多价肺炎球菌多糖-蛋白质缀合物组合物的制作方法

专利名称：：多价肺炎球菌多糖-蛋白质缀合物组合物的制作方法
技术领域：
：本发明一般涉及医学领域，更具体地涉及微生物学、免疫学、疫苗和通过免疫预防细菌病原体的感染。
背景技术：
：肺炎链球菌(Streptococcuspneumoniae)是世界上婴儿和幼儿中脑膜炎、肺炎和严重侵入性疾病的主要病因。多年前就批准了多价肺炎球菌多糖疫苗并且已经证明其在老年人和高危病人中预防肺炎球菌疾病是有价值的。然而，嬰儿和幼儿对多数肺炎球菌多糖应答很弱。7价肺炎球菌缀合疫苗(7vPnC，Prevnar⑧)是第一种表明对婴儿和幼儿中侵入性疾病和中耳炎高度免疫原性和有效的疫苗。该疫苗现在在世界上许多国家被批准。Prevnar含有来自血清型4、6B、9V、14、18C、19F和23F的荚膜多糖，每种多糖缀合到称作CRMb7的载体蛋白。Prevnar在美国、欧洲和世界的其他地区分别覆盖约80-90%、60-80%和40-80%侵入性肺炎球菌疾病(IPD)[1，2。Prevnar的引入后数年中收集的监视数据已经清楚地表明如所预期的，在美国婴儿中侵入性肺炎球菌疾病减少(图l)[3,4。在Prevnar引入前美国婴儿中进行的IPD监5f棘明由于血清群6和19的疾病的大部分是由于6A(约1/3)和19A(约1/4)血清型[5，6]。在Prevnar批准后，在美国进行的肺炎球菌侵入性疾病监视表明大部分的疾病仍然规因于血清型6A和19A(图1)[3]。此外，这两种血清型造成比血清型1、3、5和7F总和还要多的侵入性疾病病例(100，000个2岁以下儿童中8.2对3.3例)。此外，血清型6A和19A与高比率的抗生素抗性有关(图2)7，8，9。尽管随着更多儿童被免疫，可能血清群交叉保护将导致血清型6A和19A疾病的下降，但是有证据表明该下降将有限制，并且由于这些血清型引起的疾病的很大负担将保持(见下文)。考虑到由于血清型l、3、5、6A、7F和19A的侵入性肺炎球菌疾病的相对负担和重要性，向Prevnar制剂中加入这些血清型将在美国和欧洲增加侵入性疾病的覆盖率到>卯％，在亚洲和拉丁美洲高达70%-80%。该疫苗将显著扩大Prevnar的覆盖度，并且提供对6A和19A的覆盖，其不依赖于血清群交叉保护的限制。发明概述因此，本发明一般地提供了包含13种不同的多糖-蛋白质缀合物的多价免疫原性组合物，其中每种缀合物含有缀合到载体蛋白的来自不同血清型的肺炎链球菌的荚膜多糖，以及生理学上可接受的载体。任选地，在该制剂中包含佐剂，如基于铝的佐剂。更特别地，本发明提供了13价肺炎球菌缀合物(13vPnC)组合物，其包含7vPnC疫苗(4、6B、9V、14、18C、19F和23F)中的7种血清型加上6种额外的血清型(1、3、5、6A、7F和19A)。本发明还提供了多价免疫原性组合物，其中荚膜多糖来自肺炎链球菌的血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F并且栽体蛋白是CRMw7。本发明还提供了多价免疫原性組合物，其中荚膜多糖为肺炎链球菌的血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F,栽体蛋白是CRM^7,并且佐剂是基于铝的佐剂，如磷酸铝、硫酸铝和氩氧化铝。在本发明的具体实施方案中，佐剂是磷酸铝。本发明还提供了多价免疫原性组合物，其包含多糖-蛋白质缀合物以及生理学上可接受的载体，其中每种缀合物包含缀合到栽体蛋白的来自肺炎链球菌的不同血清型的荚膜多糖，并且所述荚膜多糖从血清型3和至少一种额外的血清型制备。在该多价免疫原性组合物的一个实施方案中，额外的血清型选自血清型l、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F、和23F。在另一实施方案中，载体蛋白是CRM^。在再一个实施方案中，组合物包含佐剂，如选自磷酸铝、硫酸铝和氢氧化铝的基于铝的佐剂。在一个具体实施方案中，佐剂是磷酸铝。本发明还提供了多价免疫原性組合物，其包含多糖-蛋白质缀合物与生理学上可接受的载体，其中每种缀合物包含缀合到栽体蛋白的来自肺炎链球菌的不同血清型的荚膜多糖，并且该荚膜多糖从血清型4、6B、9V、14、18C、19F、23F和至少一种额外的血清型制备。在该多价免疫原性组合物的一个实施方案中，额外的血清型选自血清型l、3、5、6A、7F和19A。在另一实施方案中，载体蛋白是CRMw。在再一个实施方案中，组合物包含佐剂，如选自磷酸铝、疏酸铝和氢氧化铝的基于铝的佐剂。在一个具体实施方案中，佐剂是磷酸铝。本发明还提供了诱导对肺炎链球菌荚膜多糖缀合物的免疫应答的方法，其包括对人施用免疫有效量的前述任一种免疫原性组合物。本发明还提供了施用的任一种免疫原性组合物是单次的0.5mL剂量，其经配制成含有除了4fig6B外，2jig每种糖；约29figCRM197载体蛋白；0.125mg元素铝(0.5mg磷酸铝)佐剂；和作为赋形剂的氯化钠和琥珀酸钠緩冲剂。附图简述图1描绘了在美国年龄<2岁的儿童从基线(1998/1999)到2001年按照血清型的IPD比率的改变。图2描绘了在<5岁(1998)的儿童中具有青霉素(PCN)抗性的链球菌分离菌的分布。图3描绘了来自D118-P16Prevnar试验的第三次剂量后OPA的倒数累积分布曲线(RCDC)。发明详述Prevnar血清型4、6B、9V、14、18C、19F、23F的包括来自1995-1998年间IPD监视的数据估计Prevnar中的7种血清型造成<2岁年龄的儿童中约82%的IPD5。在加利福尼亚北部功效试验地点，Prevnar血清型占婴儿和幼儿中所有IPD病例的卯％[10。自从在2000年引入Prevnar疫苗，由于该疫苗血清型引起的疾病的下降，总的IPD率显著降低[3，4]。因此，在此时没有理由从下一代肺炎球菌缀合疫苗除去任一种Prevnar血清型，而是加入血清型以得到更宽的覆盖范围。血清型1、3、5和7F的包括在美国，5岁以下儿童中血清型1引起的IPD率〈。/c),对于血清型3和7F的每一种大概相同[1,61。血清型1和5占具有侵入性肺炎球菌疾病的高危美国人口中IPD的较高发病率。特别地，血清型1引起阿拉斯加<2岁的本地儿童中3.5%的IPD,和2-4岁儿童中18%的IPD11。血清型1和血清型5在世界的其他地方和发达国家的土著人口中显著致病[12，13，14。与其他肺炎球菌血清型相比，血清型也与更严重的疾病有关15j。该观察是基于美国和欧洲之间病例鉴定率的差异，和医疗实践中相关的差异。总体上，IPD的发病率在欧洲低于美国。然而，在欧洲血清型l引起的IPD的百分比不成比例地高于美国(分别为6-7%与1-2%)。在欧洲，血液培养物主要从住院儿童得到。在美国，在门诊病人从发热〉39。C并且具有升高的白细胞数的儿童得到血液培养物是常规的医疗实践。考虑到医疗实践的差异，推测在美国血清型1引起的疾病的较低百分比可以被引起较轻的疾病的其他血清型的较高比率稀释，而欧洲的较高百分比反映了更严重的疾病。此外，具有并发肺炎的儿童的血清流行病学研究表明血清型1被不成比例地表示16，17，18。这提示血清型1的包括可以降低严重肺炎球菌疾病的量，以及促进侵入性肺炎球菌疾病的总的减少。加入血清型3和7F将在世界上的多数地区增加对IPD的覆盖率约3%-7%，在亚洲为约9%。从而，ll价疫苗将覆盖亚洲中的约50%和所有其他地区中IPD的约80%1，2。这些血清型对于中耳炎覆盖率也是重要的。用19F多糖免疫后对血清型19A的低水平的交叉反应性IgG和OPA应答也已经在使用缀合疫苗的试验中记栽[24，261。已经从在美国嬰儿中进行的7vPnC桥接试验(D118-P16)产生了关于对16A和19A的交叉反应性OPA应答的内部数据(图3)。这些研究与其他人的发现一致，并且表明用6B多糖免疫后诱导对6A多糖的交叉反应性功能抗体，尽管在较低水平，和用19F免疫后对19A的极低的功能抗体。动物才莫型中6B和19F免疫对6A和19A的影响已经用动物模型评估用多糖免疫的交叉保护的潜力。在Giebink等人开发的中耳炎模型中，用四价多糖外膜蛋白(OMP)缀合疫苗(含有6B、14、19F、23F糖)或安慰剂免疫灰鼠[27。在该试验中，似乎对6A有一定的交叉保护；然而，这没有达到统计学显著性并且保护水平低于用6B对中耳炎的保护水平。在该相同模型中，存在对19F中耳炎的100%保护，但是仅仅对19A中耳炎的17%的保护。Saeland等人在肺感染模型中，使用来自用8价肺炎球菌破伤风缀合疫苗(含有6B和19F)免疫的婴儿血清被动免疫小鼠，然后用6A生物进行鼻内攻击28。在59个血清样品中，53%的样品保护小鼠抵抗具有6B的菌血症，37W的样品保护抵抗6A。用来自4剂ll价肺炎球菌缀合疫苗(含有缀合到破伤风类毒素的19F)免疫的婴儿的血清被动免疫的小鼠在相同模型中被给予19A生物的鼻内攻击[29。在100只被动免疫然后攻击的小鼠中，60只小鼠在肺组织中没有检测到19A生物，而在给予盐水安慰剂的所有小鼠中鉴定到生物。然而，在该模型中，被动免疫不能保护用19F生物的攻击；因此，该模型对于血清群19的相关性是可疑的。通常，这些模型提供证据证明6B免疫对6A生物的一定的生物学影响，尽管对异源血清型的影响没有用同源血清型观察到的大。从这些模型还没有很好地了解19F免疫对19A生物的影响。6B和19F多糖缀合物免疫对功效/有效性试验中6A和19F疾病的影响在表1中指出了在7vPnC和9vPnC(7vPnC加血清型1和5)功效试验中由于6B、6A、19F和19A血清型的疾病病例数[30，10，31。侵入性疾病病例的数目太小而不能对血清型6A和19A得出任何结论。然而，Finnish中耳炎试验产生了许多肺炎球菌分离菌[32!。在符合方案分析(perprotocolanalysis)中，7vPnC对由于血清型6B引起的中耳炎为84%(95%Cl62%,93%)有效，对由于血清型6A引起的中耳炎为57%(95%Cl24%，76%)有效(表1)。相比，对由于19F或者19A引起的中耳炎没有阐明使用7vPnC的血清型特异性功效。表1.在使用7vPnC和9vPnC疫苗的功效试验中，由于血清型6B、6A、19F和19A引起的肺炎球菌疾病的病例<table>tableseeoriginaldocumentpage10</column></row><table><table>tableseeoriginaldocumentpage11</column></row><table>*阐明的统计学显著功效来自参照30、10和33，和个人交流Contr=对照ITT=打算治疗分析PP-符合方案分析还可以从疾病控制中心(CentersforDiseaseControl)进行的病例-对照试验得到上市后IPD监视数据以评估Prevnar的有效性[33。在监视实验室中鉴定了3到23个月大的儿童中发生肺炎球菌侵入性疾病的病例并通过年龄和邮政编码与三个对照病例匹配。得到知情同意后，从病例和对照的父母和医学提供者得到医疗和免疫史(如果受试者接受了至少一剂Prevnar,那么i人为他们是被免疫的)。初步结果在2003年ICAAC会议上给出并且在表2中给出对6B、19F、19A和6A疾病的发现总结。这些数据表明Prevnar能够预防由于6A引起的疾病，尽管其水平比血清型6B疾病低一些。这些数据还表明对由于19A引起的侵入性疾病的交叉保护是有限的。表2.CDC进行的病例对照试验的初步结果(在2003年ICAAC上给出)<table>tableseeoriginaldocumentpage12</column></row><table>*比较接种的(>1剂)对比未接种的疫苗有效性，并对潜在的条件调节参照40和个人/才几密交流Prevnar使用的经公布的分析3]也表明在2岁以下儿童中血清型6A和19A引起的IPD中，血清型6B和19F赋予适度减少([3中的表1)。在血清型6A、9A、9L、9N、18A、18B、18F、19A、19B、19C、23A和("都是疫苗相关的血清型，，)引起的未免疫的成年人中疾病发生率有一定的降低([3中的表2)。这些数据确定在2岁以下儿童中使用Prevnar的群体免疫力对于血清型6A和19A是中等的，并且提供了在本发明的13vPnC疫苗中包4舌血清型6A和19A的基础。加入6A和19A的结论在图1和表2中使用7vPnC疫苗的上市后监视数据和病例-对照研究表明，与上述关于动物中免疫应答和性能的其他信息相一致，可能存在对6A疾病的一定的交叉保护，但是比对6B疾病的交叉保护程度较低。此夕卜，似乎对19A的保护是受到限制的。因此，含有血清型6A和19A的13vPnC疫苗提供了覆盖，其不依赖于血清型6B和19F对血清群交叉保护的限制。因此，本发明提供了包含13种不同的多糖-蛋白质缀合物的多价免疫原性组合物，其中每种缀合物含有缀合到载体蛋白的不同的荚膜多糖缀合物，并且其中^炎链球菌的血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F制备荚膜多糖，以及生理学上可接受的载体。一种此类载体蛋白是称作CRM所的白喉类毒素。免疫原性组合物可以还包含佐剂，如基于铝的佐剂，如磷酸铝、疏酸铝和氢氧化铝。通过本领域技术人员已知的标准技术制备荚膜多糖。在本发明中，从肺炎链球菌的血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F制备荚膜多糖。通过单独的方法制备这些肺炎球菌缀合物并配制成单剂量制剂。例如，在一个实施方案中，在基于大豆的培养基中培养每种肺炎球菌多糖血清型。然后通过离心、沉淀、超滤和柱层析纯化各种多糖。将纯化的多糖化学活化以使得该糖能够与载体蛋白反应。一旦活化，将每种荚膜多糖单独缀合到载体蛋白以形成复合糖。在一个实施方案中，每种荚膜多糖缀合到相同的载体蛋白。在该实施方案中，通过还原胺化实现缀合。通过常规方法实现多糖的化学活化和随后缀合到载体蛋白。见，例如，美国专利号4,673,574和4，902，506[34,35。载体蛋白优选是无毒并且非反应原性的蛋白质并且可以以足够的量和纯度得到。载体蛋白应该服从标准的缀合步骤。在本发明的具体实施方案中，将CRM^7用作载体蛋白。CRM197(Wyeth，Sanford，NC)是从在酪蛋白氨基酸和基于酵母提取物的培养基中生长的白喉棒杆菌(Corynebacteriumdiphtheria)菌林C7(pl97)的培养物分离的白喉毒素的非毒性变体(即，类毒素)。通过超滤、硫酸铵沉淀和离子交换层析纯化CRMw7。备选地，根据美国专利号5,614,382重组制备CRM197,将该专利引入本文作为参考。其他白喉类毒素也适于用作载体蛋白。其他合适的载体蛋白包括灭活的细菌毒素，如破伤风类毒素、百日咳类毒素、霍乱类毒素(例如，如国际专利申请WO2004/083251中所述[38)、大肠杆菌LT、大肠杆菌ST、和来自铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa)的外毒素。也可以使用细菌外膜蛋白，如外膜复合体c(OMPC)、孔蛋白、转铁蛋白结合蛋白、肺炎球菌溶血素、肺炎球菌表面蛋白A(PspA)、肺炎球菌黏附素蛋白(PsaA)、来自组A或者组B链球菌的C5a肽酶、或者流感嗜血杆菌蛋白D。其他蛋白质，如卵白蛋白、匙孔血蓝蛋白(KLH)、牛血清白蛋白(BSA)或者结核菌素的纯化的蛋白质衍生物(PPD)也可以用作载体蛋白。荚膜多糖缀合到载体蛋白后，通过多种技术纯化多糖-蛋白质缀合物(关于多糖-蛋白质缀合物的量富集)。这些技术包括浓缩/渗滤操作、沉淀/洗脱、柱层析和深层过滤(depthfiltration)。见下面的实施例。纯化各复合糖后，将它们混合以配制本发明的免疫原性组合物，其可以用作疫苗。使用本领域公知的方法可以完成本发明的免疫原性组合物的配制。例如，可以用生理学上可接受的载体配制13种各自的肺炎球菌缀合物以制备组合物。此类载体的实例包括，但不限于，水、緩冲盐水、多元醇(例如，甘油、丙二醇、液体聚乙二醇)和葡萄糖溶液。在一些实施方案中，免疫原性组合物将包含一种或多种佐剂。如本文定义的，"佐剂"是用于增强本发明的免疫原性组合物的免疫原性的物质。从而，通常给予佐剂以加强免疫应答并且佐剂是技术人员公知的。用于增强组合物的有效性的合适的佐剂包括，但不限于(1)铝盐(alum),如氬氧化铝、磷酸铝、硫酸铝，等等；(2)水包油乳液制剂(有或者没有其他特定免疫刺激剂，如胞壁酰基肽(下文定义)或者细菌细胞壁组分)，如，(a)MF59(PCT公布号WO卯/14837)，含有5%篁烯，0.5%Tween80，和0.5%Span85(4壬选含有不同量的MTP-PE(见下文，尽管不是所需的)，使用microfluidizer如110Y型microfluidizer(Microfluidics，Newton，MA)配制成亚孩i米颗粒，(b)SAF，舍有10%篁烯，0.4%Tween80,5%pluronic嵌段的聚合物L121，和thr-MDP(见下文)，微流化成亚樣史米乳液或者经涡旋以产生更大颗粒大小的乳液，和(c)Ribi佐剂系统(RAS)，(Corixa，Hamilton,MT),含有2%篁烯，0.2%Tween80，和选自美国专利号4，912，094中描述的3-0-脱酖化的单磷酸类脂A(MPLTM)的一种或多种细胞壁组分(Corixa),海藻糖二霉菌酸酯(TDM),和细胞壁骨架(CWS),优选MPL+CWS(DetoxTM);(3)皂苷佐剂，可以使用如QuilA或STIMULONQS-21(Antigenics，Framingham,MA)(美国专利号5,057，540)或者从其产生的颗粒，如ISCOMs(免疫刺激复合物)；(4)细菌脂多糖，合成的脂类A类似物，如氨基烷基葡糖胺磷酸酯化合物(AGP),或者其衍生物或类似物，其可以从Corixa得到，并且在美国专利号6,113,918中描述；一种此类AGP是2-[(R)-3-十四酰氧基十四酰基氨基乙基2-脱氧-4-0-膦酰基-3-0-[(R)-3-十四酰氧基十四酰基]-2-[(R)-3-十四酰氧基十四酰基氨基-b-D-吡喃葡萄糖苷，其也称作529(以前称作RC529)，其配制为水性形式或者稳定的乳剂，合成的多核香酸，如含有CpG基序的寡核苷酸(美国专利号6,207,646);(5)细胞因子，如白介素(例如，IL-1、IL-2、IL-4、IL-5、IL國6、IL-7、IL-12、IL-15、IL-18，等)，干扰素(例如，Y干扰素)，粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)，巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)，肿瘤坏死因子(TNF)，共刺激分子B7-l和B7-2，等等；(6)细菌ADP-核糖基化毒素的脱毒突变体，如野生型或者突变型的霍乱毒素(CT),例如，其中氨基酸位置29的谷氨酸被另一氨基酸，优选组氨酸替换(根据公布的国际专利申请号WO00/18434(也见WO02/098368和WO02/098369))，百日咳毒素(PT)，或者大肠杆菌不耐热毒素(LT)，尤其LT-K63、LT-R72、CT-S109、PT-K9/G129(见例如WO93/13302和WO92/19265);和(7)作为免疫刺激剂以增强组合物的有效性的其他物质。胞壁酰基肽包括，但不限于N-乙酰基-胞壁酰基-L-苏氨酰-D-异谷酰胺(thr-MDP)、N-乙酰基-正胞壁酰基-L-丙氨酸-2-(1，-2，二棕榈酰基-811-甘油-3-羟基磷酰基氧基)-乙胺(MTP-PE)等等。本发明的疫苗组合物可以用于保护或者治疗对肺炎球菌感染敏感的人，这可通过全身或者粘膜途径施用疫苗来完成。这些施用可以包括通过肌内、腹膜内、皮内或者皮下途径注射，或者通过粘膜施用于口/消化道、呼吸或者泌尿生殖道。在一个实施方案中，鼻内施用用于治疗肺炎或者中耳炎(因为肺炎球菌的鼻咽携带可以更有效预防，从而减轻在其最早阶段的感染)。选择每个疫苗剂量中缀合物的量作为诱导免疫保护而无显著的不利作用的量。此类量可以取决于肺炎球菌血清型而变。通常，每剂将包含O.l到100pg多糖，尤其0.1到10ng，更尤其1到5ng。通过包括观察受试者中合适的免疫应答的标准研究确定具体疫苗的组分的最佳量。最初接种后，受试者可以接受足够间隔的一次或几次加强免疫。在本发明的具体实施方案中，13vPnC疫苗是各自缀合到CRMm的血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F的肺炎球菌荚膜多糖的无菌液体制剂。每0.5mL剂量被配制成含有除了4jig6B之外，2pg每种糖；约29ngCRMw7载体蛋白；0.125mg元素铝(0.5mg磷酸铝)佐剂；和作为赋形剂的氯化钠和琥珀酸钠緩沖剂。将液体填充到没有防腐剂的单剂量注射器中。摇动后，疫苗是均匀的，白色混悬液可用于肌内施用。13vPnC疫苗的剂量水平的选择类似于上市的7vPnC疫苗(Prevnar)。为所有血清型选择2吗糖剂量水平，只是对于6B为每剂4ng。7vPnC疫苗对于血清型4、9V、14、18C、19F和23F在2ng糖剂量水平和对于6B在4ng剂量水平已经显示出对于IPD的所希望的安全性、免疫原性和功效。免疫方案可以按照为7vPnC疫苗指定的方案。例如，针对肺炎链球菌由于13vPnC疫苗中包括的血清型引起的侵入性疾病的嬰儿和刚学步的小孩的常规方案是2、4、6和12-15个月的年龄本发明的组合物也适于更大的儿童、青少年和成人使用。本发明的组合物可以还包括一种或多种额外的抗原，其用于抵抗其他细菌感染引起的中耳炎。此类细菌包括非典型流感嗜血杆菌(Haemophilusinfluenza)、粘膜炎莫拉菌(Moraxellacatarrhalis)(以前称作粘膜炎布兰汉球菌)和AIloiococcusotitidis。适于包括的流感嗜血杆菌抗原的实例包括P4蛋白，也称作蛋白"e"(美国专利号5,601,831;国际专利申请W003/078453)，P6蛋白，也称作PAL或者PBOMP-l蛋白(美国专利号5，110，908;国际专利申请WO01007卯)，P5蛋白(美国再版专利号37，741),嗜血杆菌粘附和穿透蛋白(美国专利号6,245,337和6,676,948),LKP尖端黏附素蛋白(美国专利号5,643,725)和NucA蛋白(美国专利号6,221，365)。适于包括的粘膜炎莫拉菌抗原的实例包括UspA2蛋白(美国专利号5,552,146，6,310,190)，CD蛋白(美国专利号5,725,862)，E蛋白(美国专利号5,948，412)和74千道尔顿外膜蛋白(美国专利号6,899,885)。适于包括的Alloiococcusotitidis抗原的实例包括国际专利申请WO03/048304中鉴定的那些。本发明的组合物还可以包括一种或多种来自肺炎链球菌的蛋白质。适于包括的肺炎链球菌蛋白质的实例包括国际专利申请WO02/083855中鉴定的那些以及国际专利申请WO02/053761中描述的那种。本发明的组合物可以还包括一种或多种来自B型脑膜炎萘瑟氏球菌(Neisseriameningitidis)的蛋白质。适于包括的B型脑膜炎萘瑟氏球菌蛋白质的实例包括国际专利申请W003/063766、WO2004/094596、WO01/85772、WO02/16612和WO01/87939中鉴定的那些。上面的公开一般性描述了本发明。通过下面的特定实施例可以更完全地理解本发明。这些实例仅仅用于阐明的目的并且不意在限定本发明的范围。实施例实施例1制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型1制备主细胞库和工作细胞库从美国典型培养物保藏中心ATCC菌林6301得到肺炎链球菌血清型1。产生几代种子原种以便扩大菌林和除去动物来源的组分(Fl、F3和F3代)。产生两个额外代的种子原种。从F3瓶得到第一额外的世代，从第一个额外世代瓶得到随后的世代。冷冻保存(《70。C)种子瓶，用合成的甘油作为冷藏剂。除了冷冻瓶外，从F4代制备冻干的瓶。为了制备细胞库，在基于大豆的培养基中生长所有培养物。冷冻前，通过离心浓缩细胞，除去用尽的培养基，将细胞沉淀物重悬浮在含有冷藏剂如合成甘油的新鲜培养基中。发酵和收获来自工作细胞库的培养物用于接种含有基于大豆的培养基的种子瓶。将瓶子在36。C士2。C、不搅拌下温育直到满足生长要求。种子瓶用于接种含有基于大豆的培养基的种子发酵罐。用无菌碳酸钠溶液保持约7.0的pH。达到目标光密度后，用种子发酵罐接种含有基于大豆的培养基的生产发酵罐。用无菌碳酸钠溶液保持pH。生长停止后或者达到发酵罐的工作体积后终止发酵。向培养物加入合适量的无菌的12°/。脱氧胆酸钠以裂解细菌细胞和释放细胞结合的多糖。裂解后，冷却发酵罐内容物。用乙酸调节裂解的培养液的pH到约pH6.6。通过连续流动离心接着深层过滤和0.45fim微量过滤澄清裂解物。在备选方法中，用3NNaOH保持约7.0的发酵pH。达到目的光密度后，用种子发酵罐接种含有基于大豆的培养基的生产发酵罐。用3NNaOH保持pH。生长停止后或者达到发酵罐的工作体积后终止发酵。向培养物加入合适量的无菌的12%脱氧胆酸钠在培养液中得到0.12。/。的浓度，以裂解细菌细胞和释^:细胞结合的多糖。裂解后，在7。C到13。C的温度搅拌下，对发酵罐内容物保持8到24小时的时间间隔，以确保已经发生了完全的细胞裂解和多糖释放。该保持期间的搅拌防止裂解沉积物沉淀在发酵罐壁和pH探头上，从而允许保持pH探头完整性。接着，将裂解的细胞培养液的pH用50%乙酸调节到约pH5.0。无搅拌下，在15。C到25"C的温度下保持12到24小时的时间间隔后，显著部分的以前溶解的蛋白质作为固体沉淀物从溶液析出，多糖几乎没有损失或者降解，其保持在溶液中。然后通过连续流动离心，接着通过深层过滤和0.45nm微量过滤澄清具有沉淀物的溶液。纯化肺炎球菌多糖的纯化由几个浓缩/渗滤操作、沉淀/洗脱、柱层析和深层过滤步骤组成。除非另外指出，所有步骤都在室温下进行。将来自肺炎链球菌血清型1的发酵罐培养物的澄清的培养液浓缩并用100kDaMWCO(千道尔顿分子量截断)滤器渗滤。使用磷酸钠緩沖液在中性pH下完成渗滤。渗滤从较高分子量的生物聚合物，如核酸、蛋白质和多糖除去了低分子量的培养基组分。通过加入来自贮存液的十六烷基三甲基溴化铵(HB)以得到1%HB(w/v)的终浓度，从浓缩和渗滤的溶液沉淀多糖。在深层滤器上捕获多糖/HB沉淀物并丟弃滤液。再溶解多糖沉淀物并通过含有沉淀物的深层滤器再循环氯化钠溶液进行洗脱。然后用额外的氯化钠溶液冲洗滤器。向多糖溶液中加入来自Nal贮存液的捵化钠(Nal)至终浓度0.5%以沉淀HB。通过深层过滤除去沉淀物。滤液含有目标多糖。用NaCI/Nal溶液冲洗沉淀容器和滤器并将沖洗液与部分纯化的多糖溶液合并。丢弃滤器。然后通过0.2fiin滤器过滤多糖。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用氯化钠溶液渗滤。通过浸渍活性炭的深层滤器过滤，进一步纯化部分纯化的多糖溶液。过滤后，用氯化钠溶液沖洗碳滤器。将冲洗液与多糖溶液合并，然后将其通过0.2nm滤器过滤。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用1M磷酸钠緩冲液调节以实现0.025M终浓度的磷酸钠。检查pH并调节到7.0±0.2。用含有氯化钠的磷酸钠緩冲液平衡陶乾鞋基磷灰石(HA)柱，以得到合适的电导率(〈15(iS)。然后将多糖溶液装载到柱子上。在这些条件下，杂质结合到树脂并且从柱子的穿过液回收多糖。多糖溶液通过位于柱子之前和之后的0.2nm线内滤器过滤。使用30kDaMWCO滤器浓缩多糖溶液。然后用注射用水(WaterforInjection(WFI))渗滤浓缩液。将渗滤的多糖溶液通过0.2nm滤膜过滤到聚丙烯瓶中。取出样品用于发行测试并将纯化的多糖在-25。±5。C冷冻保藏。表征通过指定给多糖分子的质子的信号的分配，IH-NMR数据与化学结构相一致。1H-NMR谦显示一系列分辨率良好的信号(来自甲基的质子)，其用以定量多糖中的O-乙基官能团。使用特异性抗血清，通过对流免疫电泳证实单价多糖的身份。连接折射率和多角度激光散射(MALLS)检测器的高效凝胶过滤层析与样品浓度结合使用以计算分子量。用大小排阻层析介质(CL-4B)描绘多糖的相对分子大小分布。实施例2制备血清型1肺炎球菌糖-CRM197缀合物活化和缀合将纯化的多糖的容器解冻并在反应容器中合并。向容器中加入pH9.0的0.2M碳酸钠用于在50。C部分脱乙酰化(水解)3小时。将反应物冷却到20。C并通过0.2M乙酸进行中和。通过在2-8。C温育，在高硪酸钠存在下进行氧化，并搅拌混合物15-21小时。浓缩活化反应混合物并使用30KMWCO膜用0.9%NaCl渗滤10次。将存留物用0.2nm滤膜过滤。将活化的糖装入100mL玻璃冻干并瓦中并在-75'C滚动冷冻并冻干。"滚动冷冻"(Shell-freezing)是一种制备用于冻干(冷冻干燥)的样品的方法。在舍有醇和任何其他合适的液体的冷冻水浴中通过电机驱动的滚筒自动滚动烧瓶。在瓶的内部"壳，，周围均匀冷冻产物的薄涂层，允许在每次冷冻干燥运行期间安全地处理更大体积的物质。这些自动化的冷冻的羊位一次提供了简单和有效的预先冷冻许多烧瓶的方法，在内部产生所希望的涂层，并为有效的冷冻干燥提供了足够的表面积。将冻干物质的瓶子恢复到室温并重悬浮在糖/蛋白质比为2:1的CRM^7溶液中。向该糖/蛋白质混合物中加入1M磷酸钠緩沖液至最终0.2M离子强度和7.5的pH，然后加入氰基硼氬钠。反应物在23。C温育18小时，接着在37。C再次温育72小时。氰基硼氢化物温育后，用冷的盐水稀释反应混合物，接着加入1M碳酸钠以调节反应混合物到pH9.0。通过加入硼氢化钠，在23。C温育3-6小时淬灭未反应的醛。将反应混合物用盐水稀释2倍并通过0.45-5nm预过滤器转移到存留物容器中。用0.15M磷酸盐緩冲液(pH6)渗滤反应混合物30次，用盐水渗滤20次。通过0.2nm滤器过滤存留物。将缀合物溶液用0.9。/。盐水稀释到0.5mg/mL的目标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到最终体相浓缩物(FBC)容器中。缀合物在2-8'C保存。表征用大小排阻层析介质(CL-4B)描绘缀合物的相对分子大小分布。使用特异抗血清通过狭线印迹测定法证实缀合物的身份。分别通过糖醛酸和Lowry测定法测定糖和蛋白质浓度。通过下面的计算得到共价结合的缀合物复合体中糖与蛋白质的比率Hg/mL糖比率=--------------------fig/mL蛋白质通过Hestrin方法(Hestrinet，al"J.Biol.Chem.1949，180，p.249)测量o-乙酰基含量。o-乙酰基浓度与总的糖浓度的比率得到微摩尔o-乙酰基/mg糖。实施例3制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型3制备主细胞库和工作细胞库肺炎链球菌血清型3从RobertAustrian博士(UniversityofPennsylvania,Philadelphia,Pennsylvania)得到。细月包库系统的制备见实施例1。发酵和收获来自工作细胞库的培养物用于接种含有基于大豆的培养基的种子瓶。将瓶子在36。C士2。C无搅拌下温育，直到满足生长需要。用种子瓶接种含有基于大豆的培养基的种子发酵罐。用无菌碳酸钠溶液保持pH约7.0。达到目标光密度后，用中间种子发酵罐接种种子发酵罐。达到目标光密度后，用中间种子发酵罐接种生产发酵罐。用无菌碳酸钠溶液保持pH。达到发酵罐的工作体积后终止发酵。向培养物中加入合适量的无菌12%脱氧胆酸钠以裂解细菌细胞和释放细胞结合的多糖。裂解后，冷却发酵罐内容物。用乙酸调节裂解的培养液的pH到约pH6.6。通过连续流动离心接着深层过滤和0.45jim微量过滤澄清裂解物。纯化肺炎球菌多糖的纯化由几个浓缩/渗滤操作、沉淀/洗脱、柱层析和深层过滤步骤組成。除非另外指出，所有步骤都在室温下进行。将来自肺炎链球菌血清型1的发酵罐培养物的澄清的培养液浓缩并用100kDaMWCO滤器渗滤。使用磷酸钠緩冲液在中性pH下完成渗滤。渗滤从较高分子量的生物聚合物，如核酸、蛋白质和多糖除去了低分子量的培养基组分。加入十六烷基三曱基溴化铵(HB)前，向浓缩的和渗滤的多糖溶液中加入计算体积的NaCl贮存液以得到0.25MNaCl的终浓度。然后通过加入来自贮存液的HB沉淀多糖，得到1%HB(w/v)的终浓度。在深层滤器上捕获多糖/HB沉淀物并丢弃滤液。再溶解多糖沉淀物并通过含有沉淀物的深层滤器再循环氯化钠溶液进行洗脱。然后用额外的氯化钠溶液沖洗滤器。向多糖溶液中加入来自Nal贮存液的碘化钠(Nal)至终浓度0,5%以沉淀HB。通过深层过滤除去沉淀物。滤液含有目标多糖。用NaCI/Nal溶液冲洗沉淀容器和滤器并将沖洗液与部分纯化的多糖溶液合并。丟弃滤器。然后通过0.2pm滤器过滤多糖。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用氯化钠溶液渗滤。通过浸渍活性炭的深层滤器过滤，进一步纯化部分纯化的多糖溶液。过滤后，用氯化钠溶液冲洗碳滤器。将沖洗液与多糖溶液合并，然后将其通过0.2nm滤器过滤。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用1M裤酸钠緩冲液调节以实现0.025M终浓度的磷酸钠。检查pH并调节到7.0±0.2。用含有氯化钠的磷酸钠緩冲液平衡陶瓷羟基磷灰石(HA)柱，以得到合适的电导率(15pS)。然后将多糖溶液装载到柱子上。在这些条件下，杂质结合到树脂并且从柱子的穿过液回收多糖。用緩冲液穿过柱子冲洗多糖并通过0.2nm滤器过滤。^使用30kDaMWCO滤器浓缩多糖溶液。然后用WFI渗滤浓缩液。将渗滤的多糖溶液通过0.2nm滤膜过滤到不锈钢容器中。取出样品用于发行测试并将纯化的多糖在-25。±5。C冷冻保藏。表征通过指定给多糖分子的质子的信号的分配，1H-NMR数据与化学结构相一致。使用特异性抗血清，通过对流免疫电泳证实单价多糖的身份。连接折射率和多角度激光散射(MALLS)检测器的高效凝胶过滤层析与样品浓度结合使用以计算分子量。用大小排阻层析介质(CL-4B)描绘多糖的相对分子大小分布。实施例4血清型3肺炎球菌糖-CRM197缀合物的制备活化和缀合将纯化的血清型3糖的容器解冻并在反应容器中合并。向该容器中加入WFI和2M乙酸至终浓度0.2M和2mg/ml糖。将溶液的温度升高到85°C1小时以水解多糖。冷却反应物到^25。C并加入1M氯化镁至终浓度O.IM。通过在23。C温育16-24小时，在高碘酸钠存在下进行氧化。浓缩活化反应混合物，并使用100KMWCO膜，用WFI渗滤10次。通过0.2-jim滤器过滤存留物。为了配制，向活化的糖中加入0.2M磷酸钠(pH7.0)至10mM终浓度和6.0-6.5的pH。将CRM197栽体蛋白与糖溶液混合至2g糖/lgCRM197的比率。将合并的糖/蛋白质溶液装入100mL玻璃冻干瓶中，目标填充为50mL，在-75。C滚动冷冻，并冻干。使共同冻干的糖/蛋白质物质瓶恢复室温，并重悬浮在O.IM磷酸钠緩冲液(pH7.0)中至20mg/mL的最终糖浓度。调节pH到6.5，然后加入0.5摩尔当量的氰基硼氢钠。在37。C温育反应物48小时。^硼氩化物温育后，用冷的5mM琥珀酸盐/0.9。/。盐氷緩冲液稀释反应混合物。通过加入硼氬化钠并在23。C温育3-6小时淬灭未反应的醛。通过0.45-5jim预过滤器转移反应混合物到存留物容器中。用0.1M磷酸盐緩冲液(pH9)渗滤反应混合物30次，用0.15M磷酸盐緩冲液(pH6)渗滤反应混合物20次，用5mM琥珀酸盐/0.9%盐水渗滤反应混合物20次。通过0.2卞m滤器过滤存留物。将缀合物溶液稀释到0.5mg/mL的糖耙标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到FBC容器中。在2-8。C保存缀合物。表征用大小排阻层析介质(CL-4B)描绘缀合物的相对分子大小分布。使用特异抗血清通过狭线印迹测定法证实缀合物的身份。分别通过Anthrone和Lowry测定法测定糖和蛋白质浓度。通过下面的计算得到共价结合的缀合物复合体中糖与蛋白质的比率jig/mlj糖比率=--------------------Hg/mL蛋白质实施例5制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型5肺炎链球菌血清型5从GeraldSchiffman博士(StateUniversityofNewYork,Brooklyn,NewYork)得到。细胞库系统的制备见实施例1。发酵、收获、多糖的纯化和表征见实施例1。备选发酵方法来自工作细胞库的培养物用于接种含有基于大豆的培养基和10mM无菌NaHC03溶液的种子瓶。将瓶子在36。C±2'C无搅拌下温育直到满足生长要求。用种子瓶接种含有基于大豆的培养基和10mM无菌NaHC03溶液的种子发酵罐。用3NNaOH保持pH约7.0。达到目标光密度后，用种子发酵罐接种含有基于大豆的培养基与10mMNaHC03浓度的生产发酵罐。用3NNaOH保持pH。生长停止后或者达到发酵罐的工作体积时停止发酵。向培养物中加入合适量的无菌12%脱氧胆酸钠以得到培养液中0.12%的浓度，以裂解细菌细胞和释放细胞结合的多糖。裂解后，搅拌下，在7'C到13。C的温度下保持发酵罐内容物8到24小时的时间间隔，以确保已经发生了完全细胞裂解和多糖释放。该保持期间的搅拌防止裂解沉积物沉淀在发酵罐壁和pH探头上，从而允许保持pH探头完整性。接着，将裂解的细胞培养液的pH用50。/。乙酸调节到约pH4.5。无搅拌下，在15匸到25。C的温度下保持12到24小时的时间间隔后，显著部分的以前溶解的蛋白质作为固体沉淀物从溶液析出，多糖几乎没有损失或者降解，其保持在溶液中。然后通过连续流动离心，接着通过深层过滤和0.45nm微量过滤澄清具有沉淀物的溶液。实施例6制备血清型5肺炎球菌糖-CRM197缀合物活化和缀合将血清型5糖的容器解冻并在反应容器中合并。向该容器中加入0.1M乙酸钠(pH4.7)，接着在高碘酸钠存在下通过在23。C温育16-22小时进行氧化。浓缩活化反应混合物，并使用100KMWCO膜，用WFI渗滤10次。通过0.2卞m滤器过滤存留物。将血清型5活化的糖与CRMm以0.8:1的比例合并。将合并的糖/蛋白质溶液装入100mL玻璃冻干瓶(50mL目标填充)中并在-75。C滚动冷冻，并共同冻干。让共同冻干的物质的瓶子恢复到室温并重悬浮在O.IM磷酸钠(pH7.5)中，加入氰基硼氢钠。反应物在30。C温育72小时，接着再次加入氰基硼氢钠并在3(TC温育20-28小时。氰基硼氢钠温育后，用盐水稀释反应混合物2倍并通过0.45-5pm预过滤器转移到存留物容器中。将反应混合物用0.01M磷酸盐緩冲液(pH8)渗滤30次，用0.15M磷酸盐緩冲液(pH6)渗滤20次，并用盐水渗滤20次。通过0.2|nm滤器过滤存留物。将缀合物溶液稀释到0.5mg/mL的糖耙标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到FBC容器中。在2-8"C保存缀合物。缀合物的表征见实施例2。实施例7制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型6A从GeraldSchiffman博士(StateUniversityofNewYork,Brooklyn,NewYork)得到肺炎链球菌血清型6A。细胞库系统的制备见实施例1。发酵、收获和多糖的纯化见实施例1，只是在纯化期间，在层析步骤前的30kDaMWCO浓缩步骤被省略。实施例8制备血清型6A肺炎球菌糖-CRM197缀合物活化和缀合血清型6A多糖是高分子量聚合物，其必须在氧化前减小大小。解冻血清型6A糖的容器并在反应容器中合并。向容器中加入2M乙酸至0.1M的终浓度，用于在6(TC水解1.5小时。将反应物冷却到23'C并通过用1MNaOH调节反应混合物至pH6进行中和。在高捵酸钠存在下，通过在23。C温育14-22小时进行氧化。浓缩活化反应混合物并使用100KMWCO膜用WFI渗滤。通过0.2fun滤器过滤存留物。将血清型6A用蔗糖配制并填充到100mL玻璃冻干瓶(50mL目标填充)并在-75。C滚动冷冻并冻干。将冻千物质的^f瓦子恢复到室温并以1:1的糖/蛋白质比率重悬浮在二甲亚砜(DMSO)中。力口入氰基硼氢钠后，在23。C温育反应混合物18小时。氰基硼氩钠温育后，用冷盐水稀释反应混合物。通过加入硼氢化钠，通过在23。C温育3-20小时淬灭未反应的醛。通过5nm预过滤器将稀释的反应混合物转移到存留物容器中。将反应混合物用0.9。/oNaCl渗滤10次，用琥珀酸盐緩冲的NaCl渗滤30次。通过0.2fim滤器过滤存留物。将缀合物溶液稀释到0.5mg/mL的糖耙标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到FBC容器中。在2-8'C保存缀合物。缀合物的表征见实施例2。实施例9制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型7F肺炎链球菌血清型7F从GeraldSchiffman博士(StateUniversityofNewYork,Brooklyn,NewYork)得到。细胞库系统的制备和发酵和多糖的收获见实施例3。关于备选发酵和收获方法，见实施例l中描述的备选方法。纯化肺炎链球菌多糖的纯化由几个浓缩/渗滤操作、沉淀/洗脱、柱层析和深层过滤步骤组成。除非另外指出，所有步骤都在室温下进行。将来自肺炎链球菌血清型7F的发酵罐培养物的澄清的培养液浓缩并用100kDaMWCO滤器渗滤。使用磷酸钠緩冲液在中性pH下完成渗滤。渗滤从较高分子量的生物聚合物，如核酸、蛋白质和多糖除去了低分子量的培养基组分。血清型7F不与HB形成沉淀。而是，通过加入来自J&存液的HB至1%HB的终浓度从浓缩的和渗滤的溶液沉淀杂质。在深层滤器上捕获沉淀物并丢弃滤器。滤液中含有多糖。向多糖'溶液中加入来自Nal贮存液的碘化钠(Nal)至终浓度0.5%以沉淀HB。通过深层过滤除去沉淀物。滤液含有目标多糖。用NaCI/Nal溶液沖洗沉淀容器和滤器并将冲洗液与部分纯化的多糖溶液合并。丟弃滤器。然后通过0.2jim滤器过滤多糖。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用氯化钠溶液渗滤。通过浸渍活性炭的深层滤器过滤，进一步純化部分纯化的多糖溶液。过滤后，用氯化钠溶液冲洗碳滤器。将冲洗液与多糖溶液合并，然后将其通过0.2nm滤器过滤。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用1M磷酸钠緩冲液调节以实现0.025M终浓度的磷酸钠。检查pH并调节到7.0±0.2。用含有氯化钠的磷酸钠緩冲液平衡陶瓷羟基磷灰石(HA)柱，以得到合适的电导率(15jiS)。然后将多糖溶液装载到柱子上。在这些条件下，杂质结合到树脂并且从柱子的穿过液回收多糖。用緩冲液穿过柱子冲洗多糖并通过0.2jim滤器过滤。4吏用30kDaMWCO滤器浓缩多糖溶液。然后用WFI渗滤浓缩液。将渗滤的多糖溶液通过0.2nm滤膜过滤到不锈钢容器中。取出样品用于发行测试并将纯化的多糖在2。-8。C冷冻保藏。多糖的表征见实施例3。实施例10制备血清型7F肺炎球菌糖-CRM197缀合物活化和缀合通过在23。C温育16-24小时，在高碘酸钠存在下进行氧化。浓缩活化反应混合物并4吏用100KMWCO膜，用10mMNaOAc，pH4.5渗滤10次。通过0.2nm滤器过滤存留物。将血清型7F填充到100mL玻璃冻干瓶(50ml目标填充)，在-75°C滚动冷冻并冻干。将冻干的血清型7F和CRM197的瓶子恢复室温并以1.5:1的糖/蛋白质比例重悬浮在DMSO中。加入氰基硼氢钠后，在23。C温育反应物8-10小时。通过加入硼氢化钠，在23。C温育16小时淬灭未反应的醛。将反应混合物用冷盐水稀释10倍，并通过5jim预过滤器转移到存留物容器中。将反应混合物用0.9%盐水渗滤10次并用琥珀酸緩冲的盐水渗滤30次。通过0.2jim滤器过滤存留物。将缀合物溶液用0.9%盐水稀释到0.5mg/mL的糖靶标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到FBC容器中。在2-8'C保存缀合物。缀合物的表征见实施例4。实施例11制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型19A从GeraldSchiffman博士(StateUniversityofNewYork,Brooklyn,NewYork)得到肺炎链球菌血清型19A。关于制备细胞库系统，见实施例1。多糖的发酵、收获和纯化见实施例7。表征见实施例3。实施例12血清型19A肺炎球菌糖-CRMm缀合物的制备活化和缀合将血清型19A糖的容器解冻并在反应容器中合并。加入乙酸钠至10mM(pH5.0)并在高碘酸钠存在下通过在23。C温育16-24小时进行氧化。浓缩活化反应混合物并使用100KMWCO膜，用10mM乙酸盐，pH5.0渗滤10次。通过0.2jrni滤器过滤存留物。用蔗糖配制活化的糖接着加入CRMm。将血清型19A活化的糖和CRM197混合物(0.8:1比例)填充到100ml玻璃冻干瓶(50mL目标填充)并在-75'C滚动冷冻并冻干。将冻干物质的^f瓦子恢复到室温并重悬浮在DMSO中。向糖/蛋白质混合物中加入氰基硼氢钠(100mg/ml)。将反应物在23。C温育15小时。硼氩化物温育后，通过加入硼氢化钠，在23。C温育3-20小时淬灭未反应的趁。将反应混合物用冷盐水稀释10倍并通过5nm预过滤器转移到存留物容器中。将反应混合物用0.9%NaCl渗滤10次，0.45|Lim过滤，并用5mM琥珀酸盐/0.9°/。NaCl緩沖液，pH6渗滤30次。通过0.2jun滤器过滤存留物。用5mM琥珀酸盐/0.9°/。盐水将缀合物溶液稀释到0.5mg/mL的扭标，然后在Class100通风厨中无菌过滤到FBC容器中。在2-8'C保存缀合物。缀合物的表征见实施例4。实施例13制备肺炎链球菌荚膜多糖血清型4、6B、9V、14、18C、19F和23F制备肺炎链球菌种子培养物从GeraldSchiffman博士(StateUniversityofNewYork,Brooklyn,NewYork)得到肺炎链球菌血清型4、6B、9V、18C、19F和23F。肺炎链球菌血清型14从ATCC菌株6314得到。单独地将一瓶每种希望的血清型的肺炎链球菌用于开始发酵批次。用碳酸钠将含有基于大豆的培养基和酚红的两瓶调节到7.4±0.2的pH范围，然后向瓶中加入所需体积的50%葡萄糖/1%硫酸镁溶液。将两个瓶子接种不同量的种子。瓶子在36。士2。C培育直到培养基变成黄色。培育后，从每个瓶子除去样品，并测试光密度(OD)(0.3到0.9)和pH(4.6到5.5)。选捧两个瓶子之一用于接种种子发酵罐。将基于大豆的培养基转移到种子发酵罐并消毒。然后向发酵罐中加入一体积的50%葡萄糖/1%硫酸镁溶液。监视并控制种子发酵罐的pH(pH6.7到7.4)并搅拌。温度保持在36。C士2。C。种子接种物(瓶)无菌连接到种子发酵罐并转移接种物。保持发酵罐处于pH控制下并定期取出样品并测试OD和pH。当在600nm达到所需的OD0.5时，用来自种子发酵罐的发酵液接种中间发酵罐。将基于大豆的培养基转移到中间发酵罐并消毒。然后向发酵罐加入一体积的50%葡萄糖/1%硫酸镁溶液。监视并控制中间发酵罐的pH(pH6.7到7.4)并搅拌。温度保持在36。C士2。C。将种子发酵罐的内含物转移到中间发酵罐中。保持发酵罐处于pH控制下并定期取出样品并测试OD和pH。当在600nm达到所需的OD0.5时，用来自中间发酵罐的发酵液接种生产发酵罐。将基于大豆的培养基转移到生产发酵罐并消毒。然后向发酵罐加入一体积的50%葡萄糖/1%硫酸镁溶液。监视并控制生产发酵罐的pH(pH6.7到7.4)并搅拌。温度保持在36。Ci2。C。保持发酵罐处于pH控制下并定期取出样品并测试OD和pH，直到发酵完成。向发酵罐中加入脱氧胆酸钠至约0.12%w/v的终浓度。将培养物混合最少30分钟并〗寻温度调节点降低10°C。过夜培养培养物并且证实失活后，如必要，用50%乙酸调节培养物的pH到6.4到6.8。升高发酵罐的温度至20。±5°C并将内含物转移到澄清保持槽中。通过以每小时25到600升的流速离心处理澄清保持槽的内含物(保持细胞残渣)(血清型4除外，其中丢弃细胞残渣并升高流速到25到250升/小时)。取出上清液的样品并测试OD。在离心期间所需的OD为S0.15。最初，通过深层滤器装置再循环上清液，直到实现0.05±0.03的OD。然后，上清液穿过深层滤器装置并且通过0.45nm滤膜以过滤滤液保持槽。随后，产物通过闭管转移到纯化区用于处理。所有上面的操作(离心、过滤和转移)都在10。C到30。C之间进行。关于血清型4和6B的备选发酵和收获方法，见实施例1中描述的备选方法。纯化每种肺炎链球菌多糖的纯化由几个浓缩/渗滤操作、沉淀/洗脱、柱层析和深层过滤步骤组成。除非另外指出，所有步骤都在室温下进行。将来自所希望的肺炎链球菌血清型的发酵罐培养物的澄清的培养液浓缩并用100kDaMWCO滤器渗滤。使用磷酸钠緩冲液在pH<9.0下完成渗滤。渗滤从较高分子量的生物聚合物，如核酸、蛋白质和多糖除去了低分子量的培养基組分。通过加入来自贮存液的HB，从浓缩和渗滤的溶液沉淀多糖，以得到1。/。HB(w/v)的终浓度(血清型23F除外，其具有2.5。/。的终浓度)。在深层滤器上捕获多糖/HB沉淀物并丟弃滤液(注意:血清型14不沉淀；因此保留滤液)。再溶解多糖沉淀物并通过含有沉淀物的深层滤器再循环氯化钠溶液进行洗脱。然后用额外的氯化钠溶液冲洗滤器。向多糖溶液中加入来自Nal贮存液的-典化钠(Nal)至终浓度0.5%以沉淀HB(血清型6B除外，其具有0.25%的终浓度)。通过深层过滤除去沉淀物。滤液舍有目标多糖。丟弃滤器。然后通过0.2^111滤器过滤多糖。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用氯化钠溶液渗滤。通过浸渍活性炭的深层滤器过滤，进一步纯化部分纯化的多糖溶液。过滤后，用氯化钠溶液沖洗碳滤器。将冲洗液与多糖溶液合并，然后将其通过0.2nm滤器过滤。将多糖溶液在30kDaMWCO超滤膜上浓缩并用氯化钠溶液沖洗滤器。检查pH并调节到7.0土0丄用含有氯化钠的磷酸钠緩冲液平衡陶瓷羟基磷灰石(HA)柱，直到pH为7.0士0.3并且电导率为26士4nS。然后将多糖溶液装载到柱子上。在这些条件下，杂质结合到树脂并且从柱子的穿过液回收多糖。多糖溶液通过0.2nm滤器过滤。使用30kDaMWCO滤器浓缩多糖溶液。然后用WFI渗滤浓缩液直到电导率〈5jiS。将渗滤的多糖溶液通过0.2nm滤膜过滤到主体容器(bulkcontainer)中并在2-8。C保存。实施例14制备用于血清型4、6B、9V、14、18C、19F和23F的肺炎球菌糖-CRM197缀合物活化方法不同的血清型糖按照不同的途径用于活化(活化前水解或者不水解)和缀合(水性或者DMSO反应)，如该实施例所述。将多糖从主体容器转移到反应器容器中。然后用WFI和磷酸钠稀释多糖至1.6-2.4mg/mL的终浓度范围。步骤l对于血清型6B、9V、14、19F和23F，调节pH至pH6.0±0.3。对于血清型4，加入氢氯酸(0.01M最终酸浓度)并在450±20C下温育25-35分钟。通过冷却到21-25。C并加入1M磷酸钠至目标pH6.7±0.2终止水解。进行过程中测试以证实合适水平的depyruvylation。对于血清型18C，加入水乙酸(0.2M最终酸浓度)并在94。士2。C下温育溶液205-215分钟。然后降低温度至21-25。C并加入1-2M磷酸钠至目标pH6.8±0.2。步骤2:高碘酸反应使用总的糖含量(除了血清型4之外)确定肺炎球菌糖活化所需的高碘酸钠摩尔当量。对于血清型4，使用每摩尔糖0.8-1.2摩尔高碘酸钠的比例。通过充分混合，对于除了19F的所有血清型，让氧化反应在21-25。C下进行16到20小时，对于19F的温度S15。C。步骤3:超滤浓缩氧化的糖并在100kDaMWCO超滤膜(对于18C使用5kDa超滤膜)上用WFI(对于血清型19F使用0.01M磷酸钠緩冲液pH6.0)渗滤。丟弃渗透液并通过0.22nm滤器过滤存留物。步骤4:冻干对于血清型4、9V和14，将浓缩的糖与CRMm载体蛋白混合，装入玻璃瓶中，滚动冷冻并在仝65。C保存。冻干冷冻浓缩的糖-CRMm并在-25。士5。C保存。对于血清型6B、19F和23F，加入特定量的蔗糖，所述量经计算为在缀合反应混合物中实现5%±3%的蔗糖浓度。血清型18C不需要蔗糖加入。然后将浓缩的糖装入玻璃瓶中，滚动冷冻并在^-65。C保存。冻干冷冻浓缩的糖并在-25。±5。C保存。缀合方法使用两种缀合方法水性缀合用于血清型4、9V、14和18C，DMSO缀合用于血清型6B、19F和23F。水性缀合步骤l:溶解对于血清型4、9V和14,解冻冻干的激活的糖-CRMw7混合物并在室温平衡。然后以特定比例用O.IM磷酸钠緩冲液重构冻干激活的糖-CRM197:.对于血清型4和9V，每16-24g糖lL緩沖液对于血清型14,每6-10g糖1L緩沖液对于血清型9V,在37。士2。C下温育反应混合物直到完全溶解，对于血清型4和14，在23。±2flC下温育反应混合物直到完全溶解。对于血清型18C，在CRM^7在1M磷酸氢二钠的溶液中以每1LCRMm溶液0.11L磷酸钠的比例重构冻干的糖。在23。±2'C下温育反应混合物(8-12g/L糖浓度)直到完全溶解。在该阶段检测pH作为过程内控制。步骤2:缀合反应对于血清型4和9V，通过加入氰基硼氬钠溶液(100mg/mL)以实现每摩尔糖1.0-1.4摩尔氰基硼氢钠，启动缀合反应。在37。士2。C温育反应混合物44-52小时。然后降低温度至23。±2。C并向反应器中加入0.9%氯化钠。加入硼氩化钠溶液(100mg/mL)以实现每摩尔糖1.8-2.2摩尔当量的硼氢化钠。在23。士2。C温育混合物3-6小时。用氯化钠0.9。/。稀释混合物并冲洗反应器。使用1.2nm预过滤器将稀释的缀合混合物过滤到储存容器中。对于血清型14和18C，通过加入氰基硼氢钠溶液(100mg/mL)以实现每摩尔糖1.0-1.4摩尔氰基硼氢钠，启动缀合反应。在23。士2。C温育反应混合物12-24小时。然后升高温度至37。±2。C并将反应物温育72-96小时。然后降低温度至23。士2。C并向反应器中加入0.9。/。氯化钠。加入硼氬化钠溶液(IOOmg/mL)以实现每摩尔糖1.8-2.2摩尔当量的硼氬化钠。在23。士2。C温育混合物3-6小时。用0.9。/。氯化钠稀释混合物并冲洗反应器。使用1.2jim预过滤器将稀释的缀合混合物过滤到储存容器中。步骤3:超滤100kDa浓缩稀释的缀合混合物并使用最小15体积(血清型4)或者40体积(血清型9V、14和18C)的0.9%氯化钠在100kDaMWCO超滤膜上渗滤。丢弃、渗透液。对于血清型4，通过0.45pm滤器过滤存留物。在该步骤进行过程内控制(糖含量)。步骤4:HA柱純化该步骤仅对于血清型4缀合物进行。首先用0.5M磷酸钠緩冲液(pH7.0士0.3)中和HA柱，然后用0.9%氯化钠平衡。将过滤的存留物(血清型4)以1.0L/min的流速加到柱上。用0.9%氯化钠以^2.0L/min流速洗涤柱子。然后用0.5M磷酸钠緩冲液以^2.0L/min流速洗脱产物。然后浓缩HA级分并用最小20体积的0.9%氯化钠在100kDaMWCO膜上渗滤。丟弃渗滤液。步骤5:过滤除菌100kDaMWCO渗滤后的存留物通过0.22pm滤器过滤。对过滤的产物进行过程内控制(糖含量，游离蛋白质，游离糖和氰化物)。对过滤的存留物进行过程内控制以确定是否需要额外的浓缩、渗滤和/或稀释以满足FBC耙标。用FBC样品重复这些和额外的测试。如需要，用0.9。/。氯化钠稀释过滤的缀合物以便实现小于0.55g/L的终浓度。在该阶段进行糖含量、蛋白质含量和糖蛋白质比例的释放测试。最后，过滤缀合物(0.22nm)并以2.64g/罐的典型量装入10L不锈钢罐中。在该阶段，进行产率、糖含量、蛋白质含量、pH、糖:蛋白质比例和赖氨酸含量作为过程内控制。在该阶段进行发行测试(外观、游离蛋白质、游离糖、内毒素、分子大小测定、残留氰化物、糖身份、CRM所身份)。DMSO缀合步骤I:溶解将冻干活化的糖血清型6B、19F、23F和冻干的CRM所载体蛋白在室温平衡并用DMSO重构。稀释浓度通常为2-3g糖(2-2.5g糖)/升DMSO。步骤II:缀合反应将活化的糖和CRM^7载体蛋白在23°±2。C以0.6g-1.0g糖/gCRM197(对于血清型6B和19F)或者1.2到1.8g糖/gCRM197(对于血清型23F)的比例范围混合60-75分钟。通过以0.8-1.2摩尔当量的氰基硼氩钠对1摩尔活化糖的比例加入氰基硼氢钠溶液(100mg/ml)启动缀合反应。向反应混合物加入WIF至1%(Wv)的目标并在23。±2。C温育混合物40小时以上。向反应物中加入硼氩化钠溶液，100mg/mL(通常每摩尔活化糖1.8誦2.2摩尔当量硼氢化钠)和WFI(目标5。/。v/v)并在23。土2。C温育混合物3-6小时。该步骤还原糖上任何未反应的醛。然后在<15。C将反应混合物转移到含有0.9%氯化钠的稀释罐中。步骤III:100kDa超滤将稀释的缀合物混合物通过1.2jim滤器过滤并在100kDaMWCO膜上用最少15体积的0,9%氯化钠浓缩和渗滤(0.01M磷酸钠/0.05MNaCl緩冲液用于血清型23F)。丢弃渗透液。通过0.45nm滤器过滤存留物。在该阶段取过程内糖含量样品。步骤IV:DEAE柱纯化该步骤仅对血清型23F进行。用0.01M磷酸钠/0.05M氯化钠緩冲液平衡DEAE柱。将过滤的存留物(血清型23F)装载到柱上并用0.01M磷酸钠/0.05M氯化钠緩沖液洗涤。用0,01M磷酸钠/0.9。/oNaCl緩冲液洗涤柱子。然后用0.01M磷酸钠/0.5M氯化钠緩冲液洗脱产物。步骤V:100kDa超滤浓缩来自6B和19F的存留物并用至少30体积的0.9%氯4匕钠;參滤。丢弃渗透液。浓缩来自血清型23F的洗脱物并用最少20体积的0.9。/。氯化钠渗滤。丟弃渗透液。步骤VI:过滤除菌100kDaMWCO渗滤后的存留物通过0.22pm滤器过滤。对过滤的产物进行过程内控制(糖含量、游离蛋白质、游离糖、残留DMSO和残留的氰化物)。对过滤的存留物进行过程内控制以确定是否需要额外的浓缩、渗滤和/或稀释以满足FBC靶标。用FBC样品重复这些和额外的测试。如需要，用0.9%氯化钠稀释过滤的缀合物以便实现小于0.55g/L的终浓度。在该阶段进行糖含量、蛋白质含量和糖蛋白质比例的发行测试。最后，过滤缀合物(0.22nm)并以2.64g/罐的量装入10L不锈钢罐中。在该阶段，进行产率、糖含量、蛋白质含量、pH、糖:蛋白质比例和赖氨酸含量作为过程内控制。在该阶段进行释放测试(外观、游离蛋白质、游离糖、内毒素、分子大小测定、残留氰化物、残留DMSO、糖身份、CRM197身份)。实施例15多价肺炎球菌缀合物疫苗的配制13种缀合物的最终本体浓缩物含有0.85%氯化钠。3、6A、7F和19A型本体浓缩物也含有5MpH5.8的琥珀酸钠緩冲剂。基于批体积和本体糖浓度计算本体浓缩物的所需体积。向贴标签前的制剂容器加入80%的0.85%氯化钠(生理盐水)和所需量的琥珀酸盐緩沖液后，加入本体浓缩物。然后使用MiUiporeDurapore膜滤器单位，将制备物通过0.22膜过滤除菌到第二个容器中。用剩余的20%的0.85%氯化钠洗涤第一个容器并将容器穿过相同的滤器并收集到所述第二个容器中。在加入本体磷酸铝期间和之后温和混合配制的本体。检查pH并且如果需要，调节pH。将配制的本体产品在2-8'C保存。将配制的本体产品装入从BectonDickinson得到的l型硼硅酸盐玻璃注射器中。定期监测疫苗的混浊度以确保填克操作的均匀性。填充的疫苗(最终产品)在2-8'C保存。实施例1613价缀合疫苗的免疫原性迄今，已经在兔中对13vPnC疫苗进行了临床前研究。设计研究#HT01-0021和弁HT01-0036以独立地检查来自肺炎链球菌的荚膜多糖(PS)与CRM所的化学缀合和磷酸铝(A1P04)佐剂对兔中13vPnC疫苗的免疫应答的影响。这些效果通过抗原特异性ELISA测定血清IgG浓度和通过调理吞噬测定法(OPA)测定抗体功能来表征。研究弁HT01-0021研究弁HT01-0021检查具有A1P04佐剂的13vPnC疫苗引起疫苗血清型特异性免疫应答的能力。在13vPnC疫苗中代表的肺炎球菌血清型包括l、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F。第二个目标包括评估抗体应答的动力学和持续时间。在第0周和第2周用计划的人临床剂量的用或不用AlPO4(100ng/剂)配制的每种多糖(2fig每种PS,只是4Hg6B)肌内免疫NewZealandWhite兔。在不同时间点收集血清。通过ELISA测量血清特异性IgG并通过OPA评估功能活性。表3显示了在两剂13vPnC疫苗后，在合并的血清样品中实现的几何平均效价(GMT)。用IgGGMT的比率比较来自第4周到第0周的应答。这些数据表明在13vPnC制剂中包括A1P04与没有佐剂的相同疫苗相比引起了更高水平的IgG抗体。尽管当在制剂中包括A1P04时抗体应答更大，但是这些增加不是统计学上显著的。用这两种13vPnC制剂免疫后，还在兔中评估了功能抗体应答(表4)。当比较有或者没有佐剂的疫苗制剂时，在13vPnC+A1P04疫苗治疗组中观察到更高的OPAGMT。在两个组中，在第4周合并血清中对所有疫苗血清型都检测到OPA效价。对于多数血清型，在第4周测量的OPA效价比第0周的OPA效价(基线)高至少4倍。从来自两个治疗组的合并血清评估了对每种13vPnC疫苗血清型的动力学反应。从第0周和第1、2、3、4、8、12、26和39周抽取的血液测量了对每种血清型的IgG效价，然后比较。除了血清型l之外，在接受加佐剂的疫苗的动物中的抗体应答好于接受无佐剂的疫苗并且在免疫方案的第二周达到峰值(数据未显示)。总之，数据表明用磷酸铝配制的13vPnC疫苗在兔中是免疫原性的，引起针对疫苗中所含的肺炎球菌荚膜多糖的实质性抗体应答并且这些应答与功能活性有关。用13vPnC+A1P04免疫后对7种核心血清型观察到的应答与兔对7价制剂的历史应答相一致。表3.用两剂13价肺炎球菌复合糖免疫后的兔IgG免疫应答(GMT)血清型具有ALPO,'的稀释剂第0周第4周W^:W)第o周13vPnC'第4周(9S%CI)比率Wk4:WkO第o周13vPnC+ALPO/第4周(95%C，)比率Wk4:WkO<100<1001.0505,926(2,758-12,733)"95011,091(5,327-23,093)2223<100<1001.0506,647(2,773-15,932)1335816,443(7,096-38,106)2844<100<1001.05013554(8,031:22,875)2715029,183(15,342-55,508)5845134<1000.4505,859(2,450-14,009〉1175016,714(6邻9"40,140)3346A141<1000.47422,415(11,987-41,914)3038363,734(21,141-192,146)7686B<100<1001.0578,108(3,564-18,444)1425423,505(11，286"48,955)4357F3,8595790.217143,591(26,931-70,557)44414384,888(46,445-155,151)43,331b(23,256-71,510)4969V2899953.420515,780(7,193-34,616)12520821714437177D.4616,906(3,416-13,962)1137016,076(9,649-26,785)32218C<100<1001.05021,283(15,770-28,725)4265035,040(24,708-49,692)70119A<100<1001.0121113,599(54,518-236,707)939144280,976(119,587-660,167)1,95119F<100<1001.05014,365(7,346-28,090)2875024,912(9,243-67,141)柳23F<100<1001.0505323(1,8"-14,962)1065015,041(4,711-48,018)301a:来自组内每只兔的等体积的血清組成的合并血清的GMTb:与没有A1P04的治疗组统计学上不同(p-0.022)表4.用2剂13价肺炎球菌复合糖免疫后NZW兔合并血清的肺炎链球菌OPAGMT血清型第o周13vPnCa第4周比率Wk4:WkO第o周13vPnC+ALPO/第4周比率Wk4通0■1<86416<864163<882<81644<8164<83285<812832<85121286A8128168512646B<82566481,0241287F86488128169V864881281614163221632218C825632<82566419A<825664<81,02425619F<812832<851212823F8648<825664A:由治疗组(11=12)内各只兔的等体积的血清组成的库研究/^HT01-0036研究弁HT01-0036比较用缀合或不缀合CRMm蛋白质的13vPnC疫苗免疫后，兔对疫苗种所含的多糖(PS)的免疫应答。在第0和2周时，用一剂2.2ng每种PS—(4.4jig6B除夕卜)肌内免疫NewZealandWhite兔。动物接受三种疫苗制剂之一(a)13vPnC(PS直接缀合到CRM197)，(b)13vPnPS(游离PS)或者(c)13vPnPS+CRM197(游离PS与CRM197混合)。所有疫苗制剂都含有作为佐剂的125ng/剂量的A1P04。用IgGELISA评估对所有疫苗制剂的血清型特异性免疫应答并用补体介导的OPA测量功能性抗体。比较治疗组之间的免疫应答。表5给出了用抗原特异性IgGELISA分析的从第4周取血得到的GMT数椐。额外的分析显示了在笫4周和第0周GMT值的比率。数据表明缀合物疫苗制剂比游离的PS或者游离的PS+CRM197疫苗引起了更大的血清IgG效价。除了14型肺炎链球菌之外，13vPnC疫苗能够在OPA中诱导对肺炎链球菌的代表性菌林的功能性抗体(表6)。用13vPnPS或13vPnPS+CRM^7疫苗免疫两次后，两种疫苗都不能对于所测量的13种血清型中的10种在第4周时相对于第0周诱导>8倍的OPA效似表6)。总之，这些结果表明13价肺炎球菌疫苗多糖的缀合比仅仅使用游离多糖或者与未缀合的CRM^7混合的多糖所看到的产生更高的血清IgG效价和总的更大的功能性抗体活性。表5.用2剂13价肺炎球菌复合糖免疫后，通过ELISA测量的对PnPS的兔IgG应答(GMT)<table>tableseeoriginaldocumentpage43</column></row><table>a:用作所有组的第O周值应该理解前面的讨论和实施例仅仅给出了一些实施方案的详细描述。因此本领域技术人员显而易见的是，可以做出多种修饰和等同方案而不背离本发明的精神和范围。本专利申请中指出的所有杂志文章、其他参考文献、专利和专利申请都完整引入本文作为参考。参考文献1.HausdorffWP，BryantJ，ParadisoPR，SiberGR.Whichpneumococcalserogroupscausethemostinvasivedisease:implicationsforconjugatevaccineformulationanduse,partI.CHnInfectDis2000;30:100-21.2.HausdorffWP，BryantJ，KloekC，ParadisoPR，SiberGR.Thecontributionofspecificpneumococcalserogroupstodifferentdiseasemanifestations:implicationsforconjugatevaccineformulationanduse,partI.CHnInfectDis2000;30:122-40.3.WhitneyCG，FarleyMM,HadlerJ，等人Declineininvasivepneumococcaldiseaseaftertheintroductionofprotein-polysaccharideconjugatevaccine.NewEnglJMed2003j348(18):1737-46.4.BlackS，ShinefieldH，HansenJ，等人Postlicensureevaluationoftheeffectivenessofsevenvalentpneumococcalconjugatevaccine.PediatrInfectDisJ2001;20;1105-7.5.RobinsonKA,BaughmanW，RothrockG，等人EpidemiologyofinvasiveStreptococcuspneumoniaeinfectionsintheUnitedStates,1995-1998:Opportunitiesforpreventionintheconjugatevaccineera.JAMA2001;285:1729-35.6.ButlerJ，BreimanR，LipmanH，等人SerotypedistributionofStreptococcuspneumoniaeinfectionsamongpreschoolchildrenintheUnitedStates,1978-1994.JInfectDis1995;171:885-9.7.WhitneyCG，FarleyMM,HadlerJ，等人Increasingprevalenceofmultidrug-resistantStreptococcuspneumoniaeintheUnitedStates.NEnglJMed2000;343:1917-24.8.HofmannJ，CetronMS,FarleyMM，等人Theprevalenceofdrug-resistantStreptococcuspneumoniaeinAtlanta.NEnglJMed1995;333:481-6.9.JolobaML,WindauA，BajaksouzianS，AppelbaumPCHausdorffWP，JacobsMR.PneumococcalconjugatevaccineserotypesofStreptococcuspneumoniaeisolatesandtheantimicrobialsusceptibilityofsuchisolatesinchildrenwithotitismedia.CHnInfectDis2001;33:1489-94.10.BlackS，ShinefieldH,FiremanB，等人Efficacy,safety,andimmunogenicityofheptavalentpneumococcalconjugatevaccineinchildren.PediatrInfectDisJ2000;19:187-95.11.RudolphKM，ParkinsonAJ，ReasonoverAL，BulkowLR，ParksDJ,ButlerJC.SerotypedistributionandantimicrobialresistancepattenrsofinvasiveisolatesofStreptococcuspneumoniae:Alaska,1991-1998.JInfectDis2000;182:4卯-6.12.SniadackDH，SchwartzB,LipmanH，等人Potentialinterventionsforthepreventionofchildhoodpneumonia:geographicandtempo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。22.权利要求21的免疫原性组合物，其中所述佐剂是基于铝的佐剂。23.权利要求22的免疫原性组合物，其中所述佐剂选自磷酸铝、硫酸铝和氢氧化铝。24.权利要求23的免疫原性组合物，其中所述佐剂是磷酸铝。25.诱导对肺炎链球菌荚膜多糖缀合物的免疫应答的方法，其包括对人施用免疫有效量的权利要求18的免疫原性组合物。26.权利要求25的方法，其中所施用的免疫原性组合物是单次0.5ml剂量，其经配制成含有除了4fig6B之夕卜，2吗每种糖；约29jigCRM197载体蛋白；0.125mg元素铝(0.5mg磷酸铝)佐剂；和作为赋形剂的氯化钠和琥珀酸钠緩沖剂。全文摘要描述了具有13种不同的多糖-蛋白质缀合物和任选地基于铝的佐剂的免疫原性组合物。每种缀合物含有缀合到载体蛋白的从不同血清型的肺炎链球菌(1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F和23F)制备的荚膜多糖。配制为疫苗的免疫原性组合物总体上增加对婴儿和幼儿中肺炎球菌疾病的覆盖，并且提供了对血清型6A和19A的覆盖，其不依赖于血清群交叉保护的限制。文档编号A61K39/395GK101180079SQ200680017776公开日2008年5月14日申请日期2006年3月31日优先权日2005年4月8日发明者G·R·西贝尔,P·R·帕拉迪索,W·P·豪斯多夫申请人:惠氏公司