一种人GPC3蛋白及其原核表达和纯化方法

文档序号:38312780发布日期:2024-06-14 10:48阅读:26来源:国知局
一种人GPC3蛋白及其原核表达和纯化方法

本发明属于生物,具体涉及一种人gpc3蛋白制备技术


背景技术:

1、肝癌是肝脏最常见的原发性癌症,包括肝细胞性肝癌(hepatocellularcarcinoma,hcc)、肝内胆管癌(intrahepatic cholangiocarcinoma,icc)和混合型肝细胞癌-胆管癌(combined hepatocellular-cholangiocarcinoma,chcc-cca),其中hcc约占所有原发性肝癌的90%。hcc的早期诊断十分困难,肝癌早期常无明显症状,患者可能只表现出一些非特异性的消化道不适,如食欲不振、恶心和呕吐等,超过85%的肝癌患者在就医时已经是晚期,生存期通常不到2年。因此,进行肝癌早期筛查对延长患者的生存期和提高生活质量有重要意义。

2、磷脂酰肌醇蛋白聚糖3(glypican 3,gpc3)在正常肝组织中不表达或低表达,在hcc中特异性高表达;相关研究证实,gpc3通过激活wnt信号通路介导肝细胞恶变并促进hcc生长,与hcc的临床预后高度相关。因此,gpc3作为hcc的特异性标记物,有望成为肿瘤可视化精准诊疗的重要靶标。

3、因此,表达纯化出人gpc3蛋白,可以为后续获得相应的抗gpc3抗体奠定坚实的基础,用于hcc的诊疗。


技术实现思路

1、为了克服现有技术中的缺点和不足之处,本发明的目的之一在于以基因工程菌株b32g(pet32a-gpc3-bl21)为对象,建立一种gpc3蛋白高表达方法;目的之二是建立一种从包涵体中提取纯化出trxagpc3融合蛋白的方法;目的之三是建立一种分离纯化单一的gpc3蛋白的方法。

2、本发明目的通过以下技术方案实现:

3、一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,该方法按照以下步骤:

4、(1)构建trxa-gpc3融合蛋白的表达载体,即重组质粒pet32a-gpc3;

5、(2)trxa-gpc3融合蛋白的原核表达:将所述重组质粒pet32a-gpc3转入bl21(de3)大肠杆菌,经iptg诱导表达,获得菌体沉淀;破碎细菌,收集沉淀;

6、(3)trxa-gpc3融合蛋白的纯化:将沉淀经洗涤后,变性溶解并复性,采用亲和层析法进行纯化;

7、(4)trxa标签的切除与gpc3蛋白的分子筛纯化:测定溶液中的trxa-gpc3蛋白浓度并进行酶切,通过分子筛纯化得到gpc3蛋白;

8、进一步的,步骤(1)所述构建trxa-gpc3原核表达载体并获得重组质粒pet32a-gpc3具体按照以下步骤:从genbank获取人gpc3蛋白的基因序列,根据大肠杆菌密码子偏好、gc含量等进行优化并合成。根据优化后的序列设计扩增gpc3蛋白35-554位置的氨基酸对应基因的上下游引物,将优化后基因序列克隆pet32a载体中,构建重组质粒pet32a-gpc3。将重组质粒转化e.coli dh5α感受态细胞,并在含有50μg/ml羧苄青霉素的lb板中培养。挑取形态大小较好的单克隆先进行菌液pcr鉴定,然后提取质粒进行酶切鉴定,最后将阳性的单克隆菌液送去测序鉴定,保存鉴定结果正确的重组质粒pet32a-gpc3。

9、步骤(2)所述trxa-gpc3融合蛋白的原核表达具体按照以下步骤:将鉴定正确的pet32a-gpc3质粒转化入e.coli bl21(de3)表达感受态细胞,在37℃培养箱中倒置过夜培养后挑取单菌落至2ml含50μg/ml羧苄青霉素的lb培养基中,37℃下以220rpm振荡培养12~16h。按照1∶100的比例将菌液接种于20ml含50μg/ml羧苄青霉素以及1%(w/v)葡萄糖浓度的lb培养基中,37℃下振荡培养3~4h至od600为0.6左右,加入0.25mm iptg,再于20℃以120rpm的速度振荡培养20h。低温离心收集菌体,在冰浴中进行超声波破碎,以4℃、10000rpm离心20min,分离上清与沉淀,然后进行sds-page电泳分析。

10、步骤(3)所述trxa-gpc3融合蛋白的纯化具体按照以下步骤:每克湿菌加入20mltbs(ph 8.0)重悬,使用超声波破碎仪进行破碎,收集包涵体,使用包涵体洗涤液a(0.5%triton x-100v/v、20mm tris-hcl、150mm nacl)反复洗涤,最后用包涵体洗涤液b(8m尿素、20mm tris-hcl、150mm nacl)洗涤一次,溶解于变性液(8m尿素、20mm tris-hcl、150mmnacl、5mm dtt)中,高速离心,收集上清。将变性后的蛋白用变性液稀释至0.5mg/ml后装入透析袋中。将透析袋用密封夹夹好后按4、2、1、0m的梯度依次降低透析液中的尿素浓度,透析液中添加1mm gsh和0.2mm gssg,4℃低速搅拌透析,4~6h更换新鲜透析液一次,最后用tbs(ph 8.0)4℃透析过夜,高速离心去除沉淀,上清过滤膜后加入到含有ni-nta琼脂糖凝胶的层析柱中,用tbs(ph 8.0)平衡3~5cv后进行反复上样,用10~15 cv含有50mm咪唑的tbs(ph 8.0)进行洗杂,最后用3cv含有500mm咪唑的tbs(ph 8.0)进行洗脱去除杂蛋白获得较高纯度的融合蛋白trxa-gpc3。

11、步骤(4)所述trxa标签的切除与gpc3蛋白的分子筛纯化具体按照以下步骤:初步纯化后的trxa-gpc3融合蛋白使用bca法检测蛋白浓度并计算溶液中的蛋白含量,在酶切反应体系(25mm tris,150mm nacl,0.1%tween-20v/v,ph 8.0)中按0.1mg∶0.1u的比例加入凝血酶进行酶切,酶切完成后加入10mm edta终止反应。将酶切后的蛋白溶液加入到将含有分子筛填料sepharose 4fast flow的层析柱中,并将柱子连接akta系统,用1.5cv的tbs(ph8.0)以0.5ml/min的速度进行洗脱,所得洗脱液即是含有高纯度的目的蛋白gpc3。

12、优选的,所述步骤(1)中的上游引物如seq id no.1所示;

13、优选的,所述步骤(1)中的下游引物如seq id no.2所示

14、优选的,所述步骤(1)中优化后的gpc3蛋白序列如seq id no.3所示

15、优选的,所述步骤(1)中重组质粒pet32a-gpc3编码trxa-gpc3蛋白,大小约为78kda,编码所述trxa-gpc3蛋白基因序列信息如seq id no.4所示

16、与现有的方法相比,本发明具有以下优点及有益效果:

17、本发明所构建的gpc3原核表达载体,优化的表达条件,可以提高目的蛋白的表达,采用本发明所用纯化方法,可以获得高纯度的trxagpc3融合蛋白,采用本发明所用酶切与分子筛纯化方法,可以得到单一的具有活性的gpc3蛋白。



技术特征:

1.一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,该方法按照以下步骤:

2.根据权利要求1所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤1)所述构建trxa-gpc3原核表达载体并获得重组质粒pet32a-gpc3具体按照以下步骤:

3.根据权利要求2所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤2)中所述的上游引物核苷酸序列如seq id no.1所示;下游引物核苷酸序列如seq id no.2所示。

4.根据权利要求2所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤3)所述的lb板上的培养基为50μg/ml羧苄青霉素。

5.根据权利要求1所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤2)所述trxa-gpc3融合蛋白的原核表达具体按照以下步骤:

6.根据权利要求1所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤3)所述trxa-gpc3融合蛋白的纯化具体按照以下步骤:

7.根据权利要求6所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,所述的包涵体洗涤液a包含下述组分:0.5%(v/v)triton x-100、20mm tris-hcl、150mm nacl;所述的包涵体洗涤液b包含下述组分:8m尿素、20mm tris-hcl、150mm nacl;所述的变性液包含下述组分:8m尿素、20mm tris-hcl、150mm nacl、5mm dtt;所述的tbs的ph 8.0。

8.根据权利要求1所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,步骤4)所述trxa标签的切除与gpc3蛋白的分子筛纯化具体按照以下步骤:

9.根据权利要求8所述的一种人gpc3蛋白的原核表达和纯化方法,其特征在于,所述的酶切反应体系为25mm tris,150mm nacl,0.1%(v/v)tween-20,ph 8.0。

10.一种人gpc3蛋白,其特征在,由权利要求1-9任一所述的方法制备得到的。


技术总结
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种人GPC3蛋白及其原核表达和纯化方法;本发明提供的方法,主要包括构建pET32a‑GPC3蛋白表达质粒、将pET32a‑GPC3蛋白表达质粒转化、培养表达TrxA‑GPC3蛋白、纯化TrxA‑GPC3蛋白、切除TrxA标签蛋白并通过分子筛得到GPC3蛋白等过程。本发明将能在大肠杆菌中高表达的TrxA标签蛋白与编码人GPC3蛋白的基因进行重组,来提高目的蛋白的表达量和稳定性,然后利用酶切和分子筛纯化出单一的GPC3蛋白的。采用本发明提供的方法,操作方便,成本低,纯化效果好,为免疫学快速诊断、制备单抗等提供物质基础。

技术研发人员:赵肃清,梁锦慧,龚鑫
受保护的技术使用者:广东工业大学
技术研发日:
技术公布日:2024/6/13
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