方，首先取韭花，清洗、沥干，破碎至粒径0.35mm,向其中加入30份蜂蜜和 3份麦芽提取物，均匀混合，加入混合物料2.5倍的去离子水，用乳酸调节pH值为5.5,升温至 58°C，保温35min，然后降温至33°C于电场强度23kV/cm，脉冲时间250ys，脉冲频率250Hz进 行高压脉冲电场杀菌7min，调整pH值为6.3，加入益生菌粉剂质量的43 %恒温发酵0.7h，接 着以0.85°C/min的速率升温至42°C，加入益生菌粉剂质量的53%恒温发酵2.5h，最后以 0.65°C/min的速率升温至52°C，继续发酵0.6h，发酵液依次经40目、80目双联过滤器过滤， 滤液经循环超滤浓缩至固形物含量为80 %得蜂蜜益生菌发酵浓缩液；
[0147] 2)将剩余蜂蜜放入不锈钢容器中，置于装有53°C水的预溶装置中，预溶35min，过 105目筛，转入调配罐，保温53°C，边搅拌边依次加入剩余麦芽提取物、生姜提取物，充分溶 解12min;接着加入蛹虫草充分溶解4.5min得初混料;然后过胶体磨研磨4.5min，调整物料 细度，过170目筛，入灭菌罐81°C灭菌29min，转入贮罐降温至49°C，最后灌装、封口、包装即 得蛹虫草蜜制膏。
[0148] 经上述方法制备的蜜制膏结晶出现时间为36个月。
[0149] 实施例六：
[0150] -种壳寡糖蜜制膏，主要由以下重量份数的原料制备：
[0151 ]蜂蜜150份，麦芽提取物10份，生姜提取物6份，益生菌粉剂3份，韭花3份，壳寡糖 0 · 4份；
[0152] 其中蜂蜜含有95%的洋槐蜂蜜；
[0153] 上述益生菌粉剂益生菌活菌含量为:7.5 X 1012cfu/g;
[0154] 益生菌粉剂为干酪乳杆菌粉剂；
[0155] 壳寡糖蜜制膏的制备方法，包括如下步骤：
[0156] 1)按照配方，首先取韭花，清洗、沥干，破碎至粒径0.45mm,向其中加入40份蜂蜜和 4份麦芽提取物，均匀混合，加入混合物料3.5倍的去离子水，用乳酸调节pH值为6.5,升温至 63°C，保温45min，然后降温至34°C于电场强度28kV/cm，脉冲时间350ys，脉冲频率350Hz进 行高压脉冲电场杀菌9min，调整pH值为6.8，加入益生菌粉剂质量的48 %恒温发酵0.9h，接 着以0.95°C/min的速率升温至44 °C，加入益生菌粉剂质量的58%恒温发酵3.5h，最后以 0.75°C/min的速率升温至54°C，继续发酵0.9h，发酵液依次经40目、80目双联过滤器过滤， 滤液经循环超滤浓缩至固形物含量为85 %得蜂蜜益生菌发酵浓缩液；
[0157] 2)将剩余蜂蜜放入不锈钢容器中，置于装有58°C水的预溶装置中，预溶45min,过 115目筛，转入调配罐，保温58°C，边搅拌边依次加入剩余麦芽提取物、生姜提取物，充分溶 解Hmin;接着加入壳寡糖充分溶解5.5min得初混料;然后过胶体磨研磨5.5min，调整物料 细度，过190目筛，入灭菌罐82°C灭菌31min，转入贮罐降温至51°C，最后灌装、封口、包装即 得壳寡糖蜜制膏。
[0158] 经上述方法制备的蜜制膏结晶出现时间为38个月。
[0159] 实验例七食用雨生红球藻蜜制膏后总胆固醇的变化
[0160] 选总胆固醇180mg/dl-250mg/dl的成年人48名，男女各半，随机分成三组；第一组 每天晚餐饮用150毫升矿泉水;第二组每天晚餐冲饮普通市售雨生红球藻蜜制膏150g，第三 组每天晚餐冲饮本发明实施例2的雨生红球藻蜜制膏150g，期间每天食用同样的食物，食物 包括肉、蛋、蔬菜和水果。分别在实验开始的前一天和第20、40、60天采集试验者的血液，测 定血液中的总胆固醇含量，结果如表1:
[0161]表1:血液中总胆固醇含量检测结果
[0163] 由上表可知冲饮本发明实施例2的雨生红球藻蜜制膏后，成年人血液中的总胆固 醇的含量发生明显变化。与普通市售雨生红球藻蜜制膏相比，本发明雨生红球藻蜜制膏对 成年人血液中的总胆固醇的含量明显的降低，而矿泉水组成年人血液中的总胆固醇的含量 明显的增加，市售雨生红球藻蜜制膏虽然有所降低，但与本发明产品相比，效果不显著，由 此可知，本发明采用具有降低胆固醇特性的特定菌株制备的雨生红球藻蜜制膏具有很好的 降低胆固醇的保健效果。
[0164] 需要说明的是:本发明实施例3-6所制备的蜜制膏同样具有上述技术效果，各实施 例之间差异性不显著。
[0165] 实施例八本发明雨生红球藻蜜制膏的感官品评试验
[0166] 邀请24名人员对本发明实施例2制备的雨生红球藻蜜制膏与市售两种同类相同生 产日期的雨生红球藻蜜制膏进行品评，感官打分，其中专业和非专业人员各12名，专业人员 青年、中年、老年各4名，男女各半，非专业人员少年、青年、中年、老年各3名，男女各半;打分 包括外观(20分）、质地(25分）、风味(30分）、口感(25分）四个方面，打分人员独立进行，互不 影响，以保证品评结果准确。对品评结果进行了统计，均分值取近似值，保留整数，具体见表 2：
[0167] 表2:感官品评统计结果
[0169] 注：同一行内标不同小写字母表示差异显著(P<0.05)，标不同大写字母表示差异 极显著(P<〇.01)，标有相同字母表示差异不显著(P>〇.05)。
[0170] 以上结果表明，本发明制备的雨生红球藻蜜制膏从外观、质地、风味和口感任何一 方面都要明显优于市售雨生红球藻蜜制膏，特别是外观、风味和口感极好，同时也适合不同 年龄段、不同消费层次的消费者食用。
[0171] 需要说明的是:本发明实施例3-6制备的蜜制膏同样具有上述实验效果，各实施例 之间及与上述实验效果差异性不大。
[0172] 实施例九本发明蜜制膏对机体免疫力的影响
[0173] 1实验目的
[0174] 通过运动耐力测试(小鼠游泳试验），验证本发明蜜制膏的提高免疫力、抗疲劳作 用。
[0175] 2实验材料与试剂
[0176] 2.1供试药物：
[0177] 市售蜜制膏(Gl);市售蜜制膏(G2);本发明实施例2-6制备的蜜制膏(G3-G7)。
[0178] 2.2 试剂：
[0179] 肝/肌糖原测试盒，购自南京建成生物制品研究所;浓硫酸(AR)，南京化学试剂有 限公司；生理盐水，山东长富洁晶药业有限公司。
[0180] 3.实验动物
[0181] ICR小鼠，清洁级，体重18_22g，由宁夏医科大学比较医学中心提供，实验期间小 鼠自由饮食。
[0182] 4.主要仪器
[0183] 错制游泳箱（50cm X 50cm X 40cm)，铅丝，低温高速离心机：5804R型，Eppendrof公 司；水浴锅:DK-S26型，上海精宏实验设备有限公司；电子称:BS224S型，Sartorius公司；秒 表，温度计
[0184] 5.实验分组
[0185] 5.1剂量分组及受试样品给予时间随机将小鼠分为8组，每组10只，第1组至第7组 分别给Gl~G7的药物，第8组为空白对照组，给予等体积的双蒸水，每组每日均灌胃1次，灌 胃体积为0.2ml/10g，连续给予受试样品30天。
[0186] 5.2样品配制第1组至第7组:称取2.25g药物样品，用蒸馏水配至150ml;空白对照 组:双蒸水150ml。
[0187] 6.实验方法
[0188] 6.1负重游泳实验末次给药30min后，置小鼠于游泳箱中，水深不少于30cm，水温25 ± TC，鼠尾根部负荷5%体重的铅皮，记录小鼠游泳开始至死亡的时间，作为小鼠游泳时 间。
[0189] 6.2小鼠血清尿素测定末次给药3〇11^11后，在温度为30°(：的水中不负重游泳9〇1^11， 休息60min后摘眼球采血0.5mL (不加抗凝剂），置4°C冰箱3h，血凝固后2000r/min离心 15min，取血清送宁夏医科大学附属医院检验科检测。
[0190] 6.3肝糖原的测定末次给药3〇11^11后，在温度为25±1°(：的水中不负重游泳9〇1^11， 颈椎脱臼处死小鼠，用生理盐水洗净，并用滤纸吸干水分后，准确称取肝脏l〇〇mg，肝糖原检 测试剂盒检测小鼠肝糖原含量。
[0191] 6.4血乳酸的测定末次给药30min后采血，然后不负重在温度为30 °C的水中游泳 IOmin后停止。乳酸仪测定方法:分别在游泳前、游泳后、游泳后休息20min后各采血20yL加 入40yL破膜液中，立即充分振荡破碎细胞用乳酸仪测定。（血乳酸曲线下面积= 5X(游泳前 血乳酸值+3 X游泳后Omin的血乳酸值+2 X游泳后20min的血乳酸值）
[0192] 7.观察指标负重游泳时间，血乳酸、尿素、肝糖原值
[0193] 8.统计方法实验数据用s表示，采用t检验进行组间比较
[0194] 9.实验结果
[0195] 9.1本发明蜜制膏对小鼠体重的影响
[0196] 各组小鼠在给予Gl~G9药物后，前、中，后期体重分别见下表所示，各组小鼠的初 始体重和增重体重与对照组比较均无统计学差异(P>〇.05)，表明Gl~G9药物均无明显的 毒性。实验结果详见表3。
[0197] 表3负重游泳实验小鼠的初始体重、中期体重和结束体重（\:二s }
[0199 ] 9.2本发明蜜制膏对小鼠负重游泳时间的影响
[0200] 经口给予小鼠 Gl~G7药物后，Gl~G2药物与空白对照组比较，可以明显延长小鼠 负重游泳时间，具有显著性差异(P<〇.05)，本发明蜜制膏G3~G7药物与空白对照组比较， 可以显著延长小鼠负重游泳时间，具有极显著性差异(P<〇.01)，且明显优于Gl~G2药物。 结果详见表4。
[0201 ] 表4蜜制膏对小鼠负重游泳时间的影响d±.s_)
[0203] "*"p〈0.05vs 空白对照；
[0204] "**"？〈〇.〇1￥8空白对照；
[0205] 9.3本发明蜜制膏对小鼠运动前后血乳酸的影响
[0206] 经口给予小鼠本发明的蜜制膏后，本发明蜜制膏G3~G7药物对小鼠运动后血乳酸 曲线下面积与对照组比较有统计学差异(P<〇.05)，G1~G2药物组小鼠血乳酸曲线下面积 与对照组比较虽有所降低，但并无统计学差异(P>〇.05)。结果见表5。
[0207] 表5本发明蜜制膏对小鼠运动前后血乳酸水平的影响(Ir s )
[0209] "*"p〈0.05vs 空白对照；
[0210] 9.4本发明蜜制膏对小鼠肝糖原的影响
[0211] 经口给予小鼠 Gl~G7药物后，Gl~G2药物与空白对照组比较，小鼠肝糖原含量均 有明显的升高，具有显著性差异(P<〇.05)，本发明蜜制膏G3~G7药物与与空白对照组比 较，小鼠肝糖原含量均有明显的升高，具有极显著性差异(P<〇.01)，且明显优于Gl~G2药 物。结果详见表6。
[0212] 表6本发明蜜制膏对小鼠肝糖原含量的影响(1±勺
[0214] "*"p〈〇.〇5vs 空白对照；
[0215] "林" ρ〈〇· 〇1 vs 空白对照；
[0216] 9.5本发明蜜制膏对小鼠血清尿素的影响
[0217] 经