一种fth1基因可控表达的稳定细胞株的构建方法

文档序号:9592835阅读:3147来源:国知局
一种fth1基因可控表达的稳定细胞株的构建方法
【技术领域】
[0001] 本发明属于生物领域,具体涉及细胞株的构建。
【背景技术】
[0002] 临床上,磁共振成像(MRI)广泛用于对疾病的诊断、分期、随访及预后判断;在分 子影像学领域,MRI因为空间分辨率高,软组织对比度好以及无辐射损伤等优势具有较大应 用潜力,尤其适用于对移植细胞示踪的研究。MRI主要通过磁标记成像和报告基因成像两 种方式实现对移植细胞的示踪,前者采用MRI对比剂如金属螯合物或者超顺磁性氧化铁颗 粒(SPI0)直接标记细胞。由于SPI0横向弛豫率高,目前在细胞示踪成像上应用广泛。但 是,这种利用MRI对比剂直接标记细胞的方法,存在一个很大的缺陷,即对比剂会随着细胞 的分裂增殖逐渐降解,因而无法对移植细胞进行长期示踪。磁共振报告基因成像借助报告 基因在细胞内持续稳定表达,能够克服上述磁标记成像存在的缺陷,很大程度上可实现对 移植细胞的长期活体示踪。
[0003]目前用于MR显像的报告基因有多种,如β-半乳糖苷酶、酪氨酸酶、转铁蛋白受 体、MagA和铁蛋白基因等。在众多的MRI报告基因中,铁蛋白基因作为一种内源性报告基因 近年来备受关注。铁蛋白为一种储铁蛋白,有重链和轻链两种亚基。其中,铁蛋白重链多肽 1 (FTH1)具有亚铁氧化酶的活性,可以促进铁的氧化和掺入,作为一种功能性磁共振报告基 因已成为分子影像学研究的热点。
[0004] 然而,FTH1作为MRI报告基因的安全性是值得考虑的。目前,对FTH1表达对细胞 有无影响的研究结果不完全一致。一些研究证明FTH1是一种抗凋亡基因,它可以增加细胞 或组织对抗氧化应激的能力。然而,也有报告指出,在某些特定的细胞如宫颈癌Hela细胞、 鼻咽癌细胞中,FTH1的过表达会明显降低细胞的增殖活性。此外,以铁为成像介质的报告 基因长期持续表达还会诱发铁代谢紊乱。虽然铁是新陈代谢中多种生物活性酶的重要辅助 因子,然而,过多的铁会诱发大量活性氧自由基产生,从而导致细胞的损伤或凋亡。

【发明内容】

[0005] 基于上述技术问题,为了尽量减少FTH1持续表达并聚铁带来的不利影响,本发明 对FTH1的表达水平和表达时间进行了精确调控,使其在需要MR成像时表达,不需要MR成 像时关闭。
[0006] 本发明的目的通过以下措施实现的:
[0007] -种FTH1基因可控表达的稳定细胞株的构建方法,包括以下步骤:
[0008] (1)获取FTH1基因;
[0009] (2)将FTH1基因转入Tet-Οη载体获得重组质粒;
[0010] (3)将重组质粒构建为慢病毒载体;
[0011] (4)接种人神经母细胞瘤细胞(SK-N-SH),待细胞融合达40-50%,加入慢病毒液 0. 8μΙ/ml(滴度为1X109TU/ml)和聚凝胺5μg/ml,聚乙二醇0. 5-1μg/ml的完全培养基, 放入培养箱中培养20-24h;
[0012] (5)细胞传代后,细胞融合50-60 %,加入8μg/ml嘌呤霉素的培养基处理7d,再 加入4μg/ml嘌呤霉素的培养基筛选3d,获得可诱导表达FTH1基因的稳定细胞株,命名为 SK-N-SH/Tet-on/FTHl〇
[0013] 在利用MRI报告基因对移植细胞标记显像的示踪过程中,问题之一是如何让携带 报告基因的慢病毒成功、高效地感染目的细胞。在构建稳定细胞株过程中,由于基因片段的 插入、病毒液以及筛选抗生素对细胞的作用,均会对细胞产生毒副作用,而本发明有效降低 了这些因素对细胞的不利影响。另一方面,本发明使FTH1基因、Tet-Οη控制系统在SK-N-SH 细胞乃至动物体内有效的整合,协同作用,实现精确控制、可控表达,并能在有机体内长期、 稳定的通过MRI检测亦踪。
[0014] 上述FTH1基因可控表达的稳定细胞株的构建方法,包括以下步骤:
[0015] ?目的基因FTH1的获取:设计引物,上下游引物分别带有Age I和FcoR I酶切位 占.
[0016] FTH1-F: 5 ' -AACCGTCAGATCGCACCGGTGCCACCATGACGACCGCGTCCACCTC-3'
[0017]FTH1-R:5, -TCCTTGTAGTCCATGAATTCGCTTTCATTATCACTGTCTC-3'
[0018] PCR扩增,其条件是:94 °C,5min;94 °C,30s;55 °C,30s;72 °C,2min;30cycle; 72°C,10min;4°C保存;
[0019] ?将FTH1基因片段转入Tet-on载体构建重组FTHl/Tet-on载体;将重组FTH1/ Tet-on载体转入DH5α感受态细菌;培养重组细菌,进行质粒抽提,-20°C保存;
[0020] ?重组质粒转染
[0021] 1)将293T细胞接种于培养皿中,密度为6X106/10ml,细胞融合度约50%时可行 质粒转染;
[0022] 2)重组质粒、pHelperL0、pHelper2.0以4 : 3 : 2的比例与相应体积的 Opti-MEM混合均匀,总体积2. 5ml,室温温育5min;
[0023] 3) 100μ1脂质体2000与2. 4mlOpti-MEM培养基混匀,室温温育5min;
[0024] 4)混合DNA稀释液和脂质体2000稀释液;
[0025] 5)将混合液加入293T细胞的培养液中,培养细胞6~8h弃去原培养基,加入新鲜 培养基,注意观察细胞状态;
[0026] ?慢病毒的收集
[0027] 1)收集转染72h的293T细胞上清液,离心(4°C,4000g,10min),吸取上清,过滤于 离心管内,超速离心(4°C,25〇OOrpm,2min);
[0028] 2)倒掉上清,用预冷的PBS或DMEM重悬病毒,4°C冰箱过夜;
[0029] ?慢病毒感染人神经母细胞瘤细胞
[0030] 1)将SK-N-SH细胞接种在6孔板中,接种密度为1~2 X 105/孔;
[0031] 2)待细胞融合度达40 %~50 %时,进行慢病毒感染:
[0032] 3)弃掉旧培养基,加入含2μ1病毒液(滴度为1X109TU/ml)和5μg/ml聚凝胺、 0. 5-1μg/ml聚乙二醇的新鲜完全培养基,放入培养箱中继续培养;
[0033] 4) 12h后观察细胞状态,若无明显细胞毒性,继续培养10~12h后更换为无病毒的 新鲜完全培养基;
[0034] ?稳转株筛选
[0035] 1)待6孔板内感染病毒的细胞融合度达85%~90%时,胰酶消化,将细胞传代至 75ml培养瓶内培养;
[0036] 2)当细胞融合度达50 %~60 %时,加入含嘌呤霉素(终浓度为8μg/ml)的完全 培养基筛选7d后,再加入嘌呤霉素浓度为4μg/ml的完全培养基,继续筛选3d,获得稳定表 达抗药基因的可诱导表达FTH1基因的细胞,命名为SK-N-SH/Tet-on/FTHl。
[0037] 有益效果
[0038] 1.本发明采用四环素(Tet-on)诱导基因表达系统,通过将FTH1基因、Tet-on基 因表达系统稳定、高效地转入人神经母细胞瘤细胞(SK-N-SH)中,构建了稳定的细胞株,实 现MRI检测转基因细胞移植物中FTH1诱导表达,为细胞移植示踪提供一种可调控的、安全 的MRI报告基因成像方法。
[0039] 2.利用本发明构建的细胞株成功建立了荷瘤裸鼠模型,且利用此SK-N-SH/ Tet-on/FTHl细胞株容易构建裸鼠肿瘤模型,成功率达99%以上。细胞皮下接种后肿瘤总 体的生长速度较快,主要表现为局限性生长,形态不规则,呈结节状或分叶状,肿瘤组织很 少发生坏死,可浸润邻近大腿肌肉组织,无明显远处转移表现,构建的述肿瘤模型的特点非 常适用于MRI报告基因成像的研究。
【附图说明】
[0040]图 1-1 实施例 1Tet-on可诱导基因表达载体pLenti-Tet-〇n-MCS_3Flag-Puro图 谱
[0041] 图1-2包装质粒pHelper 1. 0图谱
[0042] 图1-3包装质粒pHelper2. 0图谱
[0043]图 2 双酶切pLenti-Tet_on-MCS-3Flag-Puro和FTH1 基因PCR产物电泳结果(Ml: DLlOOOOMarker;A:pLenti-Tet-〇n-MCS-3Flag-Puro载体酶切产物;B:FTH1 基因酶切产 物;M2:DL5000Marker)
[0044] 图3重组细菌克隆PCR产物电泳结果(M:DL5000Marker;1:阴性对照(ddH20); 2:空载自连对照组;3:阳性对照(GAPDH) ;4、6-11:实验组)
[0045] 图4不同浓度Dox诱导72h后FTH1表达变化
[0046] 图5加入0· 6 μ g/ml Dox后FTH1表达的动态变化
[0047] 图6 Dox诱导flag蛋白表达的免疫荧光染色
[0048] 图7 SK-N-SH/Tet-on/FTHl细胞在不同浓度FAC培养72h后T2-WI成像
[0049]图 8SK-N-SH/Tet-on/FTHl细胞MRI彩色编码的R2map
[0050]图 9CCK-8检测SK-N-SH和SK-N-SH/Tet-on/FTHl细胞增殖活性
[0051] 图10普鲁士蓝染色观察SK-N-SH和SK-N-SH/Tet-on/FTHl细胞聚铁能力
[0052] 图11透射电镜观察SK-N-SH和SK-N-SH/Tet-on/FTHl细胞聚铁能力
【具体实施方式】
[0053] 下面结合附图和实施例对本发明做进一步详细说明。以下实施例仅限于说明本发 明而不用于限制本发明的范围。
[0054] 实施例1
[0055] -种FTH1基因可控表达的稳定细胞株的制备方法,包括以下步骤:
[0056] (1)病毒载体的构建:
[0057] ?目的基因FTH1的获取:根据Genebank中FTH1 (BC000857)信息合成FTH1基因 的cDNA序列,设计引物,上下游引物分别带有AgeI和EcoRI酶切位点;
[0058]FTH1-F:
[0059] 5, -AACCGTCAGATCGCACCGGTGCCACCATGACGACCGCGTCCACCTC-3'
[0060] FTH1-R:
[0061] 5' -TCCTTGTAGTCCATGAATTCGCTTTCATTATCACTGTCTC-3'
[0062] PCR反应体系:
[0063]
[0064] PCR扩增条件:94Γ,5min;94Γ,30s;55Γ,30s;72Γ,2min;30cycle;72Γ, lOmin;4°C保存;
[0065] ?FTH1基因产物酶切:使用AgeI、EcoRI进行双酶切;
[0066] 酶切反应体系:
[0067]
[0068] 37Γ,反应 4h;7(TC灭火lOmin;
[0069] ?酶切产物琼脂糖凝胶电泳
[0070] 1)制备1%琼脂糖凝胶工作液,完全溶解后倒入已插好梳子的水平胶槽中,厚度 小于5mm
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