBF结合的分子由于SEBF是一种结合分子，可以利用这一特征来筛查和/或鉴定这样的新化合物该化合物抑制SEBF结合到其DNA元件(序列BTGTCNC)上；抑制SEBF结合到质体或核mRNA上；抑制SEBF与另一蛋白的相互作用；和/或负面影响SEBF三维结构(例如翻译后修饰)。可以通过电泳迁移率变动试验、可以通过使用各种化学制剂处理植物的原位分析、或者可以通过任何其它本领域的已知技术来体外测定对SEBF结合活性的抑制。如前所述，能够抑制SEBF结合活性的化合物具有许多用途，特别是用来增加植物对病原体的抗性或者诱导其防御应答机制；用来增加植物对内源生长素的敏感性并因此增加该植物的生长、生根和果实数量；用来增加植物对基于生长素的除草剂的敏感性；和用来诱导果实成熟。类似地，如前所述，能够增加SEBF结合活性的化合物具有许多用途，特别是用来降低植物对生长素及其类似物的敏感性(从而给这些植物赋予生长素除草剂抗性)；用来延迟果实成熟并防止因乙烯产生而导致的果实过成熟。实施例1以下的实施例描述了本发明应用的广阔范围，不是意图限制本发明的范围。在未脱离本发明的主旨和范围的条件下可以进行修改和改变。尽管可以在实践中使用任何类似或等同于此处所描述的那些的方法和材料来检验本发明，但在此处仅描述优选的方法和材料。a)导言作为对病原体感染的响应，植物会被引发多种防御特异性事件，包括活性氧种类产生、G蛋白活化、细胞壁加固和诱导引起防御基因转录活化的信号传导级联(Dixon等.，1994；Blumwald等.1998)。尽管正在发现信号级联的主要成分，但是只鉴定出了极少的在转录水平整合这些信号的转录因子。已经被很好表征的、由病原体侵入诱导的PR基因提供了用于研究防御基因转录调控的良好模型。基于序列相似性，PR基因被细划分为11类(VanLoon等.，1994)。PR-10基因家族被细划分为两组而且PR-10基因家族编码小的、酸性的、15-18kD的细胞内蛋白(Osmark等，1997)。尽管已经证实PR-10蛋白具有RNA酶活性，但是它们与典型的RNA酶并不具有任何序列相似性(Moiseyev等.，1994；Swoboda等.，1996)。在马铃薯中，已经鉴定出该家族中的三个成员，其中PR-10a是被表征得最好的。对表达进行的研究已经鉴定出了涉及PR-10a基因调控的顺式作用元件。位于核苷酸-135--105之间的诱导子应答元件(ERE)对于诱导子诱导的基因表达是必要且充分的(Matton等，1993；Després等.，1995；Desveaux等，2000)。PBF-2是一种单链DNA结合因子，其似乎在从ERE的PR-10a活化中发挥作用(Després等.，1995；Desveaux等，2000)。尽管ERE的存在对于PR-10a活化是充分的，但是去除位于-52--27之间的沉默元件(SE)，会引起进一步的活化作用，这一情况提示该元件和ERE一起，参与了PR-10a的调控(Matton等，1993；Després等.，1995)。在本发明中，我们利用瞬时表达研究证实只有包含序列GACTGTCAC的这9个核苷酸对于全部SE活性是必需的。我们还鉴定出了一种核因子(SEBF)，该因子显示出特异结合到序列BTGTCNC的序列。数据库检索显示此序列存在于许多PR基因的启动子中。该序列还显示出与生长素应答元件的序列有高度序列相似性，提示该序列与SEBF在由植物激素生长素及其功能性类似物所诱导基因的调控中起作用。特别是，SEBF元件存在于ACC合酶基因的启动子中，该基因被生长素所诱导并且编码乙烯生物合成中的一种关键的酶——另一种植物激素。因此，SEBF可能通过生长素的作用参与乙烯合成的调控。已经从马铃薯块茎中将SEBF纯化均匀，对该蛋白的N-末端测序分离出了编码SEBF的cDNA。推导得到的氨基酸序列显示出与叶绿体RNA结合蛋白具有高度的序列相似性。叶细胞的亚细胞划分证实SEBF同时位于叶绿体和核中，提示其在这两个细胞区室中均发挥功能。重组体SEBF在瞬时表达系统中的过表达，引起PR-10a-uidA报告基因融合体出现SE-依赖性转录抑制，证实了SEBF作为转录阻遏物的作用。通过使用酵母双杂交系统，我们鉴定出了与SEBF相互作用的蛋白。其中的一种蛋白是Pti4，它是在植物病原体诱导的防御应答过程中PR基因的转录调控子。已知Pti4与腈水解酶相互作用，腈水解酶是一种涉及生长素生物合成的酶。此外，Pti4是乙烯应答元件结合蛋白(EREBP)中的一员，已知EREBP涉及植物对乙烯的应答。b)材料与方法所有标准的分子生物学操作均依照Sambrook等.(1989)进行.植物材料马铃薯块茎(Solanumtuberosum，肯纳贝克河品种)来自魁北克农业部研究站(theQuebecMinistryofAgriculture“LesBuissons”ResearchStation)(Pointe-aux-Outardes，Canada)。将块茎储存在4℃的黑暗条件下，使用前24小时将其至于室温下。如Magnien等.(1980)所述，从培育在培育箱中的4-5周龄的马铃薯植物中分离叶肉原生质体。在长日照光周期条件下，从培育在环境培养箱(Conviron，Winnipeg，Canada)中的植物中分离马铃薯叶。GUS报告基因构建体和分析用PCR寡核苷酸1(GCCAAGCTTTAGATAAAATGACACAAATGTCAAAAATGG；SEQIDNO27)和寡核苷酸2(CCACCCGGGGATCCAGCTTTGAAC；SEQIDNO28)来将-135位的XbaI位点替换成HinDIII位点，通过PCR扩增质粒p-135(Matton等.，1993)的PR-10a启动子片段来产生野生型(WT)构建体。在用HinDIII和BamHI消化以后，将片段插入pBI201中。突变体m1先前已经被描述过(pLP9，Desveaux等.，2000)。突变体m3，m4和m5是通过使用突变的寡核苷酸(图2A)和PCR寡核苷酸2、用PCR产生的。用XbaI和BamHI切割PCR片段并将其插入上述的野生型质粒。对于突变体m2，使用寡核苷酸1和寡核苷酸3(CAGTCCATGGTTAAATCAAC；SEQIDNO29)合成HinDIII/NcoIPCR片段。而后，使用寡核苷酸2和寡核苷酸4(TAACCATGACTGTCACTTG；SEQIDNO30)合成NcoI/BamHIPCR片段。将这些片段连接到用HinDIII和BamHI切割的pBI201中以产生突变体m2(SEQIDNO2)。使用下面的引物从烟草中扩增CHN50启动子5’-GCCGCAAGTTTTCTGCAGTGTTTTTGCTC-3’(SEQIDNO31)和5’-GGTTTGGATCCAGTAGTAAAGTGGCGA-3’(SEQIDNO32)。用PstI和BamHI消化扩增的DNA，随后将其插入质粒pBI201的相同位点。使用图12C中所示的寡核苷酸和寡核苷酸CHN50R5’-ATGTCTACTCCTGCGCTCATT-3’(SEQIDNO33)，用ExSiteTM基于PCR的定点诱变试剂盒(Stratagene)在启动子中产生突变。在Whatman/BiometraTgradientTM热循环装置仪中进行扩增。对所有的构建体进行测序以确保没有被PCR插入的突变。先前已经描述了瞬时表达系统(Matton等.，1993)。使用由共电穿孔1μg质粒pWB216(Barnes，1990)产生的荧光素酶活性，对电穿孔效率校准所有的数值。将编码全长SEBF的序列插入到包含双重CaMV35S增强子的pBI223D中。将5μg表达载体加入到测试中以用于反式阻抑研究。对照载体表达处于相同启动子控制下的、含有FK506-结合蛋白(FKBP；Pelletier等.，1998)的人融合蛋白。提取物的制备粗核提取物制备如下将250ml冷NEBH(10mMPIPES-KOH，pH6.0，1M2-甲基-2，4戊二醇，0.15mM精胺，0.5mM亚精胺，10mMMgCl2，14.3mMβ-巯基乙醇，0.1mMPMSF)中的200g马铃薯块茎或者75g叶在混和器中以最大速度匀浆1分钟。在4℃下倾析5分钟后，在真空下用5层MiraclothTM过滤匀浆。将过滤物在SorvalGSA转子中以5,000RPM的速度离心5分钟以沉淀核。上清液作为胞质部分。在NP-40缓冲液(10mMMES-NaOHpH6.0，260mM蔗糖，10mMNaCl，1mMEDTA，0.15mM精胺，0.5mM亚精胺，14.3mMβ-巯基乙醇，0.1％BSA和1％NP-40)中将核清洗三遍以去除细胞器和细胞骨架污染。将最终的沉淀重新悬于5ml的200mMNaClSEBF结合缓冲液(SBB10mMTris-HCl，pH7.5，1mMEDTA，14.3mMβ-巯基乙醇，可变的NaCl浓度)中。通过超声处理将核破裂，将裂解物在15,000RPM下离心45分钟。将上清液或者立刻用于SEBF纯化或者在-70℃贮存在10％的甘油中。在此条件下，SEBF结合活性可以几个月保持稳定。叶绿体依照Gegenheimer(1990)的方法来制备。确定提取物中的酶活性按照Arnon(1949)测定叶绿素含量。分别按照Gross和apRees(1986)、Hucklesby等.(1972)、和Smith与apRees(1979)测定碱性焦磷酸酶、亚硝酸还原酶和醇脱氢酶。电泳迁移率变动试验(EMSA)将蛋白提取物(200mMNaClSBB中)与20,000CPM的32P末端标记的探针混和。结合反应体系(40μl)含有100ng的poly(dI-dC)以消除非特异性结合。将该反应体系置于冰上15分钟。通过将混合物加载到5.7％的、在Tris-甘氨酸缓冲液(25mMTris，195mM甘氨酸)中制备的聚丙烯酰胺凝胶上，在4℃下施加200V的电压2.5个小时来实现混合物的电泳分离。将凝胶置于柯达X-omatAR胶片上，在-70℃曝光过夜。从核提取物中纯化SEBF将粗核提取物加载到在200mMNaClSBB中平衡的3mlQ-琼脂糖TMFPLCTM(Amersham-PharmaciaBiotech)柱上。先用10体积的200mMNaClSBB、随后用15体积的300mMNaClSBB清洗柱。SEBF被洗脱在4ml的400mMNaClSBB中。随后对洗脱液进行两轮亲和纯化。亲和珠的制备按照Desveaux等.(2000)，通过将生物素化的WTSE寡核苷酸与链霉抗生物素包被的顺磁珠(Sigma)偶联来制备。在使用前用400mMNaClSBB将珠子清洗两遍。将20μl的EDTA500mMpH8.0、10μg的poly(dI-dC)和5μl的NP-40加入1ml的洗脱液中。将混合物加到亲和珠上并置于冰上15分钟，期间不时地混和一下。在利用磁铁将珠子从溶液中分离出来以后，先将珠子在1ml的200mMNaClSBB中清洗，随后将珠子在1ml的1MNaClSBB洗液中清洗。通过随后两次0.1ml的2MNaClSBB清洗，SEBF从珠子上被洗脱下来，并在37℃温育5分钟。用Ultrafree4TM离心滤器10KBioMaxTM(Millipore，Bedford，USA)将含有SEBF的洗脱液脱盐。将1kg块茎的等价物集中并用丙酮沉淀。将沉淀重悬于Laemmli溶解缓冲液(Laemmli1970)中，并加载到12％的SDS-聚丙烯酰胺凝胶上。将蛋白转移到PVDF膜(BIO-RAD)上并用考马斯亮蓝染色。切出条带并用EasternQuebecProteomicsCoreFacility(Ste-Foy，Canada)对其进行N-末端分析。通过对29kD条带的N-末端分析，得到了序列VTLSDFDQIEEVEAGDDDEEEGGLSDEAGASYEERN？NPDL；SEQIDNO34)。Southwestern分析按照Vinson等.(1988)进行操作。SEBF的克隆使用相应于SEBF的N-末端序列的简并寡核苷酸(GTKACWYTITCIGATTTYGAYCA；SEQIDNO35)和cs-RBD特定引物(ARRTTWCCIACRAARATYTT；SEQIDNO36；Mieszczak等.，1992)(I对应于肌苷)来生成141bp的SEBF的基因组PCR片段。特定引物GTTTGAGTGATGAAGGTGC(SEQIDNO37)衍生于该141bp片段的序列，使用Israel(1993)提出的方法将其用来探察马铃薯cDNA库(Matton和Brisson，1989)。在使用基因特异引物和M13通用引物的PCR反应中使用18,000个噬菌体的23个库。两个库得到了大约1,000bp的PCR片段。对这些库作进一步的稀释并重复操作，直到能够分离出一个单一的噬菌斑。按照制造商的说明书，通过使用ExAssistTM系统(Stratagene)来切出阳性克隆。用ThermosequenaseTM(Amerham-PharmaciaBiothech)在循环测序反应中对该克隆的双链均进行测序，所述反应随后在LI-CORTM自动测序仪(LI-COR，Lincoln，USA)中进行。本发明的发明者已经于2001年12月10日在GenBankTM中公开了SEBF的核苷酸和氨基酸序列(SEQIDNOs21和22)，登记号为No.AF389431。Southern分析和基因组分析Ausubel等(2001)描述了用来提取基因组DNA和DNA印迹的步骤。下面的引物是根据烟草和鼠耳芥属SEBF同系物(Ye等.，1991；Ohta等.，1995)中内含子的预测位置设计的，并将其用于基因组DNA的PCR分析TGCCGTTCTGTCTTCACAATTCTTTTGCTTC(SEQIDNO38)；UCAACATCTCCAGCACGCTCAAAAAGCTCAG(SEQIDNO39)；VCCTCTGCTTCTTCCTGTAAGCTTGTCATAG(SEQIDNO40)；WCAGTTGAAGCCGCCTGTCAACAATTTAATG(SEQIDNO41)；XTTGACGGGAGGGCACTGAGGGTGAATTCTG(SEQIDNO42)；YGCTTTCAATTGCAT-CGTTGACCTCCTTAG(SEQIDNO43)；和ZGCTTCAGCAGGACTTACACGGATGGCCCTG(SEQIDNO44).抗体生产和蛋白印迹在质粒pGEX-4T1TM(Amersham-PharmaciaBiotech)中将编码SEBF的cDNA与谷胱甘肽S-转移酶(GST)基因融合。在BL21细胞中表达融合蛋白(GST-SEBF)。裂解细胞以后，在谷胱甘肽柱上纯化该融合蛋白(Smith和Johnson，1988)。用凝血酶(Amersham-PharmaciaBiotech)切割GST标记并通过二次过谷胱甘肽柱将其从提出物中移除。依照Harlow和Lane(1988)进行兔免疫。简单地说使用50μg重组SEBF来免疫家兔，30天后二次注射150μg来增强免疫反应。在二次注射后的第14天处死兔。对于蛋白印迹研究，使用1∶5000稀释的SEBF抗血清，并根据制造商的说明书用ECLTM检测试剂盒(AmershamParmaciaBiotech)来揭示抗体—抗原的相互作用。酵母双杂交筛选使用DupLEX-ATM酵母双杂交系统(OriGene，Rockville，MD，USA)进行双杂交筛选。将编码成熟SEBF的序列和LEX-ADNA结合结构域插入饵载体pEG202的框架中。在靶载体pJG4-5中制得的番茄cDNA文库获自美国农业部的B.Baker(Zhang等.，1999)。依照制造商的说明书，在株系EGY48中筛查5百万个克隆。重新转化每个阳性克隆以证实相互作用的真实性。随后使用T7测序试剂盒(Amersham-PharmaciaBiotech)对这些阳性克隆的双链均进行测序。通过NCBITM的BLASTXTM程序鉴定翻译的蛋白。c)结论SEBF的鉴定以前的研究在马铃薯PR-10a基因的启动子中鉴定出了一种负调控序列(SE)(Matton等.，1993；Després等.，1995)。因此，我们力求鉴定出一种能够通过结合到该序列来调控PR-10a表达的核蛋白。由于PR-10a似乎在ERE被一种单链DNA(ssDNA)结合蛋白正调控(Desveaux等.，2000)，所以我们寻找能够结合单链或者双链形式SE的蛋白。将马铃薯块茎的粗核提取物与单链或双链放射性标记的SE共培养，并通过电泳迁移率变动试验(EMSA)来对其进行分析。图1证实一种叫做SEBF(代表SE结合因子)的核因子结合SE编码链(泳道1)。SEBF不能结合非编码链(泳道3)或者双链DNA(泳道4-6)。这些结果表明SEBF是一种只能识别沉默元件一条链的ssDNA结合蛋白。我们先前已经证明另一个PR-10a启动子的顺式元件同样与ssDNA结合蛋白相互作用。该元件位于-135--105之间、与ssDNA结合因子PBF-2相互作用(Després等.，1995；Desveaux等.，2000)，PBF-2已经显示在原生质体中活化PR-10a-uidA报告基因构建体的转录(Desveaux和Brisson，inpreparation)。因此。我们的资料提示单链DNA结合蛋白与PR-10a启动子的一个大的区域接触。据报道，动物中的几种基因具有相似的情况(Rothman-Denes等的综述1998)，并且通过对c-myc原癌基因启动子的研究阐明了这种情况，其中几种类别的单链顺式元件在体内出现并且被不同的特异ssDNA结合因子所结合(Michelotti等.，1996)。SEBF对SE的结合与PR-10a的转录抑制相关对SE进行突变分析以确定SEBF结合位点由哪些核苷酸组成、这些核苷酸在体内是否对于PR-10a表达的调控是重要的。合成SE编码链的突变型(图2A)并在EMSA研究中将其用作探针(图2B)。将同样的突变也引入与编码β-葡糖醛酸糖苷酶(GUS)的uidA报告基因融合的PR-10a启动子中，并在瞬时表达系统测定所得到的转录活性(图2D)。如图2B所示，与WT(SEQIDNO45)相比，SEBF与突变体m3(SEQIDNO3)和m4(SEQIDNO4)的结合明显下降。相反，将这些突变引入PR-10a的启动子中会引起瞬时研究中的报告基因活性增加(图2D，m3和m4)。在结合中表现出轻度增加(图2B，m2(SEQIDNO2))或者降低(图2B，m5(SEQIDNO5))的突变没有显示出改变的转录活性(图2D，m2和m5)。使用其中80％的序列被改变的突变体m1(SEQIDNO1)，彻底破坏SEBF的结合(图2B，m1)。这种结合的缺失与在瞬时研究中观察到的最高的转录活性相关(图2D，m1)。因此，PR-10a启动子的转录活性与体外SEBF与SE的结合是反向相关的。这提示SEBF是担负SE介导的PR-10a抑制的反式作用因子。序列BTGTCNC定义了SEBF的DNA结合位点图2中的结果显示，SEBF结合位点位于序列GACTGTCAC(SEQIDNO26)中。为了进一步描绘该元件，将额外的突变引入此区域并通过EMSA监测其对SEBF结合的影响。如图3所示，影响序列CTGTCAC(SEQIDNO25)的突变显著降低了SEBF的结合(图3B和3C，突变体m8(SEQIDNO8)，m9(SEQIDNO8)，m11(SEQIDNO11)，m13(SEQIDNO13)，m14(SEQIDNO14)，m15(SEQIDNO15)，m16.(SEQIDNO16)，m17(SEQIDNO17)，m18(SEQIDNO18))，而此区域之外的突变则不影响结合(图3B和3C突变体m6(SEQIDNO6)，m7(SEQIDNO7)，m12(SEQIDNO12)，m20(SEQIDNO20))。在所述序列中只突变A不影响结合(图3B和3C；突变体m12(SEQIDNO12)和m19(SEQIDNO19))。实际上，任何核苷酸都可以取代A而不影响SEBF结合(未显示)。对SEBF结合位点的进一步研究表明，可以用G或者T取代第一个C。在该特定位置唯一降低SEBF结合的核苷酸是A(图3，m13(SEQIDNO13))。因此，共有SEBF结合位点是BTGTCNC(SEQIDNO23)、优选为YTGTCNC(SEQIDNO24)，其中N是所有核苷酸，B是C，G或者T，Y是C或者T。SEBF结合位点存在于其它防御基因中表5列出了DNA数据库的检索结果，其揭示SEBF结合位点存在于许多已知被病原体诱导的基因的启动子中。这些包括来自番茄和水稻的葡聚糖酶(GenBankTMacc.NosAF077340和X58877)；来自鼠耳芥属，百慕大草(bermudagrass)，马铃薯，水稻和烟草的几丁质酶(GenBankTMacc.NosY14590，AF105426，AF153195，AF013581，X16938)；来自大麦和烟草的PR-1(GenBankTMacc.NosZ48728和X66942)以及来自苹果，桦，欧芹和豌豆的PR-10(GenBankTMacc.NosAF020542，AJ289771，U48862和U31669)。以前鉴定的CHN50基因的阻遏物元件含有SEBF结合位点。在EMSA中对该元件进行测试以确定其是否可以被SEBF识别。图9和12A证实了SEBF可以结合CHN50基因的阻遏物元件，这表明SEBF在此其它防御基因的调控中发挥作用。另外，图12B证实对SEBF的结合重要的残基对CHN50基因的抑制起非常大的作用。另外，破坏SEBF结合的突变(M2，图12A)引起CHN50基因的去抑制(M2，图12B)。表5还显示在许多创伤或者应激反应可诱导的基因中发现了SEBF结合位点。将所有这些结果综合在一起，提示SEBF及其元件在植物防御应答中、特别是在植物防御基因的调控中起作用。SEBF结合位点与AuxRE相似如表5所示，将SEBF结合位点(BTGTCNC)与其它调控序列进行比较，结果发现其与存在于组合物AuxRE中的生长素应答元件(TGTCTC；SEQIDNO55)具有很强的相似性。对公开的AuxRE的5’到TGTCTC的核苷酸进行分析，结果揭示了其富集嘌呤(C或者T)，这提示SEBF可能结合大多数的AuxRE。另外，已经显示AuxRE在不存在生长素的情况下抑制组成型增强子元件的作用(Ulmasov等.，1995)，而且不管有没有生长素存在，它们都似乎被一种尚未鉴定出来的、能够与ARF因子相互作用的因子所占据(Ulmasov等.，1999)。SEBF最有可能对应于这一因子的原因是1)其存在于叶和块茎的核中；2)其作为转录阻遏物发挥作用(见下)；和3)其应该结合大多数Aux-RE，作为例证SEBF结合到一种被最好表征的AuxRE上，该AuxRE是大豆GH3基因的D4元件(图11；Ulmasov等.，1995)。同样已知生长素负调控几种防御基因(Grosset等.，1989；Jouanneau等.，1991)。近来，分离出了一种鼠耳芥属多效性突变体，其同时显示出增加的病原体的易感性和生长素不敏感性，这表明了在引起这些表型的通路之间复杂的相互作用(Mayda等.，2000)。这些结果，以及SEBF结合位点与AuxRE之间的很强的相似性，增加了SEBF可能还参与基因表达的激素调控的可能性。SEBF的纯化使用由纯化蛋白的氨基酸序列推导得出的信息，克隆出了SEBF的cDNA。利用阴离子交换层析和亲和纯化的结合，从块茎核中纯化出了SEBF。下面的表4显示得到了纯化了20,700倍的SEBF。表4从马铃薯块茎中纯化SEBF馏分全部蛋白全部活性a特异活性纯化产率(mg)(pgDNA)(pgDNA/mg)(倍数)(％)粗核1123.3×1062.9×1041100Q-Sephb1.153.0×1062.6×1069091Aff.1c4.0×10-3d2.3×1065.8×10820,00070Aff.2e3.5×10-3d2.1×1066.0×10820,70064a全部活性，通过测定在EMSA中SEBF结合的标记探针和通过计算结合在每个馏分中的DNApg数来确定bQ-Seph.，Q-琼脂糖Fast-FlowTM阴离子交换层析cAff.1，第一轮DNA亲和层析d从着色的胶来估计eAff.2，第二轮DNA亲和层析用SDS-PAGE和考马斯染色对色谱馏分进行分析，结果揭示了在多数纯化馏分中的两种不同的条带29kD和28kD(图4，泳道4)。为了确定这两种条带究竟哪一种具有DNA结合活性，将来自第二亲和纯化(Aff.2)的蛋白转移到硝化纤维素膜上并用野生型SE寡核苷酸探查。结果显示两种纯化的蛋白可以独立地与所述沉默元件相互作用(图4，泳道5)。对两种蛋白均进行N-末端序列分析。SEBF的克隆由29kD蛋白的N-末端序列分析得到一段40个氨基酸的序列。对28kD蛋白的氨基末端测序显示每个循环有不只一个氨基酸。但是，可以观察到28kD蛋白与29kD蛋白有明显的序列相似性，这表明28kD条带含有降解形式的29kD蛋白。使用获自29kD蛋白的氨基酸序列，精心设计PCR策略来克隆cDNA(见材料与方法)。图10显示了SEBFcDNA的序列(SEQIDNO21)，而其衍生于cDNA克隆的氨基酸序列(SEQIDNO22)显示在图10和图5中。具有转运肽特性的59个氨基酸序列位于通过N-末端测序而确定的40个残基(见图5中的黑体部分)之前。出现在成熟蛋白N-末端区域的一个酸性区域位于两个共有序列型RNA结合结构域(cs-RBD，图5中的下划线部分)之前。这些结构域，也已知为RNA识别基序(RRM)，RNP共有序列(RNP-CS)或者RNA基序(Burd和Dreyfuss，1994)，它们被一个甘氨酸富集区分开。前已提及，数据库检索显示了其与一个核编码的叶绿体RNA结合蛋白家族具有高度序列相似性(见上文的表1-表3)。在SEBF中RNA结合结构域的存在以及与此结构域相关联的多种功能，提示SEBF也可能在RNA加工中起作用。已经显示，SEBF的烟草叶绿体同系物结合mRNA和含有内含子的pre-tRNAs(Nakamura等.，1999)。同样已经显示，它们给叶绿体中的mRNA赋予了稳定性和核糖核酸酶保护(Nakamura等.，2001)。另外，象哺乳动物的核编辑一样，叶绿体中的RNA编辑也涉及hnRNPs的存在(Lau等.，1997；Hirose和Sugiura，2001)。因此，SEBF代表这样的单链DNA结合因子它们能够参与核基因转录调控并且能够通过与RNA的结合在质体中控制基因表达。为了确证cDNA编码的蛋白在功能上与SEBF相对应，在大肠杆菌中将该蛋白表达为GST融合体、纯化并测试其与SE的结合。图2C显示重组体蛋白与SE寡核苷酸结合的结合特异性与天然SEBF相似(图2B)。SEBF的细胞分布从分离的核中纯化SEBF(表4)表明SEBF是一种核蛋白。然而，在重组体SEBF中的推定转运序列的存在提示，该蛋白也可能存在于质体中。这使我们对SEBF的亚细胞定位进行了研究。培养针对重组体SEBF的抗体，亚细胞部分来自马铃薯叶。通过酶测定确证每个部分的完整性。图6显示如预计的那样，醇脱氢酶活性局限于胞质部分。核没有叶绿体的标记—叶绿素，而且在胞质部分只观察到很少的污染。在核制备物中没有发现可以检测得到的碱性焦磷酸酶或者亚硝酸还原酶活性。已知这两种酶完全位于质体中(Miflin，1974；Gross和apRees，1986)。对这些部分进行的蛋白印迹分析表明，一种与SEBF免疫相关的蛋白出现在叶绿体和核中(图6)。相应于成熟型SEBF(图6重组体SEBF)分子量的单一29kD条带同时出现在这两个细胞区室中。在任何部分中都没有检测到更高分子量的蛋白，提示即使SEBF以前体形式合成，它也会在核输入前被肽酶有效地加工。SEBF的双重定位在叶绿体中存在与SEBF大小相似、免疫相关的蛋白，这提示此蛋白被有效地靶向了这个细胞区室。这一观点得到了以下证据的支持存在SEBFcDNA中编码的推定的转运肽；对其它物种的研究已经显示SEBF同系物存在于叶绿体中(Ye等.，1991；Mieszczak等.，1992；Ohta等.，1995)。SEBF是单拷贝基因为了排除核和叶绿体SEBF可能是不同基因的产物的可能性，使用限制性内切酶消化基因组DNA，并将其用于DNA印迹分析。如图7A所示，用SEBFcDNA片段探查基因组DNA产生了单个EcoRI条带和两个HinDIII条带。这是单拷贝基因所能产生的预期结果，因为在探针内没有发现EcoRI位点和单个HinDIII位点。存在两个XbaI片段是因为有一个XbaI位点在存在于基因的第三个内含子(未显示)。用PCR对马铃薯基因组DNA进行分析导致在编码SEBF的基因中鉴定出了三个内含子(图7B)。内含子1、2和3分别位于SEQID21的核苷酸454-455、核苷酸556-557、和核苷酸869-870之间。在鼠耳芥属和烟草中，这三个内含子存在于SEBF同系物的相同位置(Ye等.，1991；Ohta等，1995)。这些结果清楚地表明在马铃薯基因组中只有一个拷贝的SEBF基因。由于在基因的5’端没有内含子存在(图7C)，纯化蛋白中不存在转运肽不能归因于选择性剪接。通过对5’RACE产物进行测序可以证明这一点，测序结果全都显示其序列与SEBF序列相同(未显示)。在烟草和鼠耳芥属中该基因的基因组结构的保守性同样支持这些结论。综合在一起，所得到的结果表明核定位的SEBF是由单拷贝基因编码的，而且转运肽不会被不同的剪接所消除。这提示核SEBF和叶绿体蛋白衍生于相同的前体。由于在核中只能检测到成熟类型的SEBF，这还提示蛋白前体可能在叶绿体外被加工。在马铃薯中发现了类似的结果淀粉磷酸化酶，其被作为前体合成，其在初期块茎中被靶向造粉体但是却以被加工的形式累积在年长块茎的胞质中(Brisson等.，1989)。符合这些数据，Dahlin和Cline(1991)报道蛋白输入质体是被发育所调控的，在成熟的过程中伴随着质体丧失了其输入前体的能力。通过转运肽的磷酸化作用可以控制蛋白的差别输入，已经显示转运肽的磷酸化作用降低了叶绿体输入速度(Waegemann和Soll，1996)。在将来，确定SEBF在发育过程中的亚细胞定位是否改变将是很有意义的。不过，SEBF在叶绿体和核中的双重定位，使这种蛋白成为在防御应答过程中用于在这两个亚细胞区室中调控代谢作用的理想候选物质。以下的观点已经被很好地确立感染除了能够活化核防御基因，还导致植物初级代谢中的主要变化，包括光合作用和RuBisCO合成的速率的降低(Tang等.，1996；Somssich和Hahlbrock，1998)。因此，在上述的两个区室中，SEBF可能在协调由防御诱导的改变中发挥作用。SEBF能够抑制转录SEBF对SE突变型的结合以及在原生质体中作为负调控元件的它们的活性这两者之间的关联提示SEBF是介导SE依赖性抑制的因子。这一观点通过在马铃薯原生质体中共表达SEBF和各种报告基因构建体而得到证实。尽管通过使用野生型启动子构建体观察到了抑制作用，但是报告基因的活性太弱了而且结果在统计学上没有意义(图8WT)。这一结果是可以预料得到的，因为具有野生型SE的启动子活性早已被完全抑制了。为了避免这一问题，我们过表达SEBF和一种携带部分去抑制的突变体m4(见图2D)的构建体，重组体和纯化的SEBF(图2B和2C)对WT具有较低的亲和力。我们预计过表达的SEBF将会补偿其对所述突变体的较低的结合亲和力。图8证实，确实，与过表达对照蛋白FKBP观察到的活性相比，当SEBF过表达的时候，启动子活性下降了68％(图8，m4)。当过表达SEBF和不能结合SEBF的突变体m1(图8，m1)的时候，观察不到抑制作用，这证实所观察到的抑制作用需要被SEBF结合的顺式元件，而且这种抑制作用并不是因为激活剂受限或者翻译阻断而造成的。这些结果证实SEBF参与SE介导的PR-10a抑制，而且SEBF前体的表达导致核定位的活性。hnRNP属于被最好表征的、在真核生物的基因表达调控中起作用的ssDNA结合蛋白。例如，已经显示hnRNPD及其同系物激活(Tay等.，1992；Tolnay等.，2000；Lau等.，2000)或者抑制从多种启动子的转录(Kamada和Miwa，1992；Smidt等.，1995；Chen等.，1998)。另一种含有蛋白，人hnRNPA1的cs-RBD也已经显示抑制胸苷激酶基因的转录(Lau等.，2000)。因此，含有cs-RBDs的植物蛋白SEBF能够充当转录阻遏物就并不奇怪了。其它含有两个cs-RBDs的植物蛋白如鼠耳芥属FMV-3b，康乃馨CEBP-1，和烟草ACBF同样能够结合特异的调控顺式元件(Didier和Klee，1992；Maxson和Woodson，1996；Séguin等.，1997)并因此代表潜在的转录调控子。与Pti4相互作用的SEBF使用酵母双杂交系统来确定SEBF与哪些蛋白相互作用。在5种鉴定出来的相互作用因子中，两种与SEBF相对应，这表明该蛋白能够形成多聚体；一种对应于与DEAD盒样RNA解旋酶具有相似性的蛋白(Itadani等.，1994)；和两种相互作用因子对应于番茄转录因子Pti4(Zhou等.，1997)。已知Pti4与在番茄中控制针对细菌病原体的防御应答的Pto抗性基因之间相互作用。这些结果提示SEBF可能涉及被Pti4和Pto所调控的防御基因的调控。通过双杂交筛选，还鉴定出了其它的相互作用因子(列在表6中)。SEBF可能对这些蛋白的调控和涉及这些相互作用因子的过程发挥作用。表5SEBF结合位点的出现基因有机体GenBankTMacc.No.序列防御基因PR-10a马铃薯M29041CTGTCACPR-10b马铃薯M29042CTGTCACPR-10(ypr10b)桦AJ289770CTGTCTCPR-10(ypr10a)桦AJ289771CTGTCACPR-10苹果AF020542CTGTCACPR-10欧芹U48862TTGTCTC几丁质酶烟草X51599ATGTCTC几丁质酶马铃薯AF153195TTGTCAC几丁质酶百慕大草AF105426TTGTCTC几丁质酶鼠耳芥属Y14590TTGTCTC葡聚糖酶水稻X58877CTGTCAC葡聚糖酶番茄AF077340CTGTCACPR-1烟草X66942TTGTCACCTGTCACPR-1大麦Z48728TTGTCAC渗透蛋白(PR-5)烟草S68111TTGTCAC渗透蛋白(PR-5)烟草D76437GTGTCAC过氧化物酶小麦X85230CTGTCAC交替氧化酶(Alternative伏都百合花Z15117CTGTCACoxidase)(Voodoolily)抗真菌蛋白天麻(GastrodiaAF334813CTGTCTCelata)乙烯产生ACC合酶番茄AF043122GTGTCACACC合酶绿豆AB018355CTGTCACACC合酶马铃薯3Z27235TTGTCAC马铃薯2Z27234ATGTCCCATGTCTC马铃薯1Z27233TTGTCCC(2x)基因有机体GenBankTMacc.No.序列TTGTCTCGTGTCACATGTCTCACC氧化酶香蕉AF030411TTGTCTC纤维素酶乙烯诱导的大豆U34754CTGTCTC创伤和应激反应诱导的黑芥子酶相关的蛋白B.napusAJ223307CTGTCACwun-1甜马铃薯X17554CTGTCACosr40g2(盐应激)水稻Y08987CTGTCAC代谢小核酮糖二磷酸羧化玉米U09743CTGTCAC酶-加氧酶(rubiscosmall)小核酮糖二磷酸羧化莱因哈德衣藻(C.X04472CTGTCAC酶-加氧酶reinhardtii)淀粉分支酶玉米AF072724CTGTCACADP-葡萄糖焦磷酸化大麦AJ239130CTGTCAC酶ADP-葡萄糖焦磷酸化马铃薯X96771CTGTCAC酶(2x)硝酸盐转运蛋白大麦AF189727CTGTCAC硫酸盐转运蛋白大麦AF075270CTGTCAC叶绿素a/b-结合蛋白小麦X05823CTGTCAC其它CDPK水稻Y13658TTGTCTCCTGTCACLAP(花sp.)番茄Y08305CTGTCACMADS盒蛋白水稻AF204063CTGTCACGEG(水果sp.)非洲菊种间杂交AJ006273CTGTCAC(Gerberahybrida)表6通过双杂交筛选鉴定的蛋白核苷酸BLASTaC.C.b蛋白BLASTaC.C.b相互作用强度Pti4mRNA，番茄3,00E-93Pti4，番茄5,00E-26强Pti4mRNA，番茄0Pti4，番茄4,00E-39强Pti4mRNA，番茄1,00E-101Pti4，番茄6,00E-25强cp29AmRNA，烟草9,00E-72cp29A，烟草1,00E-33中cp33mRNA，烟草5,00E-67cp33，烟草2E-28强B2mRNA，胡萝卜3,00E-13B2，胡萝卜4,00E-09中B2mRNA，胡萝卜2,00E-46B2，胡萝卜1,00E-57强B2mRNA，胡萝卜5,00E-37B2，胡萝卜3,00E-28强B2mRNA，胡萝卜1,00E-25B2，胡萝卜9,00E-31中B2mRNA，胡萝卜2,00E-37B2，胡萝卜4,00E-29中B2mRNA，胡萝卜2,00E-15B2，胡萝卜8,00E-17强B2mRNA，胡萝卜7,00E-49B2，胡萝卜7,00E-52中B2mRNA，胡萝卜4,00E-13B2，胡萝卜3,00E-10中B2mRNA，胡萝卜9,00E-11B2，胡萝卜2,00E-06强B2mRNA，胡萝卜1,00E-16B2，胡萝卜2,00E-11中无-B2-样0,44弱无-B2-样3,00E-09弱无-B2-样2,00E-28弱无-B2-样4,00E-25中无-B2-样2,00E-15弱无-B2-样2,00E-05中DB10mRNA，烟草DB10mRNA，烟草0,73无强DB10mRNA，烟草0RNA解旋酶，烟草2,00E-90强RZ-1mRNA，烟草1,00E-12RZ-1RNA结合蛋白，烟草0,075强a在非冗余(nr)GenBankTM数据库上对核苷酸BLASTTM使用BLASTNTM程序并对蛋白BLASTTM使用BlastXTM所得的结果。bC.C确定性系数(CertaintyCoefficient)，其显示此特定序列被随机选择的概率。c通过在含有X-gal的培养基上显色来定性评价相互作用的强度。d)参考文献ArnonD.I.(1949).PlantPhysiol241-15.AusubelF.M.etal.(2001).CurrentProtocolsinMolecularBiology.NewYork，Wiley.Barnes，W.M.(1990).Proc.Natl.Acad.Sci.USA879183-9187.BlumwaldE.etal.(1998).TrendsPlantSci.3342-346.BrissonN.etal.(1989)..PlantCell1559-566.BurdC.G.，DreyfussG.(1994).Science265615-621.ChenH，etal.(1998).J.Biol.Chem.27331352-31357.DahlinC.，ClineK.(1991).PlantCell31131-1140.DesprésC.，etal.(1995)PlantCell7589-598.DesveauxD.，etal.(2000)PlantCell121477-1490.DidierD.K.，KleeH.J.(1992).PlantMol.Biol.18977-979.DixonR.A.，etal.(1994).32479-501.GegenheimerP.(1990).MethodsEnzymol.182174-193.GrossP.，apRees，T.(1986).Planta167140-145.GrossetJ.，etal.(1990).PlantPhysiol.92520-527.Harlow，E.，Lane，D.(1988).Antibodiesalaboratorymanual.ColdSpringHarbor，NY，ColdSpringHarborLaboratoryPress.Hirose，T.，Sugiura，M.(2001).EMBOJ.201144-1152.HucklesbyD.P.，etal.(1972).Planta104220-233.Israel，D.I.(1993).Nucl.Ac.Res.212627-2631.Itadani，H.，etal.(1994).PlantMolBiol.24249-252.Jouanneau，J.-P.，etal.(1991).PlantPhysiol.96459-466.Kamada，S.andMiwa，T.(1992).Gene119229-236.Laemmli，U.K.(1970)Nature227680-685.Lau，P.P.，etal.(1997).J.Biol.Chem.2721452-1455.Lau，J.S.，etal.(2000).J.Cell.Biochem.79395-406.Magnien，E.，etal.(1980).PlantSci.Letters19231-241.Matton，D.P.，Brisson，N.(1989).Mol.Plant-MicrobeInteract.2325-331.Matton，D.P.，etal.(1993).PlantMol.Biol.22279-291.Maxson，J.M.，Woodson，W.R.(1996).PlantMol.Biol.31751-759.Mayda，E.，etal.(2000).PlantCell122119-2128.Michelotti，G.A.etal.(1996).Mol.Cell.Biol.162656-2669.Mieszczak，M.，etal.(1992).Mol.Gen.Genet.234390-400.Miflin，B.J.(1974).PlantPhysiol.54550-555.Moiseyev，G.P.，etal.(1994).Planta193470-472.Nakamura，T.etal.(1999).FEBSlett.460437-441.Nakamura，T.，etal.(2001).J.Biol.Chem.276147-152.Ohta，M.，etal.(1995).Plant.Mol.Bio.27529-539.Osmark，P.，etal.(1998).PlantMol.Biol.381243-1246.Pelletier，J.N.etal.(1998).Proc.Natl.Aca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rgAlaIleArgValSerProAlaGluAlaArgProProArg275280285cgtcaattctgaagattgtagccaacatctttttgaccgagaaaaggcttga977ArgGlnPhegggtccaggaggtgacgatagttgcagaaatgaatgagttatgaactttgcaacagctat1037cttaaacttgcgcggacaaactactctctacttctggactaactagagctctcaagtaaa1097ttagttttcgtaatgtatgttctgaaattgcctcaggaagaaattctgatcttgtaatat1157gattctatccatcacttgttgacagacaagacaatgaaaaagtttgatactcttcgaaaa1217ag1219<210>22<211>289<212>PRT<213>马铃薯<400>22MetAlaSerSerSerSerSerLeuHisPheLeuSerLeuThrProGln151015ThrLeuProLysProThrSerGlnThrThrSerIleSerPhePheSer202530LeuProProSerSerLeuAsnLeuSerLeuSerSerSerSerThrPro354045ArgAsnPheGluSerSerArgPheValArgLysValThrLeuSerAsp505560PheAspGlnIleGluGluValGluAlaGlyAspAspAspGluGluGlu65707580GlyGlyLeuSerAspGluGlyAlaSerTyrGluGluArgAsnAlaAsn859095ProAspLeuLysIlePheValGlyAsnLeuProPheSerValAspSer100105110AlaAlaLeuAlaGluLeuPheGluArgAlaGlyAspValGluMetVal115120125GluValIleTyrAspLysLeuThrGlyArgSerArgGlyPheGlyPhe130135140ValThrMetSerSerLysGluAlaValGluAlaAlaCysGlnGlnPhe145150155160AsnGlyTyrGluIleAspGlyArgAlaLeuArgValAsnSerGlyPro165170175AlaProProLysArgGluAsnSerPheGlyAspAsnSerSerTyrGln180185190GlyGlyArgGlyGlyGlySerMetAspSerSerAsnArgValTyrVal195200205GlyAsnLeuAlaTrpSerValAspGlnGlnGlnLeuGluThrLeuPhe210215220SerGluGlnGlyLysValValAspAlaLysValValTyrAspArgAsp225230235240SerGlyArgSerArgGlyPheGlyPheValThrTyrSerSerAlaLys245250255GluValAsnAspAlaIleGluSerLeuAspGlyValAspLeuGlyGly260265270ArgAlaIleArgValSerProAlaGluAlaArgProProArgArgGln275280285Phe<210>23<211>7<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<220><221>misc_feature<222>(1)..(1)<223>″B″表示″T″，″C″或″G″<220><221>misc_feature<222>(6)..(6)<223>″N″表示″A″，″T″，″C″或″G″<400>23btgtcnc<210>24<211>7<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<220><221>misc_feature<222>(1)..(1)<223>″Y″表示″T″或″C″<220><221>misc_feature<222>(6)..(6)<223>″N″表示″A″，″G″，″T″或″C″<400>24ytgtcnc7<210>25<211>7<212>DNA<213>马铃薯<400>25ctgtcac7<210>26<211>9<212>DNA<213>马铃薯<400>26gactgtcac9<210>27<211>39<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>27gccaagctttagataaaatgacacaaatgtcaaaaatgg39<210>28<211>24<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>28ccacccggggatccagctttgaac24<210>29<211>20<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>29cagtccatggttaaatcaac20<210>30<211>20<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>30taaccatggactgtcacttg20<210>31<211>29<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>31gccgcaagttttctgcagtgtttttgctc29<210>32<211>27<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>32ggtttggatccagtagtaaagtggcga27<210>33<211>21<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>33atgtctactcctgcgctcatt21<210>34<211>41<212>PRT<213>马铃薯<220><221>MISC_FEATURE<222>(37)..(37)<223>″Xaa″是未知的<400>34ValThrLeuSerAspPheAspGlnIleGluGluValGluAlaGlyAsp151015AspAspGluGluGluGlyGlyLeuSerAspGluAlaGlyAlaSerTyr202530GluGluArgAsnXaaAsnProAspLeu3540<210>35<211>23<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<220><221>misc_feature<222>(9)..(9)<223>″n″相当于一个修饰的碱基肌苷<220><221>misc_feature<222>(12)..(12)<223>″n″相当于一个修饰的碱基肌苷<400>35gtkacwytntcngatttygayca23<210>36<211>20<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<220><221>misc_feature<222>(9)..(9)<223>″n″相当于一个修饰的碱基肌苷<400>36arrttwccnacraaratytt20<210>37<211>19<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>37gtttgagtgatgaaggtgc19<210>38<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>38gccgttctgtcttcacaattcttttgcttc30<210>39<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>39caacatctccagcacgctcaaaaagctcag30<210>40<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>40cctctgcttcttcctgtaagcttgtcatag30<210>41<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>41cagttgaagccgcctgtcaacaatttaatg30<210>42<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>42ttgacgggagggcactgagggtgaattctg30<210>43<211>29<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>43gctttcaattgcatcgttgacctccttag29<210>44<211>30<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>44gcttcagcaggacttacacggatggccctg30<210>45<211>25<212>DNA<213>马铃薯<400>45tctagactgtcacttgtttttttta25<210>46<211>24<212>DNA<213>马铃薯<400>46tctagactgtcacttgtttttttt24<210>47<211>25<212>DNA<213>马铃薯<400>47tctagactgtcacttgtttttttta25<210>48<211>25<212>DNA<213>马铃薯<400>48aacatctgctttgtcaccctccttg25<210>49<211>25<212>DNA<213>烟草<400>49attaagccatgtctccatcatcttc25<210>50<211>7<212>DNA<213>马铃薯<400>50ctgtcac7<210>51<211>7<212>DNA<213>甘氨酸max<400>51ttgtctc7<210>52<211>21<212>DNA<213>烟草<400>52taagccatgtctccatcatct21<210>53<211>21<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>53taagccctgtctccatcatct21<210>54<211>21<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<400>54taagccatatctccatcatct21<210>55<211>6<212>DNA<213>人工序列<220><223>序列被完整地合成<220><221>misc_feature<222>(5)..(5)<223>n表示″A″，″T″，″C″或″G″<400>55tgtcnc6权利要求书(按照条约第19条的修改)1、一种转化的或者转染的细胞，其包含a)在SEQIDNO21中列出的核酸序列；b)与SEQIDNO21具有至少96％核苷酸序列同一性的核苷酸序列；和c)与编码SEQIDNO22的氨基酸序列的核酸具有至少75％核苷酸序列同一性的核苷酸序列。2、一种克隆或者表达载体，其包含a)在SEQIDNO21中列出的核酸序列；b)与SEQIDNO21具有至少96％核苷酸序列同一性的核苷酸序列；和c)与编码SEQIDNO22的氨基酸序列的核酸具有至少75％核苷酸序列同一性的核苷酸序列。3、权利要求2的载体，其中所述的载体能够在包含载体的细胞中指导由所述核酸编码的多肽的表达。4、一种包含选自以下氨基酸序列的分离或纯化的蛋白a)由SEQIDNO.21中列出的核酸编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；d)SEQIDNO22中列出的序列；e)与由SEQIDNO21中的核苷酸68-937编码的氨基酸具有至少85％同一性的序列；和f)与由SEQIDNO21中的核苷酸68-937编码的氨基酸序列具有至少87％序列相似性的序列。5、一种包含分离或纯化的SEBF蛋白或其功能性同系物的组合物。6、权利要求5的组合物，其中所述的SEBF蛋白或同系物含有选自下面的氨基酸序列a)由具有与SEQIDNO21中的核苷酸68-937至少85％的同一性的序列的核酸编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；和d)SEQIDNO22中提供的序列。7、权利要求6的组合物，其中所述的SEBF蛋白或者同系物包含与SEQIDNO22100％相同的氨基酸序列。8、权利要求5-7中任何一项的组合物，其中所述的SEBF蛋白或者同系物由马铃薯SEBF蛋白组成。9、权利要求5或8的组合物，其中所述的SEBF蛋白纯化自马铃薯，而且其中其具有的纯化系数为大约90-大约20,700倍。10、一种特异结合SEBF蛋白的分离或纯化的抗体。11、一种分离或纯化的基因调控元件，其包含对基因PR-10a的沉默元件(SE)在植物中具有全部活性所必需的核酸序列。12、权利要求11的调控元件，其中其由沉默元件组成。13、权利要求11或12的调控元件，其中所述的核酸序列包含序列GACTGTCAC(SEQIDNO26)。14、权利要求11或12的调控元件，其中所述的核酸序列包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)。15、权利要求14的调控元件，其中所述的核酸序列本质上由序列BTGTCNC(SEQIDNO23)组成。16、权利要求14或者15的调控元件，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。17、权利要求14-16中任何一项的调控元件，其中在所述序列BTGTCNC中，B由C组成并且N由A组成。18、一种DNA构建体，其包含权利要求11-17任意一项中的调控元件。19、权利要求18的DNA构建体，其中所述的调控元件被有效连接到可诱导的启动子。20、一种遗传修饰的植物实体，在其中已经引入了权利要求11-17任何一项中的调控元件和/或权利要求19或20的DNA构建体。21、一种在植物中改变基因表达的方法，其包含在所述植物中改变核DNA结合蛋白结合到序列BTGTCNC。22、权利要求21的方法，其中所述的内源DNA结合蛋白选自由与SEBF(SEQIDNO22)具有至少48％同一性或相似性的蛋白组成的组。23、权利要求22的方法，其中所述的核DNA结合蛋白由SEBF(SEQIDNO22)组成或者由与SEBF具有至少90％同一性或相似性的蛋白组成。24、权利要求23的方法，用来改变PR基因的表达。25、一种用来增加目的基因表达的方法，所述的基因具有包含序列BTGTCNC的启动子区域，所述的方法包含突变所述基因的启动子区域以突变或者删除序列BTGTCNC的步骤。26、一种用来降低目的基因表达的方法，所述的基因具有缺乏序列BTGTCNC的启动子区域，所述的方法包含以有效连接的方式将序列BTGTCNC引入到所述的启动子区域的步骤。27、一种含有基因组的、遗传修饰的植物性宿主，其中，与在所述基因的启动子区域存在或不存在序列BTGTCNC相关的基因的转录活性已被改变，将所述被改变的转录活性与其中转录活性未被改变的、相应的未被遗传修饰的植物性宿主进行比较。28、权利要求27的植物性宿主，其中所述的启动子区域包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中所述的启动子区域已经被遗传修饰以使与序列BTGTCNC存在相关的抑制转录活性失活。29、权利要求27或28的植物性宿主，其中所述的启动子区域已经被遗传修饰以突变或者删除所述序列BTGTCNC。30、权利要求27的植物性宿主，其中所述的启动子区域没有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中所述宿主的启动子区域已经被遗传修饰以使所述序列BTGTCNC被以有效连接的方式插入其中。31、权利要求27-30任何一项中的植物性宿主，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。32、权利要求27-31任何一项中的植物性宿主，其中所述的植物性宿主由植物组成。33、权利要求32的植物性宿主，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。34、权利要求32的植物性宿主，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。35、一种用来获得遗传修饰的、呈现选自下列表型的植物的方法-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；-早期的果实成熟；其中在所述表型中涉及的基因的启动子区域包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述的表型与相应的未被遗传修饰的植物比较，所述的方法包含遗传修饰所述植物的基因组以使与所述序列BTGTCNC存在相关的内源转录活性失活的步骤。36、一种用来获得遗传修饰的、呈现选自下列表型的植物的方法-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的抗性；-降低的乙烯生产；-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟；和其中在所述表型中涉及的基因的启动子区域不含BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述的表型与相应的未被遗传修饰的植物比较，所述的方法包含遗传修饰所述植物的基因组以使所述序列BTGTCNC被以有效连接的方式插入其中的步骤。37、一种植物性宿主，其被遗传修饰以呈现具有特异结合BTGTCNC(SEQIDNO23)活性的蛋白质核因子的表达或者生物学活性发生改变，其中将所述的改变水平与相应的未被遗传修饰的、其中所述的内源性水平未被改变的植物性宿主相比较。38、权利要求37的植物性宿主，其中所述的多肽选自由与SEBF(SEQIDNO22)具有至少48％同一性或相似性的多肽组成的组。39、权利要求37或38的植物性宿主，其中所述的宿主由植物组成，而且其中所述的多肽由SEBF或者由与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽组成。40、权利要求37的植物性宿主，其中SEBF或者与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽的表达或者生物学活性已经被增加了，而且其中所述的遗传修饰的宿主呈现选自下列的表型-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的抗性；-降低的乙烯生产；和-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟；将其中所述的表型与其中SEBF的表达或生物学活性未被增加的、相应的未被遗传修饰的宿主比较。41、权利要求37的植物性宿主，其中SEBF或者与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽的表达或者生物学活性已经被降低了，而且其中所述的遗传修饰的宿主呈现选自下列的表型-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；和-早期的果实成熟；将其中所述的表型与其中SEBF的表达或生物学活性未被增加的、相应的未被遗传修饰的宿主比较。42、权利要求37-41任何一项中的宿主，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。43、权利要求37-42任何一项中的宿主，其中的植物性宿主由选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类的植物组成。44、权利要求37-42任何一项中的宿主，其中的植物性宿主由选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉的植物组成。45、一种用来获得选自下列结果的方法-调节植物对病原体的抗性或者耐受性；-调节由生长素控制的植物基因的诱导；-调节植物生长素控制的基因诱导；-增加植物的生长、生根和/或果实生产；-调节植物生长素诱导的ACC合酶基因；-调节植物乙烯生产；和-调节植物质体mRNAs的稳定性、表达或活性；其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。46、一种用来获得选自下列结果的方法-增加的植物对病原体的植物抗性或者耐受性；-增加的植物生长、生根和果实生产；-增加的植物对生长素除草剂的敏感性；-增加的植物的乙烯生产；-诱导植物的果实早熟；其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。47、一种用来获得选自下列结果的方法-降低的植物对病原体的抗性或者耐受性；-降低的植物生长、生根和果实生产；-增加的植物对生长素除草剂的抗性；-降低的植物的乙烯生产；-延迟植物果实成熟和/或使植物果实受到保护而避免其过成熟；和其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中增加内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。48、一种调节植物对病原体抗性或耐受性的方法，包含在所述植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。49、一种增加植物对病原体抗性或耐受性的方法，包含在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。50、权利要求49的方法，其中通过实施选自下列的方法来降低所述内源性SEBF蛋白或者所述SEBF功能性同系物的表达或生物学活性在所述植物中表达SEBF的反义分子；表达诱导SEBF水平或者活性的共抑制的蛋白；敲除或者化学突变编码所述SEBF蛋白的基因；和表达切割SEBFmRNA的核酶。51、一种用来降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，包含在所述植物中增加SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。52、权利要求51的方法，其中通过在所述植物中引入可表达的SEBF编码序列来增加所述内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。53、权利要求52的方法，其中所述的SEBF编码序列处于可诱导的或者组成型的启动子的控制下。54、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对病原体增加的抗性或者耐受性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。55、权利要求54的植物，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。56、权利要求54的植物，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。57、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对病原体降低的抗性或者耐受性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。58、一种用于调节植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述植物中改变内源性核DNA结合蛋白与所述序列BTGTCNC的结合。59、权利要求58的方法，其中所述的内源性核DNA结合蛋白选自由与SEBF(SEQ96IDNO22)具有至少48％同一性或相似性的蛋白组成的组。60、权利要求59的方法，其中所述的核DNA结合蛋白由SEBF(SEQIDNO22)或其功能性同系物组成。61、权利要求58-60任何一项中的方法，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。62、权利要求58-60任何一项中的方法，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。63、一种用于增加植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述植物中降低或阻止内源性核DNA结合蛋白与所述序列BTGTCNC的结合。64、权利要求63的方法，其包含突变或者删除所述序列BTGTCNC。65、权利要求63或64的方法，其中所述序列BTGTCNC位于防御基因的启动子区域。66、权利要求65的方法，其中所述的防御基因选自表5中所列的基因，包括Pr-10、Pr-10(ypr10a)、Pr-10(ypr10b)、Pr-10a、Pr-10b、几丁质酶、葡聚糖酶、PR-1、渗透蛋白(PR-5)、过氧化物酶、交替氧化酶和抗真菌蛋白。67、一种用于降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，该方法包含在所述植物中允许或者增加内源性核DNA结合蛋白结合到包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)的基因启动子区域。68、权利要求65的方法，其中所述的启动子区域没有所述序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述序列BTGTCNC有效地插入到所述的启动子区域。69、权利要求68的方法，其中所述的插入降低了所述基因的表达。70、一种用来在植物中调节由生长素控制的基因的诱导的方法，其包含在所述的植物中调节内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。71、一种用来在植物中增加生长、生根和/或果实产生的方法，其包含在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。72、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有增加的生长、生根和/或果实产生的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。73、一种用来增加植物对生长素除草剂抗性的方法，其包含在所述的植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。74、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对生长素除草剂增加的抗性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。75、一种用来调节植物乙烯产生的方法，其包含在所述的植物中调节内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。76、一种用来增加植物生产乙烯的方法，其包含在所述的植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。77、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有增加的乙烯生产的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。78、一种用来降低植物生产乙烯的方法，其包含在所述的植物中增加内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。79、一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有减少的乙烯生产的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。权利要求1.一种分离的或者纯化的核酸分子，其包含选自下述的序列a)在SEQIDNO21中列出的序列；b)与SEQIDNO21具有至少96％核苷酸序列同一性的核苷酸序列；和c)与编码SEQIDNO22的氨基酸序列的核酸具有至少75％核苷酸序列同一性的核苷酸序列。2.一种转化的或转染的细胞，其包含权利要求1的核酸。3.一种克隆或者表达载体，其包含权利要求1的核酸。4.权利要求3的载体，其中所述的载体能够在包含载体的细胞中指导由所述核酸编码的多肽的表达。5.一种包含选自以下氨基酸序列的分离或纯化的蛋白a)由权利要求1的核酸编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；d)SEQIDNO22中列出的序列；e)与由SEQIDNO21中的核苷酸68-937编码的氨基酸具有至少85％同一性的序列；和f)与由SEQIDNO21中的核苷酸68-937编码的氨基酸序列具有至少87％序列相似性的序列。6.一种包含分离或纯化的SEBF蛋白或其功能性同系物的组合物。7.权利要求6的组合物，其中所述的SEBF蛋白或同系物含有选自下面的氨基酸序列a)由具有与SEQIDNO21中的核苷酸68-937至少85％的同一性的序列的核酸编码的序列；b)与SEQIDNO22具有至少85％同一性的序列；c)与SEQIDNO22具有至少87％相似性的序列；和d)SEQIDNO22中提供的序列。8.权利要求PREC的组合物，其中所述的SEBF蛋白或者同系物包含与SEQIDNO22100％相同的氨基酸序列。9.权利要求6-8中任何一项的组合物，其中所述的SEBF蛋白或者同系物由马铃薯SEBF蛋白组成。10.权利要求6或9的组合物，其中所述的SEBF蛋白纯化自马铃薯，而且其中其具有的纯化系数为大约90-大约20700倍。11.一种特异结合SEBF蛋白的分离或纯化的抗体。12.一种分离或纯化的基因调控元件，其包含对基因PR-10a的沉默元件(SE)在植物中具有全部活性所必需的核酸序列。13.权利要求12的调控元件，其中其由沉默元件组成。14.权利要求12或13的调控元件，其中所述的核酸序列包含序列GACTGTCAC(SEQIDNO26)。15.权利要求12或13的调控元件，其中所述的核酸序列包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)。16.权利要求15的调控元件，其中所述的核酸序列本质上由序列BTGTCNC(SEQIDNO)组成。17.权利要求15或者16的调控元件，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。18.权利要求15-17中任何一项的调控元件，其中在所述序列BTGTCNC中，B由C组成并且N由A组成。19.一种DNA构建体，其包含权利要求12-18任意一项中的调控元件。20.权利要求19的DNA构建体，其中所述的调控元件被有效连接到可诱导的启动子。21.一种遗传修饰的植物实体，在其中已经引入了权利要求12-18任何一项中的调控元件和/或权利要求19或20的DNA构建体。22.一种在植物中改变基因表达的方法，其包含在所述植物中改变核DNA结合蛋白结合到序列BTGTCNC。23.权利要求22的方法，其中所述的内源DNA结合蛋白选自由与SEBF(SEQIDNO22)具有至少48％同一性或相似性的蛋白组成的组。24.权利要求23的方法，其中所述的核DNA结合蛋白由SEBF(SEQIDNO22)组成或者由与SEBF具有至少90％同一性或相似性的蛋白组成。25.权利要求24的方法，用来改变PR基因的表达。26.一种用来增加目的基因表达的方法，所述的基因具有包含序列BTGTCNC的启动子区域，所述的方法包含突变所述基因的启动子区域以突变或者删除序列BTGTCNC的步骤。27.一种用来降低目的基因表达的方法，所述的基因具有缺乏序列BTGTCNC的启动子区域，所述的方法包含以有效连接的方式将序列BTGTCNC引入到所述的启动子区域的步骤。28.一种含有基因组的、遗传修饰的植物性宿主，其中，与在所述基因的启动子区域存在或不存在序列BTGTCNC相关的基因的转录活性已被改变，将所述被改变的转录活性与其中转录活性未被改变的、相应的未被遗传修饰的植物性宿主进行比较。29.权利要求28的植物性宿主，其中所述的启动子区域包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中所述的启动子区域已经被遗传修饰以使与序列BTGTCNC存在相关的抑制转录活性失活。30.权利要求28或29的植物性宿主，其中所述的启动子区域已经被遗传修饰以突变或者删除所述序列BTGTCNC。31.权利要求28的植物性宿主，其中所述的启动子区域没有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中所述宿主的启动子区域已经被遗传修饰以使所述序列BTGTCNC被以有效连接的方式插入其中。32.权利要求28-31任何一项中的植物性宿主，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。33.权利要求28-32任何一项中的植物性宿主，其中所述的植物性宿主由植物组成。34.权利要求33的植物性宿主，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。35.权利要求33的植物性宿主，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。36.一种用来获得遗传修饰的、呈现选自下列表型的植物的方法-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；-早期的果实成熟；其中在所述表型中涉及的基因的启动子区域包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述的表型与相应的未被遗传修饰的植物比较，所述的方法包含遗传修饰所述植物的基因组以使与所述序列BTGTCNC存在相关的内源转录活性失活的步骤。37.一种用来获得遗传修饰的、呈现选自下列表型的植物的方法-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的抗性；-降低的乙烯生产；-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟；和其中在所述表型中涉及的基因的启动子区域不含BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述的表型与相应的未被遗传修饰的植物比较，所述的方法包含遗传修饰所述植物的基因组以使所述序列BTGTCNC被以有效连接的方式插入其中的步骤。38.一种植物性宿主，其被遗传修饰以呈现具有特异结合BTGTCNC(SEQIDNO23)活性的蛋白质核因子的表达或者生物学活性发生改变，其中将所述的改变水平与相应的未被遗传修饰的、其中所述的内源性水平未被改变的植物性宿主相比较。39.权利要求38的植物性宿主，其中所述的多肽选自由与SEBF(SEQIDNO22)具有至少48％同一性或相似性的多肽组成的组。40.权利要求38或39的植物性宿主，其中所述的宿主由植物组成，而且其中所述的多肽由SEBF或者由与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽组成。41.权利要求38的植物性宿主，其中SEBF或者与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽的表达或者生物学活性已经被增加了，而且其中所述的遗传修饰的宿主呈现选自下列的表型-对病原体的降低的抗性或者耐受性；-降低的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的抗性；-降低的乙烯生产；和-其果实成熟延迟和/或其果实受到保护而使其避免过成熟；将所述的表型与其中SEBF的表达或生物学活性未被增加的、相应的未被遗传修饰的宿主比较。42.权利要求38的植物性宿主，其中SEBF或者与SEBF具有至少90％同一性或相似性的多肽的表达或者生物学活性已经被降低了，而且其中所述的遗传修饰的宿主呈现选自下列的表型-对病原体的增加的抗性或者耐受性；-增加的生长、生根和/或果实生产；-对生长素除草剂的增加的敏感性；-增加的乙烯生产；和-早期的果实成熟；将所述的表型与其中SEBF的表达或生物学活性未被增加的、相应的未被遗传修饰的宿主比较。43.权利要求38-42任何一项中的宿主，其中在所述序列BTGTCNC中，B由嘧啶组成。44.权利要求38-43任何一项中的宿主，其中的植物性宿主由选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类的植物组成。45.权利要求38-43任何一项中的宿主，其中的植物性宿主由选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉的植物组成。46.一种用来获得选自下列结果的方法-调节植物对病原体的抗性或者耐受性；-调节由生长素控制的植物基因的诱导；-调节植物生长素控制的基因诱导；-增加植物的生长、生根和/或果实生产；-调节植物生长素诱导的ACC合酶基因；-调节植物乙烯生产；和-调节植物质体mRNAs的稳定性、表达或活性；其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。47.一种用来获得选自下列结果的方法-增加的植物对病原体的植物抗性或者耐受性；-增加的植物生长、生根和果实生产；-增加的植物对生长素除草剂的敏感性；-增加的植物的乙烯生产；-诱导植物的果实早熟；其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。48.一种用来获得选自下列结果的方法-降低的植物对病原体的抗性或者耐受性；-降低的植物生长、生根和果实生产；-增加的植物对生长素除草剂的抗性；-降低的植物的乙烯生产；-延迟植物果实成熟和/或使植物果实受到保护而避免其过成熟；和其中所述的方法包含下列步骤在所述植物中增加内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。49.一种调节植物对病原体抗性或耐受性的方法，包含在所述植物中调节内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。50.一种增加植物对病原体抗性或耐受性的方法，包含在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。51.权利要求50的方法，其中通过实施选自下列的方法来降低所述内源性SEBF蛋白或者所述SEBF功能性同系物的表达或生物学活性在所述植物中表达SEBF的反义分子；表达诱导SEBF水平或者活性的共抑制的蛋白；敲除或者化学突变编码所述SEBF蛋白的基因；和表达切割SEBFmRNA的核酶。52.一种用来降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，包含在所述植物中增加SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。53.权利要求52的方法，其中通过在所述植物中引入可表达的SEBF编码序列来增加所述内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性。54.权利要求53的方法，其中所述的SEBF编码序列处于可诱导的或者组成型的启动子的控制下。55.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对病原体增加的抗性或者耐受性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。56.权利要求55的植物，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。57.权利要求54的植物，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。58.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对病原体降低的抗性或者耐受性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。59.一种用于调节植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述植物中改变内源性核DNA结合蛋白与所述序列BTGTCNC的结合。60.权利要求59的方法，其中所述的内源性核DNA结合蛋白选自由与SEBF(SEQIDNO22)具有至少48％同一性或相似性的蛋白组成的组。61.权利要求60的方法，其中所述的核DNA结合蛋白由SEBF(SEQIDNO22)或其功能性同系物组成。62.权利要求59-61任何一项中的方法，其中所述的植物选自蔬菜、豆科植物、树、和谷类。63.权利要求59-61任何一项中的方法，其中所述的植物选自马铃薯、番茄、烟草、棉花、水稻、小麦、玉米、大麦、燕麦、油菜、大豆、豌豆、甘蔗、甜菜、草莓和香蕉。64.一种用于增加植物对病原体抗性或者耐受性的方法，所述的植物在基因的启动子区域具有序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，所述的方法包含在所述植物中降低或阻止内源性核DNA结合蛋白与所述序列BTGTCNC的结合。65.权利要求64的方法，其包含突变或者删除所述序列BTGTCNC。66.权利要求64或65的方法，其中所述序列BTGTCNC位于防御基因的启动子区域。67.权利要求66的方法，其中所述的防御基因选自表5中所列的基因，包括Pr-10、Pr-10(ypr10a)、Pr-10(ypr10b)、Pr-10a、Pr-10b、几丁质酶、葡聚糖酶、PR-1、渗透蛋白(PR-5)、过氧化物酶、交替氧化酶和抗真菌蛋白。68.一种用于降低植物对病原体抗性或者耐受性的方法，该方法包含在所述植物中允许或者增加内源性核DNA结合蛋白结合到包含序列BTGTCNC(SEQIDNO23)的基因启动子区域。69.权利要求66的方法，其中所述的启动子区域没有所述序列BTGTCNC(SEQIDNO23)，而且其中将所述序列BTGTCNC有效地插入到所述的启动子区域。70.权利要求69的方法，其中所述的插入降低了所述基因的表达。71.一种用来在植物中调节由生长素控制的基因的诱导的方法，其包含在所述的植物中调节内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。72.一种用来在植物中增加生长、生根和/或果实产生的方法，其包含在所述植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。73.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有增加的生长、生根和/或果实产生的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。74.一种用来增加植物对生长素除草剂抗性的方法，其包含在所述的植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。75.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有对生长素除草剂增加的抗性的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被增加了。76.一种用来调节植物乙烯产生的方法，其包含在所述的植物中调节内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。77.一种用来增加植物生产乙烯的方法，其包含在所述的植物中降低内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。78.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有增加的乙烯生产的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。79.一种用来降低植物生产乙烯的方法，其包含在所述的植物中增加内源性SEBF蛋白或SEBF功能性同系物的表达或者生物学活性。80.一种被遗传修饰以使其与相应的未被遗传修饰的植物相比，具有减少的乙烯生产的植物，其中与相应的未被遗传修饰的植物相比，所述遗传修饰植物中的内源性SEBF蛋白或者SEBF功能性同系物的表达或生物学活性被降低了。全文摘要本申请描述了植物基因调控元件及其应用。更具体地，描述了用于调节植物应答病原体、生长素和乙烯的沉默元件。本发明还描述了特异结合于本发明的沉默元件的转录阻遏物。提供了一种新的、被称为“SEBF”的转录阻遏物的核苷酸以及氨基酸序列。文档编号C12N15/82GK1564870SQ02817739公开日2005年1月12日申请日期2002年6月27日优先权日2001年7月10日发明者诺曼德·布里森,博伊尔·布里安申请人:蒙特利尔大学