作为β细胞衰竭靶标/标志的TIMP－2的制作方法

专利名称：作为β细胞衰竭靶标/标志的TIMP－2的制作方法
II型糖尿病是快速增长的世界性的重要疾病，其特征是胰腺β细胞的衰竭(β细胞衰竭)以通过增加β细胞的胰岛素分泌来补偿外周的胰岛素抵抗。这种衰竭可通过β细胞质量的相对损失以及分泌缺陷(其包括增强的β细胞基础胰岛素分泌以及骨骼肌及其它器官对胰岛素敏感性的选择性丢失)来解释。β细胞功能的损失被认为是由长期暴露于提高水平的葡萄糖和脂类下造成的(糖毒性和脂毒性)。
当前还没有临床证实的治疗可以预防或延缓脂/糖毒性条件下的β细胞衰竭。鉴定治疗β细胞衰竭的更好的靶标和检测β细胞衰竭或功能的更好的标志(其比常用的标志如胰岛素、胰岛素原或C-肽更敏感或更可靠)也是有用的。
此为，鉴定能够在血液中被检测的标志是有利的。
本发明的目标是鉴定和提供用于筛选预防、减弱或抑制β细胞衰竭的化合物的新靶标以及允许在II型糖尿病的较早期阶段监测和/或诊断β细胞衰竭且比当前所用标志更可靠的标志。
令人惊奇地发现，蛋白质TIMP-2的使用可以克服、至少部分克服当今技术水平已知的难题。
72-kDa IV型胶原酶优先于与TIMP专一结合的92-kDa的IV型胶原酶与TIMP-2相互作用。TIMP-2可抑制72-kDa IV型胶原酶的活性，并且还是膜型金属蛋白酶1的抑制剂。胶原酶涉及炎症中的细胞迁移和侵袭以及肿瘤形成(见例如Umenishi等，1991，J.Biochem.110189-95)。
令人惊奇地发现，在β细胞衰竭中分泌的TIMP-2水平发生变化。因此本发明提供了治疗和/或预防β细胞衰竭的靶标以及对糖尿病中β细胞衰竭早期诊断的新的标志。
在优选的实施方案中，新的靶标和/或标志TIMP-2可以用于诊断、监测以及筛选的目的。
当用于病人监测时，根据本发明的方法可以帮助评价追踪调查病人的治疗效果和β细胞衰竭的复发。因此，本发明提供了蛋白质TIMP-2用于检测糖尿病治疗效果的用途。
在优选的实施方案中，根据本发明的诊断方法用于筛选目的。即其用于通过测定TIMP-2水平并将TIMP-2水平与β细胞衰竭存在与否相关联来对先前没有糖尿病诊断的受试者进行评价。
根据本发明的方法用于在导致产生糖尿病的不同阶段，即胰岛素抵抗、葡萄糖耐受受损和糖尿病阶段监测疾病进展。
因此，本发明提供了监测糖尿病进展的方法，其包括步骤(a)提供从个体得到的液体样品，(b)将所述样品与TIMP-2特异性结合试剂在适合所述结合试剂与TIMP-2之间形成复合物的条件下接触，和(c)将(b)中形成的复合物的数量与β细胞衰竭中形成的复合物的数量相关联。
本发明还提供了监测糖尿病治疗效果的方法，其包括步骤(a)提供从针对糖尿病治疗的患者得到的液体样品，(b)将所述样品与TIMP-2特异性结合试剂在适合所述结合试剂与TIMP-2之间形成复合物的条件下接触，和(c)将(b)中形成的复合物的数量与缺乏治疗的情况下形成的复合物的数量相关联。
本发明提供了筛选与TIMP-2相互作用的化合物的方法，其包括步骤a)将蛋白质TIMP-2与化合物或多种化合物在允许所述化合物或多种化合物与TIMP-2相互作用的情况下接触；和b)检测所述化合物或多种化合物与所述多肽之间的相互作用。
本发明提供了筛选预防和/或抑制和/或减弱β细胞衰竭的化合物的方法，其包括步骤a)将化合物与蛋白质TIMP-2接触；和b)测定蛋白质TIMP-2的活性；其中刺激或抑制蛋白质TIMP-2活性的化合物是预防和/或抑制和/或减弱β细胞衰竭的化合物。
优选地，所述方法还包括在步骤a)之前或者在步骤a)和b)之间将蛋白质TIMP-2固定化的步骤。
如文中所使用，术语“活性”指TIMP-2的功能，例如TIMP-2对MT-MMP1活性的抑制作用(Will等，Biol Chem.1996年7月，19；271(29)17119-23)；或者TIMP-2与MT-MMP的结合以及TIMP-2对明胶酶活性的抑制(Sato等，FEBS Lett.1996年9月，9；393(1)101-4)，例如通过反相酶谱(例如在Oliver等，Anal.Biochem.244，161-166(1997)中所述)。
本发明还包括无细胞分析法。此分析法包括一种形式的TIMP-2(例如全长多肽、所述多肽的生物活性片段或者包含所有或全部所述多肽的融合蛋白)与测试化合物接触，以及测定测试化合物结合所述多肽的能力。如上所述，可以直接或间接测定测试化合物与所述多肽的结合。在一个实施方案中，分析法包括将所述多肽与结合该多肽的已知化合物接触以便形成分析混合物、将分析混合物与测试化合物接触、以及测定测试化合物与所述多肽相互作用的能力，其中测定测试化合物与所述多肽相互作用的能力包括测定测试化合物与已知化合物相比优先结合所述多肽的能力。
本发明的无细胞分析法适用于膜结合形式的多肽或其可溶性片段。在包含膜结合形式多肽的无细胞分析法的情况下，可以利用增溶剂，从而膜结合形式的多肽可以保持在溶液中。此种增溶剂的实例包括非离子去污剂，例如n-辛基葡糖苷、n-十二烷基葡糖苷、n-十二烷基麦芽糖苷、辛酰基-N-甲基葡糖胺、癸酰基-N-甲基葡糖胺、Triton X-100、Triton X-114、Thesit、异十三烷基聚乙二醇醚、3-[(3-胆酰胺丙基)二甲铵基]-1-丙磺酸(CHAPS)、3-[(3-胆酰胺丙基)二甲铵基]-2-羟基-1-丙磺酸(CHAPSO)或者N-十二烷基-N，N-二甲基-3-铵基-1-丙磺酸。
在上述本发明分析法的多种实施方案中，可以将多肽固定化以便利于从非复合形式的多肽中分离出与结合分子结合的复合形式多肽以及适应分析法的自动化。测试化合物与多肽的结合或者在候选化合物存在和缺乏条件下多肽与结合分子的相互作用可以在适于包含试剂的任何容器中实现。此类容器的实例包括微量滴定板、试管和微量离心管。在一个实施方案中，提供了这样的融合蛋白，即加入了一个允许一种或两种蛋白质结合至基质的结构域。例如，谷胱甘肽-S-转移酶融合蛋白可以被吸附到谷胱甘肽琼脂糖珠(Sigma Chemical；St.Louis，Mo.)或者谷胱甘肽衍生化的微量滴定板上，然后将它们与测试化合物或者测试化合物和非吸附结合蛋白质或多肽混合，并在有利于复合物形成的条件下(例如在生理盐度和pH的条件下)孵育混合物。孵育后，洗涤珠或微量滴定板孔以除去任何未结合成分，然后如上所述直接或间接测定复合物的形成。备选地，将复合物从基质上分离下来，并使用标准技术测定上述多肽的结合水平或活性水平。
在本发明的筛选分析法中，还可使用将蛋白质固定至基质上的其它技术。例如，可以使用生物素和链亲和素的缀合作用将上述多肽或其结合分子固定化。生物素化的本发明多肽或靶标分子可以使用本领域众所周知的技术(例如生物素化试剂盒，Pierce Chemicals；Rockford，Ill.)从生物素-NHS(N-羟基-琥珀酰亚胺)制备，并且固定至链亲和素包被的96孔板(Pierce Chemical)的孔中。备选地，可以将与多肽或结合分子发生反应但不干扰本发明多肽与其结合分子结合的抗体衍生化至板的孔中。通过抗体结合可以在孔中捕捉到未结合的结合蛋白或本发明多肽。检测此类复合物的方法，除了上述检测GST-固定化复合物的那些方法以外，还包括使用与上述多肽或结合分子发生反应的抗体进行的复合物的免疫检测以及依赖于检测与多肽或结合分子结合的酶活性的酶联分析法。
本发明还提供了筛选预防和/或抑制和/或延缓β细胞衰竭的化合物的方法，其包括检测在所述化合物存在或缺乏条件下由宿主分泌的可溶性TIMP-2，其中预防和/或抑制和/或延缓β细胞衰竭的化合物是在其存在下由宿主分泌的TIMP-2水平发生变化的化合物。
宿主可以是培养中的代表β细胞的模型细胞，或者是可以用作β细胞衰竭模型的动物。
本发明还提供了蛋白质TIMP-2的用途，其用于筛选预防和/或抑制β细胞衰竭的化合物的靶标和/或标志。
根据本发明的诊断、监测和患者筛选方法基于源自个体的液体样品。与本领域已知的方法不同，在这些方法中通过使用特异性结合试剂从该液体样品中特异性测定TIMP-2。
特异性结合试剂为例如TIMP-2受体或抗TIMP-2抗体。本领域技术人员会意识到，术语特异性用于指样品中存在的其它生物分子与TIMP-2特异性结合试剂没有明显的结合。低于5％水平的交叉反应性被认为是不明显的。
优选地，特异性结合试剂为与TIMP-2反应的抗体。术语抗体指多克隆抗体、单克隆抗体、此类抗体片段以及包含抗体结合结构域的基因构建体。通过本技术领域当前水平的方法，例如如Tijssen(Tijssen，P.，Practiceand theory of enzyme immunoassays 11(1990)全文，特别是第43-78页；Elsevier，Amsterdam)所述的方法可产生抗体。如本发明所公开，使用了在兔中产生的多克隆抗体。然而，很明显还可以使用来自不同物种，例如大鼠或豚鼠的多克隆抗体以及单克隆抗体。由于单克隆抗体可以以任何所需量产生并具有稳定的特性，因此在开发临床常规分析法中它们代表着理想的工具。另一优选实施方案为根据本发明方法的抗TIMP-2单克隆抗体的产生和用途。
现在，本领域的技术人员会意识到，TIMP-2已经用做诊断β细胞衰竭的标志，备选的方法也可以用于达到与本发明成就相比的结果。例如，可以使用产生抗体的备选策略。其中，此类策略包括代表着TIMP-2表位的合成肽用于免疫的用途。备选地，也可以使用称作DNA疫苗接种的DNA免疫。
为了测定，将从个体得到的液体样品与TIMP-2特异性结合试剂在适于结合试剂-TIMP-2复合物形成的条件下接触。此类条件不需要特别指明，因为本领域技术人员在不需要任何创造性工作的情况下就能够轻易地鉴定出此类孵育条件。
作为本发明公开方法的最后步骤，测定复合物的数量并将其与β细胞衰竭的诊断或上文所述的各个对照相关联。本领域技术人员会意识到，存在多种测量特异性结合试剂-TIMP-2复合物数量的多种方法，这些方法详细描述于相关教科书中(参考例如Tijssen P.，同前，或者Diamandis等编，(1996)Immunoassay，Academic Press，Boston)。
优选地，在夹心型分析形式中检测TIMP-2。在此测定法中，第一个特异性结合试剂用于在一面捕捉TIMP-2，标记有直接或间接检测标记的第二个特异结合试剂用于另一面。
在另一实施方案中，通过测定液体样品中TIMP-2的活性测定了液体样品中的TIMP-2。当监测糖尿病进展时，将液体样品中的TIMP-2活性与β细胞衰竭中的TIMP-2活性相关联，当监测治疗效果时，将液体样品中的TIMP-2活性与缺乏治疗情况下TIMP-2的活性相关联，或者将液体样品中的TIMP-2活性与β细胞衰竭诊断相关联。
优选地，使用上文所述形成的TIMP-2与结合试剂的复合物测定TIMP-2的活性。
如上所述，令人惊奇地发现，可以从源自各个样品的液体样品测定TIMP-2。在诊断β细胞衰竭中应用TIMP-2标志不需要使用组织和生物活检样品。
在优选的实施方案中，使用血清作为液体样品材料来实践本发明方法。
在进一步优选的实施方案中，使用血浆作为液体样品材料来实践本发明方法。
在进一步优选的实施方案中，使用全血作为液体样品材料来实践本发明方法。
虽然将常规蛋白质组学方法应用于组织样品导致鉴定出对于所选择组织的许多潜在的候选标志，但是令人惊奇的是本发明的发明人已经可以在体液样品中监测蛋白质TIMP-2。甚至更加令人惊奇的是他们已经证明源自个体的此液体样品中TIMP-2的存在可以与β细胞衰竭诊断相关联。
具有极大优点的抗TIMP-2抗体可以用于已建立的方法中，例如用于β细胞衰竭原位方法、活组织检查方法或者免疫组织学方法。
优选地，抗TIMP-2抗体可用于定性(TIMP-2存在与否)或定量(测定TIMP-2数量)免疫分析法中。
已经证实，测定蛋白质TIMP-2的水平在β细胞衰竭和糖尿病领域是非常有利的。因此，在进一步优选的实施方案中，本发明涉及蛋白质TIMP-2的用途，其用作对源自个体的液体样品进行β细胞衰竭诊断的标志分子。
术语标志分子用于表明，所测定的个体体液中分析物TIMP-2水平的变化标志着β细胞衰竭的存在。
优选地，在II型糖尿病的早期诊断中使用新标志TIMP-2。
特别优选地，在葡萄糖耐受的早期诊断中使用新标志TIMP-2。
特别优选地，在糖尿病疾病进展的监测中使用新标志TIMP-2。
蛋白质TIMP-2自身的使用代表着β细胞衰竭诊断这一挑战性领域的显著进步。将TIMP-2测定与其它已知的糖尿病标志(如胰岛素)或者其它仍有待发现的β细胞衰竭标志的组合导致进一步改进。因此，在进一步的实施方案中，本发明涉及作为糖尿病、优选β细胞衰竭标志分子的用途，其与糖尿病、优选β细胞衰竭的另一个标志分子组合用于对源自个体的液体样品进行糖尿病、优选β细胞衰竭的诊断。可以与β细胞衰竭测定相组合的、优选的所选择其它糖尿病标志为胰岛素、前胰岛素和/或C-肽。
通常，在特异性结合分析法(例如免疫分析法)领域中的诊断试剂最好以试剂盒的形式提供，所述试剂盒包含开展分析所需要的特异结合试剂和辅助试剂。因此，本发明还涉及免疫学试剂盒，其包含至少一种TIMP-2特异性结合试剂和用于测定TIMP-2的辅助试剂。
评价新标志TIMP-2的临床效果的一种方式是测定依赖外源胰岛素注射的10名糖尿病患者中的TIMP-2水平以及将其与所测定的具有正常β细胞功能的10名患者的TIMP-2水平相比较。
对于统计学分析，开展标准Student t-检验，数值＜0.05为具有显著性。
测试的精确度可以通过其接受者操作特性(receiver-operatingcharacteristics(ROC))(由其参见Zweig，M.H.和Campbell，G.，Clin.Chem.39(1993)561-577)来描述。ROC图是源自将判断阈值在全部所观察数值范围内连续变化的所有灵敏度/特异性对的曲线。
实验室测试的临床工作性能取决于诊断准确度或者将受试者正确归类于临床上相关亚群的能力。测试的诊断准确度测定其正确区分所研究受试者的能力。此类情况为例如健康和疾病。
在每一情况下，ROC图通过绘制全部范围判断阈值的灵敏度对1-特异性来图示两种分布间的重叠。y-轴为灵敏度或者真阳性分数[定义为(真阳性测试结果数)/(真阳性测试结果数+假阴性测试结果数)]。这还称作疾病或状况存在的确实性。其是从患病亚群单独计算出来的。x-轴为假阳性分数或者1-特异性[定义为(假阳性结果数)/(真阴性结果数+假阳性结果数)]。它是特异性的指标并且完全从非患病亚群中计算出来的。由于真阳性分数和假阳性分数是通过来自不同亚群的测试结果完全分别计算的，所以ROC不依赖于样本中的患病数。ROC图上的每一个点代表着对应于特定判断阈值的灵敏度/-特异性对。具有完美差别的测试(在结果的两种分布间没有重叠)具有穿过左上角的ROC图，其中真阳性分数为1.0或100％(完美灵敏度)，并且假阳性分数为0(完美特异性)。对于没有差别(对于两个群体分布结果相同)的测试，理论图为从左下角至右上角的45°对角线。大多数的图处于这两种极端情况之间。(如果ROC图完全处于45°对角线之下，这可以通过将“确定性”标准从“大于”颠倒至“小于”来容易地矫正，反之亦然。)从定性上看，图越接近于左上角，则测试的总体准确度越高。
对实验室测试的准断准确度定量的一个方便目标是通过单一数字表示其表现性能。最普通的综合测定是ROC图下的面积。根据惯例，该面积常常≥0.5(如果不是这样，可以将判定标准颠倒使其符合)。数值在1.0(两个群体的测试数值完全分开)和0.5(两个群体的测试数值之间没有出现分布差别)范围内。面积不仅依赖于图的特定部分(如最接近对角线的点或者90％特异性时的敏感度)，还依赖于整个图。这就是对ROC图是多么接近完美图(面积＝1.0)的定量性、描述性表示。
还要求保护的是基本如上所述、特别是关于下面实施例的方法、用途和试剂盒。
下面提供的实施例、参考资料、序列表以及附图
可以帮助理解本发明，但本发明的真正范围是所附权利要求所提出的范围。应当理解，在不违背本发明精神的情况下可以对所提出的方法进行修改。
实施例为了鉴定由INS-1(Asfari M，Janjic D，Meda P，Li G，Halban PA，Wollheim CB.Establishment of 2-mercaptoethanol-dependentdifferentiated insulin-secreting cell lines.Endocrinology.1992年1月；130(1)167-78)或RINm5f胰岛素瘤细胞(Praz GA，Halban PA，Wollheim CB，Blondel B，Strauss AJ，Renold AE.Regulation ofimmunoreactive-insulin release from a rat cell line(RINm5F)Biochem J.1983年2月，15；210(2)345-52)分泌的蛋白质，我们采用了两种方法(i)通过差速沉降将细胞分级分离成亚细胞区室，然后使用MALDI-TOF质谱基于它们的肽质量指纹鉴定蛋白质，以及(ii)通过肝素色谱富集糖蛋白，然后进行一维SDS-PAGE，并通过使用液相色谱串联质谱对来自蛋白质消化物的胰蛋白酶消化肽段分析来鉴定蛋白质(基于蛋白质序列标签鉴定)。
这两种纯化策略的组合可以使我们提高鉴定细胞区室以及培养细胞的培养液中的蛋白质的效率。
细胞培养通过将β细胞慢性暴露于高葡萄糖/脂肪酸(FA)下再现β细胞衰竭的特征，表明高脂血症和高血糖症促成了β细胞的代偿失调。用10mM葡萄糖和0.5mM棕榈酸组合预处理24h的INS-1E和RINm5f细胞用于这些实验。
实施例1通过2DE电泳对细胞区室中的信号蛋白进行作图和鉴定以及通过MALDI-MS鉴定如别处所述(Peyrl A，Krapfenbauer K，Slave I等，PROTEOMICS 3(9)1781-1800，2003年9月；Fountoulakis M.，Langen H.，Anal Biochem.250(1997)153-156)，将从每一细胞系制备的样品进行2-DE电泳。2-DE电泳基本上如所报道(Langen，H.，Roeder，D.，Juranville，J.-F.，Fountoulakis，M.，Electrophoresis 1997，18，2085-2090)进行。使用膜过滤管(Millipore，Art.No.UFV4BGC25)将样品脱盐，并将2.0mg应用于固定化的pH 3-10非线性梯度条(strip)(Amersham，Pharmacia Biotechnology，Uppsala，瑞典)上，应用于条的碱性端和酸性端。在200V将蛋白质聚焦，之后以2V/分钟将电压逐渐增加至5000V。在5000V继续聚焦24h。在12％聚丙烯酰胺凝胶(Biosolve，Walkinswaard，荷兰)上开展第二维分离。在容纳12块凝胶的Ettan DALT II系统(Amersham，PharmaciaBiotechnology，Uppsala，瑞典)中，以50mA/凝胶将凝胶(180×200×1.5mm)电泳。在含5％磷酸的50％甲醇中将蛋白质固定12h，之后用胶体考马斯蓝(Novex，San Diego，CA)将凝胶染色24h。通过涵盖10-200kDa范围的蛋白质标准(Gibco，Basel，瑞士)确定分子量。使用了IPG条(AmershamPharmacia，Uppsala，瑞典)供应商提供的PI值。用H2O将凝胶脱色，并在AGFA DUOSCAN光密度计中扫描。使用Photoshop(Adobe)和PowerPoint(Microsoft)记录电子图像。
MALDI-MS如所述(Langen，H.，Roeder，D.，Juranville，J.-F，Fountoulakis，M.，Electrophoresis 1997，18，2085-2090)并稍加修改进行MS分析。简言之，将斑点切下、用0.1M碳酸氢铵中的30％(v/v)乙腈脱色并在真空离心(Speedvac)蒸发器中干燥。将干燥的凝胶片用含50ng胰蛋白酶(Promega，Madison，WI，美国)的5μl 5mM碳酸氢铵(pH 8.8)重新膨胀，离心1分钟并且在室温放置大约12h。消化之后，加入5μl水，10分钟后加入含有0.3％三氟乙酸的75％乙腈，离心1分钟并将内容物涡旋20分钟。对于MALDI-MS，将1.5μl所分离液体与1μl的50％乙腈、0.1％TFA(溶于水)中的α-氰基肉桂酸混合并应用到MALDI靶上。在配备有反射器和延时引出的飞行时间质谱仪(Ultraflex，Bruker，Bremen，德国)中分析样品。Des-Arg-1缓激肽(Sigma)和ACTH(18-38)(Sigma)用作标准肽。对样品进行内部校准。将肽质量与SWISS-Prot数据库中来自所有物种的所有肽的理论肽质量匹配。
MALDI质谱的峰注释为了确定仪器的基线，使用低通中值参数样条过滤器(low-pass medianparametric spline filter)将质谱数据两次过滤。来自基线的平滑剩余平均标准差用于评估数据中的仪器噪声水平。在基线校正和高于噪声的水平调整中的数据尺度改变之后，与基线具有最大偏差的数据点用作产生非线性(Levenberg-Marquardt)数据拟合程序以检测可能的肽峰。具体而言，拟合程序试图产生被峰高、分辨率和单一同位素质量参数化最佳拟合平均理论肽同位素分布。以通常方式通过跟踪σ值确定显著拟合的收敛性。在收敛之后，应用bootstrap程序使用带有1/3数据点随机交换的十六次重复来估计所确定参数的误差。从数据中扣除所得到的拟合，将拟合附近的噪声水平调整至外推噪声水平与来自峰值拟合的偏差的总和，并且重复该过程以便找到下一个峰，直到找到五次以上高于噪声水平的候选峰。当已经找到多于50个数据峰，则停止该过程。使用从检测到的内标准峰的线性外推，校正飞行时间与质量的零级和一级转换，并且估计了对于单一同位素质量的置信区间形成峰和标准的质量准确度。
光谱峰与计算机(in-silico)蛋白质消化物的概率匹配将质谱所列的峰质量与全部蛋白质序列数据库的理论消化物相比较。对于每一理论消化物，计算了[1-II(1-N P(pi))]cMatches，其中N为理论消化物中肽数量，P(pi)为与峰的单一同位素质量置信区间匹配的肽数量除以序列数据库中全部肽数量，并且cMatches为消化物和质谱间的匹配数。可见，该数值与在消化物和光谱间得到假阳性匹配的概率成比例。为了得到产生匹配的高显著性谱峰，将概率值进一步过滤。在第一轮鉴定之后，将同一条件下所获得的质谱的鉴定偏差用于第二和第三次飞行时间与质量的转换。所得到的质量值的绝对偏差大多数小于10ppm。然后，将这些质量值用于最后一轮匹配，其中具有Pmism小于0.01/NProteins(带有Bonferoni修正的1％的显著水平)的所有匹配均可接受。
实施例2通过肝素柱从培养基中富集假定的分泌蛋白并通过LC-MS鉴定大多数具有信号功能的蛋白质为糖基化的，基于该观察结果可见，肝素琼脂糖柱的特性使得其可以作为非常通用的工具来分离许多糖基化的蛋白质，例如具有信号功能的蛋白质、生长因子、凝固蛋白和类固醇受体。肝素琼脂糖柱中的配体是自然存在的硫酸化糖胺聚糖，其是从猪肠粘膜天然蛋白聚糖提取的。肝素由交互的糖醛酸和D-葡糖胺单位组成，其中大多数被一个或两个硫酸基团取代。固定化的肝素与蛋白质具有两种主要的相互作用模式。肝素可作为亲和配体，例如在与凝血因子的相互作用中。由于肝素具有阴离子的硫酸基团，所以其还是高容量的阳离子交换剂。在本专利中，使用注射器作为柱子。
对于这两种情况，推荐的洗脱条件包括使用2M NaCl的分级梯度增加离子强度，其中结合缓冲液为10mM磷酸钠，pH～7，并且洗脱缓冲液为10mM磷酸钠，2M NaCl，pH～7。
样品制备将25ml培养基于4℃、10.000g离心10分钟，以去除细胞和其它不溶物质。调整样品溶液为结合缓冲液的组成成分。这可以通过加入25ml的20mM磷酸钠缓冲溶液(pH＝7)实现。在马上应用至柱上之前，将样品离心。对于肝素柱(HiTrap Heparin HP，1ml，目录号17-0406-01，Amersham)的卸载体积为每1ml柱5ml。
通过肝素色谱富集蛋白质的操作程序
1.用结合缓冲液装满25ml注射器。除此之外，还要去掉塞子并且使用所提供的结合器“drop to drop”将柱与注射器连接以避免向柱中注入空气。
2.取下扭断(twist-off)端并用10倍柱体积的结合缓冲液冲洗肝素琼脂糖以平衡柱。
3.然后如上所述制备样品，并且使用适合luer连接器的注射器将样品注入柱中。
4.然后，用5倍体积的结合缓冲液洗涤柱，或者直至流出物中没有物质。
5.使用5倍柱体积的洗脱缓冲液通过分级梯度洗脱样品。
6.最后，使用POROS R2柱将纯化的级分脱盐。
将从肝素柱洗脱的样品级分使用反相色谱(POROS R2，PerSeptiveBiosytems)脱盐并使用真空离心法干燥。干燥之后，将样品溶解于下述的样品缓冲液中并通过Bradford方法(BioRad potein assay，BioRad)测定蛋白质含量。
1D电泳上样和电泳条件将15μg样品溶解于20μl样品缓冲液(对于10μl的总体积为样品，2.5μl NuPAGE LDS样品缓冲液(4×)，1.0μl NuPAGE还原剂(10×)并用去离子水补足至6.5μl)，并且在加到凝胶上之前，于70℃加热10分钟。上面的缓冲液室中加入200ml 1×NuPAGE SDS电泳缓冲液(通过向950ml去离子水中加入50ml 20×NuPAGE MES SDS电泳缓冲液来制备MES SDS电泳缓冲液)。将200μl/200ml的抗氧化剂作为还原剂加入到上面的缓冲液室中。最后，在下面的缓冲液室中加入600ml 1×NuPAGE SDS电泳缓冲液并且在10％BT线性梯度聚丙烯酰胺凝胶(NuPAGE，Invitrogen)上室温200V恒压电泳35分钟。
染色和脱色方法用含5％(v/v)磷酸的50％(v/v)甲醇将蛋白质固定12小时，之后用胶体考马斯蓝(Novex，San Diego，CA，美国)染色24小时。用水将凝胶脱色，并用标准的平底扫描仪扫描。使用Photoshop(Adope)和PowerPoint(Microsoft)软件处理图像。使用Image Master 2D Elite软件(AmershamPharmacia Biotechnology)将蛋白质带定量。
LC-MS为了鉴定所分泌的蛋白质，我们还使用称作多维蛋白质鉴定技术(MudPIT)的LC/MS系统开展了蛋白质组学研究，LC/MS系统组合了多维液相色谱和电喷雾离子化串联质谱。为了分离通过肝素柱富集的所消化蛋白质，在两阶段柱中将多维液相色谱方法与强阳离子交换(SCX)树脂和反相树脂相结合。每一MudPIT分析一式两份进行，并且分离是可重复性的，两次分析间差别在0.5％之内。此外，已经表明，在复杂的肽混合物中最多的和最少的蛋白质/肽间的动态范围为10000-1。通过改进样品制备和分离，该方法增强了通过鉴定级分(富集有分泌蛋白)中蛋白质进行的全面的蛋白质组学分析。MudPIT系统包括4cm×50μm(内径)×5μm C18 microSPE预柱(用于样品浓缩)和85cm×15μm(内径)×3μm C18填充毛细管柱(用于对非常少数量的样品进行高效梯度反相纳米级LC分离)。micro-SPE阶段允许以大约8μL/min的速度将溶液加到nanoLC柱上，其中在＜2分钟内能加载10μL溶液并且样品损失＜5％(由于注射器和阀结合器)。在10,000psi的恒压下进行分离。用3μm长的颗粒填充的内径为15μm的毛细管提供了大约103的分离峰容量。用零死体积的不锈钢接头连接至柱，该接头适合于由10μm(内径)×150μm(外经)的熔融硅毛细管和内径大约2μm的口构成的、用于洗脱肽高效电离的可更换nanoESI发送器。ESI源与FTICRMS或者离子陷MS/MS相连用于肽/蛋白质的检测和鉴定。FTICR质谱仪用于基于高准确度质量测定和使用相对保留时间(RRT)信息的单一阶段MS，并且Finnigan离子陷质谱仪(LCQ XP，ThermoQuest Corp.，San Jose，CA)用于MS/MS。
实施例3抗β细胞衰竭标志TIMP-2抗体的产生产生了抗β细胞衰竭标志TIMP-2的多克隆抗体，用于通过免疫检测分析法(例如Western印迹和ELISA)测定血清和血浆和体液中的TIMP-2水平。
在大肠杆菌(E.coli)中的重组蛋白表达为了产生抗TIMP-2的抗体，重组表达了蛋白质以得到抗原。应用RTS 100表达系统和大肠杆菌的组合进行表达。在第一步中，分析DNA序列，并使用“ProteoExpert RTS E.coli HY”系统得到关于高产量cDNA沉默突变体和各个PCR引物序列的推荐。这是一种基于互联网的商业服务(www.proteoexpert.com)。使用所推荐的引物对、“RTS 100 E.coli LinearTemplate Generation Set，His-tag”(Roche Diagnostics GmbH，Mannheim，德国，目录号3186237)从cDNA产生线性PCR模板并对编码TIMP-2蛋白质的核苷酸序列进行体外转录和表达。为了进行Western印迹检测和后续纯化，所表达的蛋白质包含His标签。鉴定了最好的表达载体。从PCR至表达以及检测的所有步骤均根据生产商的说明书进行。按照生产商的说明书，将含有必需的T7调节区(启动子、核糖体结合位点和T7终止子)的各个PCR产物克隆进入pBAD TOPO载体(Invitrogen，Karlsruhe，德国，目录号K 4300/01)。为了使用T7调节序列进行表达，将构建体转化进入大肠杆菌BL 21(DE 3)(Studier，F.W.等，Methods Enzymol.185(1990)60-89)并将所转化细菌培养于1l培养基中以表达蛋白质。
按照标准程序在Ni螯合柱上纯化His-TIMP-2融合蛋白。简言之，将1l含有表达His-TIMP-2融合蛋白的表达载体的细菌培养物离心。将细胞沉淀重悬于裂解缓冲液(含有磷酸盐，pH 8.0，7M氯化胍，咪唑和硫甘油)中并使用Ultra-Turrax匀浆。通过高速离心去除不溶物质，并且上清液应用到Ni螯合色谱柱上。用几倍柱床体积的裂解缓冲液洗涤柱，然后用含有磷酸盐(pH 8.0)和尿素的缓冲液洗涤。最后，在酸性条件下用包含SDS的磷酸盐缓冲液将结合的抗原洗脱下来。
抗蛋白质TIMP-2的单克隆抗体的产生a)免疫小鼠用100μg TIMP-2经腹膜内初次免疫12周龄A/J小鼠。6周后，以每月一次的间隔再次经腹膜内免疫两次。在该过程中，向每只小鼠施用100μg吸附至氢氧化铝和109百日咳杆菌(Bordetella pertussis)的TIMP-2。之后，分别在融合前的第3天和第2天使用100μg溶于PBS缓冲液中的TIMP-2经静脉进行最后两次免疫。
b)融合和克隆按照Galfre，G.和Milstein，C(Methods in Enzymology 73(1981)3-46)的方法将按照a)所免疫小鼠的脾脏与骨髓瘤细胞融合。在该过程中，大约1×108个免疫小鼠脾细胞与2×107个骨髓瘤细胞(P3X63-Ag8-653，ATCCCRL1580)混合并离心(4℃，300g，10分钟)。然后，用不含胎牛血清(FCS)的RPMI 1640培养基洗涤细胞一次并在50ml圆锥管中于400g再次离心。丢弃上清液，通过敲打使细胞沉淀逐渐松散，加入1ml PEG(分子量为4000，Merck，Darmstadt)并用移液管上下吸吹混合。于37℃水浴1分钟之后，于室温下在4-5分钟内逐滴加入5ml不含FCS的RPMI 1640。然后，在大约1分钟内逐滴加入5ml含10％FCS的RPMI 1640，完全混合，用培养基(RPMI 1640+10％FCS)加至50ml，随后在4℃下于400g离心10分钟。将所沉淀细胞置于含有10％FCS的RPMI 1640培养基中，并散布于次黄嘌呤-重氮丝氨酸选择培养基(100mmol/l次黄嘌呤，1μg/ml重氮丝氨酸，溶于RPMI 1640+10％FCS)中。向培养基中加入100U/ml的白细胞介素6作为生长因子。大约10天后，检测初级培养物是否含有特异抗体。通过荧光激活的细胞分选仪的方法将TIMP-2阳性的初级培养物克隆入96-孔细胞培养板中。在该过程中，再次加入100U/ml的白细胞介素6作为生长添加剂。
c)从细胞培养上清液中分离免疫球蛋白以1×105个细胞/ml RPMI 1640培养基(含10％FCS)的密度将杂交瘤细胞接种，并在发酵罐(Thermodux Co.，Wertheim/Main，型号MCS-104XL，定购号144-050)中增殖7天。
在培养上清液中得到了平均浓度为100μg/ml的单克隆抗体。通过蛋白质化学的常规方法(例如根据Bruck，C等，Methods in Enzymology 121(1986)587-695)从培养上清液中纯化该抗体。
多克隆抗体的产生a)免疫为了进行免疫，新鲜制备蛋白质溶液(100μg/ml蛋白质TIMP-2)和弗氏完全佐剂比例为1∶1的乳液。在第1、7、14以及30、60和90天用1ml乳液免疫每一只兔子。如实施例3和4所述，抽取血液并将所得到的抗TIMP-2血清用于进一步实验。
b)通过使用辛酸和硫酸铵顺序沉淀从兔血清中纯化IgG(免疫球蛋白G)用4体积的醋酸盐缓冲液(60mM，pH 4.0)将1体积的兔血清稀释。用2M Tris碱将pH调节至4.5。在剧烈搅动的情况下，将辛酸(25μl/ml稀释样品)逐滴加入。30分钟后离心(13,000×g，30分钟，4℃)样品，弃沉淀并收集上清液。加入2M Tris碱将上清液的pH调节至7.5并过滤(0.2μm)。
通过在剧烈搅动的情况下将4M硫酸铵逐滴加入直至2M的终浓度，将上清液中的免疫球蛋白沉淀出来。通过离心(8000×g，15分钟，4℃)收集所沉淀的免疫球蛋白。
弃去上清液。将沉淀溶于10mM NaH2PO4/NaOH，pH 7.5，30mMNaCl中并彻底透析。将透析物离心(13,000×g，15分钟，4℃)并过滤(0.2μm)。
多克隆兔IgG的生物素化在10mM NaH2PO4/NaOH，pH 7.5，30mM NaCl中将多克隆兔IgG调至10mg/ml。以每ml IgG溶液50μl的比例加入生物素-N-羟基琥珀酰亚胺(以3.6mg/ml的浓度溶于DMSO)。室温30分钟后，样品通过Superdex 200(10mM NaH2PO4/NaOH，pH 7.5，30mM NaCl)色谱分离。收集含有生物素化IgG的级分。按照同一程序将单克隆抗体生物素化。
多克隆兔IgG的地高辛化在10mM NaH2PO4/NaOH，30mM NaCl，pH 7.5中将多克隆兔IgG调至10mg/ml。以每ml IgG溶液50μl的比例加入地高辛-3-O-甲羰基-ε-氨基己酸-N-羟基琥珀酰亚胺酯(Roche Diagnostics，Mannheim，德国，目录号1333 054)(以3.8mg/ml的浓度溶于DMSO)。室温30分钟后，样品通过Superdex200(10mM NaH2PO4/NaOH，pH 7.5，30mM NaCl)色谱分离。收集含有地高辛化IgG的级分。按照同一程序将单克隆抗体地高辛化标记。
实施例4Western印迹将通过肝素柱从培养基富集和分离的蛋白质样品(上述)溶解于由10mM Tris-HCl(pH 7.5)，150mM NaCl，0.05％Tween 20，1％SDS组成的样品缓冲液中，并于4℃，12,000g离心10分钟。通过Bradford方法，使用从广范围已知牛血清白蛋白产生的标准曲线上测定上清液的蛋白质浓度。用样品缓冲液(60mM Tris-HCl，2％SDS，0.1％溴酚兰，25％甘油和14.4mM 2-巯基乙醇，pH 6.8)固定样品并在70℃孵育5分钟之后，用12.5％均质ExcelGel SDS凝胶(Amersham Bioscience)分离样品并电转移至硝化纤维素膜上。在封闭溶液(10mM Tris-HCl，pH 7.5，150mM NaCl，0.05％Tween 20和5％脱脂奶粉)中室温孵育之后，将膜与兔抗大鼠的抗体室温孵育2小时。用洗涤溶液(0.3％Tween 20，溶于tris缓冲盐)洗涤10分钟(3次)之后，将膜分别与辣根过氧化物酶标记的抗兔IgG(H+L)、抗小鼠IgGi和抗小鼠IgG2a(Southern Biotechnology Associates，Inc.，Birmingham，AL)室温孵育1小时。将膜洗涤10分钟(3次)，并使用增强化学发光试剂(Western Lightning TM，PerkinElmer Life Sciences，Inc.，Boston，MA)按照生产商的方法在X-光胶片上将抗原-抗体复合物显色。
实施例5.1测定人血清和血浆样品中TIMP-2的ELISA为了检测人血清或血浆中的TIMP-2，开发了夹心ELISA。为了捕获和检测抗原，将抗TIMP-2多克隆抗体(见实施例2)等分试样分别与生物素和地高辛缀合。
链亲和素包被的96-孔微量滴定板与100μl生物素化抗TIMP-2多克隆抗体孵育60分钟，多克隆抗体以10μg/ml的浓度溶于10mM磷酸盐，pH 7.4，1％BSA，0.9％NaCl和0.1％Tween 20中。孵育之后，用0.9％NaCl，0.1％Tween 20将板洗涤三次。然后与作为标准抗原的系列稀释的重组蛋白(见实施例2)或者与来自患者的稀释的血浆样品孵育2小时。在TIMP-2结合之后，用0.9％NaCl，0.1％Tween 20洗涤板三次。将板与100μl地高辛化抗TIMP-2多克隆抗体孵育60分钟以特异性检测结合的TIMP-2，其中地高辛化抗TIMP-2多克隆抗体以10μg/ml的浓度溶于10mM磷酸盐，pH 7.4，1％BSA，0.9％NaCl和0.1％Tween 20中。之后，洗涤板三次以去除未结合的抗体。在下一步骤中，将孔与10mM磷酸盐，pH7.4，1％BSA，0.9％NaCl和0.1％Tween 20中的20mU/ml抗地高辛-POD缀合物(Roche Diagnostics GmbH，Mannheim，德国，目录号1633716)孵育60分钟。随后，用同样的缓冲液将板洗涤三次。为了检测抗原-抗体复合物，将孔与100μl ABTS溶液(Roche Diagnostics GmbH，Mannheim，德国，目录号11685767)孵育并在30-60分钟之后用ELISA读出器测定405nm下的OD。
实施例5.2血浆中TIMP-2的验证使用QUANTIKINE human TIMP-2 Immunoassay(R&D Systems，目录号DTM 200)验证作为β细胞衰竭生物标志的TIMP-2。分析按照生产商的说明书进行。
所有试剂、工作标准和样品如上所述制备。将板中多于的微板条拆掉。向每孔中加入100μL Assay Diluent RDlW。每孔中加入50μL标准、对照或样品*并用所提供的粘合条盖住各孔。将板在水平轨道摇床(0.12″轨道)上以500±50转/分室温孵育2小时。将板进行规划以便记录所分析的标准和样品。将每孔吸空并洗涤，重复该步骤3次，总共洗涤4次。为了得到较佳结果有必要在每一不骤完全去除液体。在最后一次洗涤之后，通过吸出或倾析去除任何残留洗涤缓冲液。将板翻过来并在干净的纸巾上吸干。每孔加入200μL TIMP-2缀合物。用新的粘合条盖住板并在摇床上室温孵育2小时。重复洗干/洗涤步骤。每孔加入200μL底物溶液并避光。在台面上将样品室温孵育30分钟。每孔加入50μL终止溶液。在30分钟内使用微孔板读出器在450nm下测定每孔的光密度。
实施例6患者数据的统计学分析通过测定10位依赖于外源胰岛素注射的糖尿病患者中新标志TIMP-2的水平并与10位被证明具有正常β细胞功能的患者中的TIMP-2水平相比较，来评估新标志TIMP-2的临床效用。通过标准Student′s t-检验进行统计学分析，数值＜0.05被认为具有显著性差异。
结果如下对照2.3ng/ml±0.539ng/mlI型糖尿病3.2ng/ml±0.891ng/ml，p＝0.0107(显著)II型糖尿病2.8ng/ml±1.133ng/ml，p＝0.00000299(非常显著)
IGT(葡萄糖耐受受损)2.9ng/ml±0.645ng/ml，p＝0.0464(显著)IFG(空腹血糖受损)2.5ng/ml±0.617ng/ml，p＝0.4798IFG+IGT2.8ng/ml±0.475ng/ml，p＝0.0731
序列表<110>弗·哈夫曼-拉罗切有限公司(F.Hoffmann-La Roche AG)<120>作为β细胞衰竭靶标/标志的TIMP-2<130>case 22663<160>2<170>PatentIn 3.2版<210>1<211>220<212>PRT<213>人<220>
<221>人TIMP-2<222>(1)..(220)<223>登录号P16035<400>1Met Gly Ala Ala Ala Arg Thr Leu Arg Leu Ala Leu Gly Leu Leu Leu1 5 10 15Leu Ala Thr Leu Leu Arg Pro Ala Asp Ala Cys Ser Cys Ser Pro Val20 25 30His Pro Gln Gln Ala Phe Cys Asn Ala Asp Val Val Ile Arg Ala Lys35 40 45Ala Val Ser Glu Lys Glu Val Asp Ser Gly Asn Asp Ile Tyr Gly Asn50 55 60Pro Ile Lys Arg Ile Gln Tyr Glu Ile Lys Gln Ile Lys Met Phe Lys65 70 75 80Gly Pro Glu Lys Asp Ile Glu Phe Ile Tyr Thr Ala Pro Ser Ser Ala85 90 95Val Cys Gly Val Ser Leu Asp Val Gly Gly Lys Lys Glu Tyr Leu Ile100 105 110Ala Gly Lys Ala Glu Gly Asp Gly Lys Met His Ile Thr Leu Cys Asp115 120 125
Phe Ile Val Pro Trp Asp Thr Leu Ser Thr Thr Gln Lys Lys Ser Leu130 135 140Asn His Arg Tyr Gln Met Gly Cys Glu Cys Lys Ile Thr Arg Cys Pro145 150 155 160Met Ile Pro Cys Tyr Ile Ser Ser Pro Asp Glu Cys Leu Trp Met Asp165 170 175Trp Val Thr Glu Lys Asn Ile Asn Gly His Gln Ala Lys Phe Phe Ala180 185 190Cys Ile Lys Arg Ser Asp Gly Ser Cys Ala Trp Tyr Arg Gly Ala Ala195 200 205Pro Pro Lys Gln Glu Phe Leu Asp Ile Glu Asp Pro210 215 220<210>2<211>220<212>PRT<213>褐家鼠(Rattus norvegicus)<220>
<221>大鼠TIMP-2<222>(1)..(220)<223>登录号P30121<400>2Met Gly Ala Ala Ala Arg Ser Leu Arg Leu Ala Leu Gly Leu Leu Leu1 5 10 15Leu Ala Thr Leu Leu Arg Pro Ala Asp Ala Cys Ser Cys Ser Pro Val20 25 30His Pro Gln Gln Ala Phe Cys Asn Ala Asp Val Val Ile Arg Ala Lys35 40 45Ala Val Ser Glu Lys Glu Val Asp Ser Gly Asn Asp Ile Tyr Gly Asn50 55 60Pro Ile Lys Arg Ile Gln Tyr Glu Ile Lys Gln Ile Lys Met Phe Lys65 70 75 80Gly Pro Asp Lys Asp Ile Glu Phe Ile Tyr Thr Ala Pro Ser Ser Ala
85 90 95Val Cys Gly Val Ser Leu Asp Val Gly Gly Lys Lys Glu Tyr Leu Ile100 105 110Ala Gly Lys Ala Glu Gly Asp Gly Lys Met His Ile Thr Leu Cys Asp115 120 125Phe Ile Val Pro Trp Asp Thr Leu Ser Ile Thr Gln Lys Lys Ser Leu130 135 140Asn His Arg Tyr Gln Met Gly Cys Glu Cys Lys Ile Thr Arg Cys Pro145 150 155 160Met Ile Pro Cys Tyr Ile Ser Ser Pro Asp Glu Cys Leu Trp Met Asp165 170 175Trp Val Thr Glu Lys Ser Ile Asn Gly His Gln Ala Lys Phe Phe Ala180 185 190Cys Ile Lys Arg Ser Asp Gly Ser Cys Ala Trp Tyr Arg Gly Ala Ala195 200 205Pro Pro Lys Gln Glu Phe Leu Asp Ile Glu Asp Pro210 215 220
权利要求
1.筛选与TIMP-2相互作用的化合物的方法，其包括步骤a)将蛋白质TIMP-2与化合物或多种化合物在允许所述的化合物或多种化合物与TIMP-2相互作用的条件下接触；和b)检测所述化合物或多种化合物与所述多肽的相互作用。
2.筛选预防和/或抑制和/或减弱β细胞衰竭的化合物的方法，其包括步骤a)将化合物与蛋白质TIMP-2接触；b)测定蛋白质TIMP-2的活性；其中抑制蛋白质TIMP-2活性的化合物是预防和/或抑制β细胞衰竭的化合物。
3.权利要求1和2中任意一项的方法，其还在步骤a)之前或者在步骤a)和b)之间包括将蛋白质TIMP-2固定化的步骤。
4.筛选预防和/或抑制和/或延缓β细胞衰竭的化合物的方法，其包括检测在所述化合物存在或缺乏条件下宿主分泌的可溶性TIMP-2的步骤，其中预防和/或抑制和/或延缓β细胞衰竭的化合物是在其存在下宿主分泌的TIMP-2水平发生变化的化合物。
5.蛋白质TIMP-2的用途，其用作筛选预防和/或抑制β细胞衰竭的化合物的靶标和/或标志。
6.监测糖尿病进展的方法，其包括步骤a)提供从个体得到的液体样品，b)将所述样品与TIMP-2特异性结合试剂在适合所述结合试剂与TIMP-2之间形成复合物的条件下接触，和c)将b)中形成的复合物的数量与β细胞衰竭中形成的复合物的数量相关联。
7.监测糖尿病治疗效果的方法，其包括步骤a)提供从针对糖尿病治疗的患者得到的液体样品，b)将所述样品与TIMP-2特异性结合试剂在适合所述结合试剂与TIMP-2之间形成复合物的条件下接触，和c)将b)中形成的复合物的数量与缺乏治疗情况下形成的复合物的数量相关联。
8.诊断β细胞衰竭的方法，其包括步骤a)提供从个体得到的液体样品，b)将所述样品与TIMP-2特异性结合试剂在适合所述结合试剂与TIMP-2之间形成复合物的条件下接触，和c)将b)中形成的复合物的数量与β细胞衰竭的诊断相关联。
9.监测糖尿病进展的方法，其包括步骤a)提供从个体得到的液体样品，b)测定所述样品中的TIMP-2活性，和c)将b)中的TIMP-2活性与β细胞衰竭中TIMP-2活性相关联。
10.监测糖尿病治疗效果的方法，其包括步骤a)提供从针对糖尿病治疗的患者得到的液体样品，b)测定所述样品中的TIMP-2活性，和c)将b)中的TIMP-2活性与缺乏治疗情况下的TIMP-2活性相关联。
11.诊断β细胞衰竭的方法，其包括步骤a)提供从个体得到的液体样品，b)测定所述样品中的TIMP-2活性，和c)将b)中的TIMP-2活性与β细胞衰竭的诊断相关联。
12.根据权利要求6-11中任意一项的方法，其特征还在于所述样品为血清。
13.根据权利要求6-11中任意一项的方法，其特征还在于所述样品为血浆。
14.根据权利要求6-11中任意一项的方法，其特征还在于所述样品为全血。
15.蛋白质TIMP-2的用途，其用作从得自于个体的液体样品诊断β细胞衰竭的标志分子。
16.蛋白质TIMP-2的用途，其用作从得自于个体的液体样品早期诊断II型糖尿病的标志分子。
17.根据权利要求16的用途，其中早期诊断是使用源自患有葡萄糖耐受的患者的样品做出的。
18.蛋白质TIMP-2的用途，其用于监测糖尿病进展。
19.蛋白质TIMP-2的用途，其用于监测糖尿病治疗效果。
20.蛋白质TIMP-2的用途，其在从源自个体的液体样品诊断β细胞衰竭中用作与至少一种用于β细胞衰竭的其它标志分子组合的用于β细胞衰竭的标志分子。
21.免疫学试剂盒，其包含至少一种TIMP-2特异性结合试剂和用于测定TIMP-2的辅助试剂。
22.基本如上所述、特别是关于前述实施例的方法、用途和试剂盒。
全文摘要
本发明涉及通过测定液体样品中的TIMP－2水平来监测疾病进展和诊断糖尿病中的β细胞衰竭，并且涉及筛选用于预防和/或治疗糖尿病的新化合物。
文档编号G01N33/573GK1993619SQ200580025614
公开日2007年7月4日 申请日期2005年7月19日 优先权日2004年7月28日
发明者A·克里斯滕, S·埃弗斯, K·克拉普费鲍尔, E·谢伯科娃 申请人:弗·哈夫曼-拉罗切有限公司