废物处理的方法和组合物的制作方法

专利名称：废物处理的方法和组合物的制作方法
技术领域：
本发明涉及酵母组合物在液体废物处理中的应用。这些酵母组合物可以通过在特定频率和场强的电磁场中生长而获得。
背景技术：
城市污水和工业废水所引起的环境污染已经对世界的活生物体造成了严重的健康威胁。这些水污染物的主要成分通常分为8类复杂的高分子量聚合物，特别是多糖(例如淀粉或纤维素)、木质素、聚乙烯、聚丙烯、聚氯乙烯、聚苯乙烯；复杂的高分子量含氮化合物，例如蛋白质、多肽、氨基酸、维生素、脂类和多聚核酸；环境有害毒素，例如抗生素，不良化学品，例如苯酚类，含硫化合物，烷烃和三氯甲烷，以及通常见于化肥和去垢剂中的化学添加剂；水溶性氮化合物，例如铵盐，硝酸盐，亚硝酸盐和氨基酸；生物可利用的磷酸盐，例如HPO42-和H2PO4-；臭味物质，例如氨，硫化物和脂肪酸；致病微生物，例如大肠杆菌，沙门氏菌，细菌，真菌，放线菌，和各种病毒；以及藻类，例如绿藻，蓝藻和红藻。当前，大规模水处理最常用的方法包括活化污泥技术和生物膜技术。这些技术依赖于种种天然微生物例如真菌、细菌和原生动物的固有能力，来降解污染物。但是，这些天然微生物成分的构成很难控制，影响了水处理的可重复性和质量。此外，存在于这些活化污泥或生物膜中的致病微生物不能被选择性的抑制，这些微生物通常与处理过的水一起进入环境，引起“二次污染”。
此外，大多数现有技术不能降解有害的化学品例如农药、杀虫剂和化肥。这些技术也不能减轻富营养化作用—另一个严重的世界性环境问题。富营养化作用通常由污水、工业废水、化肥等引起。富营养化作用指水(例如湖或池塘)富于促进植物生命特别是藻类增殖的矿质营养素和有机营养素，这种增殖使溶解氧含量降低或以别的方式使水质变差。富营养化作用通常导致其它生物体的灭绝。

发明内容
本发明是基于发现某些酵母细胞可以被具有特定频率和场强的电磁场活化，将环境污染物降解和转化为无害的终产物。含这些被活化的酵母细胞的组合物可以用来进行废物处理，例如污水、工业废水、地表水、饮用水、沉积物、土壤、垃圾和粪肥的处理。与常规方法比较，使用该组合物的废物处理方法更有效、效率更高和更经济。
本发明包括一种组合物，其包含已在频率范围约4230到4260MHz(例如4240-4260MHz)、场强范围约0.5到360mV/cm(例如80-320，80-300，60-270，90-320，70-350，或60-260mV/cm)的交变电磁场中培养的多个酵母细胞。所述酵母细胞在交变电场中培养足够的一段时间，以大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中聚合物的能力。例如，时间约为12到400小时，例如220-360，190-370，160-280，140-280，222-382，220-380或230-380小时。在该组合物中使用的酵母种包括但不限于酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)和汉逊酵母(Hansenula subpelliculosa)。例如酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.11、AS2.53、AS2.56、AS2.70、AS2.98、AS2.101、AS2.168、AS2.374、AS2.406、AS2.409、AS2.430、AS2.453、AS2.463、AS2.467、AS2.502、AS2.5 16、AS2.536、AS2.541或IFFI1331；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.433或AS2.459；或汉逊酵母(Hansenula subpelliculosa Bedford)AS2.738或AS2.740。
本发明包括一种组合物，其包含已在频率范围约5520到5540MHz(例如5521-5538MHz)、场强约范围0.5到360mV/cm(例如90-360或120-340mV/cm)的交变电场中培养的多个酵母细胞。所述酵母细胞在交变电场中培养足够的一段时间，以大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中含氮化合物的能力。例如，时间约为12到450小时，例如228-424或208-320小时。该组合物中使用的酵母种包括但不限于酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)和卡氏酵母(Saccharomycescarlsbergensis)。例如，酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae Hansen)AS2.93、AS2.98、AS2.152、AS2.423、AS2.452、AS2.458、AS2.502、AS2.535或AS2.561；或卡氏酵母(Saccharomycescarlsbergensis)AS2.440或AS2.595。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约70到100MHz(例如70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如30-220、30-230、30-250、90-280、80-280、100-200、110-280、100-220、116-225、120-280、90-190、100-190、160-300、120-300、200-300或130-310mV/cm)的交变电场中培养的多个酵母细胞。所述酵母细胞在交变电场中培养足够的时间，以大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中环境毒素例如抗生素和有机溶剂的能力。例如，时间是约12-400小时，例如180-328、114-244、80-380、80-365、120-350、90-330、130-330、100-280、110-330、130-290、80-290、110-360、或110-340小时。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约126到142MHz(例如126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、141或142MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如90-280mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中三氯甲烷的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约52到70MHz(例如52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69或70MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如80-280mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中甲苯或乙苯的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约30到50MHz(例如30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49或50MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如80-280mV/cm)的交变电磁场中培养足够时间的酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中对二甲苯的能力。
本发明还包括另一种组合物，其包含已在频率范围约200到220MHz(例如200、201、202、203、204、205、206、207、208、209、210、211、212、213、214、215、216、217、218、219或220MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如80-280mV/cm)的交变电磁场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中呋喃唑酮的能力。
本发明包括另一种组合物，其包含已在频率范围约213到229MHz(例如213、214、215、216、217、218、219、220、221、222、223、224、225、226、227、228或229MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如90-280mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中地考喹酯的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约133到151MHz(例如133、134、135、136、137、138、139、140、141、142、143、144、145、146、147、148、149、150或151MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如120-280mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中苯甲醛的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约145到162MHz(例如145、146、147、148、149、150、151、152、153、154、155、156、157、158、159、160、161或162MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如100-200mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中丙醛的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约156到176MHz(例如156、157、158、159、160、161、162、163、164、165、166、167、168、169、170、171、172、173、174、175或176MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如110-280mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度增加所述酵母细胞降解培养基中庚醛的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约163到183MHz(例如163、164、165、166、167、168、169、170、171、172、173、174、175、176、177、178、179、180、181、182或183MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如100-220mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中间二氯苯的能力。
本发明还包括另一种组合物，其包含已在频率范围约175到191MHz(例如175、176、177、178、179、180、181、182、183、184、185、186、187、188、189、190或191MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如116-225mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中苯乙酮的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约183到205MHz(例如183、184、185、186、187、188、189、190、191、192、193、194、195、196、197、198、199、200、201、202、203、204或205MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如90-190mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞的组合物，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中对氨苯基胂酸的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约114到128MHz(例如114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127或128MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如100-190mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中罗沙胂的能力。
本发明包括另一种组合物，其包含已在频率范围约244到264MHz(例如244、245、246、247、248、249、250、251、252、253、254、255、256、257、258、259、260、261、262、263或264MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如160-300mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，以大幅度增加所述酵母细胞降解培养基中十二烷的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约252到278MHz(例如252、253、254、255、256、257、258、259、260、261、262、263、264、265、266、267、268、269、270、271、272、273、274、275、276、277或278MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如120-300mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中十九烷或二十八烷的能力。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约220到250MHz(例如220、222、224、226、228、230、232、234、236、238、240、242、244、246、248或250MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如200-300mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度增加所述酵母细胞降解培养基中敌百虫的能力。
本发明还包括另一种组合物，其包含已在频率范围约220到250MHz(例如220、222、224、226、228、230、232、234、236、238、240、242、244、246、248或250MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如130-310mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述大幅度提高所述酵母细胞降解培养基中二硝托胺或3，5二硝基邻甲苯酰胺的能力。
可用于上述17种组合物中的酵母种包括但不限于酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、卡氏酵母(Saccharomycescarlsbergensis)、鲁氏酵母(Saccharomyces rouxii)和产朊假丝酵母(Candida utilis)。例如，酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)AS2.4、AS2.14、AS2.416、AS2.430、AS2.593、IFFI1002、IFF11006、IFFI1043、IFFI1045、IFFI1048、IFFI1063、IFFI1059、IFFI1206、IFFI1209、IFFI1210、IFFI1211、IFFI1213、IFFI1215、IFFI1220、IFFI1221、IFFI1224、IFFI1248、IFFI1270、IFFI1290、IFFI1291、IFFI1293、IFFI1297、IFFI1301、IFFI1302、IFFI1310、IFFI1311、IFFI1331、IFFI1335、IFFI1336、IFFI1338、IFFI1339、IFFI1340、IFFI1345、IFFI1396、IFFI1399、IFFI1411或IFFI1413；魏氏酵母(Saccharomyces willianus Saccardo)AS2.293；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.377或AS2.444；鲁氏酵母(Saccharomyces rouxii)AS2.178；或产朊假丝酵母(Candidautilis)AS2.120的细胞。
本发明进一步包括一种组合物，其包含已在频率范围约660到680MHz(例如660、661、662、663、664、665、666、667、668、669、670、671、672、673、674、675、676、677、678、679或680MHz)、场强范围约0.1到350mV/cm(例如140-320或120-290mV/cm)的交变电场中培养的多个酵母细胞。将酵母细胞培养足够的时间，以大幅度提高所述酵母细胞将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的能力。培养时间例如约为12到420小时(例如192-304或226-412小时)。本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约2160到2190MHz(例如2170到2185MHz)、场强范围约0.1到350mV/cm(例如140-320mV/cm)的交变电场中培养足够时间的多个酵母细胞，所述培养大幅度提高所述酵母细胞将培养基中的铵转化为细胞内氮的能力。这些组合物中所用酵母种包括但不限于酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、热带假丝酵母(Candida tropicalis)和白地霉(Geotrichum candidum)。例如，酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)AS2.196、AS2.336、AS2.400、AS2.416、AS2.423或AS2.982；魏氏酵母(Saccharomyces willianusSaccardo)AS2.152或AS2.614；热带假丝酵母(Candida tropicalis)AS2.1387；或白地霉(Geotrichum candidum)AS2.498的细胞。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约80到440MHz(例如86-120或410-430MHz)、场强范围约0.5到350mV/cm(例如60-360mV/cm)的交变电场中培养的多个酵母细胞。将酵母细胞培养足够的时间，以大幅度提高所述酵母细胞将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的能力。培养时间例如约为12到400小时，例如228-368小时。该组合物中可使用的酵母细胞包括但不限于酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)和卡氏酵母(Saccharomycescarlsbergensis)。例如酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)AS2.346、AS2.423、AS2.430、AS2.451、AS2.558、AS2.620、AS2.628、或IFFI1203；或卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.189的细胞。
本发明包括一种组合物，其包含已在频率范围约2160到2380MHz(例如2160-2250或2280-2380MHz)、场强范围约0.5到320mV/cm(例如40-260，70-260，80-250，90-260或140-300mV/cm)的交变电场培养中的多个酵母细胞。将酵母细胞培养足够时间，以大幅度提高所述酵母细胞减少恶臭材料气味的能力。培养时间例如约为12到350小时(例如70-220，70-320，80-310，85-220，110-230或120-300小时)。该组合物中可使用的酵母细胞包括但不限于酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)和卡氏酵母(Saccharomycescarlsbergensis)。例如酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)AS2.53、AS2.163、AS2.396、AS2.397、AS2.423、AS2.452、AS2.502、AS2.516、AS2.541、AS2.558、AS2.559、AS2.560、AS2.561、AS2.562、AS2.607、AS2.612、IFFI1052、IFFI1202、IFFI1213、IFFI1247或IFFI1397；或卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.605的细胞。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约30到50MHz(例如30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49或50MHz)、场强范围约0.5到200mV/cm(例如约10-180mV/cm)的交变电场培养中的多个酵母细胞。将酵母细胞培养足够时间，以大幅度提高所述酵母细胞抑制致病微生物增殖的能力。培养时间例如约为12到300小时(例如144-272小时)。该组合物中可使用的酵母细胞包括但不限于酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)、葡萄汁酵母(Saccharomyces uvarum)和魏氏酵母(Saccharomyces willianus)。例如，酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)ACCC2034、ACCC2043、AS2.70、AS2.369、AS2.408、AS2.451、AS2.562、AS2.607、IFFI1021、IFFI1037、IFFI1211、IFFI1221、IFFI1251、IFFI1301、IFFI1307、IFFI1308、IFFI1331或IFFI1345；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis Hansen)AS2.200；葡萄汁酵母(Saccharomyces uvarum Beijer)IFFI1023、IFFI1032或IFFI1205；或魏氏酵母(Saccharomyces willianus Saccardo)AS2.119或AS2.152的细胞。
本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约6340到6380MHz(例如6352-6370MHz)、场强范围约0.5到400mV/cm(例如70-310，100-330或120-360mV/cm)的交变电场中培养的酵母细胞。将酵母细胞培养足够时间，以大幅度提高所述酵母细胞组抑制藻类生长的能力。培养时间例如约为12到450小时(例如256-432小时)。本发明还包括一种组合物，其包含已在频率范围约4440到4470MHz(例如4452-4470MHz)、场强范围约0.5到400mV/cm(例如50-280mV/cm)的交变电场中培养的酵母细胞。将所述酵母细胞培养足够的时间，以大幅度提高所述酵母细胞分解藻类的能力。培养时间例如约为12到600小时(例如320-576小时)。这些组合物中可使用的酵母细胞包括但不限于酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)。例如，酵母细胞可以是菌株酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae Hansen)AS2.408、AS2.414、AS2.416、AS2.422、AS2.453、AS2.486、AS2.558、AS2.562或IFFI1292的细胞。
在一个实施方案中，在所述时间段内，所述交变电场的频率和/或场强可以在上述范围内变化。也就是说，酵母细胞可以被置于一系列电磁场中。
可以用于本发明中的酵母细胞可以从布达佩斯条约承认的保单位-中国普通微生物菌种保藏中心(CGMCC)(中国科学院微生物研究所中国微生物菌种保藏管理委员会，中国北京海淀区2714信箱，邮编100080)获得。
本发明进一步包括一种组合物，其包含多个酵母细胞，其中所述多个酵母细胞已被活化，使它们与未活化的酵母细胞相比，下述能力大幅度增加(1)降解聚合物，(2)降解含氮化合物，(3)降解环境毒素，例如抗生素和其它关注的有机化合物，(4)将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮，(5)将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷，(6)减少恶臭材料的气味，(7)抑制致病微生物的增殖，(8)抑制藻类的生长或分解藻类的残骸。本发明还包括这些组合物的制备方法。含两种或更多的上述组合物的组合物也在本发明的范畴之内。
这里所述的组合物可以用来进行废水处理。根据废水中污染物的种类，可以将两种或更多的这些组合物混合，以获得最佳的水处理效果。为了方便起见，这里将该混合物中的每一种组合物称作一个“酵母组分”。
此处所用的“大幅度提高”意思是超过10倍(例如102，103，104，105或106)的增加。
“培养基”指实验室中用来挑选和培养指定酵母菌株的介质，或需要处理的液体或固体废物。
“聚合物”指由重复的连接的亚单位组成的高分子量有机化合物。聚合物的实例包括但不限于多糖(例如淀粉或纤维素)、木质素、聚乙烯、聚丙烯、聚氯乙烯和聚苯乙烯。
“含氮化合物”指复杂的高分子量含氮化合物，包括但不限于蛋白质、肽、脂类和核酸。
可以被本发明酵母组合物降解的抗生素包括但不限于β内酰胺类，四环素类，多肽类，糖肽类，氨基糖苷类和大环内酯类。抗生素的具体实例是青霉素、金霉素、氯四环素、土霉素、多西环素、四环素、链霉素、卡那霉素、红霉素、螺旋霉素和杆菌肽。可被本发明酵母组合物降解的有机溶剂包括但不限于，三氯甲烷、甲苯、乙苯、对二甲苯、呋喃唑酮、地考喹酯、苯甲醛、丙醛、庚醛、间二氯苯、苯乙酮、对氨苯基胂酸、罗沙胂、十二烷、十九烷、二十八烷、敌百虫、二硝托胺和3，5二硝基邻甲苯酰胺。
“生物可利用的”或“生物可同化的”氮指可以被活生物体为了生存和/或生长而容易地利用、使用或同化的氮。生物可利用或生物可同化氮的实例包括但不限于NH4+、NO3-和NO2-、其它水溶性无机含氮化合物和有机含氮化合物。
“生物可利用”或“生物可同化”磷指可以被活体为了生存和/或生长而容易地利用、使用或同化的磷。生物可利用或生物可同化磷的实例包括但不限于PO43-、HPO42-、H2PO4-、其它水溶性无机含磷化合物和有机含磷化合物。
“减少气味”或“除臭”指使一种或多种气味化合物浓度降低的过程。气味化合物包括但不限于硫化氢、硫化铵、其它含硫化合物、氨、吲哚、甲基吲哚、对甲苯酚、胺类如甲胺、二甲胺和三甲胺，和有气味的有机酸，例如羧酸如甲酸、乙酸、丙酸和丁酸，以及其它挥发性脂肪酸。
“抑制致病微生物的生长”指阻止致病微生物数目增长，或甚至减少其数目。需要了解的是在没有本发明酵母细胞存在时，在一段时间内致病微生物的数目将会自然增长。致病微生物包括但不限于细菌例如属于埃希氏菌属(Escherichia)、沙门氏菌(Salmonella)、志贺氏杆菌(shigella)、分支杆菌(Mycobacterium)、芽胞杆菌(Bacillus)、链球菌(Streptococcus)和双球菌Diplococcus)属的细菌。
“抑制藻类生长”指阻止藻类增殖速度增加，或甚至减慢其增殖速度。“分解藻类”指将藻类的残骸分解为无害的产物。需要了解的是在没有本发明酵母细胞存在时，在一段时间内藻类的数目将会自然增长。藻类包括但不限于绿藻、蓝藻和红藻。
除非另外定义，这里所用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域一般技术人员通常理解的相同意思。下面描述一些方法和材料的例子，但与这里所述方法和材料相似或等同的方法和材料也可以用来实施或试验本发明。此处提及的所有出版物和其它参考文献均以其整体被参考引用。如果有冲突，以本说明书(包括定义)为准。所述材料、方法和实施例仅用于说明，不构成限制。
本发明的其它特征和优点将通过下面的详细描述和权利要求书清楚地显示。
附图简述

图1显示用电磁场活化酵母细胞的示范性装置的示意图。1酵母培养物；2容器；3电源。
发明详细描述本发明基于发现某些酵母菌株可以被具有特定频率和场强的电磁场(“EMF”)活化，在以下方面变得非常有效(1)降解聚合物，例如多糖和塑料，(2)降解含氮化合物，例如蛋白质和核酸，(3)降解环境毒素，例如在饲料和有机农药中使用的某些有毒化学物质，如有机溶剂和抗生素，(4)将培养基中的生物可利用氮转化为细胞内氮(即将它们周围的生物可利用氮吸收为自身的生物质)，(5)将培养基中的生物可利用磷转化为细胞内磷(即将它们周围的生物可利用磷吸收为自身的生物质)，(6)减少恶臭材料的恶臭，(7)抑制致病微生物的增殖，和/或(8)抑制有害藻类的生长，或分解藻类残骸。具有上述八种功能中某一种功能的酵母细胞这里被定义为属于相同“功能”或“功能组”。含这些活化酵母细胞(相同功能，或两种或多种不同功能)的组合物在废物处理特别是污水处理中有用。
虽不拘于任何理论或机制，本发明的发明人认为电磁场活化或加强了酵母细胞的一个或一组基因的表达，从而使该酵母细胞在某些代谢活动方面变得具有活性或更有效，产生相应的所希望的水处理功能。
I.可用于本发明的酵母菌株本发明中可用的酵母种类包括但不限于酵母属(Saccharomyces)、裂殖酵母属(Schizosaccharomyces)、掷孢酵母属(Sporobolomyces)、球拟酵母属(Torulopsis)、丝孢酵母属(Trichosporon)、维克氏酵母属(Wickerhamia)、Ashbya、芽生菌属(Blastomyces)、假丝酵母属(Candida)、固囊酵母属(Citeromyces)、Crebrothecium)、球隐酵母属(Cryptococcus)、德巴利酵母属(Debaryomyces)、拟内孢霉属(Endomycopsis)、假囊酵母属(Eremothecium)、地霉属(Geotrichum)、汉逊酵母属(Hansenula)、克勒克酵母属(Kloeckera)、油脂酵母属(Lipomyces)、毕赤酵母属(Pichia)、红冬孢酵母属(Rhodosporidium)和红酵母属的酵母。
以上属中的酵母种例如包括但不限于酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、拜耳酵母(Saccharomyces bailii)、卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)、薛瓦酵母(Saccharomyceschevalieri)、Saccharomyces delbrueckii、少孢酵母(Saccharomycesexiguus)、发酵性酵母(Saccharomyces fermentati)、Saccharomyceslogos、蜂蜜酵母(Saccharomyces mellis)、Saccharomycesmicroellipsoides、卵形酵母(Saccharomyces oviformis)、罗氏酵母(Saccharomyces rosei)、鲁氏酵母(Saccharomyces rouxii)、清酒酵母(Saccharomyces sake)、葡萄汁酵母(Saccharomyces uvarum)、魏氏酵母(Saccharomyces willianus)、酵母种(Saccharomyces sp.)、路氏酵母(Saccharomyces ludwigii)、Saccharomyces sinenses、拜耳酵母(Saccharomyces bailii)、卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)、八孢裂殖酵母(Schizosaccharomyces octosporus)、栗酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)、玫瑰色掷孢酵母(Sporobolomycesroseus)、赭色掷孢酵母(Sporobolomyces salmonicolor)、白球拟酵母(Torulopsis candida)、Torulopsis famta、Torulopsis globosa、Torulopsisinconspicua、Trichosporon behrendoo、头状丝孢酵母(Trichosporoncapitatum)、Trichosporon cutaneum、维克氏酵母(Wickerhamiafluoresens)、Ashbya gossypii、皮炎芽生菌(Blastomyces dermatitidis)、白假丝酵母(Candida albicans)、阿保利假丝酵母(Candida arborea)、季也蒙假丝酵母(Candida guilliermondii)、克柔假丝酵母(Candidakrusei)、兰姆啤酒假丝酵母(Candida lambica)、解脂假丝酵母(Candidalipolytica)、Candida parakrusei、近平滑假丝酵母(Candidaparapsilosis)、假热带假丝酵母(Candida pseudotropicalis)、美极假丝酵母(Candida pulcherrima)、Candida robusta、Candida rugousa、热带假丝酵母(Candida tropicalis)、产朊假丝酵母(Candida utilis)、马特立坦固囊酵母(Citeromyces matritensis)、Crebrothecium ashbyii、罗伦隐球酵母(Cryptococcus laurentii)、新型隐球酵母(Cryptococcusneoformans)、汉逊德巴利酵母(Debaryomyces hansenii)、Debaryomyces kloeckeri、德巴利酵母种(Debaryomyces sp.)、扣囊拟内孢霉(Endomycopsis fibuligera)、阿舒假囊酵母(Eremotheciumashbyii)、白地霉(Geotrichum candidum)、Geotrichum ludwigii、Geotrichum robustum、Geotrichum suaveolens、异常汉逊酵母(Hansenula anomala)、Hansenula arabitolgens、Hansenula.jadinii、土星汉逊酵母(Hansenula saturnus)、Hansenula schneggii、Hansenulasubpelliculosa、柠檬形克勒克酵母(Kloeckera apiculata)、油脂酵母(Lipomyces starkeyi)、粉状毕赤酵母(Pichia farinosa)、膜醭毕赤酵母(Pichia membranaefaciens)、Rhodosporidium toruloides、Rhodotorulaaurantiaca、粘红酵母(Rhodotorula glutinis、小红酵母(Rhodotorulaminuta)、深红酵母(Rhodotorula rubar，)、和Rhodotorula sinesis。
本发明中可用的酵母菌株可以从实验室培养物或公共菌种保藏中心例如CGMCC和美国典型培养物保藏中心(马纳萨斯，大学路10701号，邮编20110-2209)获得。
对于降解聚合物例如多糖和塑料，可用菌株的非限制性实例(CGMCC保藏登记号)是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiaeHansen)AS2.11、AS2.53、AS2.56、AS2.70、AS2.98、AS2.101、AS2.168、AS2.374、AS2.406、AS2.409、AS2.430、AS2.453、AS2.463、AS2.467、AS2.502、AS2.516、AS2.536、AS2.541和IFFI1331；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.443和AS2.459；和Hansenulasubpelliculosa Bedford AS2.738和AS2.740。
对于降解含氮化合物例如蛋白质和核酸，本发明可用的酵母菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.93、AS2.98、AS2.152、AS2.423、AS2.452、AS2.458、AS2.502、AS2.535和AS2.561；和卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.440和AS2.595。
对于降解环境毒素，如某些有毒化学品，例如有机溶剂、抗生素、农药和杀虫剂，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)AS2.4、AS2.14、AS2.416、AS2.430、AS2.593、IFFI1002、IFFI1006、IFFI1043、IFFI1045、1FFI1048、IFFI1063、IFFI1059、IFFI1206、IFFI1209、IFFI1210、IFFI1211、IFFI1213、IFFI1215、IFFI1220、IFFI1221、IFFI1224、IFFI1248、IFFI1270、IFFI1290、IFFI1291、IFFI1293、IFFI1297、IFFI1301、IFFI1302、IFFI1310、IFFI1311、IFFI1331、IFFI1335、IFFI1336、IFFI1338、IFFI1339、IFFI1340、IFFI1345、IFFI1396、IFFI1399、IFFI1411和IFFI1413；魏氏酵母(Saccharomyces willianus Saccardo)AS2.293；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.377和AS2.444；鲁氏酵母(Saccharomyces rouxii)AS2.178；和产朊假丝酵母(Candida utilis)AS2.120。
对于将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)AS2.196、AS2.336、AS2.400、AS2.416、AS2.423和AS2.982；魏氏酵母(Saccharomyceswillianus Saccardo)AS2.152和AS2.614；热带假丝酵母(Candidatropicalis)AS2.1387；和白地霉(Geotrichum candidum)AS2.498。
对于将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.346、AS2.423、AS2.430、AS2.451、AS2.558、AS2.620、AS2.628和IFFI1203；和卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis)AS2.189。
对于去除恶臭材料的恶臭，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.53、AS2.163、AS2.396、AS2.397、AS2.423、AS2.452、AS2.502、AS2.516、AS2.541、AS2.558、AS2.559、AS2.560、AS2.561、AS2.562、AS2.607、AS2.612、IFFI1052、IFFI1202、IFFI1213、IFFI1247和IFFI1397；和卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis Hansen)AS2.605。
对于抑制致病微生物增殖，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)ACCC2034、ACCC2043、AS2.70、AS2.369、AS2.408、AS2.451、AS2.562、AS2.607、IFFI1021、IFFI1037、IFFI1211、IFFI1221、IFFI1251、IFFI1301、IFFI1307、IFFI1308、IFFI1331和IFFI1345；卡氏酵母(Saccharomyces carlsbergensis Hansen)AS2.200；葡萄汁酵母(Saccharomyces uvarum Beiier)IFFI1023、IFFI1032和IFFI1205；魏氏酵母(Saccharomyces willianus Saccardo)AS2.119和AS2.152。
对于抑制有害藻类生长或分解藻类残骸，可用菌株的非限制性实例是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.408、AS2.414、AS2.416、AS2.422、AS2.453、AS2.486、AS2.558、AS2.562和IFFI1292。
虽然优选使用纯菌株，但对于每种水处理功能，本发明酵母组合物并不限于以纯酵母菌株开始制备。具有特定水处理功能的酵母组合物可以通过培养属于不同种或菌株的具有相同水处理功能的酵母细胞混合物而获得。任何酵母种或菌株发挥这些所需功能的能力可以通过本领域已知方法容易地测试。也见下文的讨论。
已知某些可按本发明活化的酵母种对人和/或其它活生物体具有致病性。这些酵母种包括，例如Ashbya gossypii、皮炎芽生菌(Blastomyces dermatitidis)、白假丝酵母(Candida albicans)、Candidaparakrusei、热带假丝酵母(Candida tropicalis)、马特立坦固囊酵母(Citeromyces matritensis)、Crebrothecium ashbyii、罗伦隐球菌(Cryptococcus laurentii)、新型隐球酵母(Cryptococcus neoformans)、汉逊德巴利酵母(Debaryomyces hansenii)、Debaryomyces kloeckeri、德巴利酵母菌株(Debaryomyces sp.)和扣囊拟内孢霉(Endomycopsisfibuligera)。在某些情况下，本发明不优选使用这样的致病酵母。如果使用这些菌种是必要的，应引起注意的是尽量减少将该酵母细胞泄漏到将进入环境的最终处理产物中。
II.电磁场的应用本发明中可使用的电磁场可以通过本领域熟知的各种方法产生和应用。例如，可以通过应用交变电场和振荡磁场产生电磁场。
交变电场可以通过电极与培养基直接接触或电磁感应作用于细胞培养物。见例如图1。培养基中的相对高电场可以通过电极与培养基接触的方法产生。必须注意防止电极处电解将不希望出现的离子引入培养物中，还要防止接触电阻、气泡或其它电解特征将电场水平降至低于所需水平。电极应与其环境相匹配，例如，在富于氯离子的溶液中使用Ag-AgCl电极，并尽可能在低电压下使用。综合性的回顾见Goodman et al.，Effects of EMF on Molecules and Cells，InternationalReview of Cytology，A Survey of Cell Biology，Vol.158，Academic Press，1995。
本发明中可使用的电磁场还可以通过应用振荡磁场产生。振荡磁场可以通过流经赫尔姆霍茨线圈的振荡电流产生。该磁场反过来又产生电场。
本发明中可使用的电磁场的频率范围从5MHz到10000MHz。本发明可使用的电场的场强范围从约0.1到400mV/cm。每一种水处理功能优选的频率和场强的范围见下文的描述。
当一组电磁场应用于酵母培养物时，酵母培养物可以保持在于同一个容器中，同时，使用同一组电磁场发生器和发射器来改变频率和/或场强。该组中每个电磁场可以有不同频率或不同场强；或不同频率和不同场强。这些频率和场强优选的在上述范围内。在一个实施方案中，该组开始的电磁场具有与随后电磁场相同或较低的场强，这样酵母细胞培养物就被置于场强逐渐增加的电磁场中。虽然一组中应用的电磁场数量可以是任意的，但优选将酵母培养物置于一组总数为2、3、4、5、6、7、8、9或10个电磁场中。
图1显示了一个产生交变电场的示范设备。能够产生频率范围为5到10,000MHz、优选正弦波形式交变电场的交流电源(3)产生具有所需频率和强度的电场。也可以使用能够产生较窄频率范围信号的信号发生器。如果需要，可以用信号放大器来增强输出。交变电场可以通过多种方法应用于培养物，包括将酵母培养物紧靠信号发生器放置。在一个实施方案中，由浸没于培养物(1)中的电极施加电场。该实施方案中，一个电极可以是置于容器(2)底部的金属板，另一个电极可以含一组均匀分布于培养物(1)中的电极线，使电场的能量均匀分布。所用电极线的数目取决于培养物的体积和线的直径。在一个优选的实施方案中，对于体积为5000ml的培养物，每100ml培养物可以使用一个直径为0.1到1.2mm的电极线。对于体积超过1000L的培养物，每1000L培养物可以使用一个直径为3到30mm的电极线。
1.降解聚合物用于降解聚合物的电磁场的频率范围为5MHz到5000MHz，例如从4230MHz到4260MHz。示范频率为4240、4241、4242、4243、4244、4245、4246、4247、4248、4249、4250、4251、4252、4253、4254、4255、4256、4257、4258、4259和4260MHz。可用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5mV/cm到360mV/cm，例如从约50到360mV/cm(例如80-320、80-300、60-270、90-320、70-350或60-260mV/cm)。示范性场强为78、82、87、90、95、108、110、240、245、250、280和300mV/cm。
作为例子，酵母细胞可以在第一组交变电场中培养，每个电场的频率在4240到4260MHz的范围、场强在50到360mV/cm的范围。酵母细胞置于每个电磁场约10到30小时。第一组培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共20到140小时。优选的，第二组交变电场的频率可以与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在510到360mV/cm范围内的更高的水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共220-360、190-370、160-280、140-280、222-382、220-380或230-380小时。
2.降解含氮化合物用于降解含氮化合物的电磁场的频率范围为10MHz到10，000MHz，例如从5520MHz到5540MHz(如5521到5538MHz)。示范频率为5521、5522、5523、5524、5525、5526、5527、5528、5529、5530、5531、5532、5533、5534、5535、5536、5537、5538、5539和5540MHz。用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到360mV/cm，例如从90-360mV/cm或120-340mV/cm。示范性场强是125、148、326和350mV/cm。
作为例子，酵母细胞可以在第一组各自电场频率在5521到5538MHz范围内、场强在90到360mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约25小时。第一组培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共30到128小时。优选的，第二组交变电场的频率可以与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在90到360mV/cm范围内的更高的水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共228-424或208-320小时。
3.降解环境毒素用于降解环境毒素的电磁场的频率范围为5MHz到1000MHz，例如70-100、126-142、52-70、30-50、200-220、213-229、133-151、145-162、156-176、163-183、175-191、183-205、114-128、244-264、252-278或220-250MHz。示范频率为70、72、74、76、78、80、82、84、86、88、90、92、94、96、98或100MHz。用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到350mV/cm，例如从约20-320mV/cm(例如30-220、30-230、30-250、90-280、80-280、100-200、110-280、100-220、116-225、120-280、90-190、100-190、160-300、120-300、200-300或130-310mV/cm)。示范性场强是48、89、93、 98、103、107、110、112、124、126、130、133、138、168、200、202、213、219和274mV/cm。
作为例子，酵母细胞可以在第一组各自频率在70到100MHz范围内、场强在20到320mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约10到25小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共30到120小时。优选的，第二组交变电场的频率可以与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在20到320mV/cm范围内的更高的水平。
或者，酵母细胞可以在一组各自频率在70到100MHz范围内、场强在20到320mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约20到40小时。优选的，该组的场强保持一致，而频率逐渐增加。
在另一个实施方案中，酵母细胞可以在第一组各自频率在126-142、52-70、30-50、200-220、213-229、133-151、145-162、156-176、163-183、175-191、183-205、114-128、244-264、252-278或220-250MHz范围内，场强在90-280、80-280、120-280、100-200、110-280、100-220、116-225、90-190、100-190、160-300、120-300、200-300或130-310mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约10到25小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共30到120小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率相等，而第二组的场强增加至上述范围内更高的水平。或者，酵母细胞可以在一组交变电场中培养，每个电场的频率在126-142、52-70、30-50、200-220、213-229、133-151、145-162、156-176、163-183、175-191、183-205、114-128、244-264、252-278或220-250MHz范围内，场强在90-280、80-280、120-280、100-200、110-280、100-220、116-225、90-190、100-190、160-300、120-300、200-300或130-310mV/cm。酵母细胞置于每个电磁场约20到40小时。优选的，该组的场强保持一致，而频率逐渐增加。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共180-328、114-244、80-380、80-365、120-350、90-330、130-330、100-280、110-330、130-290、80-290、110-360或110-340小时。
4.将培养基中的生物可利用氮转化为细胞内氮用于将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的电磁场的频率范围约为5MHz到5000MHz，例如从约600到700MHz(例如660到680MHz)或2160到2190MHz(例如2170到2185MHz)。示范频率为662、664、666、668、670、672、674、676、678、2170、2171、2172、2173、2174、2175、2176、2177、2178、2179、2180、2181、2182、2183、2184和2185MHz。用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.1到350mV/cm，例如100-350mV/cm(例如140-320或120-290mV/cm)。示范场强为126、152、196和310mV/cm。
作为例子，酵母细胞可以在第一组各自频率在660到680MHz范围内、场强在100到350mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约18到25小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共25到130小时。优选的，第二组交变电场的频率可以与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在100到350mV/cm范围内的更高水平。
在另一个实施方案中，酵母细胞可以在第一组各自频率在2170到2185MHz范围内、场强在140到320mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约18到25小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共25到130小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率依次相等，而第二组的场强增加至在140到320mV/cm范围内的更高水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共192-304或226-412小时。
5.将培养基中的生物可利用磷转化为细胞内磷可用于将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的电磁场的频率范围约为5到5000MHz，例如从80到440MHz(例如80-120MHz或410-430MHz)。示范频率为86、88、90、92、94、96、98、100、102、104、106、108、110、112、114、116、118、120、410、411、412、413、414、415、416、417、418、419、420、421、422、423、424、425、426、427、428、429和430MHz。可用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到350mV/cm，例如从约60到260mV/cm。示范性场强为68和240mV/cm。
例如，酵母细胞可以在第一组各自频率在86到120MHz范围内、场强在60到260mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约24小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共24到132小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在60到260mV/cm范围内的更高水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共228-368小时。
6.减少气味可用于减少气味的电磁场的频率范围为5到5000MHz，例如从2160MHz到2380MHz(例如2160-2250MHz或2280-2380MHz)。示范性频率为2160、2165、2170、2175、2180、2185、2190、2195、2200、2205、2210、2215、2220、2225、2230、2235、2240、2245、2250、2280、2285、2290、2295、2300、2305、2310、2315、2320、2325、2330、2335、2340、2345、2350、2355、2360、2365、2370、2375和2380MHz。
可用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到320mV/cm，例如从30到310mV/cm(例如40-260、70-260、80-250、90-260或140-300)。示范性场强为98、240、250和290mV/cm。
例如，酵母细胞可以在一组各自频率在2160到2250MHz或2280到2380MHz范围内、场强在30到310mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约10到40小时。优选的，组内场强保持一致，而频率逐渐增加。
或者，酵母细胞可以在第一组各自频率在2280到2380MHz范围内、场强在90到260mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约15到20小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共20到50小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至在90到260mV/cm范围内的更高水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共70-220、70-320、80-310、85-220、110-230或120-300小时。
7.抑制致病微生物的生长可用于抑制致病微生物生长的电磁场的频率范围为30MHz到50MHz。示范频率为30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49和50MHz。可用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到200mV/cm，例如从10到180mV/cm。示范性场强为26和150mV/cm。
例如，酵母细胞可以在第一组各自频率在30到50MHz、场强在10到180mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约12小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在基本相同的条件下在第二组交变电场中进一步培育共24到96小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至10到180mV/cm范围内的更高水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共144-272小时。
8.抑制藻类生长或分解藻类残骸可用于抑制藻类生长的电磁场的频率范围约为10到10,000MHz，例如从约6340MHz到6380MHz(例如6352-6370MHz)。示范性频率为6352、6353、6354、6355、6356、6357、6358、6359、6360、6361、6362、6363、6364、6365、6366、6367、6368、6369和6370MHz。可用于这种水处理功能的电场场强范围约为0.5到400mV/cm，例如从约60到380mV/cm(例如70到310，100到330或120到360mV/cm)。示范性场强为85、112、136、250、290和337mV/cm。
在另一个实施方案中，本发明可用的电磁场的频率在从约4440到4470MHz(例如4452-4470MHz)范围内。示范性频率为4452、4453、4454、4455、4456、4457、4458、4459、4460、4461、4462、4463、4464、4465、4466、4467、4468、4469和4470MHz。本发明可用的电场场强从约0.5到400mV/cm范围内，例如从约50到280mV/cm。示范场强为127和268mV/cm。
例如，酵母细胞可以在第一组各自频率在6352到6370MHz范围内、场强在60到380mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约24小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共56到160小时。优选的，第二组交变电场的频率可以与第一组电场的频率依次相等，第二组的场强增加至60到380mV/cm范围内的更高水平。
在另一个实施方案中，酵母细胞可以在第一组各自频率在4452到4470MHz范围内，场强在50到280mV/cm范围内的交变电场中培养。酵母细胞置于每个电磁场约32小时。在第一组电磁场中培养后，将获得的酵母细胞在第二组交变电场中进一步培育共32到192小时。优选的，第二组交变电场的频率与第一组电场的频率依次相等，而第二组的场强增加至在50到280mV/cm范围内的更高水平。
虽然酵母细胞在电磁场存在下甚至培养几个小时就可以被活化，优选的，应使活化的酵母细胞在电磁场存在下繁殖和生长共256-432小时。
III.培养基本发明可使用的培养基含有可以被酵母细胞吸收的营养源。本发明中，培养基指实验室培养基，或需要处理的液体或固体废物。适当形式的复杂含碳物质例如碳水化合物(例如蔗糖、葡萄糖、果糖、右旋糖、麦芽糖、木糖、纤维素、淀粉等)和煤，可以是酵母细胞的碳源。培养基中使用的碳源的准确数量可以根据培养基的其它成分来调整。通常，碳水化合物的量在培养基重量的约0.1％到5％(重量)之间，优选的在约0.1％到2％(重量)之间，最优选的约1％。这些碳源可以单独或联合使用。在可以加入培养基的无机盐中，有通常可以提供钠、钾、钙、磷酸根、硫酸根、碳酸根等离子的盐类。营养性无机盐的非限制性实例为(NH4)2HPO4、KH2PO4、K2HPO4、CaCO3、MgSO4、KNO3、NaCI和CaSO4。
IV.酵母细胞的电磁活化1.以降解聚合物能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以将复杂的高分子量有机聚合物转化为简单分子，例如戊糖和己糖。当水处理组合物含有多个功能组的酵母细胞时，Ca酵母产生的简单分子就可以被其它功能组的酵母利用，例如作为营养。在此，具有这种降解能力的酵母被称为“Ca酵母”。可以被这些Ca酵母降解的有机聚合物包括但不限于多糖(例如纤维素和半纤维素)、脂肪酸、木质素、聚乙烯、聚丙烯、聚氯乙烯和聚苯乙烯。
为了活化或加强酵母细胞降解聚合物的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃(例如28℃)、在如第II节(1)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-400小时(例如220-360、190-370、160-280、140-280、222-382、220-380或230-380小时)。图1描绘了培养过程的一个示范装置。一种示范性的培养基每1000ml无菌水中含下列成分3g木质素(不小于120μm)、3g纤维素(不小于120目)、5g原油污染的水、0.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、0.5g CaCO3·5H2O、0.2g CaSO4·2H2O和0.5gK2HPO4。
随后，可以用标准方法测量酵母细胞降解聚合物例如多糖的能力。在一个实施方案中，将1ml制备的酵母培养物接种于30ml适宜的培养基中。培养物在室温下培育24-72小时。培养物中简单碳水化合物的量可以通过本领域已知的任何方法检测，这些方法包括但不限于层析法。优选的，对于每克酵母干重，培养物中简单碳水化合物的量增加至少10mg。
在另一个实施方案中，化学需氧量(“COD”)水平不小于50,000mg/L、一般含木质素、纤维素和多糖的造纸厂木质纸浆作为底物使用。具体的，将木质纸浆稀释至下述COD浓度(1)100-1,000mg/L；(2)1,000-5,000mg/L；(3)5,000-10,000mg/l；(4)10,000-50,000mg/L。然后将干酵母细胞制剂以0.2-0.5g/L的浓度接种于木质纸浆溶液中，在10-40℃培养24-120小时。然后用标准技术测量溶液的COD水平。24-120小时前后的COD水平的差异显示酵母细胞降解碳水化合物的活性。其它检测活化细胞聚合物降解能力的方法将在下面的实施例中加以描述。
2.以降解含氮化合物的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以将复杂的含氮化合物(例如蛋白质、肽和核酸)降解为简单分子。这些简单分子可以被其它酵母细胞利用来维持它们的生长与活动。在此，具有这种降解能力的酵母被称为“Ni酵母”。可以被这些酵母降解的含氮化合物包括但不限于蛋白质、肽、脂类和核酸。
为了活化或加强酵母细胞降解含氮化合物的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃(例如28℃)、在如第II节(2)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-450小时(例如228-424或208-320小时)。图1描绘了培养过程的一个示范装置。一种示范性的培养基每1000ml无菌水中含12g可溶淀粉，1.2g of 牛肉蛋白质，1.2g of 卵磷脂，1.2g NaCl、0.2gMgSO4·7H2O、3g CaCO3·5H2O、0.3g CaSO4·2H2O、和0.2g K2HPO4。
随后，可以用标准方法测量酵母细胞降解含氮化合物的能力。在一个示范性方法中，牛肉蛋白质和植物蛋白质作为酵母细胞的底物使用。将蛋白质加入无菌水中获得具有下列COD浓度的溶液(1)100-1,000mg/L；(2)1,000-5,000mg/L；(3)5,000-10,000mg/l；(4)10,000-50,000mg/L。然后将干酵母细胞制剂以0.3-0.5g/L的浓度接种于蛋白质溶液中，在10-40℃培养24-72小时。然后用标准技术测量溶液的COD水平。24-72小时前后的COD水平的差异显示酵母细胞的降解含氮化合物的能力。其它检测活化酵母细胞降解含氮化合物能力的方法将在下面的实施例中加以描述。
3.以降解环境毒素的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以将环境有害毒素，例如化学品化合物如化肥、有机溶剂、去诟剂和抗生素，降解为无毒的简单分子。在此，这种酵母被称为“Ch酵母”。这些组合物降解分子量为180到28,000道尔顿的化合物最为有效。
为了活化或加强酵母细胞降解环境毒素的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃(例如28℃)、在如第II节(3)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-400小时(例如180-328、114-244、80-380、80-365、120-350、90-330、130-330、100-280、110-330、130-290、80-290、110-360、或110-340小时)。
一种示范性的培养基每400ml无菌水含8g污泥、0.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、0.5g CaCO3·5H2O、0.2g CaSO4·2H2O、0.5gK2HPO4、1.5g蛋白胨和600ml污泥提取物。如下制备污泥提取物500g已知被有害化学品污染的污泥与600ml无菌水混合并在30-37℃培养24小时。然后将污泥混合物过滤获得污泥提取物。随后，用标准方法测量酵母细胞降解多种化学品的能力。
4.以将培养基中的生物可利用氮转化为细胞内氮的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以将将培养基例如废水中的生物可利用或可吸收氮转化为它们自身的生物质，即细胞内氮。在此，这种酵母被称为“N-C酵母”。可以被这些酵母转化的生物可利用氮包括但不限于NH4+、NO3-和NO2-，其它水溶性含氮无机化合物和含氮有机化合物。废水中的生物可利用氮引起世界范围水体的不希望的富营养化。
为了活化或加强酵母细胞将培养基中的生物可利用氮转化为细胞内氮的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃(例如28℃)、在如第II节(4)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-420小时(例如192-304或226-412小时)。一种示范性的培养基每1000ml无菌水含12g蔗糖、4gNH4NO2、0.25g NaCI、0.25g MgSO4·7H2O、3.5g CaCO3·5H2O、0.5gCaSO4·2H2O和0.2g K2HPO4。
随后，用标准方法测量酵母细胞将可利用氮转化为细胞内氮的能力。在一个示范方法中，含高水平铵盐和/或硝酸盐或亚硝酸盐的氮肥制造厂的废水与蒸馏水混合得到下述COD浓度(1)100-1,000mg/L；(2)1,000-5,000mg/L；(3)5,000-10,000mg/l；和(4)10,000-50,000mg/L。然后将干酵母细胞制剂以0.2-0.6g/L的浓度接种于该溶液中，在10-40℃培养24-48小时。然后用标准技术测量溶液的COD水平。24-48小时前后的COD水平的差异显示酵母细胞的氮转化能力。另一种检测培养基中氮化合物水平的方法将在下面的实施例中加以描述。
5.以将培养基中的生物可利用磷转化为细胞内磷的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以将培养基例如废水中的生物可利用或可吸收磷转化为它们自身的生物质，即细胞内磷。在此，这种酵母被称为“P-C酵母”。可以被这些酵母转化的生物可利用磷包括但不限于PO43-、H3PO4、HPO42-、H2PO4-，其它水溶性含磷无机化合物和含磷有机化合物。废水中的生物可利用磷引起世界范围水体的不希望的富营养化。
为了活化或加强酵母细胞将生物可利用磷转化为细胞内磷的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃例如28℃、在如第II节(5)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-400小时(例如228-368小时)。一种示范性培养基每1000ml无菌水含10g蔗糖、3g(NH4)H2PO4(或其它生物可利用磷)、1.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、3g CaCO3·5H2O、0.3gCaSO4·2H2O、0.3g KNO3和0.5g酵母提取物。
随后，用标准方法，例如使用紫外线分光光度测定法或化学需氧量(“COD”)方法，测量酵母细胞将生物可利用磷转化为细胞内磷的能力。在一个示范性方法中，含高水平HPO42-、H2PO4-和/或H3PO4的磷肥制造厂的废水与蒸馏水混合得到下述COD浓度(1)100-1,000mg/L；(2)1,000-5,000mg/L；(3)5,000-10,000mg/l；和(4)10,000-50,000mg/L。然后将干酵母细胞制剂以0.2-0.6g/L的浓度接种于溶液中，在10-40℃培养24-48小时。然后用标准技术测量溶液的COD水平。24-48小时前后的COD水平的差异显示酵母细胞的磷转化能力。另一种检测活化细胞磷转化能力的方法将在下面的实施例中加以描述。
6.以减少气味的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以通过降低恶臭物质的浓度来减少气味。在此，这些酵母被称为“O”酵母。恶臭物质包括但不限于硫化氢、硫化铵、其它含硫化合物、氨、吲哚、甲基吲哚、对甲苯酚、胺类如甲胺、二甲胺和三甲胺，和有气味的有机酸，例如羧酸如甲酸、乙酸、丙酸和丁酸，以及其它挥发性脂肪酸。
为了活化或加强酵母细胞减少气味的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃例如28℃、在如第II节(6)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-350小时(例如70-220、70-320、80-310、85-220、110-230或120-300小时)。
一种示范性的培养基每1000ml污水(含恶臭物质)含0.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、0.5g CaCO3·5H2O、0.2g CaSO4·2H2O和0.5gK2HPO4。
随后测量酵母细胞减少气味的能力。已知多种方法和技术可以测量气味的强度，包括但不限于气相色谱法、HPLC(高压液相色谱法)和质谱分析法。恶臭物质气味强度的减少还可以主观地检测。一种气味强度的主观测量法是测量使气味达到人或动物实验对象难以觉察程度所必要的稀释度。任何客观或主观测量气味强度的方法和技术，都可以用来监控酵母组合物减少气味的能力。
在一个示范性方法中，含2g/L甲胺/二甲胺/三甲胺、1g/L吲哚、2g/L对甲苯酚、1g/L硫化氢、2g/L乙酸和/或1g/L氨的污水作为底物。将干酵母细胞制剂以0.2-0.6g/L的浓度接种于污水中，在10-35℃培养24小时。用气相色谱法测量恶臭化学品的水平。24小时前后上述恶臭组分水平的差异显示酵母细胞减少气味的能力。
7.以抑制致病微生物生长的能力大幅度增长为特点的酵母菌株本发明某些活化的酵母可以抑制致病微生物的自然增殖。在此，这样的酵母被称为“Pa酵母”。通常，存在充足营养时，经过一段时间致病微生物的数目将自然增加。这些致病微生物包括但不限于细菌，例如属于埃希氏菌属、沙门氏菌属、志贺氏杆菌属、分支杆菌属、葡萄球菌属、芽胞杆菌属、链球菌属和双球菌属的细菌。
为了活化或加强酵母细胞抑制致病微生物生长的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃例如28℃、在如第II节(7)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-300小时(例如144-272小时)。
一种示范性的培养基是通过将400ml无菌水、8g可溶淀粉、5g蔗糖、0.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、0.5g CaCO3·5H2O、0.2gCaSO4·2H2O、0.5g K2HPO4、1.5g蛋白胨和600ml含致病微生物的污泥提取物混合而制备。
随后通过本领域已知计数微生物的标准方法，例如光密度法、固体介质平板接种稀释计数法、或在显微镜下计数单个细胞的方法，测量酵母细胞抑制致病微生物生长的能力。可以应用染色来区分或确定样本中不同的微生物菌株或种属，或确定它们的生活性。
在一个示范性方法中，含超过109细胞/ml格兰氏阳性大肠杆菌、109细胞/ml沙门氏菌、和108细胞/ml志贺氏杆菌的污水作为底物。将干酵母细胞制剂以0.3-0.6g/L的浓度接种于污水中，在10-40℃培养24小时。24小时前后上述活细菌数目的差异显示酵母细胞的病原体抑制能力。
8.以抑制藻类生长或分解藻类残骸的能力大幅度增长为特点的酵母菌株富营养化引起有害藻类的过度生长，严重的降低了水中溶解氧的水平，反过来影响了水生态系统。此外，这些藻类的残骸沉积在氧气水平低的泥沙中，因此不能被自然微生物有效分解。不分解的藻类残骸为藻类的进一步生长提供了营养，形成藻类污染的恶性循环。本发明某些活化的酵母可以通过抑制藻类的增殖和/或通过分解藻类残骸来阻止或减少这种污染。在此，这样的酵母被称为“Al酵母”。本发明的藻类包括但不限于绿藻、蓝藻和红藻。
为了活化或加强酵母细胞抑制藻类生长或分解藻类残骸的固有能力，这些细胞可以在适宜的培养基中、无菌条件下、25℃-30℃例如28℃、在如第II节(8)所述的交变电场或一组交变电场中培养足够的时间，例如12-450小时(例如256-432小时)。
一种示范性的培养基是通过将1000ml蒸馏水、6g干燥的藻类残骸、0.2g NaCl、0.2g MgSO4·7H2O、0.5g CaCO3·5H2O、0.2gCaSO4·2H2O和0.5g K2HPO4混合而制备。通过含大量蓝藻和绿藻的地表水(例如池塘水)在1000g离心20分钟制备干燥的藻类残骸。
随后用本领域已知的标准方法，例如计数单个细胞，测量酵母细胞抑制藻类生长的或分解藻类残骸的能力。在一个示范性方法中，将干酵母细胞制剂以0.2-0.6g/L的浓度接种于含超过1010活蓝藻细胞/ml和1010活绿藻细胞/ml的地表水(例如河、池塘或湖水)中，在15-42℃培养24-72小时。24-72小时前后上述活藻类数目的差异显示酵母细胞藻类抑制或分解藻类的能力。
优选的，本发明酵母细胞的培养过程在溶解氧浓度为0.025到0.8mol/m3之间的条件下进行，优选的0.4mol/m3。氧气水平可以通过例如搅拌和/或发泡来控制。
与上述基本相同的方案可以用来培养八种水处理功能的活化酵母细胞。培养过程开始时，每100ml培养基以102-106细胞/ml、优选的105-106细胞/ml、最优选的3×105细胞/ml的密度接种活化的酵母细胞。培养过程在约20-40℃、优选的25-28℃进行48-96小时。该过程的规模可以根据需要按比例增减。对于工业规模生产，将酵母细胞接种于75升无菌水中。该培养基含10L上述该特定酵母功能组的培养基、30kg淀粉和65L蒸馏水。在培养过程结束时，酵母细胞优选达到2×1010细胞/ml浓度。培养物中的细胞可以通过本领域已知的多种方法回收，并储存于约15-20℃。酵母应在24小时内被干燥，并以粉末的形式保存。
V.酵母细胞适应废物环境在本发明另一个实施方案中，活化的酵母细胞还可以在一定条件下培养，使得细胞适应特定类型的废物。这个过程可以被分别施于每个酵母细胞组分或酵母细胞组分的混合物。该适应过程使酵母在特定废物环境中更好的生长和存活。
为达到这个目的，具有特定功能的酵母细胞与特定来源的废物以每1000ml 106-108个细胞(如107个细胞)混合。然后将酵母细胞置于具有上述第II和IV节所述该功能特定频率的交变电场中。电场的场强可以是约100到400mV/cm(例如120-250mV/cm)。在约5℃到约45℃之间以5℃增量循环的温度下培育培养物。例如，在一个典型循环中，培养物的温度可以从5℃开始，保持该温度约1-2小时，然后调至10℃并保持该温度1-2小时，然后调至15℃并保持该温度约1-2小时等等，直到温度达到45℃。然后将温度降低至40℃并保持该温度约1-2小时，然后降至35℃并保持该温度约1-2小时等，直到温度恢复到5℃。循环重复约48-96小时。然后将得到的酵母细胞干燥并储存于0-4℃。
VI.废物处理组合物的制造本发明具有相同或不同水处理功能的酵母细胞，可以与合适的填充物例如岩石粉末和煤灰按下述比例混合600L 2×1010细胞/ml的混合酵母细胞培养物与760kg填充物。在干燥器中低于65℃的温度下将混合物迅速干燥10分钟，然后在低于70℃的温度下进一步干燥不超过30分钟，使水含量小于7％。将干燥的组合物冷却至室温以包装。
这些干燥的酵母组合物可以用来处理污染的地表水、污水或任何其它种类的液体或固体废物。例如，为了处理污染的地表水，向30L洁净水中加入1kg干燥的酵母组合物制备酵母溶液。向污染的地表水喷洒酵母溶液，每平方米污染的地表水约1-3L酵母溶液。为了处理污水或任何其它种类的废水，向10-30L洁净水中加入约1kg干燥的酵母组合物。酵母溶液在10-35℃培育24-48小时。按每升废水约3-20L溶液，将所得酵母溶液加入废水中。
VII.实施例下列实施例用来说明本发明的方法和材料。对所述条件和参数进行适当改进和调整对本领域技术人员来说是显而易见的，并属于本发明的实质和范畴内。
实施例1降解木质素酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.502细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4234MHz、场强为95mV/cm的交变电场中培养10小时；(2)然后在频率为4246MHz、场强为95mV/cm的交变电场中培养10小时；(3)然后在频率为4253MHz、场强为95mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)然后在频率为4256MHz、场强为95mV/cm的交变电场中培养30小时；(5)然后在频率为4243MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养20小时；(6)然后在频率为4246MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养20小时；(7)然后在频率为4253MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养50小时；和(8)最后在频率为4256MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养50小时。
为了检测培养细胞的木质素降解能力，向含大量木质素的工业废水中补充额外的木质素形成含200mg/L木质素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.502细胞加入100L木质素溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.502细胞的木质素溶液(溶液B)或不含细胞的木质素溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD(化学需氧量)水平。或者，用HPLC(高效液体色谱)检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的木质素浓度与溶液C相比降低了12％以上。相反，溶液B的木质素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例2降解纤维素酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.516在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4243MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为4248MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为4253MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养25小时；(4)然后在频率为4258MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养25小时；(5)然后在频率为4243MHz、场强为280mV/cm的交变电场中培养20小时；(6)然后在频率为4248MHz、场强为280mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为4253MHz、场强为280mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为4258MHz、场强为280mV/cm的交变电场中培养10小时。
为了检测所培养细胞的纤维素降解能力，向含纤维素的废水中补充额外的纤维素形成含200mg/L纤维素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.516细胞加入100L纤维素溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.516细胞的纤维素溶液(溶液B)或不含细胞的纤维素溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的纤维素浓度与溶液C相比降低了22％以上。相反，溶液B的纤维素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例3降解半纤维素酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.409在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4245MHz、场强为87mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为4250MHz、场强为87mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为4255MHz、场强为87mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为4260MHz、场强为87mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为4245MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养25小时；(6)然后在频率为4250MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养25小时；(7)然后在频率为4255MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养25小时；和(8)最后在频率为4260MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养25小时。
为了检测所培养细胞的半纤维素降解能力，向废水中补充半纤维素形成含200mg/L半纤维素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.409细胞加入100L半纤维素溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.409细胞的半纤维素溶液(溶液B)或不含细胞的半纤维素溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的半纤维素浓度与溶液C相比降低了24％以上。相反，溶液B的半纤维素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例4降解聚乙烯酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.430在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4244MHz、场强为78mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为4247MHz、场强为78mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为4254MHz、场强为78mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为4258MHz、场强为78mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为4244MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(6)然后在频率为4247MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(7)然后在频率为4254MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；和(8)最后在频率为4258MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测所培养细胞的聚乙烯降解能力，向含聚乙烯的工业废水中补充聚额外的聚乙烯(≥80目)形成含200mg/L聚乙烯的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.430细胞加入100L聚乙烯溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.430细胞的聚乙烯溶液(溶液B)或不含细胞的聚乙烯溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的聚乙烯浓度与溶液C相比降低了15％以上。相反，溶液B的聚乙烯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例5降解聚丙烯酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.453在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4242MHz、场强为108mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为4248MHz、场强为108mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为4253MHz、场强为108mV/cm的交变电场中培养25小时；(4)然后在频率为4259MHz、场强为108mV/cm的交变电场中培养25小时；(5)然后在频率为4242MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养36小时；(6)然后在频率为4248MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养36小时；(7)然后在频率为4253MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养25小时；和(8)最后在频率为4259MHz、场强为300mV/cm的交变电场中培养25小时。
为了检测所培养细胞的聚丙烯降解能力，向含聚丙烯的工业废水中补充聚额外的聚丙烯(≥80目)形成含200mg/L聚丙烯的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.453细胞加入100L聚丙烯溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.453细胞的聚丙烯溶液(溶液B)或不含细胞的聚丙烯溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的聚丙烯浓度与溶液C相比降低了19％以上。相反，溶液B的聚丙烯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例6降解聚氯乙烯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.463在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4246MHz、场强为90mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为4250MHz、场强为90mV/cm的交变电场中培养30小时；(3)然后在频率为4256MHz、场强为90mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)然后在频率为4260MHz、场强为90mV/cm的交变电场中培养30小时；(5)然后在频率为4246MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养25小时；(6)然后在频率为4250MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养25小时；(7)然后在频率为4256MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养25小时；和(8)最后在频率为4260MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养25小时。
为了检测所培养细胞的聚氯乙烯降解能力，向含聚氯乙烯的工业废水中补充额外的聚氯乙烯(≥80目)形成含200mg/L聚氯乙烯的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.463细胞加入100L聚氯乙烯溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.463细胞的聚氯乙烯溶液(溶液B)或不含细胞的聚氯乙烯溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的聚氯乙烯浓度与溶液C相比降低了27％以上。相反，溶液B的聚氯乙烯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例7降解聚苯乙烯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.467在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4243MHz、场强为82mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为4246MHz、场强为82mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为4251MHz、场强为82mV/cm的交变电场中培养25小时；(4)然后在频率为4257MHz、场强为82mV/cm的交变电场中培养25小时；(5)然后在频率为4243MHz、场强为245mV/cm的交变电场中培养45小时；(6)然后在频率为4246MHz、场强为245mV/cm的交变电场中培养45小时；(7)然后在频率为4251MHz、场强为245mV/cm的交变电场中培养20小时；和(8)最后在频率为4257MHz、场强为245mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测所培养细胞的聚苯乙烯降解能力，向含聚苯乙烯的工业废水中补充额外的聚苯乙烯(≥80目)形成含200mg/L聚苯乙烯的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.467细胞加入100L聚苯乙烯溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理AS2.467细胞的聚苯乙烯溶液(溶液B)或不含细胞的聚苯乙烯溶液(溶液C)作为对照。测量溶液的COD水平。或者，用HPLC检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的聚苯乙烯浓度与溶液C相比降低了21％以上。相反，溶液B的聚苯乙烯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例8降解动物蛋白质将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.452在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为5521MHz、场强为148mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为5526MHz、场强为148mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为5533MHz、场强为148mV/cm的交变电场中培养25小时；(4)然后在频率为5536MHz、场强为148mV/cm的交变电场中培养25小时；(5)然后在频率为5521MHz、场强为350mV/cm的交变电场中培养32小时；(6)然后在频率为5526MHz、场强为350mV/cm的交变电场中培养32小时；(7)然后在频率为5533MHz、场强为350mV/cm的交变电场中培养32小时；和(8)最后在频率为5536MHz、场强为350mV/cm的交变电场中培养32小时。
为了检测电磁场处理的AS2.452细胞降解动物蛋白质的能力，向含动物蛋白质的废水中补充牛肉提取物，形成含200mg/L蛋白质的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.452细胞加入150L蛋白质溶液中，在28℃培养72小时(溶液A)。150L含同样数目未处理AS2.452细胞的动物蛋白质溶液(溶液B)或不含细胞的蛋白质溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，用HPLC检测蛋白质溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中的蛋白质浓度与溶液C相比降低了32％以上。相反，溶液B的蛋白质浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例9降解植物蛋白质将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.423在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为5524MHz、场强为125mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为5528MHz、场强为125mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为5532MHz、场强为125mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)然后在频率为5538MHz、场强为125mV/cm的交变电场中培养24小时；(5)然后在频率为5524MHz、场强为326mV/cm的交变电场中培养28小时；(6)然后在频率为5528MHz、场强为326mV/cm的交变电场中培养28小时；(7)然后在频率为5532MHz、场强为326mV/cm的交变电场中培养28小时；和(8)最后在频率为5538MHz、场强为326mV/cm的交变电场中培养28小时。
为了检测电磁场处理的AS2.423细胞降解植物蛋白质的能力，向含植物蛋白质的废水中补充大豆蛋白质，形成含200mg/L蛋白质的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.423细胞加入150L蛋白质溶液中，在28℃培养72小时(溶液A)。150L含同样数目未处理AS2.423细胞的蛋白质溶液(溶液B)或不含细胞的蛋白质溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，用HPLC检测蛋白质溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中的蛋白质浓度与溶液C相比降低了36％以上。相反，溶液B的蛋白质浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例10降解青霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.293在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为77MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为83MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为96MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为77MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为83MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为90MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为96MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.293细胞降解青霉素的能力，向医院废水中补充普鲁卡因青霉素(或氯唑西林)，形成含100mg/L青霉素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.293细胞加入100L青霉素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的青霉素溶液(溶液B)或不含细胞的青霉素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测青霉素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的青霉素浓度与溶液C相比降低了23％以上。相反，溶液B的青霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例11降解金霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1063在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为70MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为73MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为88MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为98MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为70MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为73MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为88MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为98MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1063细胞降解金霉素的能力，向医院废水中补充盐酸金霉素(金霉素的一种)，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1063细胞加入100L抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的盐酸金霉素的浓度与溶液C相比降低了31％以上。相反，溶液B的盐酸金霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例12降解土霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1211在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为70MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为74MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为88MHz、场强为44mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为98MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为70MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为74MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为88MHz、场强为200mV/em的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为98MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1211细胞降解土霉素(“OTC”)的能力，向医院废水中补充盐酸土霉素，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1211细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的OTC(土霉素)浓度与溶液C相比降低了28％以上。相反，溶液B的OTC(土霉素)浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例13降解强力霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1340在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为71MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为73MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为77MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为88MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为71MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为73MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为77MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为88MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1340细胞降解强力霉素(“DOTC”)的能力，向医院废水中补充DOTC，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1340细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的DOTC浓度与溶液C相比降低了33％以上。相反，溶液B的DOTC浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例14降解四环素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1215细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为70MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为75MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为82MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为85MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为70MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为75MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为82MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为85MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1215细胞降解四环素(“TC”)的能力，向医院废水中补充TC(四环素)，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1215细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的TC浓度与溶液C相比降低了26％以上。相反，溶液B的TC浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例15降解链霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1213细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为70MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为73MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为80MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为96MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为70MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为73MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为80MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为96MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1213细胞降解链霉素的能力，向医院废水中补充链霉素，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1213细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A的链霉素浓度与溶液C相比降低了31％以上。相反，溶液B的链霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例16降解卡那霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1206细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为71MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为78MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为86MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为98MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为71MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为78MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为86MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为98MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1206细胞降解卡那霉素的能力，向医院废水中补充卡那霉素，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1206细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A的卡那霉素浓度与溶液C相比降低了25％以上。相反，溶液B的卡那霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例17降解红霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1211细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为73MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为79MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为88MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为98MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为73MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为79MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为88MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为98MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1211细胞降解红霉素的能力，向医院废水中补充红霉素，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1211细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的红霉素浓度与溶液C相比降低了27％以上。相反，溶液B的红霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例18降解螺旋霉素将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1210细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为70MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为77MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为84MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为93MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为70MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为77MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为84MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为93MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1210细胞降解螺旋霉素的能力，向医院废水中补充螺旋霉素，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1210细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的螺旋霉素浓度与溶液C相比降低了22％以上。相反，溶液B的螺旋霉素浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例19降解杆菌肽将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1290细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为75MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(2)然后在频率为78MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为81MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(4)然后在频率为95MHz、场强为48mV/cm的交变电场中培养15小时；(5)然后在频率为75MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(6)然后在频率为78MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；(7)然后在频率为81MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时；和(8)最后在频率为95MHz、场强为200mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1290细胞降解杆菌肽的能力，向医院废水中补充杆菌肽，形成含100mg/L该抗生素的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1290细胞加入100L该抗生素溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的该抗生素溶液(溶液B)或不含细胞的该抗生素溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用HPLC检测该抗生素溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的杆菌肽浓度与溶液C相比降低了17％以上。相反，溶液B的杆菌肽浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例20降解三氯甲烷将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1413细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为82MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为90MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为82MHz、场强为274mV/cm的交变电场中培养32小时；(4)最后在频率为90MHz、场强为274mV/cm的交变电场中培养32小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1413细胞降解三氯甲烷的能力，向工业废水中补充三氯甲烷，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1413细胞加入100L三氯甲烷溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的三氯甲烷溶液(溶液B)或不含细胞的三氯甲烷溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法检测三氯甲烷溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的三氯甲烷浓度与溶液C相比降低了29％以上。相反，溶液B的三氯甲烷浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例21降解甲苯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1399细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为76MHz、场强为89mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为80MHz、场强为89mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为86MHz、场强为89mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为96MHz、场强为89mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1399细胞降解甲苯的能力，向工业废水中补充甲苯，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1399细胞加入100L甲苯溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的甲苯溶液(溶液B)或不含细胞的甲苯溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测甲苯溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的甲苯浓度与溶液C相比降低了32％以上。相反，溶液B的甲苯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例22降解对二甲苯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1336细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为72MHz、场强为93mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为80MHz、场强为93mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为88MHz、场强为93mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为93mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1336细胞降解对二甲苯的能力，向工业废水中补充对二甲苯，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1336细胞加入100L二甲苯溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的二甲苯溶液(溶液B)或不含细胞的二甲苯溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测二甲苯溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的二甲苯浓度与溶液C相比降低了24％以上。相反，溶液B的二甲苯浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例23降解苯甲醛将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1331细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为78MHz、场强为130mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为86MHz、场强为130mV/cm的交变电场中培养30小时；(3)然后在频率为94MHz、场强为130mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为96MHz、场强为130mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1331细胞降解苯甲醛的能力，向工业废水中补充苯甲醛，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1331细胞加入100L苯甲醛溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的苯甲醛溶液(溶液B)或不含细胞的苯甲醛溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测苯甲醛溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的苯甲醛浓度与溶液C相比降低了34％以上。相反，溶液B的苯甲醛浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例24降解丙醛将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1396细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为76MHz、场强为103mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为88MHz、场强为103mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为96MHz、场强为103mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为103mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1396细胞降解丙醛的能力，向工业废水中补充丙醛，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1396细胞加入100L丙醛溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的丙醛溶液(溶液B)或不含细胞的丙醛溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测丙醛溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的丙醛浓度与溶液C相比降低了19％以上。相反，溶液B的丙醛浓度与溶液C相比没有显示明显的改变。
实施例25降解庚醛将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1310细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为74MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养40小时；(2)然后在频率为82MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养40小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1310细胞降解庚醛的能力，向工业废水中补充庚醛，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1310细胞加入100L庚醛溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的庚醛溶液(溶液B)或不含细胞的庚醛溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测庚醛溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的庚醛浓度与溶液C相比降低了22％以上。相反，溶液B的庚醛浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例26降解间二氯苯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1331细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为72MHz、场强为107mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为80MHz、场强为107mV/cm的交变电场中培养10小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为107mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为94MHz、场强为107mV/cm的交变电场中培养40小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1331细胞降解间二氯苯的能力，向废水中补充间二氯苯，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1331细胞加入100L间二氯苯溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的间二氯苯溶液(溶液B)或不含细胞的间二氯苯溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测间二氯苯溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的间二氯苯浓度与溶液C相比降低了26％以上。相反，溶液B的间二氯苯浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例27降解苯乙酮将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1311细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为76MHz、场强为124mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为82MHz、场强为124mV/cm的交变电场中培养30小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为124mV/cm的交变电场中培养40小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为124mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1311细胞降解苯乙酮的能力，向废水中补充苯乙酮，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1311细胞加入100L苯乙酮溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的苯乙酮溶液(溶液B)或不含细胞的苯乙酮溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测苯乙酮溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的苯乙酮浓度与溶液C相比降低了11％以上。相反，溶液B的苯乙酮浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例28降解对氨苯基胂酸将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1336细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为78MHz、场强为133mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为88MHz、场强为133mV/cm的交变电场中培养40小时；(3)然后在频率为92MHz、场强为133mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为96MHz、场强为133mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1336细胞降解对氨苯基胂酸的能力，向废水中补充对氨苯基胂酸，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1336细胞加入100L对氨苯基胂酸溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的对氨苯基胂酸溶液(溶液B)或不含细胞的对氨苯基胂酸溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测对氨苯基胂酸溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的对氨苯基胂酸浓度与溶液C相比降低了13％以上。相反，溶液B的对氨苯基胂酸浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例29降解罗沙胂将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1338细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为78MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养10小时；(2)然后在频率为92MHz、场强为110mV/cm的交变电场中培养10小时；(3)然后在频率为78MHz、场强为213mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为92MHz、场强为213mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1338细胞降解罗沙胂的能力，向废水中补充罗沙胂，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1338细胞加入100L罗沙胂溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的罗沙胂溶液(溶液B)或不含细胞的罗沙胂溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测罗沙胂溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的罗沙胂浓度与溶液C相比降低了13％以上。相反，溶液B的罗沙胂浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例30降解呋喃唑酮(Furazolidonum)将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1413细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为74MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为76MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为86MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为94MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1413细胞降解呋喃唑酮的能力，向废水中补充呋喃唑酮，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1413细胞加入100L呋喃唑酮溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的呋喃唑酮溶液(溶液B)或不含细胞的呋喃唑酮溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测呋喃唑酮溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的呋喃唑酮浓度与溶液C相比降低了10％以上。相反，溶液B的呋喃唑酮浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例31降解地考喹酯将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1411细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为78MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为82MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养30小时；(3)然后在频率为86MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为94MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1411细胞降解地考喹酯的能力，向废水中补充地考喹酯，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1411细胞加入100L地考喹酯溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的地考喹酯溶液(溶液B)或不含细胞的地考喹酯溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测地考喹酯溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的地考喹酯浓度与溶液C相比降低了17％以上。相反，溶液B的地考喹酯浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例32降解敌百虫将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1211细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为74MHz、场强为219mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为86MHz、场强为219mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为96MHz、场强为219mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为219mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1211细胞降解敌百虫的能力，向废水中补充敌百虫，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1211细胞加入100L敌百虫溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的敌百虫溶液(溶液B)或不含细胞的敌百虫溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测敌百虫溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的敌百虫浓度与溶液C相比降低了15％以上。相反，溶液B的敌百虫浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例33降解二硝托胺和3，5二硝基邻甲苯酰胺将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1063细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为76MHz、场强为202mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为82MHz、场强为202mV/cm的交变电场中培养30小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为202mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为96MHz、场强为202mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1063细胞降解二硝托胺的能力，向废水中补充二硝托胺，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1063细胞加入100L二硝托胺溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的二硝托胺溶液(溶液B)或不含细胞的二硝托胺溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测二硝托胺溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的二硝托胺浓度与溶液C相比降低了26％以上。相反，溶液B的二硝托胺浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。可以用同样对方法评估活化的酵母细胞降解3，5二硝基邻甲苯酰胺的能力。
实施例34降解十二烷将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1213细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为72MHz、场强为168mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为80MHz、场强为168mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为90MHz、场强为168mV/cm的交变电场中培养30小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为168mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1213细胞降解十二烷的能力，向废水中补充十二烷，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1213细胞加入100L十二烷溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的十二烷溶液(溶液B)或不含细胞的十二烷溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检测十二烷溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的十二烷浓度与溶液C相比降低了21％以上。相反，溶液B的十二烷浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例35降解十九烷将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1270细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为80MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为82MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为94MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1270细胞降解十九烷的能力，向废水中补充十九烷，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1270细胞加入100L十九烷溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的十九烷溶液(溶液B)或不含细胞的十九烷溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检验十九烷溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的十九烷浓度与溶液C相比降低了23％以上。相反，溶液B的十九烷浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例36降解二十八烷将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1293细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为76MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为84MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为96MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为98MHz、场强为138mV/cm的交变电场中培养40小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1293细胞降解二十八烷的能力，向废水中补充二十八烷，形成含100mg/L该化学品的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1293细胞加入100L二十八烷溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的二十八烷溶液(溶液B)或不含细胞的二十八烷溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用气相色谱法或HPLC检验二十八烷溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的二十八烷浓度与溶液C相比降低了20％以上。相反，溶液B的二十八烷浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例37转化NH4+将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.614细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为662MHz、场强为152mV/cm的交变电场中培养18小时；(2)然后在频率为666MHz、场强为152mV/cm的交变电场中培养18小时；(3)然后在频率为672MHz、场强为152mV/cm的交变电场中培养18小时；(4)然后在频率为678MHz、场强为152mV/cm的交变电场中培养18小时；(5)然后在频率为662MHz、场强为310mV/cm的交变电场中培养25小时；(6)然后在频率为666MHz、场强为310mV/cm的交变电场中培养25小时；(7)然后在频率为672MHz、场强为310mV/cm的交变电场中培养35小时；(8)最后在频率为678MHz、场强为310mV/cm的交变电场中培养35小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.614细胞将含NH4+的细胞外化学品转化为细胞自身生物质的能力，向废水中补充硫酸铵，形成含200mg/L硫酸铵的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.614细胞加入100L硫酸铵溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的硫酸铵溶液(溶液B)或不含细胞的硫酸铵溶液(溶液C)作为对照。培育48小时后，用凯氏固氮实验检测硫酸铵溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的硫酸铵浓度与溶液C相比降低了22％以上。相反，溶液B的硫酸铵浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例38转化硝酸盐和亚硝酸盐将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.982细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为661MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养25小时；(2)然后在频率为665MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养25小时；(3)然后在频率为672MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养25小时；(4)然后在频率为676MHz、场强为126mV/cm的交变电场中培养25小时；(5)然后在频率为661MHz、场强为196mV/cm的交变电场中培养25小时；(6)然后在频率为665MHz、场强为196mV/cm的交变电场中培养25小时；(7)然后在频率为672MHz、场强为196mV/cm的交变电场中培养38小时；(8)最后在频率为676MHz、场强为196mV/cm的交变电场中培养38小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.982细胞将细胞外硝酸盐和/或亚硝酸盐转化为细胞自身生物质的能力，向废水中补充硝酸钠和亚硝酸钠，形成总浓度为200mg/L的硝酸钠/亚硝酸钠溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.982细胞加入100L硝酸钠/亚硝酸钠溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的硝酸盐/亚硝酸盐溶液(溶液B)或不含细胞的硝酸盐/亚硝酸盐溶液(溶液C)作为对照。培育48小时后，用凯氏固氮实验检测硝酸钠和亚硝酸钠溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中的硝酸钠和亚硝酸钠浓度与溶液C相比降低了29％以上。相反，溶液B的硝酸钠和亚硝酸钠浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例39将培养基中的PO43-、HPO42-、H2PO4-和/或H3PO4转化为细胞内磷将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.620细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为98MHz、场强为68mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为112MHz、场强为68mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为108MHz、场强为68mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)然后在频率为118MHz、场强为68mV/cm的交变电场中培养24小时；(5)然后在频率为98MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为112MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为108MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养42小时；(8)最后在频率为118MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养42小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.620细胞将生物可利用磷转化为细胞内磷的能力，向废水或畜粪或垃圾滤出液中补充Na3PO4，形成含200mg/L Na3PO4的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.620细胞加入100L Na3PO4溶液中，在28℃培养48小时(溶液A)。100L含同样数目未处理细胞的Na3PO4溶液(溶液B)或不含酵母细胞的Na3PO4溶液(溶液C)作为对照。培育48小时后，用紫外分光光度法检测溶液。结果显示培育48小时后，溶液A中Na3PO4的浓度与溶液C相比降低了23％以上。相反，溶液B的Na3PO4浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例40减少硫化氢引起的气味将酿酒椭圆酵母(Saccharomyces cerevisiae HansenVar.ellipsoideus(Hansen)Dekker)AS2.599细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2165MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为2175MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为2200MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为2235MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.599细胞减少硫化氢所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充H2S，形成含100mg/LH2S的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.599细胞加入100L H2S溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的H2S溶液(溶液B)或不含酵母细胞的H2S溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的H2S浓度与溶液C相比降低了13％以上。相反，溶液B的H2S浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例41减少氨引起的气味将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.423细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2160MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为2175MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为2210MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为2245MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养10小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.423细胞减少氨所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充氨，形成含100mg/L氨(以氢氧化铵的形式)的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.423细胞加入100L氨溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的氨溶液(溶液B)或不含酵母细胞的氨溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的氨浓度与溶液C相比降低了11％以上。相反，溶液B的氨浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例42减少吲哚引起的气味将酿酒椭圆酵母(Saccharomyces cerevisiae HansenVar.ellipsoideus(Hansen)Dekker)AS2.612细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2165MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养40小时；(2)然后在频率为2180MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时；(3)然后在频率为2200MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养40小时；(4)最后在频率为2220MHz、场强为240mV/cm的交变电场中培养20小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.612细胞减少吲哚所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充吲哚，形成含100mg/L吲哚的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.612细胞加入100L吲哚溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的吲哚溶液(溶液B)或不含酵母细胞的吲哚溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的吲哚浓度与溶液C相比降低了15％以上。相反，溶液B的吲哚浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例43减少甲胺、二甲胺或三甲胺引起的气味将酿酒椭圆酵母(Saccharomyces cerevisiae HansenVar.ellipsoideus(Hansen)Dekker)AS2.541细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2160MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为2190MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养10小时；(3)然后在频率为2210MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养40小时；(4)最后在频率为2250MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养40小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.541细胞减少甲胺、二甲胺或三甲胺所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充甲胺、二甲胺或三甲胺，形成含100mg/L甲胺、二甲胺或三甲胺的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.541细胞加入100L甲胺、二甲胺或三甲胺溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的甲胺、二甲胺或三甲胺溶液(溶液B)或不含酵母细胞的甲胺、二甲胺或三甲胺溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的甲胺、二甲胺或三甲胺浓度与溶液C相比降低了23％以上。相反，溶液B的甲胺、二甲胺或三甲胺浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例44减少有机酸引起的气味将酿酒椭圆酵母(Saccharomyces cerevisiae HansenVar.ellipsoideus(Hansen)Dekker)AS2.53细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2315MHz场强为290mV/cm的交变电场中培养30小时；(2)然后在频率为2335MHz场强为290mV/cm的交变电场中培养10小时；(3)然后在频率为2355MHz场强为290mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为2375MHz场强为290mV/cm的交变电场中培养10小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.53细胞减少有机酸所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充乙酸，形成含100mg/L乙酸的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.53细胞加入100L乙酸溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的乙酸溶液(溶液B)或不含酵母细胞的乙酸溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的乙酸浓度与溶液C相比降低了19％以上。相反，溶液B的乙酸浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例45减少对甲酚引起的气味将酿酒椭圆酵母(Saccharomyces cerevisiae HansenVar.ellipsoideus(Hansen)Dekker)AS2.163细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为2300MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养20小时；(2)然后在频率为2370MHz、场强为98mV/cm的交变电场中培养15小时；(3)然后在频率为2300MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养20小时；(4)最后在频率为2370MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养30小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.163细胞减少对甲酚所引起的气味的能力，向废水、或畜粪或垃圾滤出液中补充对甲酚，形成含100mg/L对甲酚的溶液。将0.1ml浓度高于108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.163细胞加入100L对甲酚溶液中，在28℃培养24小时(溶液A)。100L含同样数目未处理酵母细胞的对甲酚溶液(溶液B)或不含酵母细胞的对甲酚溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用质谱法(MAS-nose，VG生产)检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的对甲酚浓度与溶液C相比降低了23％以上。相反，溶液B的对甲酚浓度与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例46抑制金黄色葡萄球菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1037细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为30MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为36MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为43MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为47MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为30MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为36MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为43MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为47MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1037细胞抑制金黄色葡萄球菌生长的能力，将含金黄色葡萄球菌的废水、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml金黄色葡萄球菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1037细胞加入1L金黄色葡萄球菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的金黄色葡萄球菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的金黄色葡萄球菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活金黄色葡萄球菌数目与溶液C相比降低了2.7％以上。相反，溶液B的活金黄色葡萄球菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例47抑制肺炎双球菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1021细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为30MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为36MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为42MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为49MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为30MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为36MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为42MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为49MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1021细胞抑制肺炎双球菌生长的能力，将含肺炎双球菌的废水、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml肺炎双球菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1021细胞加入1L肺炎双球菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的肺炎双球菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的肺炎双球菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活肺炎双球菌数目与溶液C相比降低了2.8％以上。相反，溶液B的活肺炎双球菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例48抑制炭疽杆菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1251细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为35MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为39MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为43MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为47MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为35MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为39MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为43MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为47MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1251细胞抑制炭疽杆菌生长的能力，将含炭疽杆菌的废水、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml炭疽杆菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1251细胞加入1L炭疽杆菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的炭疽杆菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的炭疽杆菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活炭疽杆菌数目与溶液C相比降低了3.1％以上。相反，溶液B的活炭疽杆菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例49抑制结核分枝杆菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1331细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为33MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为36MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为45MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为47MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为33MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为36MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为45MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为47MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1331细胞抑制结核分枝杆菌生长的能力，将含结核分枝杆菌的废水、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml结核分枝杆菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1331细胞加入1L结核分枝杆菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的结核分枝杆菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的结核分枝杆菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活结核分枝杆菌数目与溶液C相比降低了2.9％以上。相反，溶液B的活结核分枝杆菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例50抑制大肠杆菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1345细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为30MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为34MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为38MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为49MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为30MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为34MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为38MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为49MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1345细胞抑制大肠杆菌生长的能力，将含大肠杆菌的废、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml大肠杆菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1345细胞加入1L大肠杆菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的大肠杆菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的大肠杆菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活大肠杆菌数目与溶液C相比降低了48％以上。相反，溶液B的活大肠杆菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例50抑制沙门氏菌的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)IFFI1211细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为30MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(2)然后在频率为33MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(3)然后在频率为36MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(4)然后在频率为38MHz、场强为26mV/cm的交变电场中培养12小时；(5)然后在频率为30MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(6)然后在频率为33MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(7)然后在频率为36MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为38MHz、场强为150mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的IFFI1211细胞抑制沙门氏菌生长的能力，将含沙门氏菌的废水、或畜粪或垃圾滤出液在常规条件下培养，形成含超过1010细胞/ml沙门氏菌的溶液。将1毫升浓度为2×108-5×108细胞/ml的电磁场处理过的IFFI1211细胞加入1L沙门氏菌溶液中，在30℃培养24小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的沙门氏菌溶液(溶液B)或不含酵母细胞的沙门氏菌溶液(溶液C)作为对照。培育24小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育24小时后，溶液A中的活沙门氏菌数目与溶液C相比降低了66％以上。相反，溶液B的活沙门氏菌数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例52抑制绿藻的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.408细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为6353MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为6357MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为6364MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)然后在频率为6368MHz、场强为112mV/cm的交变电场中培养24小时；(5)然后在频率为6353MHz、场强为290mV/cm的交变电场中培养56小时；(6)然后在频率为6357MHz、场强为290mV/cm的交变电场中培养56小时；(7)然后在频率为6364MHz、场强为290mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为6368MHz、场强为290mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.408细胞抑制绿藻生长的能力，将含绿藻的湖水或其它地表水在常规条件下培养，形成含超过1.0×109-1.5×109细胞/ml绿藻的溶液。将0.1ml浓度为108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.408细胞加入1L绿藻溶液中，在28-32℃培养72小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的绿藻溶液(溶液B)或不含酵母细胞的绿藻溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中的活绿藻数目与溶液C相比降低了28％以上。相反，溶液B的活绿藻数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例53抑制蓝藻的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.414细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为6355MHz、场强为85mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为6360MHz、场强为85mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为6364MHz、场强为85mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)然后在频率为6367MHz、场强为85mV/cm的交变电场中培养24小时；(5)然后在频率为6355MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养56小时；(6)然后在频率为6360MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养56小时；(7)然后在频率为6364MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为6367MHz、场强为250mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.414细胞抑制蓝藻生长的能力，将含蓝藻的湖水或其它地表水在常规条件下培养，形成含超过1.0×109-1.5×109细胞/ml蓝藻的溶液。将0.1ml浓度为108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.414细胞加入1L蓝藻溶液中，在28-32℃培养72小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的蓝藻溶液(溶液B)或不含酵母细胞的蓝藻溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中的活蓝藻数目与溶液C相比降低了31％以上。相反，溶液B的活蓝藻数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例54抑制红藻的生长将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.416细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为6352MHz、场强为136mV/cm的交变电场中培养24小时；(2)然后在频率为6359MHz、场强为136mV/cm的交变电场中培养24小时；(3)然后在频率为6363MHz、场强为136mV/cm的交变电场中培养24小时；(4)然后在频率为6370MHz、场强为136mV/cm的交变电场中培养24小时；(5)然后在频率为6352MHz、场强为337mV/cm的交变电场中培养56小时；(6)然后在频率为6359MHz、场强为337mV/cm的交变电场中培养56小时；(7)然后在频率为6363MHz、场强为337mV/cm的交变电场中培养24小时；(8)最后在频率为6370MHz、场强为337mV/cm的交变电场中培养24小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.416细胞抑制红藻生长的能力，将含红藻的湖水或其它地表水在常规条件下培养，形成含超过1.0×109-1.5×109细胞/ml红藻的溶液。将0.1ml浓度为108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.416细胞加入1L红藻溶液中，在28-32℃培养72小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的红藻溶液(溶液B)或不含酵母细胞的红藻溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，用流式细胞计数仪检测溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中的活红藻数目与溶液C相比降低了37％以上。相反，溶液B的活红藻数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
实施例55分解藻类残骸将酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae Hansen)AS2.422细胞在下列顺序的一组交变电场中培养将酵母细胞置于(1)频率为4452MHz、场强为127mV/cm的交变电场中培养32小时；(2)然后在频率为4456MHz、场强为127mV/cm的交变电场中培养32小时；(3)然后在频率为4462MHz、场强为127mV/cm的交变电场中培养32小时；(4)然后在频率为4464MHz、场强为127mV/cm的交变电场中培养32小时；(5)然后在频率为4452MHz、场强为268mV/cm的交变电场中培养32小时；(6)然后在频率为4456MHz、场强为268mV/cm的交变电场中培养32小时；(7)然后在频率为4462MHz、场强为268mV/cm的交变电场中培养64小时；(8)最后在频率为4464MHz、场强为268mV/cm的交变电场中培养64小时。
为了检测经电磁场处理的AS2.422细胞分解藻类残骸的能力，将含绿藻、蓝藻和/或红藻残骸的湖水或其它地表水在常规条件下培养，形成含超过1.0×109-1.5×109细胞/ml绿藻、蓝藻和/或红藻残骸的溶液。将0.1ml浓度为108细胞/ml的电磁场处理过的AS2.422细胞加入1L该藻类溶液中，在28-32℃培养72小时(溶液A)。1L含同样数目未处理酵母细胞的该藻类溶液(溶液B)或不含酵母细胞的该藻类溶液(溶液C)作为对照。培育72小时后，检验溶液。结果显示培育72小时后，溶液A中绿藻、蓝藻和/或红藻的数目与溶液C相比降低了26％以上。相反，溶液B绿藻、蓝藻和/或红藻的数目与溶液C相比显示没有明显的改变。
虽然这里列出了一些本发明的实施方案，但显然可以改变基本构成以提供其它利用本发明组合物和方法的实施方案。
权利要求
1.至少含有下列多组酵母细胞之一的组合物1)第一组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为4230到4260MHz、场强为0.5到360mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中聚合物的能力大幅度提高；2)第二组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为5520到5540MHz、场强为0.5到360mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中含氮化合物的能力大幅度提高；3)第三组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为70到100MHz、场强为0.5到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中抗生素或有机溶剂的能力大幅度提高；4)第四组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为660到680MHz、场强为0.1到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的能力大幅度提高；5)第五组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为80到440MHz、场强为0.5到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的能力大幅度提高；6)第六组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为2160到2380MHz、场强为0.5到320mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们减少培养基气味的能力大幅度提高；7)第七组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，在频率为30到50MHz、场强为0.5到200mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们抑制致病微生物生长的能力大幅度提高；和8)第八组酵母细胞，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为4440到4470MHz、场强为0.5到400mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们分解藻类残骸的能力大幅度提高。
2.根据权利要求1的含第一组酵母细胞的组合物，其中所述酵母细胞的特征在于，经过在频率为4230到4260MHz、场强为0.5到360mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中聚合物的能力大幅度提高。
3.根据权利要求2的组合物，其中所述频率在4240到4260MHz范围内。
4.根据权利要求2的组合物，其中所述场强在50到360mV/cm范围内。
5.根据权利要求2的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母、卡氏酵母或Hansenula subpelliculosa的细胞。
6.根据权利要求2的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心的、保藏号选自下组的菌株的细胞AS2.11、AS2.53、AS2.56、AS2.70、AS2.98、AS2.101、AS2.168、AS2.374、AS2.406、AS2.409、AS2.430、AS2.453、AS2.463、AS2.467、AS2.502、AS2.516、AS2.536、AS2.541、AS2.443、AS2.459、AS2.738、AS2.740和IFFI1331。
7.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是纤维素。
8.根据权利要求7的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在80-300mV/cm范围内。
9.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是半纤维素。
10.根据权利要求9的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在60-270mV/cm范围内。
11.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是木质素。
12.根据权利要求11的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在80-320mV/cm范围内。
13.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是聚乙烯。
14.根据权利要求13的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在60-270mV/cm范围内。
15.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是聚丙烯。
16.根据权利要求15的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在90-320mV/cm范围内。
17.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是聚氯乙稀。
18.根据权利要求17的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在70-350mV/cm范围内。
19.根据权利要求2的组合物，其中所述聚合物是聚苯乙烯。
20.根据权利要求19的组合物，其中所述频率是在4240-4260MHz范围内，所述场强是在60-260mV/cm范围内。
21.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为5520到5540MHz、场强为0.5到360mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中含氮化合物的能力大幅度提高。
22.根据权利要求21的组合物，其中所述频率是在5521到5538MHz的范围内。
23.根据权利要求21的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母或卡氏酵母的细胞。
24.根据权利要求21的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.93、AS2.98、AS2.152、AS2.423、AS2.452、AS2.458、AS2.502、AS2.535、AS2.561、AS2.440和AS2.595。
25.根据权利要求21的组合物，其中所述的含氮化合物是动物蛋白质。
26.根据权利要求25的组合物，其中所述频率是在5521-5538MHz范围内，所述场强是在90-360mV/cm范围内。
27.根据权利要求21的组合物，其中所述含氮化合物是植物蛋白质。
28.根据权利要求27的组合物，其中所述频率是在5521-5538MHz范围内，所述场强是在120-340mV/cm范围内。
29.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为70到100MHz、场强为0.5到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中抗生素或有机溶剂的能力大幅度提高。
30.根据权利要求29的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母、卡氏酵母、鲁氏酵母、魏氏酵母或产朊假丝酵母的细胞。
31.根据权利要求29的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.4、AS2.14、AS2.416、AS2.430、AS2.593、IFFI1002、IFFI1006、IFFI1043、IFFI1045、IFFI1048、IFFI1063、IFFI1059、IFFI1206、IFFI1209、IFFI1210、IFFI1211、IFFI1213、IFFI1215、IFFI1220、IFFI1221、IFFI1224、IFFI1248、IFFI1270、IFFI1290、IFFI1291、IFFI1293、IFFI1297、IFFI1301、IFFI1302、IFFI1310、IFFI1311、IFFI1331、IFFI1335、IFFI1336、IFFI1338、IFFI1339、IFFI1340、IFFI1345、IFFI1396、IFFI1399、IFFI1411、IFFI1413、AS2.293、AS2.377、AS2.444、AS2.178、和AS2.120。
32.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是青霉素。
33.根据权利要求29的组合物，其中所述场强是在30-220mV/cm范围内。
34.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是金霉素。
35.根据权利要求34的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
36.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是土霉素。
37.根据权利要求36的组合物，其中所述场强是在30-250mV/cm范围内。
38.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是强力霉素。
39.根据权利要求38的组合物，其中所述场强是在30-250mV/cm范围内。
40.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是四环素。
41.根据权利要求40的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
42.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是链霉素。
43.根据权利要求42的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
44.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是卡那霉素。
45.根据权利要求44的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
46.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是红霉素。
47.根据权利要求46的组合物，其中所述场强是在30-250mV/cm范围内。
48.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是螺旋霉素。
49.根据权利要求48的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
50.根据权利要求29的组合物，其中所述抗生素是杆菌肽。
51.根据权利要求50的组合物，其中所述场强是在30-230mV/cm范围内。
52.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是三氯甲烷。
53.根据权利要求52的组合物，其中所述场强是在90-280mV/cm范围内。
54.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是甲苯或乙苯。
55.根据权利要求54的组合物，其中所述场强是在80-280mV/cm范围内。
56.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是对二甲苯。
57.根据权利要求56的组合物，其中所述场强是在80-280mV/cm范围内。
58.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是呋喃唑酮。
59.根据权利要求58的组合物，其中所述场强是在80-280mV/cm范围内。
60.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是地考喹酯。
61.根据权利要求60的组合物，其中所述场强是在90-280mV/cm范围内。
62.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是苯甲醛。
63.根据权利要求62的组合物，其中所述场强是在120-280mV/cm范围内。
64.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是丙醛。
65.根据权利要求64的组合物，其中所述场强是在100-200mV/cm范围内。
66.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是庚醛。
67.根据权利要求66的组合物，其中所述场强是在110-280mV/cm范围内。
68.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是间二氯苯。
69.根据权利要求68的组合物，其中所述场强是在100-220mV/cm范围内。
70.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是苯乙酮。
71.根据权利要求70的组合物，其中所述场强是在116-225mV/cm范围内。
72.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是对氨苯基胂酸。
73.根据权利要求72的组合物，其中所述场强是在90-190mV/cm范围内。
74.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是罗沙胂。
75.根据权利要求74的组合物，其中所述场强是在100-190mV/cm范围内。
76.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是十二烷。
77.根据权利要求76的组合物，其中所述场强是在160-300mV/cm范围内。
78.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是十九烷。
79.根据权利要求78的组合物，其中所述场强是在120-300mV/cm范围内。
80.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是二十八烷。
81.根据权利要求80的组合物，其中所述场强是在120-300mV/cm范围内。
82.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是敌百虫。
83.根据权利要求82的组合物，其中所述场强是在200-300mV/cm范围内。
84.根据权利要求29的组合物，其中所述有机溶剂是二硝托胺或3，5二硝基邻甲苯酰胺。
85.根据权利要求84的组合物，其中所述场强是在130-310mV/cm范围内。
86.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为126到142MHz、场强为90到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中三氯甲烷的能力大幅度提高。
87.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为52到70MHz、场强为80到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中甲苯或乙苯的能力大幅度提高。
88.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为30到50MHz、场强为80到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中对二甲苯的能力大幅度提高。
89.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为200到220MHz、场强为80到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中呋喃唑酮的能力大幅度提高。
90.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为213到229MHz、场强为90到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中地考喹酯的能力大幅度提高。
91.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为133到151MHz、场强为120到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中苯甲醛的能力大幅度提高。
92.含一组酵母细胞的组合物，其中所述酵母细胞的特征在于，在频率为145到162MHz、场强为100到200mV/cm范围的交变电场中培养后，与没有经这样培养的酵母细胞相比，结果它们降解培养基中丙醛的能力大幅度增长。
93.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为156到176MHz、场强为110到280mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中庚醛的能力大幅度提高。
94.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为163到183MHz、场强为100到220mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中间二氯苯的能力大幅度提高。
95.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为175到191MHz、场强为116到225mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中苯乙酮的能力大幅度提高。
96.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为183到205MHz、场强为90到190mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中对氨苯基胂酸的能力大幅度提高。
97.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为114到128MHz、场强为100到190mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中罗沙胂的能力大幅度提高。
98.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为244到264MHz、场强为160到300mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中十二烷的能力大幅度提高。
99.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为252到278MHz、场强为120到300mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中十九烷或二十八烷的能力大幅度提高。
100.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为220到250MHz、场强为200到300mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中敌百虫的能力大幅度提高。
101.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为220到250MHz、场强为130到310mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中二硝托胺的能力大幅度提高。
102.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为660到680MHz、场强为0.1到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的能力大幅度提高。
103.根据权利要求102的组合物，其中所述场强是在100到350mV/cm范围内。
104.根据权利要求102的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母、魏氏酵母、热带假丝酵母或白地霉的细胞。
105.根据权利要求102的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.152、AS2.196、AS2.336、AS2.400、AS2.416、AS2.423、AS2.498、AS2.614、AS2.982、和AS2.1387。
106.根据权利要求102的组合物，其中所述生物可利用氮是铵。
107.根据权利要求106的组合物，其中所述频率是在660到680MHz范围内，场强是在140-320mV/cm范围内。
108.根据权利要求102的组合物，其中所述生物可利用氮是硝酸盐或亚硝酸盐。
109.根据权利要求108的组合物，其中所述频率是在660到680MHz范围内，场强是在120-290mV/cm范围内。
110.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为2160到2190MHz、场强为140到320mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们将培养基中的铵转化为细胞内氮的能力大幅度提高。
111.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为80到440MHz、场强为0.5到350mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的能力大幅度提高。
112.根据权利要求111的组合物，其中所述频率是在86到120MHz或410到430MHz范围内。
113.根据权利要求111的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母或卡氏酵母的细胞。
114.根据权利要求111的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.346、AS2.423、AS2.430、AS2.451、AS2.558、AS2.620、AS2.628、IFFI1203、和AS2.189菌株的细胞。
115.根据权利要求111的组合物，其中所述生物可利用磷是PO43-、HPO42-、H2PO4-或H3PO4。
116.根据权利要求115的组合物，其中所述频率是在86到120MHz范围内，所述场强是在60到260mV/cm范围内。
117.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为2160到2380MHz、场强为0.5到320mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们减少培养基气味的能力大幅度提高。
118.根据权利要求117的组合物，其中所述频率是在2160到2250MHz或2280到2380MHz范围内。
119.根据权利要求117的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母或卡氏酵母的细胞。
120.根据权利要求117的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.53、AS2.163、AS2.396、AS2.397、AS2.423、AS2.452、AS2.502、AS2.516、AS2.541、AS2.558、AS2.559、AS2.560、AS2.561、AS2.562、AS2.605、AS2.607、AS2.612、IFFI1052、IFFI1202、IFFI1213、IFFI1247和IFFI1397。
121.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由硫化氢引起。
122.根据权利要求121的组合物，其中所述频率是在2160到2250MHz，所述场强是在80到250mV/cm范围内。
123.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由氨引起。
124.根据权利要求123的组合物，其中所述频率是在2160到2250MHz，所述场强是在70到260mV/cm范围内。
125.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由吲哚引起。
126.根据权利要求125的组合物，其中所述频率是在2160到2250MHz，所述场强是在70到260mV/cm范围内。
127.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由甲胺、二甲胺或三甲胺引起。
128.根据权利要求127的组合物，其中所述频率是在2160到2250MHz，所述场强是在40到260mV/cm范围内。
129.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由有机酸引起。
130.根据权利要求129的组合物，其中所述频率是在2280到2380MHz，所述场强是在140到300mV/cm范围内。
131.根据权利要求130的组合物，其中所述气味是乙酸引起。
132.根据权利要求117的组合物，其中所述气味是由对甲酚引起。
133.根据权利要求132的组合物，其中所述频率是在2280到2380MHz，所述场强是在90到260mV/cm范围内。
134.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为30到50MHz、场强为0.5到200mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们抑制致病微生物生长的能力大幅度提高。
135.根据权利要求134的组合物，其中所述场强是在10到180mV/cm范围内。
136.根据权利要求134的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母、卡氏酵母、葡萄汁酵母或魏氏酵母的细胞。
137.根据权利要求134的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞ACCC2034、ACCC2043、AS2.70、AS2.119、AS2.152、AS2.200、AS2.369、AS2.408、AS2.451、AS2.562、AS2.607、IFFI1021、IFFI1023、IFFI1032、IFFI1037、IFFI1205、IFFI1211、IFFI1221、IFFI1251、IFFI1301、IFFI1307、IFFI1308、IFFI1331和IFFI1345。
138.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是金黄色葡萄球菌。
139.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是肺炎双球菌。
140.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是炭疽杆菌。
141.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是结核杆菌。
142.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是大肠杆菌。
143.根据权利要求134的组合物，其中所述致病微生物是沙门氏菌。
144.根据权利要求1的含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为6340到6380MHz、场强为0.5到400mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们抑制藻类生长的能力大幅度提高。
145.根据权利要求144的组合物，其中所述频率是在6352到6370MHz范围内。
146.根据权利要求144的组合物，其中所述场强是在60到380mV/cm范围内。
147.根据权利要求144的组合物，其中所述酵母细胞来自于酿酒酵母的细胞。
148.根据权利要求144的组合物，其中所述酵母细胞来自于保藏在中国普通微生物菌种保藏中心、保藏号选自下列的菌株的细胞AS2.408、AS2.414、AS2.416、AS2.422、AS2.453、AS2.486、AS2.558、AS2.562和IFFI1292。
149.根据权利要求145的组合物，其中所述藻类是绿藻。
150.根据权利要求149的组合物，其中所述场强是在100到330mV/cm范围内。
151.根据权利要求145的组合物，其中所述藻类是蓝藻。
152.根据权利要求151的组合物，其中所述场强是在70到310mV/cm范围内。
153.根据权利要求145的组合物，其中所述藻类是红藻。
154.根据权利要求153的组合物，其中所述场强是在120到360mV/cm范围内。
155.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞的特征在于，经过在频率为4440到4470MHz、场强为0.5到400mV/cm范围的交变电场中培养，与没有经这样培养的酵母细胞相比，它们分解藻类残骸的能力大幅度提高。
156.根据权利要求155的组合物，其中所述藻类是绿藻、蓝藻或红藻。
157.根据权利要求156的组合物，其中所述频率是在4452到4470MHz，所述场强是在50到280mV/cm范围内。
158.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们降解培养基中聚合物的能力大幅度提高。
159.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们降解培养基中含氮化合物的能力大幅度提高。
160.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们降解培养基中抗生素或有机溶剂的能力大幅度提高。
161.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的能力大幅度提高。
162.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的能力大幅度提高。
163.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们减少培养基气味的能力大幅度提高。
164.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们抑制致病微生物生长的能力大幅度提高。
165.含多个酵母细胞的组合物，其中所述多个酵母细胞已被活化，与未活化的酵母细胞相比，它们抑制藻类生长或分解藻类残骸的能力大幅度提高。
166.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在4230到4260MHz范围、场强在0.5到360mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中聚合物的能力大幅度提高。
167.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在5520到5540MHz范围、场强在0.5到360mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中含氮化合物的能力大幅度提高。
168.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在70到100MHz范围、场强在0.5到350mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们降解培养基中抗生素或有机溶剂的能力大幅度提高。
169.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在660到680MHz范围、场强在0.1到350mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用氮转化为细胞内氮的能力大幅度提高。
170.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在80到440MHz范围、场强在0.5到350mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们将培养基中生物可利用磷转化为细胞内磷的能力大幅度提高。
171.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在2160到2380MHz范围、场强在0.5到320mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们减少培养基气味的能力大幅度提高。
172.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在30到50MHz范围、场强在0.5到200mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们抑制致病微生物生长的能力大幅度提高。
173.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在6340到6380MHz范围、场强在0.5到400mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们抑制藻类生长的能力大幅度提高。
174.一种制备酵母组合物的方法，包括在频率在4440到4470MHz范围、场强在0.5到400mV/cm范围内的交变电场中培养多个酵母细胞，所得酵母细胞的特征在于，与没有如此培养的酵母细胞相比，它们分解藻类残骸的能力大幅度提高。
175.一种处理废物的方法，包括向所述废物中加入一种或多种根据权利要求1、21、29、86-102、110、111、117、134、144、155或158-165任一项的组合物的步骤。
176.根据权利要求175的方法，其中所述废物是废水。
177.根据权利要求176的方法，其中所述废水是污水。
178.根据权利要求176的方法，其中所述废水是工业废水。
179.根据权利要求176的方法，其中所述废水是地表水。
180.根据权利要求176的方法，其中所述废水是饮用水。
全文摘要
本发明提供包含一组或多组酵母细胞的组合物，其中所述酵母细胞的特征是在具有特定频率和特定场强的交变电磁场存在下培养后，与没有这样培养的酵母细胞相比，它们(1)降解聚合物如多糖和塑料；(2)降解含氮化合物如蛋白质和核酸；(3)降解环境毒素，例如某些有毒化学品如有机溶剂和饲料中使用的抗生素和有机农药；(4)将培养基中的生物可利用氮转化为它们自身的生物量；(5)将培养基中的生物可利用磷转化为它们自身的生物量；(6)减少恶臭材料的恶臭；(7)抑制致病微生物的增殖；和/或(8)抑制藻类的生长或分解藻类残骸的能力大幅度提高。本发明还包括制备这些组合物的方法以及使用这些组合物处理废水的方法。
文档编号C02F1/50GK1596308SQ01823195
公开日2005年3月16日 申请日期2001年12月11日 优先权日2001年3月1日
发明者张令玉 申请人:欧亚生物科技有限公司