专利名称：线粒体靶向的抗氧剂的制作方法
技术领域：
本发明涉及带有亲脂性阳离子基团的抗氧剂以及这些抗氧剂作为药物等的用途。
线粒体是负责能量代谢的细胞内的细胞器。因此，线粒体的缺陷是损伤性的，特别是对于高能量需求的神经和肌肉组织。线粒体还是可在大部分细胞内引起氧化性应激反应的自由基和活泼氧物质的主要来源。因此，申请人确信，将抗氧剂选择性地传送到线粒体将比使用非靶向的抗氧剂更为有效。因此，本发明的目的是提供可靶向于线粒体的抗氧剂。
亲脂性阳离子因其带有正电荷而可以在线粒体基质中积聚(Rottenberg，(1979)酶学方法(Methods Enzymol)，55，547-560；Chen，(1988)细胞生物学年鉴(Annu Rev Cell Biol)4，155-181)。所述离子积聚的条件是它们具有足够的亲脂性以屏蔽正电荷或使其分散在很大的表面积上，此外还应当没有主动流出途径并且阳离子不能代谢或者对细胞直接产生毒性。
因此，本发明的目的是提供一种方法，该方法可以利用线粒体浓缩特定亲脂性阳离子的能力来摄入所连接的抗氧剂，从而使抗氧剂靶向于可引起氧化性应激反应的自由基和活泼氧物质的主要来源。
适宜的亲脂性阳离子是三苯基锛阳离子。
另一方面，本发明提供下式的线粒体靶向的抗氧剂 其中Z是阴离子，X是连接基团，R是抗氧剂部分。优选X是(CH2)n，其中n是1-6的整数。
更优选X是亚乙基、亚丙基或亚丁基。
优选Z是可药用阴离子。
首选本发明的线粒体靶向的抗氧剂具有如下结构式 优选R选自能够通过线粒体膜被转运并且能够在完整细胞的线粒体内积聚的抗氧剂。
在一个特别优选的实施方案中，本发明的线粒体靶向的抗氧剂具有如下结构式 优选Z是Br。
另一方面，本发明提供适于对可从减少氧化性应激反应中受益的患者进行治疗的药物组合物，所述组合物含有有效量本发明的线粒体靶向的抗氧剂和一种或多种可药用载体或稀释剂。
又一方面，本发明提供在细胞中减少氧化性应激反应的方法，该方法包括向所述细胞施用以上定义的线粒体靶向的抗氧剂的步骤。
再一方面，本发明提供对可从减少氧化性应激反应中受益的患者进行治疗或预防的方法，该方法包括向所述患者施用以上定义的线粒体靶向的抗氧剂的步骤。
尽管有以上的宽范围定义，但本发明不仅限于此，并且本发明也不仅限于以由下说明书中所提供的实施例所构成的实施方案。
发明详述如上所述，本发明涉及线粒体靶向的化合物，主要目的是治疗和／或预防以减少氧化性应激反应。
线粒体在其内膜上的基础膜电位高达180mV(内侧为负极)。由于该电位，膜渗透性的亲脂性阳离子在线粒体基质内积聚了数百倍。
申请人现已发现，通过将亲脂性阳离子(优选亲脂性三苯基锛阳离子)与抗氧剂共价偶联，该化合物可传送到完整细胞内的线粒体基质。抗氧剂于是靶向于细胞内自由基和活泼氧物质的主要生产位点，而不是随机的分散。
理论上，所有的亲脂性阳离子和所有的抗氧剂均可用于形成本发明的化合物。但优选所述亲脂性阳离子是本文所例举的三苯基鏻阳离子，所述亲脂性阳离子与抗氧剂部分通过1-6个碳原子的直链亚烷基链连接；更优选通过亚乙基、亚丙基或亚丁基连接。根据本发明，其它可与抗氧剂共价偶联的亲脂性阳离子包括三苄基铵或鏻阳离子。
所述优选的抗氧剂化合物很容易通过例如如下的反应制备 通用的合成方案是将卤代的前体、优选溴代或碘代的前体(RBr或RI)在适宜的溶剂中与2-3当量的三苯膦一起在氩气氛下加热数天。然后以溴化物或碘化物盐的形式分离出锛化合物。为了分离化合物，蒸除溶剂，然后将产物用乙醚反复研制，直至得到米色的固体。然后将其溶于氯仿并用乙醚沉淀除去过量的三苯膦。重复该过程，直至该固体不再溶于氯仿。然后将产物用二氯甲烷／乙醚重结晶数次。
还应当理解，如需要，所制备的抗氧剂化合物的阴离子(当采用该合成方法时为卤素)很容易与其它的药物阴离子或可药用阴离子通过离子交换、色谱或其它本领域已知的技术进行互换。
同一通用方法可用于生产多种带有不同的与三苯基鏻(或其它亲脂性阳离子)盐相连接的抗氧剂部分R的线粒体靶向化合物。其中包括维生素E衍生物系列，其中，连接维生素E功能基和三苯基鏻盐的桥键的长度不同。可用作R的其它抗氧剂包括链终止抗氧剂，例如丁基化的羟基苯甲醚、丁基化的羟基甲苯、醇醌和一般的游离基清除剂如衍生化的富勒烯(fullerenes)。此外，还可以合成可与自由基反应生成稳定自由基的自旋捕获剂。其中包括5，5-二甲基吡咯啉-N-氧化物、叔丁基亚硝基苯、叔亚硝基苯、α-苯基-叔丁基硝酮以及相关的化合物的衍生物。
在制得本发明的抗氧剂化合物后，可将其以任何药学上适宜的形式(可选择性地含有可药用载体或添加剂)向需要进行治疗和／或预防的患者给药。给药后，该化合物将靶向于细胞内的线粒体。
以下列出了用于制备本发明的其它特异性线粒体靶向的抗氧剂化合物的合成方案，即，(1)线粒体靶向的足球烯；(2)线粒体靶向的自旋捕获化合物和(3)线粒体靶向的自旋捕获化合物的其它合成路线。
足球烯(Buckminsterfullerene)的合成
自旋捕获剂的合成Ⅰ
自旋捕获剂的合成Ⅱ
现在将通过以下非限定性实验部分对本发明进行更详细的描述。实验1．线粒体靶向的维生素E衍生物(化合物1)的合成线粒体靶向的维生素E(化合物1)的合成方案如下。溴代的前体(化合物2)2-(2-溴乙基)-3，4-二氢-6-羟基-2，5，7，8-四甲基-2H-1-苯并吡喃通过将相应的醇按照Grisar等人(1995)(药物化学杂志(J．Med．Chem．)38，2880-2886)的描述溴化进行合成。所述醇通过将相应的羧酸按照Cohen等人(1979)(美国化学会志(J．Amer．Chem．Soc．)101，6710-6717)的描述还原进行合成。羧酸衍生物按照Cohen等人(1982)(合成通讯(Syn．Commun)12，57-65)的描述由2，6-二羟基-2，5，7，8-四甲基苯并二氢吡喃合成，而后者按照Scott等人(1974)(美国油脂化学家学会志(J．Amer．Oil．Chem．Soc．，101，6710-6716)的描述进行合成。 为了合成化合物1，将1g化合物2加入到8ml含有2．5摩尔当量三苯膦的丁酮中，然后在密封的Kimax管中在氩气氛及100℃下加热7-8天。室温下真空蒸除溶剂，将黄色的油用乙醚研制，直至形成米色的固体。将其溶于氯仿并用乙醚析出沉淀。重复该过程直至固体不溶于氯仿，然后将其用二氯甲烷／乙醚重结晶数次，真空干燥得到白色吸湿性粉末。线粒体对化合物1的摄取为了证实该靶向是有效的，将维生素E化合物1用分离的线粒体和分离的细胞进行试验。为此，用[3H]-三苯膦合成[3H]-化合物1并通过闪烁计数定量线粒体对化合物1的积聚作用(
图1)(Burns等，1995，生物化学和生物物理学文献(Arch Biochem Biophys)332，60-68；Burns和Murphy，1997，生物化学和生物物理学文献339，33-39)。为此，将大鼠的肝脏线粒体在已知可产生大约180mV线粒体膜电位的条件下温育(Burns等，1995；Burns和Murphy，1997)。在该条件下，化合物1可以被迅速(＜10s)摄取到线粒体内，积聚比例为大约6000。通过加入解偶联剂FCCP(羰基氰化物-对-三氟甲氧基苯基腙)可以阻断化合物1在线粒体内的积聚，所述解偶联剂可以阻止线粒体膜电位的建立(图1和2)(Burns等，1995)。因此，化合物1可以在线粒体膜电位的驱动下迅速而且选择性地积聚在线粒体内，并且该积聚导致线粒体内化合物的浓度比外部介质高数千倍。当化合物1在线粒体内积聚后，通过加入解偶联剂FCCP消除线粒体膜电位可以使该积聚迅速(＜10s)逆转。因此，线粒体特异性的积聚作用仅仅是由线粒体膜电位引起的，并非是由特异性结合或共价相互作用引起的。
线粒体对化合物1的特异性积聚作用还可以在完整细胞内发生。这可以按照Burns和Murphy，1997的描述测定，并且该积聚作用可以通过消除线粒体和血浆膜电位而阻止。此外，含有有缺陷线粒体(无线粒体膜电位)的细胞不能积聚化合物1。因此，化合物1在细胞内的积聚是由线粒体膜电位驱动的。
在一系列化合物1的浓度下，积聚比例相似，并且摄取到线粒体内的化合物1的量相对于线粒体内的浓度为4-8mM(图2)。该摄取完全是由膜电位引起的，并且在一系列的膜电位范围内与简单的三苯基鏻阳离子TPMP的摄取相似(图3)。通过在相同膜电位下比较TPMP和化合物1的摄取，我们推论出在线粒体内约84％的化合物1是与膜结合的(与之相比，疏水性较弱的化合物TPMP为约60％)。
以下给出详细的实验方法和结果。
图1显示了能化的大鼠肝脏线粒体对10μM[3H]化合物1的摄取(实线和实心符号)。虚线和空心的符号显示了在第3分钟时加入333nMFCCP的影响。在一开始便与FCCP一起温育和在第3分钟时加入FCCP所引起的摄取结果相同(数据未示出)。肝脏线粒体从雌性Wistar大鼠通过匀浆化然后在含有250mM蔗糖、10mM Tris-HCl(pH7．4)和1mM EGTA的培养液中差速离心制得，蛋白质浓度通过缩二脲试验用BSA作为标准物进行测定。为了测定[3H]化合物1的摄取，将线粒体(2mg蛋白／ml)于25℃下悬浮在补充有尼日利亚菌素(1μg／ml)、10mM琥珀酸盐、鱼藤酮1．33μg／ml和60nCi／ml[3H]化合物1和10μM化合物1的0．5-1ml110mM KCl，40mM Hepes-KOH，pH7．2，0．1mM EDTA中。温育后，通过离心使线粒体沉积，然后通过闪烁计数定量上清液和沉积物中的[3H]化合物1。
图2显示了将能化的大鼠肝脏线粒体与不同浓度的化合物1一起温育3分钟后得到的线粒体积聚比[(化合物1／mg蛋白)／(化合物1／μl)](实心条块)和333nM FCCP对该积聚比的影响(空心条形)。虚线和空心圈显示线粒体对化合物1的摄取(对FCCP-不敏感性结合进行了校正)。为了测定[3H]化合物1的积聚比，将线粒体(2mg蛋白／ml)于25℃下悬浮在补充有尼日利亚菌素(1μg／ml)、10mM琥珀酸盐、鱼藤酮1．33μg／ml和6-60nCi／ml[3H]化合物1和1-50μM化合物1的0．5-1ml 110mM KCl、40mM Hepes-KOH、pH7．2、0．1mM EDTA中。温育后，通过离心使线粒体沉积，然后通过闪烁计数定量上清液和沉积物中的[3H]化合物1。
图3显示了在一系列线粒体膜电位的范围内，化合物1的摄取与TPMP的摄取的比较。将能化的大鼠肝脏线粒体与10μM化合物1和1μMTPMP一起保温3分钟，用0-8 mM的丙二酸盐或333nM FCCP建立不同的膜电位。测定与60nCi／ml[3H]化合物1或50nCi／ml[3H]TPMP平行温育的积聚比，用化合物1的积聚比相对于在相同膜电位下的TPMP的积聚比作图(斜率=2．472，y截距=319，r=0．97)。将线粒体(2mg蛋白／ml)于25℃下悬浮在补充有尼日利亚菌素(1μg／ml)、10mM琥珀酸盐、鱼藤酮1．33μg／ml的0．5-1ml 110mM KCl，40mM Hepes-KOH，pH7．2，0．1mM EDTA中。3．化合物1的抗氧剂效果本发明的化合物还可以非常有效地对抗氧化性应激反应。为了证明这一点，将化合物1用大鼠大脑匀浆进行了进一步的测试。将大鼠大脑匀浆在含或不含各种浓度的试验化合物(化合物1；天然维生素E(α-生育酚)、溴化溴丁基三苯基鏻、Trolox(一种水溶性维生素E)和化合物2，即2-(2-溴乙基)-3，4-二氢-2，5，7，8-四甲基-2H-1-苯并吡喃-6-醇、化合物1的前体(“Brom Vit E”))的条件下温育并用TBARS试验定量在温育过程中发生的氧化损伤(Stocks等，1974，(Clin．Sci．Mol．Med．)47，215-222)。由此测定出抑制氧化损伤50％所需的化合物浓度。在该系统中，210nM化合物1可以抑制氧化损伤达50％，而天然维生素E的相应值为36nM。含有三苯基锛部分但不含抗氧剂维生素E部分的溴化溴丁基三苯基鏻的相应值为47μM。这些数据表明，化合物1是有效的抗氧剂，其数量级与维生素E的相当。与溴化溴丁基三苯基鏻的比较表明抗氧剂能力是由维生素E部分而不是鏻盐引起的。以下将进一步详细描述实验方法和结果。
在大鼠大脑匀浆中测定抑制脂质过氧化的IC50值，该值为在2-3个大脑制备物上测定值的平均值±SEM或范围。辛-1-醇／PBS分配系数为3次彼此独立的测定值的平均值±SEM。N．D．未测定。分配系数通过如下方法来测定将200μM化合物在2ml用水饱和的辛-1-醇中的溶液与2ml辛醇饱和的PBS在室温下混合1小时，然后通过短时间的离心将两层分离并利用PBS或辛醇制备的标准曲线通过分光光度法测定各层的浓度。为了测定抗氧剂效果，将4个大鼠大脑在15ml 40mM磷酸钾(pH7．4)、140mMNaCl中于4℃下进行匀浆，沉积颗粒状物质(1000gx g，4℃15分钟)，洗涤一次并将合并的上清液冷冻保存。将等份液迅速解冻并将5mg蛋白质悬浮在800μl含有抗氧剂或乙醇载体的PBS中并于37℃保温30分钟。向保温液中加入200μl浓高氯酸和200μl 1％硫代巴比土酸，于100℃加热15分钟然后冷却并离心分离(10000xg，2分钟)，于532nm处定量硫代巴比土酸活泼物质(TBARS)。所得结果示于下面的表1中。
表1．化合物1及相关化合物的分配系数和抗氧剂效果
当将线粒体接触氧化性应激反应时，化合物1可以保护线粒体防止氧化损伤，这可以通过脂质过氧化和蛋白羰基形成进行测定(图4)。通过将线粒体与解偶联剂FCCP温育以阻止化合物1的摄取可以阻止该氧化剂保护作用，并且亲脂性阳离子本身不会保护线粒体(图5)。最重要的是，化合物1的摄取对线粒体功能的保护作用(通过产生膜电位的能力进行确定)比维生素E本身更为有效(图6)。这表明化合物1在线粒体内的积聚可以选择性地保护线粒体的功能防止氧化性损伤。此外我们还证实，化合物1在产生保护作用的浓度下不会损伤线粒体。
下一步是测定化合物1是否可以被完整细胞积聚。化合物1可被完整的143B细胞迅速积聚，积聚量大于从143细胞衍生的ρ°细胞。这是非常重要的，因为ρ°细胞缺乏线粒体DNA从而其线粒体膜电位远远低于143B细胞，但其它方面，包括血浆膜电位、细胞体积和蛋白含量完全相同(图8)；这表明细胞内的化合物1大部分是在线粒体内。通过阻断血浆和线粒体膜电位可以抑制化合物摄取到细胞内的比例(图9)。该能化敏感性的摄取对应于化合物1在线粒体内的浓度为约2-4mM，该浓度足以保护线粒体防止氧化性损伤。这样的化合物1的浓度对细胞是无毒的(图10)。
以下将进一步详细描述实验方法和结果。
图4显示了化合物1对防止线粒体氧化性损伤的保护作用。将线粒体与铁／抗坏血酸盐一起保温使其接触氧化性应激反应，然后通过测定TBARS(实心条块)和蛋白的羰基(空心条块)来评估化合物1对氧化性损伤的影响。将大鼠肝脏线粒体(10mg蛋白)于25℃下在振摇水浴中于2ml含有100mM KCl，10mM Tris，pH7．7并且补充有鱼藤酮(1．33μg／ml)，10mM琥珀酸盐、500μM抗坏血酸盐和其它添加剂的培养液中保温。预保温5分钟后，加入100μM FeSO4并在45～55分钟后取出两份样品分析TBARS或蛋白的羰基。
图5显示了化舍物1和维生素E的比较结果以及解偶联剂和其它亲脂性阳离子的影响。使能化的大鼠肝脏线粒体接触叔丁基过氧化氢并测定化合物1(实心条块)、α-生育酚(空心条块)、化合物1+333nMFCCP(点画条块)或简单的亲脂性阳离子溴丁基三苯基鏻(交叉孔的条块)对TBRAS形成的影响。将大鼠肝脏线粒体(4mg蛋白)在2ml含有120mMKCl、10mM Hepes-HCl pH 7．2，1mM EGTA的培养液中在37℃下于振摇水浴中与各种添加剂一起保温5分钟，然后加入叔丁基过氧化氢(5mM)，将线粒体继续保温45分钟然后测定TBARS。
图6显示了化合物1是如何保护线粒体的功能防止氧化性损伤的。将能化的大鼠肝脏线粒体与铁／抗坏血酸一起在不含添加剂(点画条块)、含5μl化合物1(实心条块)、5μMα-生育酚(空心条块)或5μMTPMP(交叉孔的条块)的条件下保温，然后分离线粒体并测定相对于不含铁／抗坏血酸的对照保温液由呼吸底物所产生的膜电位。将大鼠肝脏线粒体于25℃下在2ml含有100mM KCl、10mM Tris、pH7．7并且补充有鱼藤酮(1．33μg／ml)、10mM琥珀酸盐、500μM抗坏血酸和其它添加剂的培养液中于振摇水浴中保温。预保温5分钟后，加入100μMFeS04，30分钟后，将保温液用6ml冰冷的STE 250mM蔗糖、10mMTris-HCl(pH7．4)和1mM EGTA稀释，离心(5000xg 5分钟)，然后沉积物重新悬浮在200μl STE中并将20μl(=1mg蛋白)悬浮在含有1μMTPMP和50nCi／ml[3H]TPMP以及10mM谷氨酸盐和苹果酸盐、10mM琥珀酸盐和鱼藤酮或5mM抗坏血酸／100μM TMPD+鱼藤酮和myxothiazol(2μg／ml)的1ml 110mM KCl、40mM HEPES、0．1mM EDTA pH7．2中，于25℃保温3分钟，然后离心，按照以上描述测定膜电位并与未接触氧化性应激反应的保温液进行比较。
图7显示了化合物1对膜电位(实心的条块)以及偶联的(空心的条块)、磷酰化的(点画的条块)和解偶联的线粒体(交叉孔的条块)呼吸速率的影响，用不存在化合物1时的数值的百分数表示。各种浓度的化合物1对分离的线粒体膜电位的影响通过将大鼠肝脏线粒体(2mg蛋白／ml)在0．5ml含有1μM TPMP和50n Ci／ml[3H]TPMP的上述培养基中温育3分钟从[3H]TPMP的分布来测定。温育后，通过离心使线粒体沉积，然后通过闪烁计数定量上清液和沉积物中的[3H]TPMP并计算膜电位，假定体积为0．5μl／mg蛋白并且60％的线粒体内TPMP是膜结合的。为了测定化合物1对偶联的、磷酰化的和解偶联的呼吸速率的影响，将线粒体(2mg蛋白／ml)在3ml Clark氧电极中悬浮在120mM KCl、10mMHepes-HCl pH7．2、1mM EGTA，10mM K Pi中，然后向电极中依次加入呼吸底物、ADP(200μM)和FCCP(333nM)并测定呼吸速率。
图8显示了细胞对化合物1的摄取。将106143B细胞(实心的符号)或ρ°细胞(空心的符号)与1μM[3H]化合物1一起温育并测定化合物1的积聚比例。将人骨肉瘤143B细胞以及衍生的缺乏线粒体DNA的ρ°细胞系在补充有尿苷和丙酮酸盐的DMEM／10％FCS(胎牛血清)中、在5％CO2／95％空气的氛围下于37℃培养，生长至融合然后收集细胞，用胰蛋白酶处理进行实验。为了测定[3H]化合物1的积聚，将细胞(106)在1mlHEPES-缓冲的DMEM中温育。温育结束时，离心使细胞沉积，制备用于闪烁计数的细胞沉积物和上清液并计算积聚比例[(化合物1／mg蛋白)／(化合物1／μl)]。
图9显示了106143B细胞在1小时的温育时间内摄取的化合物1的量(对抑制剂不敏感性结合进行校正)。将人骨肉瘤143B细胞与1-50μM的化合物1一起在补充有6-60nCi／ml[3H]化合物1的1ml HEPES-缓冲的DMEM中进行温育。为了测定能化依赖型的摄取，用12．5μM寡霉素、20μM FCCP、10μM myxathiazol、100nM缬氨霉素和1mM哇巴因进行平行温育。温育结束时，通过离心使细胞沉积，然后进行闪烁计数并测定能化敏感性摄取。
图10显示了化合物1对细胞活力的影响。将融合143B细胞与各种浓度的化合物1一起在24孔组织培养盘中温育24小时，然后通过乳酸脱氢酶释放测定细胞活力。工业实用性本发明的化合物可用于人类患者的选择性抗氧剂疗法，以预防线粒体损伤。该化合物可以阻止与特定疾病有关的提高的线粒体氧化性应激反应，例如帕金森氏病或与线粒体DNA突变有关的疾病。
它们还可用于和神经变性疾病的细胞移植疗法结合，以增加移植细胞的存活率。
此外，这些化合物可用作预防剂在移植过程中保护器官，或缓解手术过程中出现的局部缺血-再灌注损伤。本发明的化合物还可用于降低中风和心脏病发作后的细胞损伤，或对易于发生大脑局部缺血的早产婴儿进行预防性给药。相对于现有的抗氧剂疗法，本发明方法的主要优点在于，它们可以使抗氧剂选择性地在线粒体内积聚，而线粒体是细胞中受氧化应激反应最大的部分。这将大大增加抗氧剂疗法的效力。所涉及的亲脂性阳离子已在试验中用作潜在的抗癌药物，并且已证实对所有动物均相对无毒，因此这些靶向的抗氧剂不可能具有有害的副作用。
本领域技术人员可以理解，以上描述仅仅是举例性的，可以采用不同的亲脂性阳离子／抗氧剂组合物而不超出本发明的范围。
权利要求
1．含有与抗氧剂部分共价偶联的亲脂性阳离子的线粒体靶向的抗氧剂化合物。
2．权利要求1的化合物，其中所述的亲脂性阳离子是三苯基鏻阳离子。
3．权利要求1所述的线粒体靶向的抗氧剂化合物，其中，所述化合物具有如下结构式 其中X是连接基团，Z是阴离子，R是抗氧剂部分。
4．权利要求3的化合物，其中X是(CH2)n，n是1-6的整数。
5．权利要求4的化合物，其中X是亚乙基、亚丙基或亚丁基。
6．权利要求5的化合物，其中X是亚乙基。
7．根据权利要求3-6任一项的化合物，其中R选自能够通过线粒体膜被转运并且能够在完整细胞的线粒体内积聚的抗氧剂。
8．权利要求3的化合物，其中，所述化合物具有如下结构式
9．权利要求8的化合物，其中Z是Br。
10．一种适于对可从减少氧化性应激反应中受益的患者进行治疗的药物组合物，所述组合物含有有效量的根据权利要求1-9任一项所定义的线粒体靶向的抗氧剂和一种或多种可药用载体或稀释剂。
11．一种对可从减少氧化性应激反应中受益的患者进行治疗或预防的方法，该方法包括向所述患者施用根据权利要求1-9任一项所定义的线粒体靶向的抗氧剂的步骤。
12．一种在细胞中减少氧化性应激反应的方法，该方法包括向所述细胞施用根据权利要求1-9任一项所定义的线粒体靶向的抗氧剂的步骤。
全文摘要
本发明提供了线粒体靶向的抗氧剂化合物。本发明的化合物含有与抗氧剂部分共价偶联的亲脂性阳离子。在优选的实施方案中,亲脂性阳离子是三苯基鏻阳离子,所述化合物是式P(Ph
文档编号A61K31/665GK1282334SQ98812314
公开日2001年1月31日 申请日期1998年11月25日 优先权日1997年11月25日
发明者M·P·墨菲, R·A·J·史密斯 申请人:奥塔戈大学