一种热稳定性及比酶活提高的碱性α-淀粉酶突变体的制作方法

文档序号:499670阅读:302来源:国知局
一种热稳定性及比酶活提高的碱性α-淀粉酶突变体的制作方法
【专利摘要】本发明公开了一种热稳定性及比酶活提高的碱性α-淀粉酶突变体及其制备方法和应用。它是在GenBank登录号为KF451925.1的碱性α-淀粉酶基因Amy703基础上,缺失其N端669个核苷酸(223个氨基酸),得到碱性α-淀粉酶突变体基因N-Amy703,将其转化大肠杆菌构建成基因工程菌,经诱导表达、纯化得到高热稳定性高比酶活的碱性α-淀粉酶突变体N-Amy703。突变体比酶活提高到170.15U/mg,是突变前的40倍;其在50℃的t1/2为28min,比突变前的t1/2提高了近4倍。同时其最适反应温度提高了10℃。本发明提供的N-Amy703酶学性质有大幅度改善,更适用于工业生产应用。
【专利说明】一种热稳定性及比酶活提高的碱性α-淀粉酶突变体

【技术领域】
[0001]本发明涉及一种热稳定性及比酶活提高的碱性α -淀粉酶突变体及其构建方法和应用,属于遗传工程【技术领域】。

【背景技术】
[0002]α -淀粉酶(EC 3. 2. I. I)属于糖苷水解酶13家族(GH13),能催化水解淀粉及相关多聚物内部的α-1,4-糖苷键,分布于植物、动物及微生物中。α-淀粉酶因能水解淀粉及相关多聚物产生α异头物的单糖或寡糖,或通过转糖苷作用形成α糖苷键,是最早实现工业化生产并且是迄今为止用途最广、产量最大的商品化酶,占全球酶制剂市场份额的25%?33%,尤其是酸性淀粉酶已广泛应用于淀粉原料液化、青贮饲料、白酒酿造、烘焙等工业化生产中。此外,在碱性溶液中表现出最佳活性的碱性α-淀粉酶可应用于造纸和纸浆工业中的淀粉改性,以及作为洗涤添加剂去除淀粉类污渍,作用日益突出。
[0003]由于在高温下反应具有减少微生物污染、增加底物溶解度及降低粘度等优点,工业生产过程一般要求在高温下进行。同时,比酶活较高的酶转化等量底物或产生等量产物所需要的酶更少,时间更短。
[0004]来自于Bacillus pseudofirmus 703的碱性α -淀粉酶Amy703 (氨基酸序列的GenBank登录号为AGT54942),其在pH 9. O,40°C时具有最高酶活,在碱性pH (8. O?10.5)条件下稳定,在50°C处理20min后,残余酶活为18. 5%,在大肠杆菌中诱导表达、Ni柱纯化后的比酶活为4. 93U/mgo但碱性α -淀粉酶Amy703的比酶活与热稳定性还需进一步提高,以满足工业生产提高效率节约能源的要求。


【发明内容】

[0005]本发明的目的是利用基因技术改造GenBank登录号为AGT54942的碱性α -淀粉酶,提高其比酶活、热稳定性,进一步适应工业生产的更高要求。
[0006]本发明是这样实现的。在GenBank登录号为KF451925. I的碱性α -淀粉酶基因Amy703,其对应的氨基酸序列收录号为AGT54942的基础上,设计引物(FP和RP)进行PCR,获得缺失N端669个核苷酸的α-淀粉酶突变体基因N-Amy703,其氨基酸序列如SEQ IDNO. I所示;
[0007]所述引物为:FP:5’CGCGGATCCAATGTCTCTCACAACTTTAACCACAACC 3’
[0008]RP: 5 ’ CCGCTCGAGTTATTTCTGACCTCGCTTGTCACTC 3’。
[0009]本发明的重组碱性α -淀粉酶Amy703的构建方法,具体包括如下步骤:
[0010]I)采用化学全合成或PCR方法克隆得到GenBank登录号为KF451925. I的碱性α -淀粉酶基因Amy703。
[0011 ] 2)将Amy703基因片段连接到大肠杆菌表达载体pET28a上,得到重组载体pET28a-Amy703 ;
[0012]3)设计缺失Amy703基因N端669个核苷酸的突变引物FP和RP,以重组载体pET28a-Amy703 为模板,进行 PCR ;
[0013]FP: 5 ’ CGCGGATCCAATGTCTCTCACAACTTTAACCACAACC 3’
[0014]RP: 5 ’ CCGCTCGAGTTATTTCTGACCTCGCTTGTCACTC 3’
[0015]PCR 反应体系:10XEx Taq buffer, 5 μ I ;dNTP (2. 5mM), 5 μ I ;突变引物FP (10 μ Μ),2 μ I ;突变引物 RP (10 μ Μ),2 μ I ;Ex Taq, O. 3 μ I ;模板,I μ I ;加 ddH20 至50 μ Io
[0016]空白对照:将以上体系中的DNA模板换成ddH20,其他不变。
[0017]PCR扩增体系:94°C,5min ;94°C,30s,55°C,30s,72°C,2min 15s,25 个循环;72°C,7min ;12°C, ;
[0018]4)将步骤3)获得的PCR产物用0. 7%的琼脂糖凝胶回收后,连接T载体pMD18_T,通过测序验证,得到碱性α-淀粉酶突变体基因N-Amy703,其氨基酸序列如SEQ ID NO. I所示;
[0019]5)将N_Amy703基因片段用限制性内切酶BamH I和Xho I双酶切,酶切体系为:BamH I ,0. 5 μ I ;Xho I,O. 5 μ I ;10XK buffer,5 μ I ;PCR 回收产物,30 μ 1,加 ddH20 至50 μ I,37°C处理2h后,用O. 7 %的琼脂糖凝胶回收,与经过同样方式处理后的载体pET28a在16°C酶连2h,酶连体系为:酶切片段,1.2μ1 ;酶切载体,O. 3μ1 Solution I,I. 5 μ I。酶连产物直接转化到大肠杆菌XL-GOLD克隆感受态细胞中,挑选两个转化子经测序得到N端669个核苷酸缺失的重组载体pET28a-N-Amy703 ;
[0020]6)将步骤5)获得的重组载体pET28a-N-Amy703转化大肠杆菌BL21 (DE3),得到产碱性 α -淀粉酶 N-Amy703 的重组菌株 BL21 (DE3) -pET28a-N_Amy703 ;
[0021]7)将菌株BL21 (DE3) -pET28a-N-Amy703按照常规的大肠杆菌诱导表达重组蛋白方法,获得重组蛋白N-Amy703,分析碱性α -淀粉酶突变体N_Amy703的酶学性质。
[0022]所述发酵培养基组成成分为胰蛋白胨10g/L,酵母抽提物5g/L,NaCl 10g/L。
[0023]本发明通过PCR方法缺失Amy703基因的N端669个核苷酸得到N_Amy703,并将其连接到大肠杆菌表达载体pET28a上,转化到大肠杆菌XL-GOLD感受态中,筛选到重组载体pET28a-N-Amy703 (图I)并转化大肠杆菌BL21 (DE3)表达菌株,经诱导表达、破菌、纯化获得碱性α -淀粉酶突变体N-Amy703 (图2),对N_Amy703进行酶学性质分析,发现其在50°C处理20min后,残余酶活从原始酶Amy703的18. 5%提高到72. 2% (图4)。同时,比酶活从原始酶Amy703的4. 93U/mg,提高到170. 15U/mg,提高了近40倍。突变体N_Amy703最适反应温度和最适pH分别从Amy703的40°C ,pH 9.0提高到50°C,pH 9. 5。这为碱性α -淀粉酶的应用奠定了良好的基础。
[0024]淀粉酶酶活力(U)定义方法:在最适反应条件下,I分钟内转化生成I微摩尔产物所需的酶量为一个活力单位(U)。
[0025]检测碱性α -淀粉酶比酶活(U/mg)的定义方法:原始酶(Amy703)与突变体(N-Amy703)通过相同方式纯化后(Ni柱纯化),每毫克纯化蛋白所具有的酶活力。

【专利附图】

【附图说明】
[0026]图l:(a)目的基因的扩增。M : λ-EcoTH I digest DNA Marker ; I :PCR 扩增条带;
[0027](b)重组质粒检测。M:A-EcoT14 I digest DNA Marker ;I :重组质粒酶切条带。
[0028]图2 :SDS-PAGE电泳检测纯化后的碱性α -淀粉酶突变体。M :蛋白质分子量标准;I :纯化的碱性α-淀粉酶突变体条带。
[0029]图3 :原始酶Amy703的热稳定性:将纯化后的酶在不同温度下处理20min后,测定残余酶活。
[0030]图4 :突变体N-Amy703的热稳定性:将纯化后的酶在不同温度下处理20min后,测定残余酶活。

【具体实施方式】
[0031]实施例I
[0032]I)采用PCR方法克隆得到GenBank登录号为KF451925. I的碱性α -淀粉酶基因Amy703。将Amy703基因片段连接到大肠杆菌表达载体pET28a上,得到重组载体pET28a-Amy703 ;
[0033]2)以重组载体pET28a-Amy703为模板,使用突变引物FP和RP进行PCR ;
[0034]FP: 5? CGCGGATCCAATGTCTCTCACAACTTTAACCACAACC 3,
[0035]RP:5’ CCGCTCGAGTTATTTCTGACCTCGCTTGTCACTC 3’
[0036]PCR 反应体系:10 X Pyrobest buffer, 5 μ I ;dNTP (2. 5mM),5 μ I ;突变引物FP(10yM),2yl ;突变引物 RP (10 μ Μ),2 μ I ;Pyrobest, O. 3 μ I ;模板,Ιμ? ;加 ddH20 至50 μ Io空白对照:将以上体系中的DNA模板换成ddH20,其他不变。
[0037]PCR扩增体系:94°C,5min ;94°C,30s,55°C,30s,72°C,2min 15s,25 个循环;72°C,7min ;12°C, ;
[0038]3)将步骤2)获得的PCR产物用0. 7%的琼脂糖凝胶回收后,连接T载体pMD18_T,通过测序验证,得到碱性α-淀粉酶突变体基因N-Amy703,其氨基酸序列如SEQ ID NO. I所示。N-Amy703基因片段用限制性内切酶BamH I和Xho I双酶切,酶切体系为:BamH I,O. 5 μ I ;Xho I,0· 5 μ I ;10ΧΚ buffer, 5 μ I ;PCR 回收产物,30 μ 1,加 ddH20至 50 μ 1,37°C处理2h后,用O. 7 %的琼脂糖凝胶回收,与经过同样方式处理后的载体pET28a在16 °C酶连2h,酶连体系为:酶切片段,1.2μ1 ;酶切载体,O. 3μ1 Solution I,I. 5 μ I。酶连产物直接转化到大肠杆菌XL-GOLD (Invitrogen公司)克隆感受态细胞中,挑选两个转化子经测序得到N端669个核苷酸缺失的重组载体pET28a-N-Amy703 ;
[0039]4)将步骤3)获得的重组载体pET28a-N-Amy703转化大肠杆菌BL21 (DE3),得到产碱性α -淀粉酶突变体N-Amy703的重组菌株BL21 (DE3)-pET28a-N_Amy703 ;
[0040]实施例2碱性α -淀粉酶突变体的诱导表达及纯化
[0041]将实施例I的重组菌株BL21 (DE3) -pET28a-N_Amy703接种到含有50 μ g/ml卡那霉素的LB液体培养基中,37°C、200rpm条件下培养至OD6tltl= O. 8,加入IPTG至终浓度为O. 5mM,18°C、200rpm条件下诱导12h。离心收集菌体,超声波破菌,离心去上清,过Ni柱纯化,用超滤管浓缩,得到纯化后的碱性α -淀粉酶突变体蛋白,SDS-PAGE检测。
[0042]实施例3碱性α -淀粉酶突变体的酶活测定
[0043]α -淀粉酶的酶活测定方法:将纯化后的蛋白稀释适当倍数,取50 μ I稀释酶液,加到500 μ I提前预热的可溶性淀粉底物中,在指定温度下反应15min,沸水浴5min终止反应,加800 μ I DNS溶液,沸水浴lOmin,冷却后,在540nm波长处测定吸光值。空白对照为沸水浴时加入50 μ I酶液。以在最适反应条件下,每分钟生产I μ mo I/L还原糖所需的酶量作为一个酶活力单位(U)。
[0044]经实验测定,淀粉酶突变体N-Amy703在50 °C处理20min后,残余酶活从原始酶Amy703的18. 5 %提高到72. 2 %。同时,比酶活从原始酶Amy703的4. 93U/mg,提高到170. 15U/mg,提高了近 40 倍。
【权利要求】
1.一种热稳定性及比酶活提高的碱性α-淀粉酶突变体N-Amy703,其特征在于在GenBank登录号为KF451925.1的碱性α -淀粉酶基因Amy703,其对应的氨基酸序列收录号为AGT54942的基础上,设计引物FP、RP进行PCR,获得缺失N端669个核苷酸的α -淀粉酶突变体基因N-Amy703,其氨基酸序列如SEQ ID N0.1所示; 所述引物为:FP:5’ CGCGGATCCAATGTCTCTCACAACTTTAACCACAACC3’
RP: 5 ’ CCGCTCGAGTTATTTCTGACCTCGCTTGTCACTC3’。
2.一种热稳定性及比酶活提高的碱性α -淀粉酶突变体构建方法,其特征在于包括如下步骤: 1)采用化学全合成或PCR方法克隆得到碱性α-淀粉酶基因Amy703 ; 2)将步骤I)获得的碱性α-淀粉酶基因Amy703连接到大肠杆菌表达载体pET28a上,得到重组载体pET28a-Amy703 ; 3)设计缺失Amy703基因N端669个核苷酸的突变引物FP和RP,以重组载体pET28a-Amy703 为模板进行 PCR,
FP: 5 ’ CGCGGATCCAATGTCTCTCACAACTTTAACCACAACC3’
RP: 5 ’ CCGCTCGAGTTATTTCTGACCTCGCTTGTCACTC3’ 4)将步骤3)获得的PCR产物用0.7%的琼脂糖凝胶回收后,连接到T载体pMD18-T,通过测序验证,得到权利要求1)所述的碱性α -淀粉酶突变体基因N-Amy703 ; 5)将N-Amy703基因片段用限制性内切酶BamHI和Xho I双酶切,酶切体系为:BamHI,0.5 μ I ;Xho I,0.5 μ I ;10ΧΚ buffer, 5 μ I ;PCR 回收产物,30 μ 1,加 ddH20 至 50 μ 1,37°C处理2h后,用0.7%的琼脂糖凝胶回收,与经过同样方式处理后的载体pET28a在16°C酶连2h,酶连体系为:酶切片段,1.2μ1 ;酶切载体,0.3μ1 ;Solut1n I,1.5μ1,酶连产物直接转化到大肠杆菌XL-GOLD克隆感受态细胞中,挑选两个转化子经测序得到N端669个核苷酸缺失的重组载体pET28a-N-Amy703 ; 6)将步骤5)获得的重组载体pET28a-N-Amy703转化大肠杆菌BL21(DE3),得到产碱性α -淀粉酶突变体 N-Amy703 的重组菌株 BL21 (DE3)-pET28a-N_Amy703 ; 7)将菌株BL21(DE3)-pET28a-N-Amy703按照常规的大肠杆菌诱导表达重组蛋白方法,获得重组蛋白N-Amy703,分析碱性α -淀粉酶N_Amy703的酶学性质。
【文档编号】C12N15/70GK104498453SQ201410852880
【公开日】2015年4月8日 申请日期:2014年12月31日 优先权日:2014年12月31日
【发明者】张桂敏, 卢争辉, 马延和 申请人:湖北大学
网友询问留言 已有0条留言
  • 还没有人留言评论。精彩留言会获得点赞!
1