马红球菌致病基因VapA重组蛋白的应用

文档序号:8912100阅读:1196来源:国知局
马红球菌致病基因VapA重组蛋白的应用
【技术领域】
[0001] 本发明涉及生物技术领域,更具体地,涉及马红球菌致病基因VapA蛋白的应用。
【背景技术】
[0002] 马红球菌属于红球菌属,是一种人畜共患的条件性致病菌。该病原菌普遍存在于 自然环境土壤中,调查表明,50~95%的农场土壤中存在该菌。马红球菌可感染人,导致呼 吸道感染症状。该病也是幼龄马驹最常见的疾病之一,发病率可达80%。染病马驹一般呈慢 性或亚急性支气管肺炎症状,有时伴发盲结肠和肠系膜淋巴结溃疡。
[0003] -直以来关于马红球菌的致病机制并不清楚,直至最近研宄发现,导致该细菌毒 性的关键是其是否含有一个致病性相关质粒。该质粒含有85~90kb的遗传编码DNA,可编 码多个高免疫原性的毒性脂蛋白。其中,毒性相关蛋白A(VapA)为其主要表达蛋白。大量 研宄表明,马红球菌的毒性与VapA密切相关。目前,虽有部分重组VapA蛋白表达的报道, 但其表达的蛋白多以包涵体的形式存在,较难应用于实际的医疗诊断和治疗产品的开发和 应用。

【发明内容】

[0004] 本发明所要解决的技术问题是克服现有技术存在的缺陷,提供马红球菌致病基因 VapA蛋白的应用。
[0005] 本发明的目的是通过以下技术方案予以实现的: 马红球菌致病基因VapA重组蛋白在制备治疗由马红球菌引起的疾病的制剂中的应 用,所述马红球菌致病基因VapA重组蛋白为带MBP标签的MBP-VapA,其氨基酸序列如SEQ IDNO:1 所示。
[0006] 申请人通过研宄发现,MBP-VapA蛋白更接近马红球菌致病基因VapA的性质,因此 MBP-VapA蛋白在中和抗马红球菌抗体时具有很高的活性。
[0007] 因此,本发明还提供了马红球菌致病基因VapA重组蛋白在制备检测由马红球 菌引起的疾病的制剂中的应用,所述马红球菌致病基因VapA重组蛋白为带MBP标签的 MBP-VapA,其氨基酸序列如SEQIDN0:1所示。
[0008] -种制备治疗马红球菌病的免疫血清的方法,包括以下步骤: 51. MBP-VapA重组蛋白的制备:扩增VapA基因,并克隆到PMAL-C5X载体上,构建表达 载体PMAL-VapA,将PMAL-VapA转化至原核表达菌,通过IPTG在20°C下诱导获得MBP-VapA 重组蛋白; 52. 将纯化后的MBP-VapA重组蛋白与免疫佐剂混合后免疫动物,获得免疫血清。
[0009] 本发明使用PMAL-C5X载体,它可以促进重组表达蛋白的可溶性表达,实验研宄表 明,包涵体形式表达重组蛋白影响其氨基酸折叠形成正常的蛋白质三级、四级拓扑结构的 形成,进而影响重组表达蛋白的抗原性和生物活性。本研宄首次采用PMAL-C5X为载体,对 马红球菌的致病基因VapA进行了重组,获得重组质粒一PMAL-VapA。
[0010] 另外,发明人通过实验发现,单单使用PMAL-C5X载体,对VapA蛋白的可溶性表 达虽然有促进作用,但作用并不明显,还必须要配合低温诱导的温度,才能够使VapA蛋白 大量可溶性表达,发明人研宄了多个诱导温度对VapA蛋白的表达影响,结果显示,只有在 20°C时才能够获得大量的可溶性的VapA蛋白,该VapA蛋白带有MBP标签。
[0011] 本发明通过上述方法获得了大量可溶性表达且活性好的VapA蛋白,该蛋白具有 良好的免疫原性。
[0012] 优选的,所述本发明所述免疫动物可以是兔子或小鼠,免疫血清可以是兔抗马血 清,也可以是鼠抗马血清。
[0013] 更优选地,本发明所述免疫动物为兔子,免疫血清是兔抗马血清。
[0014] 发明人将纯化后获得的MBP-VapA蛋白进行ELISA检测,结果表明纯化的MBP-VapA 可用于纪特异性抗体的检测。
[0015] 优选地,本发明所述原核表达菌在培养至0D_值为0.5~0.7后,加入IPTG进行 诱导;更优选地,原核表达菌在培养至〇D_值为0.6后加入IPTG进行诱导。
[0016] 优选的,本发明所述IPTG诱导的浓度为0. 3~0. 7mM,诱导时间为8~12h。
[0017] 更优选地,申请人发现所述原核表达菌在20°C培养下,IPTG诱导浓度为0. 7mM,且 诱导时间为8h时,VapA蛋白的表达量最高,且多为可溶性表达。
[0018] 具体地,所述马红球菌致病基因VapA重组蛋白通过以下方法获得: 51. 重组质粒PMAL-VapA的构建:设计SEQIDNO:2和SEQIDNO:3所述引物扩增 VapA基因,将VapA基因与pZeroBack/blunt载体相连构建质粒pZeroBack-VapA;最后将 PMAL-c5x和测序正确的pZeroBack-VapA进行双酶切后构建表达载体PMAL-VapA; 52. 将PML-VapA转化入BL21菌中,测序鉴定为阳性之后,将菌液接种于培养基中, 培养至〇D_值为0. 5~0. 7,加入IPTG诱导后,离心重悬菌体,破碎菌体,收集上清,获得可 溶性VapA蛋白。
[0019] 优选地,S2中原核表达菌在培养至OD6cJ直为0. 6后加入IPTG进行诱导。
[0020] 与现有技术相比,本发明的有益效果如下: 本发明提供了马红球菌致病基因VapA重组蛋白在制备治疗由马红球菌引起的疾 病的制剂中的应用,其特征在于,所述马红球菌致病基因VapA重组蛋白为带MBP标签的 MBP-VapA,其氨基酸序列如SEQIDNO:1所示,该重组蛋白几乎全部以可溶表达的形式存 在。该重组蛋白具有良好的免疫原性,适于临床治疗用高免血清抗体和疫苗的制备、临床诊 断试剂的开发。
【附图说明】
[0021] 图1为VapA基因的PCR扩增图;其中,I:VapA;2 :ddH20对照;M:2000bp的DNA分 子量标准。
[0022] 图2为重组克隆质粒pZeroBack-VapA的酶切鉴定;其中,I:pZeroBack_VapA重组 质粒的及I和I双酶切产物;M:5000bp的DNA分子量标准。
[0023] 图3为重组表达质粒PMAL-VapA的测序鉴定结果;下划线部位分别为yVMI与 feo/PI的酶切位点序列。
[0024] 图4为不同诱导温度对蛋白表达量的影响;其中,M:蛋白分子量标准;I:IPTG诱 导前的蛋白表达;2-6:分别在10°〇、15°〇、20°〇、28°〇和37°〇温度下诱导的蛋白表达。
[0025] 图5为不同IPTG诱导时间对蛋白表达量的影响;其中,M:蛋白分子量标准;1-8分 别为IPTG诱导0、2、4、8、12、16、20和24小时的蛋白表达。
[0026] 图6为不同IPTG浓度对诱导蛋白表达量的影响;其中,M:蛋白分子量标准;1-7: IPTG浓度分别为:0、0? 1、0. 3、0. 5、0. 7、1. 0 和L4mM。
[0027] 图7为20°C下0. 7mMIPTG诱导8h后表达的蛋白;其中,M:蛋白分子量标准;1:诱 导前BL21细菌的蛋白表达;2 :诱导后BL21细菌的蛋白表达;3转化空表达载体PMAL-C5X 的BL21诱导前蛋白表达;4 :转化空表达载体PMAL-C5X的BL21诱导后蛋白表达;5 :转化空 表达质粒PML-VapA的L21诱导前蛋白表达;6 :转化表达质粒PML-VapA的BL21诱导后的 蛋白表达;7 :经亲和层析纯化后的VapA蛋白;8 :诱导表达VapA蛋白的BL21菌液超声破碎 上清(含可溶性表达蛋白);9 :诱导表达VapA蛋白的BL21菌液超声破碎沉淀(含包涵体表达 蛋白)。
[0028] 图8为不同温度诱导表达的VapA蛋白的状态分析;M:蛋白分子量标准;I:IPTG诱 导前转化BL21 (含PML-VapA)的蛋白表达;2和3分别为:20°C诱导表达产物的超声破碎 上清(含可溶性表达蛋白)和沉淀(含包涵体表达蛋白);4和5分别为:28°C诱导表达产物的 超声破碎上清和沉淀;6和7分别为:37°C诱导表达产物的超声破碎上清和沉淀。
[0029] 图9为纯化后VapA蛋白的Western-blot分析结果;其中,1:纯化的VapA蛋白; M:蛋白分子量标准。
[0030] 图10为MBP-VapA重组蛋白的Dot ELISA分析,其中,1至3孔为BSA,蛋白浓度分 别为:0? lmg/mL、0. 025mg/mL、0. 00625mg/mL ;4孔为PBS对照,5孔为马红球菌(ATCC33701) 裂解液阳性对照;6至8孔为VapA蛋白浓度分别为0. lmg/mL、0. 025mg/mL、0. 00625mg/mL。
[0031] 图11为抗原抗体稀释度图。
[0032] 图12为HRP酶标二抗稀释度优化结果图。
【具体实施方式】
[0033] 下面结合说明书附图和具体实施例进一步说明本发明的内容,但不应理解为对本 发明的限制。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的简单 修改或替换,均属于本发明的范围;若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术 人员所熟知的常规手段。
[0034] 实施例1原核表达重组质粒PMAL-VapA的构建与鉴定 1、马红球菌的复苏与培养:购买保藏于美国菌种保藏中心,保藏号为ATCC33701的马 红球菌,按照规定操作流程复苏马红球菌。
[0035] 2、引物设计:根据NCBI基因库中马红球菌致病基因VapA序列(JN990991. 1)以及
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