专利名称：用于处理粘性棉花纤维的酶组合物及用所述的酶组合物处理粘性棉花纤维的方法
技术领域：
本发明涉及用于降低棉花纤维粘性的“粘性棉花”处理，特别是，涉及酶组合物及用上述酶组合物处理“粘性棉花”纤维以降低其粘性的方法。
“粘性棉花”是一个用以说明在棉花纤维上有由某种(同翅昆虫)昆虫(主要是甘蓍粉虱Bemisia tabaci和棉花蚜虫，Aphisgossyppi)排泄的粘性糖沉积物的棉花纤维，所述昆虫以盛开棉桃上面的棉花叶为食。在棉花加工过程中，粘性棉花引起严重问题。这是全世界棉农面临的问题。
将在“粘性棉花”的棉花纤维上的粘性物质称为“蜜汁”。蜜汁是一种单、二、三糖及少量蛋白质与有机酸(1，2)的复合混合物。由粉虱生产的典型蜜汁组合物含29.5%寡糖(包括松三糖)，10.1%蔗糖，5.3%葡萄糖，11.7%果糖，43.1%海藻糖(trehalulose)(3)。
在棉花上的蜜汁给轧棉和纺织厂中棉花的加工造成困难。另外，上述蜜汁的存在，会增加纤维染色真菌的微生物发酵。很大程度上影响了棉花的纤维质量。在轧棉中，粘性棉花影响废物的清除并需要更频繁地清洗轧棉机刀口，减慢了轧棉操作。这会显著地降低生产力。在纺织厂中，蜜汁影响许多加工步骤，包括梳棉，拉丝、制粗纱和精纺操作。由于高速技术的适应性，在许多国家中，粘性棉花是棉花生产的主要威胁，并且在纺织工业中，是一个重要的质量考虑因素。
似乎已有降低受害棉花的粘性的有限工作的报告。报告过，将粘性棉花加热到130-140℃一段短时间，以使蜜汁中的糖成焦糖，从而避免精纺(4)过程中的粘性。有报告报道将碳氢化合物和表面活性剂加到棉花中以消除纱线加工过程(5)中的粘连问题。报道过的另一种方法是用氢氧化铵或硝酸铵的稀释溶液喷洒污染的棉花蕾以增强蜜汁中糖的微生物降解(2)。其它的还有用杀虫剂控制棉花粘性(6、7)。发现将称作Tempanil的物质(据报道含葡萄糖氧化酶)用于污染的棉花可显著降低可溶性糖(8)。未提及所处理的棉花的粘性的改变。Tempanil由两部分组成葡萄糖氧化酶和过氧化氢酶的粉末状制品;和非离子和阴离子湿润剂的液体混合物。
从文献中可以看出，在使用酶水解蜜汁这一领域做得很少，除葡萄糖氧化酶的使用外。但是，葡萄糖氧化酶仅仅是将葡萄糖转变成葡糖酸，而对于那些已知对棉花粘性有影响的糖没有活性。
(存在于蜜汁中的)低分子量的二、三糖即海藻糖和松三糖的复合物显著地影响污染棉花的粘性。这些糖包含单糖;葡萄糖和果糖，如下文所示，它们是由α和β糖苷键相连(1)海藻糖(O-αD-吡喃葡糖基-(1→1)-D-呋喃果糖苷)
(2)松三糖(O-α-D-吡喃葡糖基-O-(1-2)-O-β-D-呋喃果糖基-(3-1)-α-D-吡喃葡糖苷) 不幸的是，存在于蜜汁中的海藻糖和松三糖对由常规的碳水化合物水解酶进行的水解有抗性。因此，使用上述常规的碳水化合物水解酶不能令人满意地通过从棉花纤维中除去蜜汁来处理粘性棉花。
因此，可以看出，有必要提供一种组合物，特别是能水解或进一步降低棉花纤维上蜜汁的酶组合物。可以进一步看出，有必要提供一种使用上述酶组合物处理粘性棉花纤维以降低棉花在纤维上粘性的方法。
本发明的目的之一是鉴别并提供一种组合物，特别是能水解和/或进一步减少棉花纤维上的蜜汁以减小所述纤维粘度的酶组合物。
本发明的目的之一是提供一种处理粘性棉花纤维以降低其粘性的方法。
据本发明的教导，本文公开的是一种酶组合物，它能够水解和/或另外减少棉花纤维上存在的蜜汁，由此降低其粘性。该酶组合物包括至少一种得自真菌的水解酶。
优选的，酶组合物的水解酶来自曲霉菌属的真菌菌株。更优选的是，上述水解酶得自黑曲霉种的菌株。最佳的水解酶得自保藏于美国典型培养收集中心(ATCC)，保藏号为14916的真菌菌株黑曲霉(臭曲霉)。
本发明的酶组合物中所包括的得自真菌的优选的水解酶包括转葡糖苷酶(α-1，4和α-1，6)和果胶酶。
根据本发明的进一步教导，本文公开的是一种处理(酶方法处理)粘性棉花纤维以减小其粘度的方法。该方法包括将所述的棉花纤维与包括至少一种来自真菌的水解酶的酶组合物接触。
优选的，该方法使用有水解酶的酶组合物，所述水解酶得自曲霉属的真菌菌株。更优选的，上述水解酶来自黑曲霉种的菌株。最佳的水解酶是来自保藏于美国典型培养物收集中心(ATCC)，保藏号为14916的真菌菌株黑曲霉(臭曲霉)。
在本发明的酶组合物中包含的来自真菌的优选的水解酶包括转葡糖苷酶(α-1，4和α-1，6)和果胶酶。
根据本发明进一步的教导，本文公开的是至少一种来自真菌的水解酶用于制备酶组合物的用途，所述的酶组合物能至少部分水解棉花纤维上的蜜汁，从而降低棉花纤维的粘度。
优选的，所用的这些酶组合物含有得自曲霉属的真菌菌株的水解酶。更优选的，上述水解酶得自黑曲霉种的菌株。最佳的水解酶得自保藏于美国典型培养物收集中心(ATCC)，保藏号为14916的黑曲霉(臭曲霉)真菌菌株。
在本发明的酶组合物中包含的来自真菌的优选的水解酶包括转葡糖苷酶(α-1，4和α-1，6)及果胶酶。
通过对下列描述的阅读，并与包括的附图相结合，本发明的这些及进一步的目的和优点将是显而易见的。
图1A和1B是按实施例1描述完成的，分别是在0时和17小时时，对从粘性(污染的)棉花纤维提取的蜜汁进行酶水解试验而得到的蜜汁消化物的HPLC色谱。
图2A，2B，2C和2D是按实施例2的描述完成的，分别是在0时，1小时、4小时和20小时时，蔗糖的转葡糖苷酶水解的HPLC色谱。
图3A，3B，3C和3D是按实施例2描述完成的，分别是在0时，1小时、4小时和20小时时，松三糖的转葡糖苷酶水解的HPLC色谱。
图4A和4B是按实施例2描述完成的，分别是在0时和4小时时，海藻糖的转葡糖苷酶水解的HPLC色谱。
图5A和5B用黑曲霉果胶酶制品处理从纤维中提取的糖的HPLC色谱。“未处理”指表2中的对照样品。“喷洒器+管道”指进行了与两个说明中相同的实验。
图6是一个图，说明本发明酶组合物的有效性，其中，X轴是测温计分级值(Thermodetctor Rating)，Y轴是籽棉中的水的百分量，实(或黑)点及将它们连在一起的线代表用含1%(V/V)转葡糖苷酶L-1000制品的酶组合物得到的结果，空(或白)点及将它们连在一起的线代表用含2%(V/V)转葡糖苷酶L-1000制品的酶组合物得到的结果，三角和将其连在一起的线表示使用标准物得到的结果。
图7是说明本发明酶组合物有效性的图，其中，X轴表示缩微字符卡分级值(Minicard Rating)，Y轴是籽棉中的水百分含量，实(或黑)点及将其连在一起的线代表用含1%(V/V)转葡糖苷酶L-1000制品的酶组合物所得到的结果，实(或白)点及将其连在一起的线代表用含2%(V/V)转葡糖苷酶L-1000制品的酶组合物所得到的结果，三角和将其连在一起线表示用标准物得到的结果。
图8是说明本发明酶组合物有效性的图，其中X轴是测温计读数，Y轴是缩微字符卡读数。
图9是进一步说明本发明酶组合物有效性的直方图，所述的酶组合物含已被喷成各种湿度并培育2星期的转葡糖苷酶L-1000制品，其中X轴是测温计读数，最左边的柱代表干燥对照(即，既没有湿度，也没有酶的样品对照)，其中，紧挨着其的右边的柱代表有10%(V/V)水而没有酶的湿对照，再紧挨其右边的柱代表有10%(V/V)H2O和0.26%(V/V)转葡糖苷酶L-1000制品的湿对照，紧挨其右边的柱代表有12%(V/V)H2O和0.25%(V/V)转葡糖苷制品L-1000的湿对照，再紧挨其右边的柱代表有10%(V/V)H2O和0.5%(V/V)转葡糖苷制品L-1000的湿对照，再向右的柱代表(最右边的柱)代表有12%(V/V)H2O和0.5%(V/V)转葡糖苷的L-1000制品的湿对照。
本发明的新的酶制品(组合物)包括通过水解蜜汁中的糖，优选的，松三糖和海藻糖，而能降低棉花纤维上粘性的酶。另外，本文公开酶促水解这些糖的方法，造成污染棉花的粘性降低。由此，给全世界棉农的主要难题提供一种简单、经济且安全的解决办法。
我们已鉴定的能进行所述水解的酶是来自真菌，特别是曲霉属真菌的那些水解酶。最优选的是来自黑曲霉菌株，如寄存于美国典型培养物收集中心(ATCC)，保藏号为14916的黑曲霉(臭曲霉)菌株的那些水解酶。
当掺入本发明的酶组合物后能水解(松三糖和海藻糖)的本发明水解酶的种类包括，但不限于来自真菌的转葡糖苷酶、果胶酶，α-半乳糖苷酶、葡糖淀粉酶。
上述转葡糖苷酶的实例是来自黑曲霉ATCC14916的转葡糖苷酶α-1，4，来自黑曲霉ATCC14916的转葡糖苷酶α-1，6，以及商标名为Transglucosidase L-1000(SOLVAY ENZYMES，INC.，Elkhart，Ind.)的推入市场的转葡糖苷酶组合物。
上述果胶酶的实例是商标名为PEAREX 5X和CLAREX-ML(SOLVAY ENZYMES，INC.，Elkhart，Ind.，U.S.A)的推入市场的果胶酶组合物。
α-半乳糖苷酶的实例是来自黑曲霉的α-半乳糖苷酶(商标名为BEANO，AK PARMA INC.USA)。
葡糖淀粉酶的实例是得自黑曲霉ATCC 14916的葡糖淀粉酶。
根据本发明的原理，用水解酶制备用于水解棉花纤维上蜜汁的酶组合物，从而减小棉花纤维的粘性。关于这一点，将酶(或酶制品)与允许所得的酶组合物用于棉花纤维上的、可接受的载体混合或配制，以便将棉花纤维上的蜜汁水解掉并从其上除去。
可用于本发明酶组合物的载体的实例包括水。其它类型的载体包括，湿润剂，如TRITON X-100(UNION CARBIDE)。可以根据使用时酶组合物应用的环境(如所需接触的时间，接触时的环境条件等)确定具体所用的载体。
本发明酶组合物制品中，所用的酶或酶组合物与载体的精确浓度和比例容易由本领域专业人员所确定。
优选的，用本领域熟知的方法，如搅拌将酶(或酶制品)与载体混合，以溶解和/或完全且实质上均匀地将组分混合成实质上均匀的组合物。
进一步根据本发明的原理，可用本发明的酶组合物处理带有蜜汁的棉花纤维。该处理方法包括将棉花纤维与本发明的酶组合物接触一段足够时间，以便至少部分水解蜜汁。处理方法还包括随后从酶组合物中除去棉花纤维，从而使水解的蜜汁保留在酶组合物中。用这种方法，降低棉花纤维上的蜜汁。
如上所述，可将本发明的酶组合物和其使用方法用于处理仍在田地中或已收获的棉花纤维。
在前者情况下，可以用喷洒器或其它能够将液体酶组合物分散(优选的，实质上均匀地分散)到棉花纤维上的适合的装置，如喷雾器施用酶组合物。在这种情况下，然后，通过使酶组合物从棉花纤维上沥下的重力，通过蒸发和自然沉淀，从酶组合物中除去棉花纤维。如果需要，随后，也可以湿润或浸透棉花纤维(收获前和/或之后)以便进一步从处理过的棉花纤维上除去本发明的酶组合物。
在后者情况下，可以在含本发明酶组合物的适当水池中，通过浸透收获的棉花来施用酶组合物。另外，也可用适当的(及常规的)装置，如空气压力喷雾枪，将酶组合物喷到棉花纤维上。只是将酶组合物灌注到棉花纤维上沥下的重力，蒸发和自然沉淀，从酶组合物中除去棉花纤维，和/或，随后，也可以湿润或浸透棉花纤维以便进一步从处理过的棉花纤维上除去本发明的酶组合物。
酶组合物与有蜜汁的棉花纤维接触的时间的长短尤其取决于需水解的量及完全程度，本领域专业人员可以很容易地确定。本文中，所述的接触可以是10分钟那样短，或人们所需要的长时间，接触时间最长可达可能几天或几星期。然而，本文中，18小时的最短接触时间是优选的。
已经一般性地描述了本发明的组合物和方法，现参考下列实施例，它们仅用于说明目的而不是为了限制。
实施例1在50℃，用600ml水提取用蜜汁污染的15g棉花。再重复提取3次。每次提取包括湿润棉花，掺和15分钟，用手挤出棉花中的水。将提取物倒在一起，并用旋转膜蒸发器真空浓缩至约10ml。然后用该提取物挑选能水解蜜汁的酶。
为了测试水解酶活性，将PH4.5的0.5ml提取物与0.02ml转葡糖苷酶L-1000制品(由寄存于美国典型培养物收集中心，Rockville，Maryland，U.S.A，保藏号为ATCC 14916且已培养在适当的营养培养液中的黑曲霉的筛选菌株生产的，有时将该菌株划分成臭曲霉种的成员)于50℃培养18小时。通过取出0.2ml反应样品并在沸水浴中放10分钟来终止反应。冷却后，加入0.3ml 0.01NH2SO4。然后用Eppendorf台式离心机将混合物离心，使上清液通过一个0.45微米的滤器将其澄清。然后，于60℃，用流速为0.7ml/min的流动相(0.01N H2SO4)，在BioRad HPX-87H柱(Bio-Rad USA)上对0.02ml样品进行HPLC分离。用ErmaRI检测器Model ER-7512(Erma CA.Inc.Tokyo，Japan)检测糖。蜜汁提取物分离成数个峰，葡萄糖和果糖为后两个峰。在柱中的分离条件，低PH和高温引起蔗糖水解。在HPLC中使用的条件下，存在酶的情况下，蔗糖的命运不能完全预料。从文献中看，蜜汁中的寡糖的组合物主要是葡萄糖和果糖的聚合物。因此，水解寡糖的酶应引起葡萄糖和果糖的增加，相应地降低寡糖部分。
通过将20单位转葡糖苷酶加到蜜汁提取物(0.5ml体积)中对从相同的黑曲霉变种的筛选菌株中分离的转葡糖苷酶按上述进行实验。将1单位转葡糖苷酶定义为在用麦芽糖作为底物实验的条件下，每分钟生产1微摩尔6-α-葡糖基麦芽糖所需的酶量。该实验在0小时和17小时后，蜜汁消化的一份HPLC色谱复印件示于图1。图1清楚地表明，由于蜜汁寡糖被水解，引起单糖(葡萄糖和果糖)的增加。
实施例2蔗糖、海藻糖和松三糖的转葡糖苷酶水解据报道，蜜汁含有蔗糖、海藻糖和松三糖(7)。由于含BioRadHPX-87H柱的HPLC条件水解蔗糖，而另一个HPLC柱，其操作条件不能引起蔗糖的水解。发现用68%(V/V)乙腈和32%(V/V)水组成的流动相，BioRad Amino Bio Sil5S柱可以很好地分离寡糖和单糖而不会水解蔗糖。于25℃使用流动相操作该柱，流速为0.8ml/min。发现20μl4%DS(干物质)样品对于良好分离足够了。
为了进行酶消化，用0.02M乙酸盐缓冲液(PH5.0)制备4%各种糖溶液(标明ACS等级或来源)。在50℃，用10ml底物和50单位转葡糖苷酶完成消化。通过将消化液在沸水浴中温育10分钟，从而终止反应。在注入HPLC前，通过0.45微米的滤器过滤消化液。图2-4分别表明用转葡糖苷酶水解蔗糖、松三糖(SIGMA CHEMICALS)和海藻糖(W.B.MILLER的赠品，Clemson.University)的色谱图。结果清楚地表明，用转葡糖苷酶制品将蔗糖、海藻糖和松三糖水解成葡萄糖和果糖。
这些观察结果是独特的，由于一般转葡糖苷酶水解麦芽糖并将一个糖基转移到另一个麦芽糖上，形成1-6键，得到6-α-葡糖基麦芽糖。便得这三种糖蔗糖、松三糖及海藻糖水解如此不一般是因为它们均由葡萄糖和果糖组成，即蔗糖[葡萄糖-果糖，αβ(1→2)]、松三糖[α葡萄糖(1→2)]β果糖(3→1)α葡萄糖]和海藻糖(α葡萄糖(1→1)果糖]。
实施例3用商业上的果胶酶制品水解蜜汁用(从实施例1中描述的污染“(粘性)”棉花得到的)蜜汁提取物检测含各种真菌酶活性的商业酶制品。用与实施例1中描述的相同的方法，检测这些酶对蜜汁的水解活性。
为了检测作为蜜汁水解结果的单糖(葡萄糖和果糖)的增加用RT为7.22的峰值的降低作为蜜汁水解的指示(见图1)。
制订定性分级，以评估用本发明的各种酶组合物酶水解蜜汁的有效性。分级为从0到3的范围，0(-)表示约水解0-10%，1(+)表示约水解10-40%，2(++)表示约水解40-70%，3(+++)表示约水解70-100%。表1总结了这些分析结果。
实施例4果胶酶组合物的田间应用使用前，用含0.25%(W/V)TRITONX-100(UNION CARBIDE)(通过加入足够量的乙酸，使其PH降到4.5)的自来水将液体形式的Sumizyme-AP-Ⅱ稀释到其原浓度的2%(V/V)。在收获时，通过用喷嘴喷射，将该混合物用于Bemisia tabaci蜜汁污染的棉花，以便用这种溶液润湿收获的籽棉。根据棉花采摘者的速度，调整喷雾线的压力，以便每英亩棉花用约30加仑(US)的这种混合物。这些实验田的产量是每英亩约3000lb籽棉。
在这些实验中所用的采摘器，一台International Harvester422型，有一个小(14US加仑)的塑料箱，一个压力调节器，球形流速控制阀和安装在驾驶员附近的滤器以盛酶溶液。从这个箱中，以各种压力(约40psi)将混合物泵到喷嘴以得到所需的使用速率。将喷雾喷嘴放在采摘器头前的喷射器支架(金属支持结构)上，以便在棉花入采摘器前，用很细的喷雾喷射棉花(喷雾处理)。用于检测果胶酶制品的另一种使用方法是，经直接与管道固定的喷嘴，喷洒收获的棉花，所述的管道将收获的籽棉从采摘器头部运送到采摘器上的司机后面的贮存箱(称为篮子)。
喷洒后，将样品迅速从采摘器的篮子中取出，并放到密封的容器中以确定施用的湿度(和由此确定的有效的酶加入量，由于假设必须在湿润的状态下，酶才是有效的)。然后将这些样品称重，于105℃在压力供气箱中过夜干燥，然后再称重以确定它们的含湿量。同样地将未处理的样品取样，通过比较，确定有效的喷洒量。
为了确定对收获棉花的蜜汁糖和粘性的影响，从采摘器的篮子中另取一些样品，放在紧紧密封并包裹的容器(ZIPLOCR袋)中，将所述容器在室温下(约85-105°F)培养两天，然后，从塑料包中取出籽棉，并在热、干燥的房间(没有空调的温室中，温度约115-160°F，湿度很低)中干燥，直到其重量稳定。然后，用小型实验室轧棉机轧样品，用HPLC对10g棉绒(即棉纤维)作糖分析。将剩下的棉绒送到一个实验室(Dr，Henry H.PERKINS，Jr.In Clemson，S.C.)，用Minicard测试分析降低的糖和粘性。在后一测试中，按在美国所通用的，用0到3的分极，其中的0表示非粘性棉花，3表示最大粘性。使用果胶酶组合物在喷洒器应用中使2.75±0.29(平均值±SEM)的粘性分级值降到0.5±0.29。当喷到管道中，粘性降低到0.25±0.00的Minicard分级值，从两个位置喷时，粘性分级值是0.00±0.00。
在表2中总结了这些结果。
在表2中说明的实验及用未喷洒的棉花作为对照的图，反映了同样实验中的有关的水含量(表2)。
数据代表四个相同样品的平均值±S.E.。标为对照的处理是采摘后未加酶，其它处理是在收获时，用含2%(V/V)酶制品0.25%(V/V)表面活性剂的弱乙酸(PH约4.5)溶液喷洒。
实施例5转葡糖苷酶酶组合物的田间应用在使用前，用含0.25%(W/V)TRITON X-100(UNION CARBIDE)(通过加入足够的乙酸，使其PH降到4.5)的自来水，将从SOLVAY ENZYMES，INC.(Elkhart，IN)得到的液体转葡糖苷酶L-1000稀释到从0.25到1%(V/V)的各种浓度。在收获时，通过用喷嘴喷洒，将这种混合物施用于Bemisia tabaci蜜汁污染的棉花上，以便用这种溶液润湿收获的籽棉。根据棉花采摘器的速度，将喷洒线中的压力调整到施用每英亩棉花约30加仑(US)的该混合物。经这些试验的田地的产量从每英亩约1，600到3，400lb籽棉不等。
在实验中，使用International Harvester采摘器，422和782型。IH422型，有一个小(14US加仑)的塑料箱，一个压力调节器，球型流式阀及固定在驾驶员附近的滤器以盛装酶溶液。从该箱，以各种压力(约40psi)，将混合物泵到喷嘴，从而产生所需的施用速率。IH782型，用采摘器的供水箱(约50US加仑)作为喷洒水源。对于这两种采摘器，喷嘴均放在采摘器头部前面的喷洒器支架(金属支持结构)上，以便使棉花在进入采摘器前，用很细的喷雾将其喷洒(喷洒器处理)。用于检测转葡糖苷酶L-1000制品施用的另一种方法是，通过与管道相连的固定的喷嘴，喷洒棉花，所述的管道将收获的籽棉从采摘器头部运到采摘器驾驶员后面的贮存箱(称作篮子)。
喷洒后，从采摘器的篮子中迅速取出两份样品，并分别放在密封的金属容器(双唇密封的1夸脱油漆箱)中，以确定施用的湿度(和由于假设必须以湿的状态，酶才是有效的，由此确定有效的酶加入量)。然后，将这些样品送到实验室，称重，放置并在压力供气的箱中于105℃过夜(至少8小时)干燥，取出，在充有干燥剂的大金属箱中冷却，然后，再称重以确定其含水量。用ASTM检测后，用湿重作为分母，计算水的%。采样未处理的样品和用等量水加乙酸和TRITON X-100喷洒的样品，通过比较，确定有效的喷洒量。
为了确定转葡苷酶L-1000制品对收获棉花的蜜汁糖及粘性的影响，另外再从采摘器中取样，同样放入于室温(约85-105°F)下的密封金属箱中培养24小时直至5星期不等，然后从金属箱中取出籽棉，在热、干燥的房间(温度为约115-160°F，湿度很低的没有空调的温室)中干燥，直到其重量稳定，然后用小型的实验室轧棉机轧制样品，用HPLC对10g棉绒(即棉纤维)作糖分析。将剩余的棉线送到一个实验室(Dr.Henry H.PERKINS，Jr.USDA-ARS，Clemson，S.C)，用Minicard试验和Thermodetector试验对降低的糖和粘性进行分析。注意Minicard试验，按在美国通用的，用0到3分级值，0表示没有粘性的棉花，3表示最大粘性，Thermodetector试验有约10倍高的等级(即3.0的Minicard分级值接近于30的Thermodetector分级值)。若这些试验给出相等的结果，则后者对于很粘的样品，多少能更快地应用，因此，在1993各种粘度试验中，突出地使用后者测定粘度。
在用转葡糖苷酶L-1000溶液或以用于酶添加物的相同的比例的含乙酸的和TRITON X-100等量水喷洒后，将其它的籽棉地块在田地中处理成棉花“单元”。在经商业轧棉机除去种子前，在室温条件(约70到105°F)下，将这些单元贮存约一星期。在轧棉前，制备时，从这些商业单元取样，在除去种子后，从轧棉机中的棉绒滑杆处取样。在轧棉时，这些样品的粘度是对从这些单元中取出的并在实验室轧棉机上轧棉的单用水处理的样品是21.67±1.20(平均值±SEM);对于用转葡糖苷酶L-1000处理的籽棉为0.00±0.00;对于取自轧棉机棉绒滑杆(即种子去除后即刻)的水处理的籽棉是4.10±0.79;对于取自棉绒滑杆处的用转葡糖苷酶L-1000处理的籽棉是0.25±0.16。
显然，可以完成的许多修改而未偏离本发明的基本精髓。相应的，这是本领域专业人员可以理解的，在附属的权利要求范围内，本文不仅详细描述了本发明，而且可以按其进行实施。
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权利要求
1.一种用于降低污染的粘性棉花的粘性的酶组合物，所述的组合物含有至少一种能水解至少一种污染的粘性棉花的蜜汁糖，并降低其粘性的酶。
2.权利要求1的酶组合物，其中所述酶包括来自真菌的酶。
3.权利要求2的酶组合物，其中，所述真菌是曲霉菌属的真菌。
4.权利要求3的酶组合物，其中所述的真菌是黑曲霉种的真菌。
5.权利要求1的酶组合物，其中所述酶包括转葡糖苷酶。
6.权利要求1的酶组合物，其中所述酶包括果胶酶。
7.至少一种能水解被污染的粘性棉花的至少一种蜜汁糖以制备用于降低被污染的粘性棉花的粘性的酶组合物的用途。
8.权利要求7的用途，其中所述酶包括来自真菌的酶。
9.权利要求8的用途，其中所述真菌是曲霉属的真菌。
10.权利要求9的用途，其中所述真菌是黑曲霉种的真菌。
11.权利要求7的用途，其中所述的酶包括转葡糖苷酶。
12.权利要求7的用途，其中所述的酶包括果胶酶。
13.一种处理其上有蜜汁的棉花纤维的方法，所述方法包括用一种酶组合物接触所述的棉花纤维，所述酶组合物包括至少一种能水解被污染的粘性棉花的至少一种蜜汗糖的酶，从而至少将蜜汁部分水解，并减少被污染棉花上的蜜汁。
14.权利要求13的方法，其中所述的酶包括来自真菌的酶。
15.权利要求14的方法，其中所述的真菌是曲霉属的真菌。
16.权利要求15的方法，其中所述的真菌是黑曲霉种的真菌。
17.权利要求13的方法，其中所述的酶包括转葡糖苷酶。
18.权利要求13的方法，其中所述的酶包括果胶酶。
全文摘要
本文公开了一种在用于降低被污染棉花的蜜汁粘性的方法中的一种酶组合物及其用途。该组合物包括，且该方法使用，得自真菌如曲霉属真菌的、能水解组成蜜汁的糖的酶，如转葡糖苷酶和果胶酶。
文档编号C12N9/10GK1100142SQ9410662
公开日1995年3月15日 申请日期1994年4月29日 优先权日1993年4月30日
发明者O·J·兰特罗, J·K·谢蒂 申请人:索尔维酶有限公司