一种食疗发酵杨梅汁的制备方法

一种食疗发酵杨梅汁的制备方法
【专利摘要】本发明公开了一种食疗发酵杨梅汁的制备方法，包括：将产纳豆激酶兼吡咯喹啉醌的纳豆芽孢杆菌10261和10263分别进行亚硝基胍诱变，然后混合二者诱变后代，进行细胞融合传代培养，并在基因组重排技术基础上进一步采用底物诱导适应性策略，高通量筛选得到高产纳豆激酶兼吡咯喹啉醌的纳豆芽孢杆菌；将干酪乳杆菌进行亚硝基胍诱变，从中筛选出甲硫氨酸营养缺陷型的干酪乳杆菌；将筛选出的纳豆芽孢杆菌和干酪乳杆菌共发酵杨梅汁，得到富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌的杨梅汁。本发明得到的富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌的杨梅汁中，吡咯喹啉醌含量达到63-129ng/mL，纳豆激酶活力达到575-855U/mL。
【专利说明】一种食疗发酵杨梅汁的制备方法

【技术领域】
[0001] 本发明涉及微生物工程与发酵领域，具体涉及一种食疗发酵杨梅汁的制备方法。

【背景技术】
[0002] 纳豆由大豆经纳豆芽孢杆菌（Bacillus natto)发酵而成，具有多重生理功效：
[0003] ①纳豆对心血管系统的作用：纳豆中一种标志性生理活性物质纳豆激酶 (Nattokinase，NK)是能够溶解血栓的蛋白质，由275个氨基酸残基组成，分子量27KD左右， 无毒、无副作用，是一种丝氨酸蛋白酶，其溶栓效果甚至超过溶栓制剂尿激酶。纳豆激酶除 具有直接溶栓作用外，还具有促进静脉内皮细胞产生纤维蛋白溶酶原激活剂的能力，从而 间接表现其溶栓活性。纳豆中亚油酸占全脂质的50%，亚油酸能够降低血浆中胆固醇含量， 有预防动脉硬化、心脏病和高血压的功效，具有血栓溶解作用；
[0004] ②纳豆对消化系统的作用：大豆蛋白质经纳豆酶的作用转化成可溶性多肽和氨 基酸，有利于人体吸收。Ig纳豆中含有10亿个以上纳豆菌，纳豆菌繁殖快，能消耗肠道中 的氧，可以抑制引起肠内异常发酵的痢疾杆菌等腐败菌，促进乳酸菌繁殖，调节肠内细菌平 衡，预防痢疾、肠炎和便秘等。大豆经过纳豆菌发酵蓄积了大量蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶、酯 酶、纤维素酶和脲酶等酶群，这些生物酶在消化系统中能够有效调理促进消化吸收。纳豆芽 孢杆菌在通过分解利用大豆蛋白进行繁殖的过程中，可以产生大量酵素、维生素、多聚谷氨 酸和多聚果糖等粘性物质，其被覆在胃肠粘膜表面起到保护作用，饮酒时可缓解酒醉。纳豆 菌还能杀死肠道出血性大肠杆菌；
[0005] ③纳豆对免疫系统的作用：通过接种纳豆菌的动物实验发现，纳豆可以提高机体 抵抗力，排除侵入的葡萄球菌，还可以诱发机体干扰素生成，增强机体免疫力；纳豆中含有 活性物质如皂草甙、维生素 B2、维生素 E等，每天食用可除去体内致癌物质，预防癌症发生， 并可软化血管，促进肌肤光滑；
[0006] ④促进骨骼发育：维生素 K2可促进钙与蛋白质结合从而促进骨骼形成，在骨骼形 成过程中起着重要作用，而纳豆中维生素 K2含量是其他发酵食品的数百倍，有预防骨质疏 松、腰痛等老年病的功效。
[0007] 近年发现纳豆还具有其它更丰富广泛的生理功效，源于其另一种标志性生理活性 物质-批咯喹啉醌（pyrroloquinoline quinone，PQQ)，它是继黄素核苷酸和烟酰胺核苷 酸之后在细菌脱氢酶中发现的第三种辅基，化学名称为4, 5-二氢-4, 5-二氧化-1-氢吡咯 (2, 3f)醌-2, 7, 9-三羧酸，又名Methaxatin。虽然自然条件下仅少数细菌如Methylovorus、 Deinococcus radiodurans>Gluconobacter oxydans、Klebsiella pneumoniae 等會泛够合成 PQQ，但在各种植物、动物以及人体内都发现含有微量PQQ。日本科学家测定了 26种常见食 物中的PQQ含量，发现1克食物中PQQ含量在3. 65-61纳克不等，例如，蔬菜中的欧芹、青椒， 水果中的奇异果、木瓜，饮品中的绿茶、乌龙茶，以及人们常吃的豆腐。值得注意的是，日本 传统食物纳豆当中PQQ含量最高，达到61纳克/克。
[0008] PQQ作为一种普遍存在于动物和植物组织中的氧化还原酶辅基，虽然含量非常低， 但作用重要，不仅是一种新发现的线粒体呼吸链组分，参与催化生物体内氧化还原反应，还 具有非常多样的生物活性，缺乏时会引起哺乳动物诸多代谢障碍，被认为是一种新型维生 素。PQQ对哺乳动物的主要生理作用有：
[0009] ①全面提高人体免疫功能：PQQ作为人类发育的必要因子，能刺激人体细胞生长， 尤其是激活人体B细胞、T细胞，提高人体免疫功能；
[0010] ②防治肝损伤：PQQ能显著降低血清胆红素和谷丙转氨酶水平，调理肝损伤，对肝 脏疾病有极好疗效；
[0011] ③减少自由基对人体的伤害=PQQ是一种氧化还原酶辅基，参与生物体内氧化还 原反应，能有效清除体内自由基，减少自由基对人体伤害所引发的各种疾病，如心脏病、癌 症以及各类炎症；
[0012] ④调理各种神经系统疾病：PQQ在体内能促进神经因子合成，调理各种神经系统 疾病；
[0013] ⑤促进氨基酸吸收：PQQ是醌蛋白酶的辅基，参与呼吸链电子传递，在人体内能促 进氨基酸吸收；
[0014] ⑥促进生长因子合成：生长因子是人类生长的激素，PQQ能刺激人体细胞生长，增 加细胞密度，微量PQQ就能提高生物体组织的代谢能力和生长机能；
[0015] ⑦防治老年痴呆症：PQQ具有修复神经纤维、活化神经元、激活休眠神经细胞的能 力，能有效防治老年痴呆症和改善记忆力；
[0016] ⑧促进谷胱甘肽合成：谷胱甘肽具有重要抗氧化作用和整合解毒作用，PQQ能促 进机体谷胱甘肽合成，防止白内障发生和肝脏胆红素积累；
[0017] ⑨极强的抗癌功能：PQQ激活自然杀伤细胞（NK)细胞为ANK细胞，使其具有杀肿 瘤作用；使NK细胞等免疫细胞聚集，更有效地杀灭肿瘤细胞；封闭肿瘤细胞载铁蛋白受体， 阻断其功能，抑制肿瘤生长、转移；破坏肿瘤细胞脂质双层，使肿瘤细胞溶解死亡；阻止肿 瘤细胞DNA复制，促其凋亡。
[0018] 在天然食品中，纳豆独有NK，并且PQQ含量最丰富。纳豆中的NK和PQQ由纳豆芽 孢杆菌产生。纳豆是日常健康食品，纳豆芽孢杆菌是公认安全的食品级微生物（GRAS微生 物），对纳豆芽孢杆菌进行定向选育，然后与乳酸菌共发酵，制备富含NK和PQQ的食品，对于 人们在日常饮食中补充NK和PQQ、充分发挥NK和PQQ的生理调理作用具有重要意义。
[0019] 杨梅果肉含糖量为12%?13%，含酸量为0. 5%?I. 1 %，富含纤维素、矿质兀素、 维生素和一定量蛋白质、脂肪、果胶及氨基酸，其果实中钙、磷、铁含量要高出其他水果10 多倍。每100克杨梅可食部食品中的营养素含量：水分83. 4?92. 0克、热量28千卡，蛋白 质〇. 8克，脂肪0. 2克，碳水化合物5. 7克，膳食纤维1克，果汁含糖量12?13克，含酸量 0. 5?1. 8克，硫胺素10微克，核黄素50微克，烟酸0. 3毫克，视黄醇当量92微克，胡萝卜 素0. 3微克，维生素 A7微克，维生素 C9毫克，维生素 E0. 81毫克，钙14毫克，镁10毫克，铁 1晕克，猛〇. 72晕克，锋0. 14晕克，铜20微克，钟149晕克，憐8晕克，纳0. 7晕克，砸0. 31 微克。杨梅还含有花色素单葡萄糖甙和少量双葡萄糖甙、蒲公英赛醇、α -香树脂醇、β -香 树脂醇、蛇麻脂醇、内消旋肌醇和杨梅树皮甙等活性物质。杨梅性味辛温，理气、止血、化瘀， 主治胃痛、膈食呕吐、疝气、吐血、血崩、痔血、外伤出血、跌打损伤、牙痛、汤火伤、恶疮、疥 癞。杨梅汁保留了杨梅的营养成分。杨梅汁经乳酸菌发酵后，将进一步形成乳酸菌素、活性 脂肪酸、以乳酸为主的有机酸等诸多食疗物质。
[0020] 乳酸菌发酵除能产生诸多食疗成分外，还能赋予怡人的甜酸口感。纳豆芽孢杆菌 发酵则能产生NK和PQQ。本发明通过选育纳豆芽孢杆菌和干酪乳杆菌及其共发酵，开发出 富含NK和PQQ的食疗发酵杨梅汁。但如果干酪乳杆菌与纳豆芽孢杆菌在同一体系中生长不 平衡会导致一种菌在竞争中排斥另一种，共发酵无法顺利进行。关于生理特性，即使在野生 状态下，乳酸菌胞壁蛋白酶PrtS也只有少数菌株具有且活力不高，分解蛋白质获得必需氨 基酸的能力不足，而纳豆芽孢杆菌具有较强蛋白酶活力，其分解蛋白质产生氨基酸和肽可 满足乳酸菌对氨基酸的需求。纳豆芽孢杆菌兼性厌氧，通过消耗氧气也促进乳酸菌生长和 产酸。在本发明中，除了纳豆芽孢杆菌和干酪乳杆菌两者之间存在不严格偏利共生关系外， 更通过选育手段使干酪乳杆菌因形成甲硫氨酸营养缺陷（Met-)而与纳豆芽孢杆菌形成严 格偏利共生关系，从而保证了干酪乳杆菌与纳豆芽孢杆菌的共发酵顺利进行。
[0021] 纳豆芽孢杆菌合成NK和PQQ的代谢途径迄今尚未完全明了，从而无法通过理性优 化手段提高纳豆芽孢杆菌合成NK和PQQ的产率。而且由于糖、氨基酸、脂类、核苷酸四大有 机物代谢之间的相通和密切关联，使得微生物细胞代谢网络既显示出刚性（Rigidity)又 显示出柔性（Plasticity)，处于严格控制之中，刚性表现为牵一发而动全身，从而在许多情 形下，即使明了代谢途径，定点理性突变也并不能获得理想表型，而柔性表现为对整个代谢 网络中处于不同节点但又相关的途径进行协同突变后，会表现出新的代谢属性。欲提高纳 豆芽孢杆菌合成NK和PQQ的产率，不明了其代谢途径并不成为不可逾越的障碍，只要有合 适的非理性优化手段（Unrational optimization technique),对所有可能与NK和PQQ合 成有关的主流及旁支途径统筹优化,实现多位点协同突变,并通过高通量筛选使多位点协 同突变的表型从突变库中凸显，即可实现提高纳豆芽孢杆菌合成NK和PQQ产率的目标。
[0022] 随机突变是最常见的非理性优化手段，虽然它能够产生突变位点数量足够大的突 变库，但在突变库中，各突变位点往往是分散独立于单个细胞中，相互之间无法优化组合， 而且大多不产生可见表型，从而使得绝大多数突变隐没于突变库中而不能得到筛选。
[0023] 基因组重排（Genome Shuffling)是在随机突变的基础上发展起来的新型诱变育 种技术。它是在通过随机突变产生突变位点数量足够大的突变库的基础上，进一步通过 细胞融合使各突变位点优化组合，从而使突变指数级上升特别是增加大量表型可见突变。 基因组重排为利用微生物代谢网络这种柔性进行多点协同突变的菌种选育提供了技术支 撑。Zhang等（2002)首先以传统诱变方法获得一个突变库，筛选出若干个正向突变株作为 出发株，然后通过多轮递推原生质体融合的方式使众多基因随机重组，实现基因组重排，最 终从突变库中筛选出性状被提升的目的菌株；St印hanopoulos (2002)通过基因组重排改 造了细菌表型；Patnaik等（2002)利用基因组产品技术实现了乳酸杆菌的一株工业菌株 的改良，令其在pH 4.0下乳酸产量为出发野生菌株的3倍；Gao等（2012)通过两轮基因 组重排，使 Clostridium acetobutylicum CICC 8012 产 Acetone-Butanol-Ethanol (ABE) 提高了 34. 53% ;Ge 等（2012)通过基因组重排获得 Saccharomyces cerevisiae GS3-10， 其对五碳糖和六碳糖的转化率达到69. 48 %和100%，而出发菌株为14. 83 %和100%， 乙醇产率达到47.08g/L，而出发菌株为18. 12g/L;Kang等（2011)通过基因组重排，使 Aureobasidium pullulans产普鲁蓝多糖大幅度提高，并且遗传稳定；Zheng等（2010)通 过基因组重排提高了 Sporolactobacillus inulinus ATCC 15538的D-乳酸产率和耐 酸性；John等（2008)通过原生质体融合式的基因组重排，获得了以木薯-甘蔗渣为基质 的乳酸商广菌株；Yu等（2008)通过基因组重排获得了糖耐度提商从而乳酸广率增加的 Lactobacillus rhamnosus ;Wang等（2007)通过基因组重排获得了耐酸度提高从而乳酸产 率增加的 Lactobacillus rhamnosus。
[0024] 基因组重排也为进行微生物代谢组学分析提供了支撑。经过基因组重排而代谢 优化的目的菌其遗传背景来源于出发菌，故通过比对目的菌与出发菌的蛋白表达谱差异， 辅以代谢流和代谢控制分析技术，即可解析导致代谢优化的关键酶及有关途径的调控机 制。Luo 等（2012)通过基因组重排使 Streptomyces gilvosporeus ATCC 13326 的游霉素 (natamycin)产率明显升高，Streptomyces gilvosporeus ATCC 13326 的蛋白表达谱发生 明显改变，34种蛋白表达上升而20种蛋白表达下降，提示与游霉素合成有关的牵涉广泛的 代谢网络得到优化；Zhang等（2010)通过基因组重排，使Propionibacterium shermanii产 Vb12大幅度提高，重排后菌株38种蛋白表达发生改变，其中22种蛋白表达上升而16种蛋白 表达下降，在表达上升的22种蛋白中，有6种是V b12合成途径中的酶，提示与Vb12合成有关 的牵涉广泛的代谢网络得到优化。
[0025] 但目前基因组重排在策略上存在一定缺陷，主要是选育培养基与发酵培养基之间 无关联，使得选育到的菌株在发酵时目标产物产率远低于预期。针对此问题，本发明在进行 基因组重排选育时，选育平板中添加一定比例的发酵培养基组分，而发酵培养基中添加一 定比例的选育平板组分，使得选育与发酵两环节之间形成关联，保障了选育环节表现出高 产表型的菌株在发酵时依然表现出高产表型，此即为本发明的底物诱导适应性策略。因此， 在对纳豆芽孢杆菌高产NK兼PQQ表型进行基因组重排选育时，在选育平板中添加一定比例 杨梅汁，而在杨梅汁发酵时则添加一定比例豆芽汁。


【发明内容】

[0026] 本发明提供了一种食疗发酵杨梅汁的制备方法。本发明在基因组重排技术基 础上进一步采用底物诱导适应性策略，对纳豆芽孢杆菌所有可能与NK和PQQ合成有关 的主流及旁支途径统筹优化，实现多位点协同突变，进而通过高通量筛选使多位点协 同突变的表型从突变库中凸显，获得能够在杨梅汁发酵中高产NK兼PQQ的纳豆芽孢 杆菌BN-NKPQQ-RWX-508。同时，通过随机诱变获得甲硫氨酸营养缺陷（Met_)干酪乳 杆菌（Lactobacillus casei Shirota-Met、LcS-MeO。LcS-Meif 在生长速度上高于 BN-NKPQQ-RWX-508,但前者对后者营养依赖，两者之间形成稳定共生关系，保障了共发酵顺 利完成，从而获得富含NK和PQQ的杨梅汁。
[0027] -种食疗发酵杨梅汁的制备方法，包括以下步骤：
[0028] 1)、将产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263分别进行亚硝基 胍诱变；然后混合二者诱变后代，进行细胞融合传代培养，在基因组重排技术基础上进一步 采用底物诱导适应性策略，高通量筛选得到高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌，命名为纳豆芽 孢杆菌 BN-NKPQQ-RWX-508 ;
[0029] 细胞融合传代培养实现基因组改组，使纳豆芽孢杆菌10261和10623所有诱变后 代的优势突变得到优化整合。如有必要，可对融合后代进行第二轮或者多轮诱变及融合，直 至选育出NK兼PQQ产率高且生长旺盛、遗传稳定、适合作为生产菌株的高产NK兼PQQ纳豆 芽孢杆菌。
[0030] 2)、将干酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota)进行亚硝基胍诱变，从中筛选 出甲硫氨酸营养缺陷型的干酪乳杆菌，命名为干酪乳杆菌LcS-Meif (Lactobacillus casei Shirota-Met-)；
[0031] 3)将纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508和干酪乳杆菌LcS-Mef共发酵杨梅汁，得 至IJ富含NK和PQQ的杨梅汁，得到的富含NK和PQQ的杨梅汁即为食疗发酵杨梅汁。
[0032] 本发明在基因组重排技术基础上进一步采用底物诱导适应性策略，对纳豆芽孢杆 菌所有可能与NK和PQQ合成有关的主流及旁支途径统筹优化，实现多位点协同突变，进而 通过高通量筛选使多位点协同突变的表型从突变库中凸显，获得能够在杨梅汁发酵中高产 NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508。同时，通过随机诱变获得甲硫氨酸营养缺陷 (Met )干酿乳杆菌LcS-Met。
[0033] 欲使干酪乳杆菌与纳豆芽孢杆菌顺利共发酵，两者之间应形成共生关系。本发 明的策略是使通常情况下竞争占优的干酪乳杆菌成为甲硫氨酸营养缺陷（LcS-MeO，从 而在代谢上对纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508形成依赖，其所需要的甲硫氨酸（Met) 由纳豆芽孢杆菌供给，即形成严格的偏利共生关系。虽然LcS-Mef在生长速度上高于 BN-NKPQQ-RWX-508,但前者对后者营养依赖，两菌之间形成稳定共生关系，保障了共发酵顺 利完成，从而获得富含NK和PQQ的杨梅汁。
[0034] 所用纳豆芽孢杆菌和干酪乳杆菌均属于食品级安全微生物，共发酵得到的富含NK 和PQQ的杨梅汁中，PQQ含量达到63-129ng/mL。NK活力达到575-855U/mL。所获得的杨梅 汁富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌，具有杨梅汁固有的滋味和发酵后特有的风味。
[0035] 步骤1)中，纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263采用现有技术，纳豆芽孢 杆菌10261来自中国工业微生物菌种保藏管理中心（CICC)，地址：北京市朝阳区酒仙桥中 路24号院6号楼；保藏日期为2002年，菌种保持编号为10261 ;纳豆芽孢杆菌10263来自中 国工业微生物菌种保藏管理中心（CICC)，地址：北京市朝阳区酒仙桥中路24号院6号楼； 保藏日期为2002年，菌种保持编号为10263;干酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota) 来自养乐多（上海）有限公司；小鼠抗PQQ IgG单抗PQQ-mAb采用市售产品，购自嘉兴元科 生物科技有限公司，商品号为YK-Ab-013。
[0036] 所述的底物诱导适应性基因组重排后的高通量筛选具体包括：①制备2个平板豆 芽汁杨梅汁固体培养基（杨梅汁占平板总量的10% -15%，使得选育培养基与发酵培养基 之间发生关联，此即为本发明的底物诱导适应性策略），其中一个将小鼠抗PQQ IgG单抗 PQQ-mAb配入，形成平板A，另一个将琼脂糖-纤维蛋白配入，形成平板B ;②将纳豆芽孢杆 菌10261和纳豆芽孢杆菌10263的诱变融合后代涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印 至另一个平板，使平板A和平板B互为影印平板；③平板A中，高产PQQ诱变融合后代菌落 周围形成肉眼可见沉淀线，根据沉淀圈直径大小可肉眼判断产PQQ量大小；④平板B中，高 产NK诱变融合后代菌落周围形成透明圈，根据透明圈直径大小可肉眼判断产NK活力高低； ⑤平板A与平板B中，高产PQQ菌落与高产NK菌落处于同一位置者，即为高产NK兼PQQ的 纳豆芽孢杆菌。
[0037] 所获得的高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508保藏于斜面豆芽汁杨 梅汁固体培养基中。
[0038] 所述的平板豆芽汁杨梅汁固体培养基和斜面豆芽汁杨梅汁固体培养基以IL计， 由以下量的组分组成：
[0039] 杨梅? 卩 IOO-ISOmL; 蔗糖 4.0?&0g; 琼脂 1,5?2.0g; :C芽汁 余fi。
[0040] 进一步优选，所述的平板豆芽汁杨梅汁固体培养基和斜面豆芽汁杨梅汁固体培养 基以IL计，由以下量的组分组成：
[0041] 杨梅汁 10(M50mL; 鹿糖 5.0g; BK 脂 1·5 ?2.0g; 豆芽汁 余
[0042] 所述的豆芽汁的制备：刚出芽的大豆500g，加水2500mL，煮沸浓缩至IOOOmL后过 滤，得到豆芽汁。
[0043] 该平板豆芽汁杨梅汁固体培养基的配方有利于纳豆芽孢杆菌菌落形成和高通量 筛选。该斜面豆芽汁杨梅汁固体培养基的配方有利于纳豆芽孢杆菌保藏。
[0044] 本发明中，采用基因组重排技术选育纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508时，选育平 板中添加一定比例的发酵培养基组分（杨梅汁），而发酵培养基中添加一定比例的选育平 板组分（豆芽汁），使得选育与发酵两环节之间形成关联，促使选育环节表现出高产表型的 菌株在发酵时依然表现出高产表型，此即为本发明的底物诱导适应性策略。
[0045] 步骤2)中，所述的从中筛选出甲硫氨酸营养缺陷型的干酪乳杆菌，具体包括：① 制备2个平板MRS固体培养基，其中一个将甲硫氨酸（Met)配入（Met添加量为10-15mg/ L)，为平板C，另一个为单纯MRS固体培养基平板（平板D)，为平板D ;②将诱变后的干酪乳 杆菌（Lactobacillus casei Shirota)涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印至另一个 平板，使平板C和平板D互为影印平板；③在平板C与平板D的同一位置，平板C出现菌落 而平板D未出现菌落，或平板C上的菌落显著大于平板D上的菌落，则该菌落为甲硫氨酸营 养缺陷型干酪乳杆菌，命名为干酪乳杆菌LcS-Met^保藏于斜面MRS固体培养基中。
[0046] 所述的平板MRS固体培养基和斜面MRS固体培养基以IL计，由以下量的组分组 成：
[0047] 蛋 Π 藤 lO.Og; 中1?膏 丨0,%; 5.0g； If檬酸氢二鑛 2.0g; 葡萄糖 20.0g; 乙纖铺 5.0g； 磷酸氢二卿 2.0g； 硫酸镁 〇.58g; 疏酸 fi 〇.25g； 琼膽 20g; 吐温 80 I.OmL； 水 余M; 该MRS固体培养基的pH位保持在6.2?6.4。
[0048] 该MRS固体培养基有利于干酪乳杆菌菌落形成和甲硫氨酸营养缺陷型干酪乳杆 菌的筛选。
[0049] 本发明中，采用随机诱变技术获得甲硫氨酸营养缺陷（MeO的干酪乳杆 菌（Lactobacillus casei Shirota-Me if，LcS-Meif)。LcS-Meif 在生长速度上高于 BN-NKPQQ-RWX-508,但前者对后者营养依赖，两者之间形成稳定共生关系，通过构建共生关 系的策略实现纳豆芽孢杆菌与干酪乳杆菌的共发酵，获得富含NK和PQQ的杨梅汁。
[0050] 步骤3)中，在共发酵之前，将BN-NKPQQ-RWX-508和LcS-Met_分别进行活化培 养，BN-NKPQQ-RWX-508在豆芽汁杨梅汁液体培养基中进行活化培养，培养温度为34? 36 °C (优选35 °C )，LcS-Met-在MRS液体培养基中进行活化培养，培养温度为36?38 °C (优 选 37。。）。
[0051] 所述的豆芽汁杨梅汁液体培养基以IL计，由以下量的组分组成：
[0052] 杨梅汁 100 ?150mL ;
[0053] 鹿糖 4. 0 ?6. Og ;
[0054] 豆芽汁 余量。
[0055] 所述的豆芽汁杨梅汁液体培养基以IL计，优选的，由以下量的组分组成：
[0056] 杨梅汁 100 ?1 SOmT,；
[0057] 蔗糖 5. Og ;
[0058] 豆芽汁 余量。
[0059] 该豆芽汁杨梅汁液体培养基的配方有利于纳豆芽孢杆菌增殖培养。豆芽汁制备： 刚出芽的大豆500g，加水2500mL，煮沸浓缩至IOOOmL后过滤，得到豆芽汁。
[0060] 所述的MRS液体培养基以IL计，由以下量的组分组成：
[0061] 肋1藤 10.% 牛肉膏 10.% 醇母膏 5.0g; 柠檬酸氮二鐵 2.0g； 葡萄糖 20.0g; 乙酸 Il 5.0g; 磷酸氢二# 2.0g; mmm 0.5 gg; 硫酸蜢 〇.25g； 吐温 80 I.OmL； 水 余.31:; 该MRS液体培养基的pH位保持在6.2?6.4。
[0062] 该MRS液体培养基有利于干酪乳杆菌增殖培养。
[0063] 将BN-NKPQQ-RWX-508和LcS-Met_共发酵含杨梅汁的发酵培养基，具体包括：将活 化后的BN-NKPQQ-RWX-508和LcS-Met_混合，形成混合菌液，将混合菌液接种至含杨梅汁的 发酵培养基，纱布封口培养后得到富含NK和PQQ的杨梅汁。
[0064] 所述的含杨梅汁的发酵培养基以IL计，由以下量的组分组成：
[0065] 筋糖 50.0g; 酪氨酸 0.5g;
[0066] 谷試酸 0.5g; +炎芽糖 20.0g! .口.芽汁 IOOmLi 杨梅计 余量。
[0067] 所述的杨梅汁的制备包括：水中加去核杨梅，碾磨成浆汁，得到杨梅汁。具体地，如 IOOmL水中加10?25g去核杨梅，碾磨成浆汁。
[0068] 混合菌液中，所述的BN-NKPQQ-RWX-508和LcS-MetI勺混合密度比为1:2?1:5。
[0069] 所述的混合菌液接种至含杨梅汁的发酵培养基的接种量为1 %?5%。
[0070] 所述的纱布封口培养的条件为：37°C?42°C六层纱布封口培养24h?36h。
[0071] 共发酵时，在含杨梅汁的发酵培养基中，添加酪氨酸和谷氨酸对 BN-NKPQQ-RWX-508进行代谢调控，促进PQQ合成，添加麦芽糖对BN-NKPQQ-RWX-508进行代 谢调控，促进NK生成，添加豆芽汁促进BN-NKPQQ-RWX-508在杨梅汁发酵过程中的增殖。本 发明中，纳豆芽孢杆菌与干酪乳杆菌选育及其共发酵制备的发酵杨梅汁富含纳豆激酶和吡 咯喹啉醌，具有杨梅汁固有的滋味和发酵后特有的风味。
[0072] 与现有技术相比，本发明具有如下优点：
[0073] -、本发明使用的纳豆芽孢杆菌和干酪乳杆菌均属于食品级安全微生物。
[0074] 二、首次采用基因组重排技术优化NK和PQQ合成途径，对纳豆芽孢杆菌所有可能 与NK和PQQ合成有关的主流及旁支途径统筹优化，实现多位点协同突变，进而通过高通量 筛选使多位点协同突变的表型从突变库中凸显。同时，在基因组重排技术基础上进一步采 用底物诱导适应性策略，保障了选育环节表现出高产表型的菌株在发酵时依然表现出高产 表型，获得能够在杨梅汁发酵中高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508。
[0075] 三、首次采用构建共生关系的策略实现纳豆芽孢杆菌与干酪乳杆菌的共发酵。通 过随机诱变获得甲硫氨酸营养缺陷（Met)干酪乳杆菌LcS-Met' LcS-Mef在生长速度上 高于BN-NKPQQ-RWX-508,但前者对后者营养依赖，两者之间形成稳定共生关系，保障了共发 酵顺利完成，从而获得富含NK和PQQ的杨梅汁。
[0076] 四、从结构上看，PQQ通过酪氨酸和谷氨酸之间形成肽键连接环化而成。本发明通 过在含杨梅汁的发酵培养基中添加酪氨酸和谷氨酸对BN-NKPQQ-RWX-508进行代谢调控， 促进PQQ合成。通过在含杨梅汁的发酵培养基中添加麦芽糖对BN-NKPQQ-RWX-508进行代 谢调控，促进NK生成。通过在含杨梅汁的发酵培养基中添加豆芽汁促进BN-NKPQQ-RWX-508 在杨梅汁发酵过程中的增殖，从而得到富含NK和PQQ的杨梅汁，PQQ含量达到63-129ng/ mL。NK活力达到575-855U/mL。所获得的杨梅汁富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌，具有杨梅汁 固有的滋味和气味。

【具体实施方式】
[0077] 在实施例中，有关培养基配制如下，
[0078] (a)所述的豆芽汁杨梅汁液体培养基配制完成后，121°C灭菌15min，以IL计，由以 下量的组分组成：
[0079] 杨梅汁 I3OmL ;
[0080] 蔗糖 5. Og ;
[0081] 豆芽汁 余量；
[0082] 该豆芽汁杨梅汁液体培养基的配方有利于纳豆芽孢杆菌增殖培养。豆芽汁制备： 刚出芽的大豆500g，加水2500mL，煮沸浓缩至IOOOmL后过滤，得到豆芽汁。
[0083] (b)所述的豆芽汁杨梅汁固体培养基（平板）配制完成后，121°C灭菌15min，以IL 计，由以下量的组分组成：
[0084] 杨梅 --· l：H)mL； 蔗糖 5.0g; 琼脂 1.8g; IZ牙汁 余m;
[0085] 该豆芽汁杨梅汁固体培养基（平板）的配方有利于纳豆芽孢杆菌菌落形成和高通 量筛选。
[0086] (c)所述的豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）配制完成后，121°C灭菌15min，以IL 计，由以下量的组分组成：
[0087] 杨梅 Π · 130mL； 蔗糖 5.0g; 琼脂 i.%
[0088] 芽汁 佘茕； 倒试符斜丽
[0089] 该豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）的配方有利于纳豆芽孢杆菌的保藏。
[0090] (d)所述的MRS液体培养基配制完成后，121°C灭菌15min，以IL计，由以下量的组 分组成：
[0091] 蛋丨?胨 l〇.〇g； 牛肉膏 lO.Og; 酵賴 5%; 柠檬酸M-:铵 2.0g； 葡菊糖 20.0g; 乙酸钠 5.0g; 磷酸氢：钾 2.0g; 硫酸镁 〇.58g; 硫酸锰 0.25g; 吐温 80 l.OmL； 水 余S; pH 6-2 ?6.4
[0092] 该MRS液体培养基有利于干酪乳杆菌增殖培养。
[0093] (e)所述的MRS固体培养基（平板）配制完成后，121°C灭菌15min，以IL计，由以 下量的组分组成：
[0094] 蛋 i+? 藤 ia〇g; 牛_膏 lO.Og; 酵母膏 5.0g; 柠檬酸氢二續 2.0g； 葡萄糖 20.0g; 乙酸钠 5.0g; 鶴酸氢二钾 2.0g; 硫酸镁 〇.58g; 硫酸锰 0.25g; 琼脂 20g; 吐温 80 l.OmL； 水 余最;
[0095] pH 6.2 ?6.4
[0096] 该MRS固体培养基有利于干酪乳杆菌菌落形成和筛选。
[0097] (f)所述的MRS固体培养基（斜面）配制完成后，121°C灭菌15min，以IL计，由以 下量的组分组成：
[0098] 蛋广丨胨 l〇.〇g; 牛肉膏 UXOg; 酵母膏 5.Og; 柠檬酸氛-：铵 2.0g； 葡萄糖 20.0g; 乙酸钠 5.0g; 磷酸氢二卿 2,0g; 硫酸镁 0.58g； 硫酸锰 0.25g； 琼脂 20g； 吐温 80 LOmL; 水 余最； pH 6.2^6.4 倒试管斜面
[0099] 该MRS固体培养基（斜面）有利于干酪乳杆菌保藏。
[0100] (g)所述的含杨梅汁的发酵培养基以IL计，由以下量的组分组成：
[0101] IiHfIf 50.0g； 酪減酸 0.5g; 谷氨酸 〇.5g; 麦芽糖 2aog; ? H. KHhnI,; 杨梅汁 余.S。
[0102] (h)所述的杨梅汁的制备包括：1000mL水中加200g去核杨梅，碾磨成浆汁，得到杨 梅汁。
[0103] 本发明实施例中，纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263采用现有技术，纳豆 芽孢杆菌10261来自中国工业微生物菌种保藏管理中心（CICC)，地址：北京市朝阳区酒仙 桥中路24号院6号楼；保藏日期为2002年，菌种保持编号为10261 ;纳豆芽孢杆菌10263 来自中国工业微生物菌种保藏管理中心（CICC)，地址：北京市朝阳区酒仙桥中路24号院 6号楼；保藏日期为2002年，菌种保持编号为10263 ;干酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota)来自养乐多（上海）有限公司；小鼠抗PQQ IgG单抗PQQ-mAb采用市售产品，购 自嘉兴元科生物科技有限公司，商品号为YK-Ab-013。
[0104] 实施例1
[0105] 本发明通过纳豆芽孢杆菌与干酪乳杆菌选育及其共发酵制备富含NK和PQQ的杨 梅汁，包括以下步骤：
[0106] (1)高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508的选育
[0107] 采用底物诱导适应性策略，通过基因组重排及高通量筛选技术获得高产NK兼PQQ 的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508,具体方法为：首先构建纳豆芽孢杆菌突变库，将已获 得的产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌10261和10263分别进行亚硝基胍诱变；然后混合二者诱 变后代，进行细胞融合（促融剂为聚乙二醇4000)，传代培养，实现基因组改组，使纳豆芽孢 杆菌10261和10623所有诱变后代的优势突变得到优化整合，选育出NK兼PQQ产率高且生 长旺盛、遗传稳定、适合作为生产菌株的高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌。
[0108] 突变库高通量筛选：①制备2个豆芽汁杨梅汁固体培养基平板（杨梅汁占平板总 量的10-15%，使得选育培养基与发酵培养基之间发生关联，此即为本发明的底物诱导适应 性策略），其中一个将小鼠抗PQQ IgG单抗PQQ-mAb配入，形成平板A，另一个将琼脂糖-纤 维蛋白配入，形成平板B ;②将纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263的诱变融合后代 涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印至另一个平板，使平板A和平板B互为影印平板； ③平板A中，高产PQQ诱变融合后代菌落周围形成肉眼可见沉淀线，根据沉淀圈直径大小可 肉眼判断产PQQ量大小；④平板B中，高产NK诱变融合后代菌落周围形成透明圈，根据透明 圈直径大小可肉眼判断产NK活力高低；⑤平板A与平板B中，高产PQQ菌落与高产NK菌落 处于同一位置者，即为高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌。所获得的高产NK兼PQQ的纳豆芽 孢杆菌命名为BN-NKPQQ-RWX-508,保藏于豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）中。
[0109] (2)甲硫氨酸营养缺陷（MeO的干酪乳杆菌（LcS-MeO的选育
[0110] 将干酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota)进行亚硝基胍诱变，从中筛选出 甲硫氨酸营养缺陷型（LcS-MeO。
[0111] LcS-Met-筛选：①制备2个MRS固体培养基平板，其中一个将甲硫氨酸（Met)配 入（平板C，Met添加量为10-15mg/L)，另一个为单纯MRS平板（平板D);②将干酪乳杆菌 (Lactobacillus casei Shirota)的诱变后代涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印至 另一个平板，使平板C和平板D互为影印平板；③在平板C与平板D的同一位置，平板C出 现菌落而平板D未出现菌落，或平板C上的菌落显著大于平板D上的菌落，则该菌落甲硫氨 酸营养缺陷型干酪乳杆菌，命名为LcS-Met^保藏于MRS固体培养基（斜面）中。
[0112] (3)BN-NKPQQ-RWX-508 的活化培养
[0113] 将保存于豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）中的BN-NKPQQ-RWX-508取一环，接种 至豆芽汁杨梅汁液体培养基活化，培养温度35°C，培养结束菌种密度达到10 9cfu/mL左右。
[0114] (4) LcS-Meif 的活化培养
[0115] 将保存于MRS固体培养基（斜面）中的LcS_Met_取一环，接种至MRS液体培养基 37°C活化培养，培养结束菌种密度达到10 9cfu/mL左右。
[0116] (5)富含NK和PQQ的杨梅汁的发酵制备
[0117] 将活化的BN-NKPQQ-RWX-508与LcS-Met_混合，使混合菌液中二者密度比为 1:2 (I X 108CFM/mL: 2 X 108CFM/mL)，混合菌液以1 %接种量接种含杨梅汁的发酵培养基， 42°C六层纱布封口培养24h，得到富含NK和PQQ的杨梅汁。含杨梅汁的发酵培养基中所含 豆芽汁、酪氨酸、谷氨酸和麦芽糖对BN-NKPQQ-RWX-508合成NK和PQQ进行代谢调控，豆芽 汁有利于纳豆芽孢杆菌增殖，麦芽糖有利于NK合成，而PQQ由酪氨酸和谷氨酸通过肽键连 接环化而成。发酵结束后，杨梅汁中NK活力575U/mL，PQQ含量63ng/mL。所获得的杨梅汁 富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌，具有杨梅汁固有的滋味和发酵后特有的风味。
[0118] 实施例2
[0119] 本发明通过纳豆芽孢杆菌与干酪乳杆菌选育及其共发酵制备富含NK和PQQ的杨 梅汁，包括以下步骤：
[0120] (1)高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508的选育
[0121] 采用底物诱导适应性策略，通过基因组重排及高通量筛选技术获得高产NK兼PQQ 的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508,具体方法为：首先构建纳豆芽孢杆菌突变库，将已获 得的产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌10261和10263分别进行亚硝基胍诱变；然后混合二者诱 变后代，进行细胞质融合（促融剂为聚乙二醇4000)，传代培养，实现基因组改组，使纳豆芽 孢杆菌10261和10623所有诱变后代的优势突变得到优化整合，选育出NK兼PQQ产率高且 生长旺盛、遗传稳定、适合作为生产菌株的高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌。
[0122] 突变库高通量筛选：①制备2个豆芽汁杨梅汁固体培养基平板（杨梅汁占平板总 量的10-15%，使得选育培养基与发酵培养基之间发生关联，此即为本发明的底物诱导适应 性策略），其中一个将小鼠抗PQQ IgG单抗PQQ-mAb配入，形成平板A，另一个将琼脂糖-纤 维蛋白配入，形成平板B ;②将纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263的诱变融合后代 涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印至另一个平板，使平板A和平板B互为影印平板； ③平板A中，高产PQQ诱变融合后代菌落周围形成肉眼可见沉淀线，根据沉淀圈直径大小可 肉眼判断产PQQ量大小；④平板B中，高产NK诱变融合后代菌落周围形成透明圈，根据透明 圈直径大小可肉眼判断产NK活力高低；⑤平板A与平板B中，高产PQQ菌落与高产NK菌落 处于同一位置者，即为高产NK兼PQQ的纳豆芽孢杆菌。所获得的高产NK兼PQQ的纳豆芽 孢杆菌命名为BN-NKPQQ-RWX-508,保藏于豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）中。
[0123] (2)甲硫氨酸营养缺陷（MeO的干酪乳杆菌（LcS-MeO的选育
[0124] 将干酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota)进行亚硝基胍诱变，从中筛选出 甲硫氨酸营养缺陷型（LcS-MeO。
[0125] LcS-Mef筛选：①制备2个MRS固体培养基平板，其中一个将甲硫氨酸（Met)配入 (平板C，Met添加量为10-15mg/L)，另一个为单纯MRS固体培养基平板（平板D);②将干 酪乳杆菌（Lactobacillus casei Shirota)的诱变后代涂布其中一个平板后，再用纤维素 膜影印至另一个平板，使平板C和平板D互为影印平板；③在平板C与平板D的同一位置， 平板C出现菌落而平板D未出现菌落，或平板C上的菌落显著大于平板D上的菌落，则该菌 落甲硫氨酸营养缺陷型干酪乳杆菌，命名为LcS-Met^保藏于MRS固体培养基（斜面）中。
[0126] (3)BN-NKPQQ-RWX_508 的活化培养
[0127] 将保存于豆芽汁杨梅汁固体培养基（斜面）中的BN-NKPQQ-RWX-508取一环，接种 至豆芽汁杨梅汁液体培养基活化，培养温度35°C，培养结束菌种密度达到10 9cfu/mL左右。
[0128] (4) LcS_Met_ 的活化培养
[0129] 将保存于MRS固体培养基（斜面）中的LcS_Met_取一环，接种至MRS液体培养基 37°C活化培养，培养结束菌种密度达到10 9cfu/mL左右。
[0130] (5)富含NK和PQQ的杨梅汁的发酵制备
[0131] 将活化的BN-NKPQQ-RWX-508与LcS-Met_混合，使混合菌液中二者密度比为 1:5 (I X 108CFM/mL: 5 X 108CFM/mL)，混合菌液以5 %接种量接种含杨梅汁的发酵培养基， 37°C六层纱布封口培养36h，得到富含NK和PQQ的杨梅汁。含杨梅汁的发酵培养基中所含 豆芽汁、酪氨酸、谷氨酸和麦芽糖对BN-NKPQQ-RWX-508合成NK和PQQ进行代谢调控，豆芽 汁有利于纳豆芽孢杆菌增殖，麦芽糖有利于NK合成，而PQQ由酪氨酸和谷氨酸通过肽键连 接环化而成。发酵结束后，杨梅汁中NK活力855U/mL，PQQ含量129ng/mL。所获得的杨梅 汁富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌，具有杨梅汁固有的滋味和发酵后特有的风味。
[0132] 本发明中采用色谱法测定PQQ，具体步骤参照"Noji N，Nakamura T, Kitahata N, et al. Simple and sensitive method for pyrroloquinoline quinone(PQQ) analysis in various foods using liquid chromatography/electrospray-lonization tandem mass spectrometry. J Agri Food Chem, 2007, 55 (18): 7258-7263·，'。
[0133] 本发明中采用琼脂糖-纤维蛋白原平板法测定NK活力。测定步骤：将发酵液过滤 后点种在琼脂糖-纤维蛋白平板上，37°C孵育18h，以尿激酶作为标准品，通过测量透明圈 直径计算纳豆激酶相当于尿激酶的活力单位（U/mL)。
【权利要求】
1. 一种食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，包括以下步骤： 1)、将产纳豆激酶兼吡咯喹啉醌的纳豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263分别进 行亚硝基胍诱变；然后混合二者诱变后代，进行细胞融合传代培养，高通量筛选得到高产纳 豆激酶兼吡咯喹啉醌的纳豆芽孢杆菌，命名为纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508 ; 2) 、将干酪乳杆菌进行亚硝基胍诱变，从中筛选出甲硫氨酸营养缺陷型的干酪乳杆菌， 命名为干酪乳杆菌LcS-Met_ ; 3)将纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508和干酪乳杆菌LcS-Met_共发酵杨梅汁，得到富 含纳豆激酶和吡咯喹啉醌的杨梅汁。
2. 根据权利要求1所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤1)中，所述 的高通量筛选具体包括：①制备2个平板豆芽汁杨梅汁固体培养基，其中一个将小鼠抗PQQ IgG单抗PQQ-mAb配入，形成平板A，另一个将琼脂糖-纤维蛋白配入，形成平板B;②将纳 豆芽孢杆菌10261和纳豆芽孢杆菌10263的诱变融合后代涂布其中一个平板后，再用纤维 素膜影印至另一个平板，使平板A和平板B互为影印平板；③平板A中，高产吡咯喹啉醌的 诱变融合后代菌落周围形成肉眼可见沉淀圈，根据沉淀圈直径大小可肉眼判断产吡咯喹啉 醌量大小；④平板B中，高产纳豆激酶的诱变融合后代菌落周围形成透明圈，根据透明圈直 径大小可肉眼判断产纳豆激酶活力高低；⑤平板A与平板B中，高产吡咯喹啉醌菌落与高产 纳豆激酶菌落处于同一位置者，即为高产纳豆激酶兼吡咯喹啉醌的纳豆芽孢杆菌。
3.根据权利要求2所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤1)中，所述的 平板豆芽汁杨梅汁固体培养基以IL计，由以下量的组分组成： 杨梅汁 100~150mL； 庶糖 4.0?6.0g; 琼脂 1.5?2.0g; --芽汁 余-β:。
4.根据权利要求1所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤2)中，所述 的从中筛选出甲硫氨酸营养缺陷型的干酪乳杆菌，具体包括：①制备2个平板MRS固体培养 基，其中一个将甲硫氨酸配入，为平板C，另一个为单纯MRS固体培养基平板，为平板D;②将 诱变后的干酪乳杆菌涂布其中一个平板后，再用纤维素膜影印至另一个平板，使平板C和 平板D互为影印平板；③在平板C与平板D的同一位置，平板C出现菌落而平板D未出现菌 落，或平板C上的菌落显著大于平板D上的菌落，则该菌落为甲硫氨酸营养缺陷型干酪乳杆 菌。
5.根据权利要求4所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤2)中，所述的 平板MRS固体培养基以IL计，由以下量的组分组成： 蛋l〇.〇g； 牛1?膏 〗0.0g; 醇母膏 5,0g; If檬酸氨二銨 2.0g； 葡萄糖 20.0g; 乙酸钠 5.0g； *酸氢二卿 2,0g; 硫酸镁 〇.58g； ?Λ? 〇.25g; 琼脂 20g； 吐温 80 l.OmL； 水 余最； 该MRS固体培养基的pH值保持在6. 2?6. 4。
6. 根据权利要求1所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤3)中，在共 发酵之前，将纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508和干酪乳杆菌LcS-Met_分别进行活化培养， 纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508在豆芽汁杨梅汁液体培养基中进行活化培养，培养温度 为34?36°C，干酪乳杆菌LcS-Met_在MRS液体培养基中进行活化培养，培养温度为36? 38。。。
7. 根据权利要求6所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤3)中，所述的 豆芽汁杨梅汁液体培养基以IL计，由以下量的组分组成： 杨梅汁 100?150mL; 鹿糖 4.O?6.Og; 豆芽汁余量； 所述的MRS液体培养基以IL计，由以下量的组分组成： 蛋「_ lO.Og; 牛肉幵 lO.Og； 酵母膏 5.0g； If檬酸it::屬 2.0g; 葡萄糖 2u.0g； 乙酸铺 5,% 磷酸氢二钾 2.0g； 硫酸镁 0.5?; 硫酸蜢 0.25g; ?:温 80 i.OmL； 水 余S:; 该MRS液体培养基的pH值保持在6. 2?6. 4。
8. 根据权利要求1所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤3)中，将纳 豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508和干酪乳杆菌LcS-Met_共发酵杨梅汁，具体包括：将活化后 的纳豆芽孢杆菌BN-NKPQQ-RWX-508和干酪乳杆菌LcS-Met_混合，形成混合菌液，将混合菌 液接种至含杨梅汁的发酵培养基，纱布封口培养后得到富含纳豆激酶和吡咯喹啉醌的杨梅 汁。
9. 根据权利要求8所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤3)中，所述的 含杨梅汁的发酵培养基以IL计，由以下量的组分组成： 蔗糖 50,0g; 酪氨酸 0.5g; 谷氨酸 〇.5g; 麦芽if 20,0g; 豆芽汁 IOOmL; 杨梅汁 余最Q
10. 根据权利要求1所述的食疗发酵杨梅汁的制备方法，其特征在于，步骤3)中，所述 的杨梅汁的制备包括：水中加去核杨梅，碾磨成浆汁，得到杨梅汁。
【文档编号】A23L2/02GK104432326SQ201410751926
【公开日】2015年3月25日 申请日期:2014年12月10日 优先权日:2014年12月10日
【发明者】张哲滔, 阮子琦, 莫凡, 邓惟, 吴渊 申请人:杭州元佩特生物科技有限公司