重组鸡马立克氏病病毒sc9-1株和sc9-2株的构建和应用的制作方法

文档序号:870496阅读:518来源:国知局
专利名称:重组鸡马立克氏病病毒sc9-1株和sc9-2株的构建和应用的制作方法
技术领域
本发明涉及重组鸡马立克氏病病毒SC9-1株和SC9-2株的构建和应用,属于兽用生物制品分子生物学领域。
背景技术
自1968年首次分离马立克氏病病毒(Marek,s disease virus,缩写为MDV)以来,养鸡业采用疫苗免疫来预防MD已有40多年的历史了,随着MDV的致病性在不断演化,MDV的毒力和致病性逐渐增强,因而所用的疫苗从III型HVT单价疫苗发展到II型SB-I加HVT双价疫苗,最后不得不用致弱的但仍有一定致肿瘤性的I型CVI988/Rispens疫苗株。
从鸡群中MDV的流行来看,已从以弱病毒株(mMDV)为主,到以强病毒株(vMDV)为主,以至近20年来超强病毒(vvMDV)株越来越普遍,10年前还出现了特超强病毒株(vv+MDV)(Witter RL. Increased virulence of Marek ' s disease virus fieldisolates. Avian Diseases, 1997,41 (I) :149-163. ) 科学家利用各种方法构建了各种MDV候选毒株试图改进疫苗的效果,但都不成功。例如,Witter和Kreager等比较了10株新的疫苗候选株的保护性免疫效果,但结果都不比CVI988/Ri spens株好(WitterRL and Kreager KS. Serotype I viruses modified by backpassage or insertionalmutagenesis Approaching the threshold of vaccine efficacy in Marek’s disease.Avian Dis. 2004,48 :768-782.)。看来,面对MDV野毒株致病性增强的趋势,用常规方法改进疫苗似乎已走到了尽头。但是,根据过去40多年中MDV演变规律,其毒力很有可能会在今后几年变得更强。近年来,在我国,即使在一些已用CV1988/Rispens免疫的鸡群,仍有肿瘤发生率上升的趋势,虽然国内还没有相关分离到特超强毒株的报道,但MDV的变异却一直在进行着。例如,本发明人分离的野毒株GX0101,其毒力虽比Md5(超强毒)小,但其横向传播能力却远远大于Md5 (许晓云,孙爱军,崔言顺,等.带有REV-LTR片段的马立克氏病病毒重组野毒株与超强毒株致病性和横向传播性比较.微生物学报(Acta MicrobiologicaSinica) ,2009,49 (4) :0540-0543, Cui et al.,2009)。显然,有必要在能突破 CVI988/Rispens株的保护性免疫的新的致病性更强的MDV野毒株出现并开始流行以前,应尽快地用新的方法研制更有效的疫苗。本发明人已将GX0101的全基因组克隆进BAC载体,构建了其感染性克隆GX0101-BAC,将其转染细胞,可以拯救出重组病毒MDV的bac_GX0101 (孙爱军,2009,Chinese Science Bulletin. 54 :2641-2647)。按如下方法敲除 MDV 的 bac-GX0101 中的2个meq基因以质粒pKD13为模板,用PCR扩增FRT-卡那霉素抗性基因(kanamycinresistance gene, kan1)。为了通过同源重组将Icanlr基因取代bac-GX0101中的meq基因,在扩增FRT-karf基因所用的上下游引物的5'端分别含有与meq基因的前后50bp序列同源的同源臂。引物序列如下Ameq-F 5/ -AGAAACATGGGGCATAGACGATGTGCTGCTGAGAGTCACAATGCGGATCAcgtgtaggctggagctgcttc-3';Ameq-R 5/ -CTTGCAGGTGTATACCAGGGAGAAGGCGGGCACGGTACAGGTGTAAAGAGcattccggggatccgtcgac-3' (meq基因的前后50bp同源序列用大写字母表示,来自FRT-Iianlr的序列以小写字母表示)。FRT-卡那霉素抗性基因的扩增体系如下10XBuffer 2. 5 μ L,模板pKD13 (约lOOng/μ L) I μ L, Mg2+(15mmol/L)2y L,dNTP (2. 5mmol/L)2y L,上下游引物(25pmol/y L)各 I μ L, Taqenzyme (5U/ μ L) O. I μ L,用双蒸水补至 25 μ L。PCR 扩增程序为95°C IOmin,按950C lmin, 55°C lmin,72°C lmin,30个循环;最后72°C延伸lOmin。扩增产物用凝胶电泳进
行鉴定。在karf 两端含有 flp 识别位点(flp recognition target, FRT), flp 重组酶能够识别卡那霉素抗性基因两侧34bp的FRT位点,可特异性切除2个FRT位点内侧的序列。PCR产物用Dpn I酶进行消化Ih以去除PCR产物中残留的的环状模板质粒,消化后的PCR产物利用电转化仪转化进已含有GXO101-BAC的大肠杆菌EL250中(孙爱军,2009,ChineseScience Bulletin. 54 :2641-2647),电转条件为 1800V, 1 00 Ω,25 μ F。转化后立即用 Iml LB重悬细菌,32°C培养2h后取100 μ L菌液涂于含有卡那霉素抗性的LB平板中。16h后挑取单菌落利用 PCR 鉴定 kanr 是否取代了 meq 基因(Schumacher, D. , B. K. Tischer, ff. Fuchs, andN. Osterrieder. 2000. Reconstitution of Marek' s disease virus serotype I (MDV-I)from DNA cloned as a bacterial artificial chromosome and characterization of aglycoprotein B-negative MDV-I mutant. J. Virol. 74 :11088-11098)。经鉴定,利用卡那霉素抗性基因取代一个meq基因后,挑取菌落接种于LB液体培养基中于32°C过夜培养摇振培养,待其OD值达到0. 5时,加10%的阿拉伯糖诱导lh,使宿主菌内的质粒flp重组酶激活和表达,从而去除卡那霉素抗性基因。所得到的菌可在只含有30 μ g/mL氯霉素LB琼脂平板上生成,但不能在同时含有30 μ g/mL氯霉素和50 μ g/mL卡那霉素的LB琼脂平板上生长。敲除一个meq基因验证成功后,再利用同样的方法利用karf取代另外一个meq基因,将获得的缺失2个meq基因的MDV GX0101的感染性克隆质粒命名为GX0101 Λ meq-BAC,由其质粒DNA转染细胞产生的病毒为GX0101 Λ meq。但由于在敲除第二个Meq基因的过程中又加入了一个Karf基因,按照现行的基因工程产物生物安全法,不得将带有Karf基因的活病毒用作疫苗。为了取得可用作疫苗的毒株,还必须敲除Karf基因。

发明内容
本发明的目的是利用对flp重组酶表达的不完全诱导产生的对带有3个FRT位点的部分消化作用来敲除GX0101的BAC克隆质粒中用于取代第2个meq基因的karf基因;并通过对大量菌落在含有和不含有卡那霉素的2块LB平板上的对比培养,筛选出可用于拯救出用作疫苗的不带有meq基因和karf基因的BAC克隆;以此从原始的致病性MDV野毒株GX0101获取了不带有卡那霉素抗性基因的可以用作疫苗的meq基因缺失病毒SC9-1株,以及又进一步敲除了含有抗氯霉素基因(CM+)的BAC载体的大部分骨架序列的SC9-2株。本发明的技术方案本发明所涉及的基因组构建物是利用flp-kan+重组方法敲除了 2个meq基因且不含卡那霉素抗性基因,第一个卡那霉素抗性基因是用常规的flp酶法去除,第二个卡那霉素抗性基因则是用不完全flp酶消化加卡那霉素抗性负筛选法去除的。由此得到能用于转染细胞产生MDVSC9-1病毒的重组BAC质粒pSC9-BAC(见图I)然后再进一步去除最初构建BAC克隆过程中插入的BAC载体的相关基因(如氯霉素抗性基因、mini-F因子等),由此得到能用于转染细胞产生MDV SC9-2 (图3)病毒的重组BAC质粒pSC9-BAC-Kana-Sv-Cre-US2 (见图 2)本发明还涉及重组的鸡马立克氏病病毒MDV SC9-1株/或MDV SC9-2株在制备用于预防超强毒或新出现的特超强毒MDV诱发的鸡马立克氏病的鸡马立克氏病疫苗中的用途。本发明同时还涉及一种预防鸡马立克氏病的方法,其中向鸡给予预防有效剂量的鸡马立克氏病疫苗,所述的疫苗包含重组鸡马立克氏病疫苗病毒MDV SC9-1株/或MDVSC9-2 株。
具体实施例方式利用对flp重组酶表达的不完全诱导产生的对带有3个FRT位点的部分消化作用来敲除GX0101的BAC克隆质粒中用于取代第2个meq基因的karf基因,并通过对大量菌落在含有和不含有卡那霉素的2块LB平板上的对比培养,筛选出可用于拯救出用作疫苗的不带有meq基因和kar/基因的BAC克隆。在前期已发表的研究中(李延鹏马立克氏病病毒meq基因缺失株生物学特性及其免疫效果研究,博士学位论文,2010,中国农业科学院.AndYanpeng Li,Aijun Sun,Shuai Su,Peng Zhao, Zhizhong Cui,Hongfei Zhu,Deletion ofthe Meq gene significantly decreases immunosuppression in chickens caused bypathogenic Marek' s disease virus. Virology Journal2011,8 :2),已从 GXOlOl 的 BAC克隆质粒构建了敲除了 2个meq基因的重组BAC克隆质粒pGXOlOl Λ meq-BAC。具体过程是利用卡那霉素抗性基因取代一个meq基因后,挑取菌落接种于LB液体培养基中摇振培养,待其OD值达到0. 5时,加10%的阿拉伯糖诱导lh,使宿主菌内的质粒flp重组酶,从而去除卡那霉素抗性基因。诱导后将菌分别涂布于含有30 μ g/mL氯霉素或50 μ g/mL卡那霉素的LB琼脂平板上32°C过夜培养,如果只在含有30 μ g/mL氯霉素的LB琼脂平板上生长但在含50 μ g/mL卡那霉素的LB琼脂平板上不生长,表明诱导后的重组菌仍具备氯霉素抗性而不再具备卡那霉素抗性(KarO,即可确定该重组菌为目的菌。但该重组质粒中在被去掉的第一个Meq基因所在的位置仍保留一个flp重组酶识别的位点(flprecognition target, FRT)。敲除一个Meq基因并经验证后,再利用同样的方法利用kar/取代另外一个meq基因,将获得的缺失了 2个Meq基因的MDV GX0101的感染性克隆质粒命名为pGXOlOl Ameq-BAC0该克隆又插入了一个karf基因。鉴于在敲除前一个karf基因是留下了一个FRT位点,在质粒pGXOlOlAmeq-BAC上已存在3个FRT位点(如图I)。如果按同样的方法用诱导flp重组酶来敲除第2个karf基因,就会同时敲除MDV的一部分基因组,因而不再能拯救到新的感染性克隆病毒。另一方面,我们已发表的GXOlOl AMeq病毒,虽然没有致病性并具备很好的保护性免疫力,但它在细胞上的复制能力较差,这一特性也不适合用作商品化疫苗。为此,本发明人在构建敲除Meq基因的GX0101的感染性克隆过程中,对与pGXOlOl Ameq-BAC同批获得的12个质粒克隆菌落进行了比较筛选。将这些单独菌落分别重新编号为PSCAMeq-BACl至pSCAMeq-BAC12。分别将不同菌落的菌体大量培养后制备质粒DNA,再转染CEF。在细胞出现MDV特有的蚀斑后,分别将所得到的感染性克隆病毒命名为SCl Δ Meq至SC12 Δ Meq0分别比较这些病毒在CEF上的复制水平,从中选择到感染性克隆质粒pSC Δ Meq-BAC9在CEF上形成的病毒蚀斑最快最多。该感染性克隆质粒pSC Δ Meq_BAC9用于进一步敲除其中的Karf基因。为此,我们设计了 “对flp重组酶和FRT部分诱导消化结合多重筛选”的新方法,即在细菌培养时降低对flp重组酶的诱导条件和时间,使一部分pGXO 101 Ameq-BAC质粒DNA分子上3个FRT位点中只有2个位点被flp重组酶作用,从而使部分分子只有kar/基因二侧的FRT被flp重组酶识别和作用,因此这一部分分子上只有karf基因被flp重组酶消化剪辑掉,而与另一个FRT位点相关的MDV基因组均全部保留。
已分别将每一菌落经过多次比较筛选,最后按如下条件取得成功感染性克隆质粒pSC Δ Meq-BAC9转化的E250株大肠杆菌接种于LB液体培养基中摇振培养,待其OD值达到O. 5时,加5% (完全诱导的标准浓度为10% )的阿拉伯糖诱导40min(完全诱导的时间为60min),使宿主菌内的质粒flp重组酶只被部分激活,从而使部分MDV基因组克隆质粒分子只去除了卡那霉素抗性基因但不影响MDV基因组部分。诱导后将菌涂布于含有30 μ g/mL氯霉素的LB琼脂平板上,32°C过夜培养。将所有具备氯霉素抗性的菌落再分别接种二类LB琼脂平板一类只含30 μ g/mL氯霉素(A),另
一类同时含有30 μ g/mL氯霉素和50 μ g/mL卡那霉素(B), 二类平板上接种的菌落分别--对号。选择在A板上生长而在B板上不生长的菌落即已不具备抗卡那霉素活性的菌落,再分别接种于含有30μ g/mL氯霉素的LB琼脂平板上,在,32°C过夜培养。取每一个菌落的部分菌体分别提取基因组DNA,分别用karf基因和MDVpp38基因特异性引物(PP38-F :5’ -AGGCAGGGCATGGGAAAACAGAAG-3’,序列 3 和 pp38_R :5 ’ -ACCGACTAACATACCAGCGAAAAA-3 ’,序列 4)做 PCR,选择在 PCR 中 kan"基因阴性但 MDVpp38基因阳性的菌落再接种于含有30μ g/mL氯霉素的LB肉汤,选择相应数个菌落用plasmidMaxi kit (购自QIAGEN公司)大量提取质粒DNA,成功用于转化细胞产生SC9-1株MDV的质粒定名为PSC9-BAC (见图I)。然后分别用以上各个质粒DNA分别转染鸡胚成纤维细胞单层,从其中选出MDV特有的细胞蚀斑,由此拯救到了敲除了 Karf抗性基因的重组病毒,命名为 MDV SC9 ΔMeq Δ Kanr,简称 MDV SC9-1。该马立克氏病病毒(Marek,s disease virus)株已于2010年12月03日保藏在北京市朝阳区北辰西路I号院3号中国科学院微生物研究所中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No. 4399。考虑到有些国家对基因重组产物的生物安全的不同标准要求,在构建SC9-1的同时又构建了进一步敲除了抗氯霉素基因的SC9-2株MDV。先按已发表的方法(Zhao et al.,Self-excision of the BAC sequences from the recombinant Marek’ s disease virusgenome increases replication and pathogenicity, Virology Journal, 2008, 5 :19),构建一个在Kan+和SV-cre组合基因二侧带有分别来自BAC载体质粒的mini_F片段和GXO101株MDV基因组的US2-US3连接区序列的中间重组质粒pPartial-F-Kan-Cre-US2-US3。将该质粒与pSC9-BAC质粒DNA共转化E250大肠杆菌,在含有卡那霉素和氯霉素的培养板筛选对卡那霉素有抗性的菌落,菌落质粒定名为pSC9-BAC-Kana-Sv-Cre-US2.用该菌落制备大剂量质粒DNA,然后再用该质粒DNA转染CEF细胞单层培养。每3_5天将转染的细胞消化悬浮后再传代,并观察MDV产生的病毒蚀斑。由于在SV-cre中的ere基因在SV40启动子是真核细胞启动子,它在CEF细胞中可自动激活ere基因的表达。被转染的CEF细胞中产生的病毒基因组上ere基因表达的酶可将被转染细胞中产生的及随后传代过程中继续被感染的细胞中MDV病毒基因组上的2个IoxP位点消化,从而自动将病毒基因组上2个IoxP位点间的所有序列剪切掉,所产生的病毒即SC9-2。其基因组相关片段的结构如附图
中的C.由此得到的SC9-2已敲除了含抗氯霉素基因(Cif)的BAC载体骨架的大部分DNA序列。为了提到SC9-2在感染细胞内的MDV病毒群体中的比例,将pSC9-BAC-Kana-Sv-Cre-US2质粒DNA转染产生了病毒蚀斑的CEF单层培养连续传代。在连传8代后,经PCR检测,绝大多数病毒蚀斑是有SC9-2所形成的,即以敲除了 BAC载体及CM+基因序列,但仍有少数病毒仍带有BAC载体及CM+基因序列。通过有限稀释法稀释病毒感染细胞接种于96孔细胞培养板上。挑选只有I个病毒蚀斑的孔中的病毒感染细胞进一步传代,由此得到纯化的完全是敲除了 BAC载体及CM+基因序列的SC9-2株病毒的细胞培养物,该马立克氏病病毒(Marek’ s disease virus)株已于2011年11月24日保藏在北京市朝阳区北辰西路I号院3号中国科学院微生物研究所中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为 CGMCCNo. 5502。。
二、将野毒株敲除肿瘤Meq基因的马立克氏病疫苗病毒SC9-1株和SC9-2的鉴别特性该病毒基因组上带有三个位于特定位点的特定序列可作为本病毒的鉴别性标志(I)在原有的二个Meq基因位点,在敲除Meq基因后,各留下一个约36bp左右的FRT序列;(2)在病毒基因组的US/TRS片段连接点的上游约370bp处插入了一段约539bp的REV-LTR 片段。(3)MDV SC9-1 和 MDV SC9-2 的区别是MDV SC9-1 带有 CM"基因和 mini-F 质粒,但MDV SC9-2不含有CMlr基因和mini-F质粒。三、MDV SC9-1株和MDV SC9-2株病毒对鸡的致病性和保护性免疫作用在已发表的研究中,已证明了 GXOlOl Ameq对鸡完全没有致病性且可诱发100%的保护性免疫(苏帅,李延鹏,孙爱军,崔治中.敲除meq的马立克氏病毒强毒株对超强毒的免疫保护作用,微生物学报,2010,50 =380-386.),只是由于GX0101 Δ meq带有Kanlr基因,因而不能用作为疫苗病毒。为此,本发明采用了完全敲除Karf基因的新的疫苗毒株MDVSC9-1株和它的衍生病毒MDV SC9-2,按已报道的方法(苏帅,李延鹏,孙爱军,崔治中.敲除meq的马立克氏病毒强毒株对超强毒的免疫保护作用,微生物学报,2010,50 =380-386)在SPF鸡用同样方法同样条件的人工感染试验,具体方法如下将I日龄SPF鸡240只,随机分为8组,每组30只,分别饲养于8个带有正,压过滤空气的SPF动物饲养隔离器内,I日龄时,第I组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种GX0101 Λ meq,第2组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种SC9-1、第3组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种MDV SC9-2、第4组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种CVI988/Rispen,第5组鸡为攻毒对照,第6组鸡为空白对照,第7组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种SC9-1,第8组鸡以2000pfu/只的剂量腹腔接种MDV SC9-2。免疫接种5天后,第1、2、3、4和5组鸡分别以IOOOpfu/只的攻击剂量MDV超强毒株w rMd5。攻毒后每周观察及的生长态势。实验期间,对各组死亡鸡只剖检,并取疑似马立克氏病特有病变脏器做石蜡切片,HE染色后进行病理组织学观察。在攻毒后90天,所有的存活鸡均被处死并剖检,观察鸡的病变,同时,每组随机选取5只,分别取心脏、脾、肝脏于10%中性福尔马林固定,4°C保存。石蜡切片,HE染色进行病理组织学观察。
试验结果证明,该MDV SC9-1和MDV SC9-2 二株病毒对SPF鸡没有致病性,并对超强毒vvMDV病毒株Md5表现出同样的保护性免疫(表I)。从表可看出,在将Kanlr基因敲除后,SC9-1株病毒对SPF鸡的致病性和保护性免疫效力与其亲本病毒GX0101 Ameq完全相同。在敲除了 Karf基因后,将符合生物安全法的要求可用作疫苗。MDV SC9-2株在进一步敲除CMlr基因后也完全相同。表IMDV SC9-1和MDV SC9-2与其他MDV毒株对SPF鸡的致病性和保护性免疫效
力的比较
权利要求
1.一种重组鸡马立克氏病病毒的基因组构建物,其特征在于所述基因组构建物上带有三个位于特定位点的特定序列,此特定序列还可作为本病毒的鉴别性标志 (I)在原有的_■个Meq基因位点,在敲除Meq基因后,各留下一个34bp的序列5 FRT 5' -GAAGTTCCTA TACTTTCTAG AGAATAGGAA CTTC-3';敲除ニ个Meq基因后,MDVSC9-1 株和MDV SC9-2株完全没有致病性;(2)在病毒基因组的US/TRS片段连接点的上游约370bp处插入了一段约539bp的REV-LTR片段序列6 5' -CATTGTGGGAGGGAGCTCCGGGGGAATGTGGGAGGGAGCTCCGGGGGGAATAGCGCTGGCTCGCTAACTGCCATATTAGCTTCTGTAGTCATGCTTGCTTGCCTTAGCCGCCATTGTACTTGATATATTTCGCTGATATCATTTCTCGGAATCGGCATCAAGAGCAGGCTCATAAACCCATAAAAGGAAATGTTTGTTGAAGGCAAGCATCAGACCACTTGCACCATCCAATCACGAACAAACACGAGATCGAACCATCATACTGAGCCAATGGTTGTAAAGGGCAGATGCTATCCTCCAATGAGGGAAAATGTCATGCAACATCCTGTAAGCGGCTATATAAGCCAGGTGCATCTCTTGCTCGGGGTCGCCGTCCTACACATTGTTGTGACGTGCGGCCCAGATTCGAATCTGTAATAAAAGCTTTTTCTTCTATATCCTCAGATTGGCAGTGAGAGGAGATTTTGTTCGTGGTGTTGGCTGGCCTACTGGGTGGGGTAGGGATCCGGACTGAATACCGTAGTATTTCGGTACAACAA-3'。
2.ー种含有权利要求I所述基因组构建物的重组的鸡马立克氏病疫苗病毒MDV SC9-1株/或MDV SC9-2株,其特征在于其基因组利用flp-kan+重组方法敲除了 2个meq基因且不含卡那霉素抗性基因,第一个卡那霉素抗性基因是用常规的flp酶法去除,第二个卡那霉素抗性基因则是用不完全flp酶消化加卡那霉素抗性负筛选法去除的,由此得到能用于转染细胞产生SC9-1病毒的重组BAC质粒pSC9-BAC ;然后再进ー步去除最初构建BAC克隆过程中插入的BAC载体的相关基因,如氯霉素抗性基因、mini-F因子由此得到能用于转染细胞产生SC9-2病毒的重组BAC质粒pSC9-BAC-Kana-Sv-Cre-US2 ; MDV SC9-1株已于2010年8月26日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No. 4399 ; MDV SC9-2株已于2011年11月24日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No. 5502。
3.ー种包含如权利要求2所述的重组鸡马立克氏病病毒MDV SC9-1株或SC9-2株感染的鸡胚成纤维细胞。
4.一种鸡马立克氏病病毒疫苗,其特征在于包含权利要求I所述的重组鸡马立克氏病病毒的基因组构建物。
5.—种鸡马立克氏病病毒疫苗,其特征在于包含权利要求2所述的重组的鸡马立克氏病疫苗病毒MDV SC9-1株或MDV SC9-2株。
6.—种鸡马立克氏病病毒疫苗,其特征在于包含权利要求3所述的鸡胚成纤维细胞。
7.ー种根据权利要求I所述的重组鸡马立克氏病病毒的基因组构建物、权利要求2所述的重组的鸡马立克氏病疫苗病毒MDV SC9-1株或MDV SC9-2株和权利要求3所述的鸡胚成纤维细胞在制备鸡马立克氏病病毒疫苗中的用途。
8.预防鸡马立克氏病的方法,其中向鸡给予预防有效剂量的鸡马立克氏病病毒疫苗,所述的疫苗包含选自权利要求I所述的重组鸡马立克氏病病毒的基因组构建物,包含权利要求2所述的重组的鸡马立克氏病疫苗病毒MDV SC9-1株或SC9-2株,或者包含权利要求3所述的鸡胚成纤维细胞。
全文摘要
本发明涉及重组鸡马立克氏病病毒SC9-1株和SC9-2株的构建和应用。本发明的重组病毒构建方法解决了连续二次采用两端含有flp识别位点kanr基因敲除同一病毒基因组上二个特定功能基因后无法用现行方法再敲除kanr基因的技术难点;所获得的重组病毒MDV SC9-1株和MDV SC9-2用作马立克氏病活疫苗的生产毒株所制备的疫苗,预防超强毒或新出现的特超强毒MDV诱发的鸡马立克氏病,其保护性免疫效果优越于目前国内外市场上应用最广泛的CVI988/Rispens株疫苗;该重组病毒的抗原性应比美国已发表的同类病毒rMd5Δmeq更类同于中国的流行株,不仅不会诱发肿瘤,也没有免疫抑制作用,因而更实用于中国。
文档编号A61K39/245GK102628053SQ20111039365
公开日2012年8月8日 申请日期2011年12月2日 优先权日2010年12月14日
发明者崔治中, 苏帅, 赵鹏 申请人:山东农业大学
网友询问留言 已有0条留言
  • 还没有人留言评论。精彩留言会获得点赞!
1