本发明涉及一种植物的生产方法及植物加工品的制造方法。
背景技术：
：近年来，源自植物的多酚化合物的各种生理功能受到关注。为了高效地利用植物所含有的这些多酚化合物，正在开发含有大量多酚化合物的植物的生产方法。在专利文献1中记载有“一种含有多酚化合物的植物体的生产方法，与供于根部去除工序的植物体相比，所述含有多酚化合物的植物体的多酚化合物量得到了增加，所述含有多酚化合物的植物体的生产方法具有：根部去除工序，去除选自包括除红薯以外的薯类、旋花科植物及菊科植物的组中的生长的含有多酚化合物的植物体的根部；及保存工序，在水的存在下，将去除了根部的植物体在20℃～40℃下保存24小时以上”。以往技术文献专利文献专利文献1；日本特开第2016-106621号公报技术实现要素：发明要解决的技术课题本发明人等对专利文献1中所记载的含有多酚化合物的植物体的生产方法进行了研究，其结果，明确了所得到的植物中的咖啡酰奎尼酸化合物的含有率有进一步提高的余地。因此，本发明的课题在于提供一种用于得到咖啡酰奎尼酸化合物的含有率高的植物的、植物的生产方法。并且，本发明的课题在于还提供一种植物加工品的制造方法。用于解决技术课题的手段本发明人等为了实现上述课题而进行了深入研究，其结果，发现了通过以下构成能够解决上述课题。[1]一种植物的生产方，其具有：使选自包括除红薯以外的薯类、旋花科植物及菊科植物的组中的至少一种植物生长的工序；及使用实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子的培养液对生长的植物进行营养液栽培的工序。[2]根据[1]所述的植物的生产方法，其中，培养液含有选自包括b、mn、zn、cu及mo的组中的至少一种金属的金属离子。[3]根据[2]所述的植物的生产方法，其中，当培养液含有一种金属离子时，金属离子的含有率相对于培养液的总质量为1.0质量ppm以下，当培养液含有两种以上的金属离子时，金属离子的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0质量ppm以下。[4]根据[1]至[3]中任一项所述的植物的生产方法，其中，培养液含有mn离子，mn离子的含有率相对于培养液的总质量为超过50质量ppb且1.0质量ppm以下。[5]根据[1]至[4]中任一项所述的植物的生产方法，其中，培养液含有选自包括k+、mg2+、ca2+、so42-及cl-的组中的至少一种离子，当培养液含有一种上述离子时，上述离子相对于培养液的总质量的含有率为1.0质量ppm以上，当培养液含有两种以上的上述离子时，上述离子的各自相对于培养液的总质量的含有率为1.0质量ppm以上。[6]根据[5]所述的植物的生产方法，其中，当培养液含有一种上述离子时，上述离子的含有率相对于培养液的总质量为1.0～300质量ppm，当培养液含有两种以上的上述离子时，上述离子的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0～300质量ppm。[7]根据[1]至[6]中任一项所述的植物的生产方法，其中，培养液含有选自包括b、mn、zn、cu及mo的组中的至少一种金属的金属离子和选自包括k+、mg2+、ca2+、so42-及cl-的组中的至少一种离子。[8]一种植物加工品的制造方法，其中，将通过[1]至[7]中任一项所述的生产方法得到的植物的根部去除而得到叶茎部，并在不供给水分的状态干燥叶茎部而得到植物加工品。[9]根据[8]所述的植物加工品的制造方法，其中，干燥时的温度为20～35℃，相对湿度为30～95％。发明效果根据本发明，能够提供一种用于得到咖啡酰奎尼酸化合物的含有率高的植物的、植物的生产方法。并且，根据本发明，还能够提供一种植物加工品的制造方法。咖啡酰奎尼酸化合物的含有率是指单位质量(干重)的植物中所包含的咖啡酰奎尼酸化合物的质量。具体实施方式以下，对本发明进行详细说明。以下所记载的构成要件的说明有时是基于本发明的代表性实施方式而进行的，但本发明并不限定于这种实施方式。另外，本说明书中，用“～”表示的数值范围是指将“～”前后所记载的数值作为下限值及上限值而包含的范围。[植物的生产方法]上述植物的生产方法为如下的植物的生产方法，其具有：使选自包括除红薯以外的薯类、旋花科植物及菊科植物的组中的至少一种植物生长的工序(以下，也称为“工序1”。)；及使用实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子的培养液对生长的植物进行营养液栽培的工序(以下，也称为“工序2”。)。通过具有这种构成的植物的生产方法生产的植物的咖啡酰奎尼酸化合物(以下，也称为“cqa”。)的含有率高。已知在咖啡类、大麦幼叶及红薯类等中含有cqa，由于其生理功能，有望应用于功能性食品等。另一方面，植物中的cqa(其中，生理活性特别高的三咖啡酰奎尼酸(tcqa))，其含有率低，这成为利用上的课题。根据上述植物的生产方法，与以往相比，能够生产cqa(尤其是tcqa)含有率高的植物。根据由此得到的植物，在以饮食经验为根据的安全性及消费者所具有的安全感的观点上，容易应用于功能性食品、化妆品及医药品等。〔工序1〕工序1为使选自包括除红薯以外的薯类、旋花科植物及菊科植物的组中的至少一种植物生长的工序。作为除红薯以外的薯类并不受特别限制，可以举出马铃薯、木薯、槟榔芋、芋头及山药等。作为旋花科植物并不受特别限制，可以举出红薯、旋花、牵牛花、月光花、蕹菜、茑萝松、菟丝子、土丁桂及空心菜等。作为菊科植物并不受特别限制，可以举出菊芋、蓍草、牛蒡、野艾蒿、紫菀、酒神菊、雏菊、金盏花、翠菊、红花、矢车菊、喜林草、苘蒿、木茼蒿、矶菊、菊苣、黄晶菊、朝鲜蓟、香丝草、硫华菊、蒲公英、大丽花、紫松果菊、一年蓬、白头婆、大吴风草、非洲菊、鼠麴草、六月菊、葵花、马兰、莴苣、大丁草、洋甘菊、瓜叶菊、蜂斗菜、雪莲果、一枝黄花、苦苣菜、春黄熊菊、百日菊及洋蓟等。其中，在可得到更优异的本发明的效果的观点上，作为植物，优选为选自包括旋花科植物及菊科植物的组中的植物，更优选为旋花科植物，进一步优选为红薯。作为红薯，例如可以举出beniazuma、beniharuka、benikomachi、红赤、鸣门金时、shiroyutaka、shirosatsuma、koganesengan、murasakimasari、ayamurasaki、suiou、shimonimo及tamaakane等，但并不受特别限制。并且，也能够使用源自高系14号的其他品种。并且，也能够使用尚未登记品种的各种类型的红薯。作为使上述植物生长的方法并不受特别限制，能够使用与植物的种类相应的公知的方法。作为使植物生长的方法，可以举出土耕栽培或营养液栽培。作为营养液栽培，可以举出固体基质耕栽培、喷雾耕栽培或水耕栽培。作为使植物生长的方法，根据植物的种类，例如可以举出马铃薯：“农家教你怎么种马铃薯/红薯”、附册现代农业、农文协、2013年10月号、pp92-96；红薯：同一杂志、pp152-175；洋蓟：蔬菜的栽培方法诀窍大辞典(2014)、主编北条雅章、成美堂出版、pp8-9；苘蒿：同一杂志、pp34-35；莴苣：同一杂志、pp80-81；牛蒡：同一杂志、pp168-169；芋头：同一杂志、pp170-171；雪莲果：同一杂志、pp186-187；空心菜：同一杂志、pp212-213等，但并不限于此。其中，从植物生长为更大，其结果，能够使cqa的产量(表示每单位根的植物中所包含的cqa的质量，单位为mg/根。)变得更多的观点考虑，在植物生长时，优选在水及肥料的存在下且在足够的光照射下培育。其中，当使用红薯作为植物时，在其叶子中包含大量cqa，因此更优选在进一步增大每一片叶子的大小并且进一步增加每一根植物的叶子的片数的公知的条件下培育。另外，本说明书中，“生长”是指植物充分变大的状态，具体而言，指以下状态。例如，在红薯的情况下，是指红薯的地上部分展开4片(4节)以上的状态或地上部分伸长为20cm以上的状态。在野艾蒿及茼蒿的情况下，是指地上部分生长为10cm以上的状态。在洋蓟及莴苣的情况下，是指真叶出现4片～5片以上的状态。在牛蒡的情况下，是指真叶出现3片～4片以上的状态。在芋头的情况下，是指真叶出现3片以上的状态。在马铃薯的情况下，是指地上部分生长为10cm以上的状态。在雪莲果的情况下，是指地上部分生长为10cm以上的状态。在空心菜的情况下，是指地上部分生长为10cm以上的状态。在工序1中用于使植物生长的条件并不受特别限制，能够按植物适当地进行调节。在调节条件，例如可以举出温度、湿度、光(可以为太阳光，也可以为人造光)、co2(可以直接利用空气中的co2，也可以进一步增加环境气体中的co2含有率)、水(可以为在土壌中的撒水，也可以为营养液栽培)及根据所需的养分(能够使用氮、磷酸、钾等，进一步还能够使用市售的肥料。)等。在植物的生长过程中，将这些条件适当地组合而进行调节即可。另外，当使用人造光作为光源时，例如能够使用荧光灯及led(lightemittingdiode：发光二极管)等。并且，在这些之中，有尤其以植物栽培用或植物培育用等用途市售的光源，也优选利用这些光源。并且，在近年来的植物工场中，从削减照明与燃料费及光源长寿命化等观点考虑，led照明也被广泛利用。作为该情况下的光源，不需要特别是白色光，根据目的利用r(red；红色)光与b(blue：蓝色)光的组合的例子也较多。也能够利用根据需要进一步对这些光源添加了g(green：绿色)光或近红外光的光源。在工序1中用于使植物生长的条件根据植物的种类而不同，作为昼长时间，优选为6～24小时，更优选为8～16小时。并且，作为环境气体温度，优选为10～40℃，更优选为15～35℃。并且，作为湿度并不受特别限制，优选为在使植物生长的温度下为30～100％。作为环境气体中的co2的含有率，优选为400～2000质量ppm，更优选为1000～1500质量ppm。作为光合成光量子通量密度，优选为50～500μmol/m2/sec，更优选为80～450μmol/m2/sec。另外，上述各条件能够根据植物的种类适当地进行选择。作为工序1的期间并不受特别限制，只要是植物达到已说明的“生长的”状态为止的期间即可。典型地，7～60天左右的情况较多，例如在使红薯幼苗生长时，作为工序1，优选为10～40天。一般而言，cqa在叶茎部尤其在叶子中其含量多。因此，在工序1中，优选为通过使植物生长而得到足够量的叶子。一般而言，作为叶子的产量，在从生长的植物去除根和茎的基础上，对剩余的叶子进行干燥处理，该叶子的产量能够表示为所得到的干燥叶的产量的每一根植物的平均值(g/根)。即，能够表示为能够从一根植物获取的叶子的干重的合计(g/根)。叶子的产量也根据植物的种类、栽培条件及栽培期间等而不同，例如若为红薯的水耕栽培的情况，则优选为1g/根以上，更优选为2g/根以上，进一步优选为3g/根以上。〔工序2〕工序2为使用实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子的培养液对生长的植物进行营养液栽培的工序。即为接着栽培在工序1中生长的植物的工序。本说明书中，营养液栽培是指不使用土壌而将包含植物的生长所需要的养分的培养液供给到植物的栽培方法，包括使用固体基质的固体基质耕以及不使用固体基质的水耕及喷雾耕。其中，从更容易控制赋予到植物的养分的观点考虑，优选为水耕。工序2中的营养液栽培只要作为培养液而使用实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子的培养液，则其方法并不受特别限制，能够使用公知的方法。以下，以基于其中的水耕的情况为例子进行说明，但作为本发明的实施方式所涉及的工序2，并不限于以下。在工序2中使用的培养液实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子。实质上不含有硝酸根离子及磷酸根离子是指，当使用离子色谱仪进行了测定时，相对于培养液的总质量，硝酸根离子及磷酸根离子的含有率均小于10质量ppm，优选小于5.0质量ppm，更优选小于1.0质量ppm。一般而言，在营养液栽培(典型地为水耕栽培)中使用的培养液(所谓的液体肥料)中含有100～1000质量ppm左右的硝酸根离子、30～200质量ppm左右的磷酸根离子的情况较多。即，与一般的上述液体肥料相比，在本工序中使用的培养液的硝酸根离子及磷酸根离子的含有率为1/10～1/1000左右。推测通过在工序2中限制供给植物的生长所需要的硝酸根离子及磷酸根离子，在植物中促进了cqa的产生(其中，尤其是tcqa的产生)。另外，作为培养液的溶剂，通常使用水的情况较多。在该情况下，作为培养液中的水的含有率并不受特别限制，相对于培养液的总质量，优选为90质量％以上，更优选为95质量％以上，进一步优选为99质量％以上。作为上述培养液，能够使用纯水、蒸馏水及根据需要调节了成分的自来水。另外，本说明书中，自来水是指满足一般的自来水质基准的自来水(例如，mn离子的含有率在自来水的总质量中为50质量ppb以下)。在可得到更优异的本发明的效果的观点上，培养液优选含有选自包括b、mn、zn、cu及mo的组中的至少一种金属的金属离子(以下，称为“第1离子”。)。另外，在可得到更优异的本发明的效果的观点上，培养液进一步优选含有b、mn、zn、cu及mo的各自的离子作为第1离子。作为培养液中的第1离子的含有率并不受特别限制，当在培养液中含有一种第1离子时，作为第1离子的含有率，相对于培养液的总质量，优选为10质量ppm以下，更优选为1.0质量ppm以下。当在培养液中含有两种以上的第1离子时，第1离子的各自的含有率相对于培养液的总质量，优选为10质量ppm以下，更优选为1.0质量ppm以下。另外，本说明书中，培养液含有某一第1离子的状态是指，培养液含有相对于培养液的总质量为20质量ppb以上的该第1离子，优选为50质量ppb以上，更优选为超过50质量ppb。若培养液含有至少一种(或两种以上)第1离子且其(或各自的)含有率为1.0质量ppm以下，则所得到的植物中的cqa(尤其是tcqa)的含量变得更多。培养液优选含有第1离子中的至少mn离子，该情况下的mn离子的含有率相对于培养液的总质量，优选为超过50质量ppb且1.0质量ppm以下。若培养液中的mn离子的含有率在上述范围内，则可得到更优异的本发明的效果。并且，在可得到更优异的本发明的效果的观点上，培养液优选含有选自包括k+、mg2+、ca2+、so42-及cl-的组中的至少一种离子(以下，也称为“第2离子”。)，更优选含有两种以上的第2离子。另外，在可得到更优异的本发明的效果的观点上，培养液进一步优选含有k+、mg2+、ca2+、so42-及cl-的各自的离子作为第2离子。作为培养液中的第2离子的含有率并不受特别限制，当在培养液中含有一种第2离子时，作为第2离子的含有率，优选为0.1质量ppm以上，更优选为1.0质量ppm以上，进一步优选为5.0质量ppm以上，且优选为500质量ppm以下，更优选为300质量ppm以下，进一步优选为200质量ppm以下，尤其优选为150质量ppm以下。并且，当在培养液中含有两种以上的第2离子时，优选至少一种含有率在上述范围内，更优选各个第2离子的含有率在上述范围内。若培养液中的至少一种第2离子的含有率为1.0～300质量ppm，则可得到更优异的本发明的效果，若培养液中的所有第2离子的含有率为1.0～300质量ppm，则可得到更优异的本发明的效果。另外，本说明书中，培养液含有某一第2离子的状态是指，当利用实施例中所记载的方法进行了测定时，其含有率为定量下限值以上(例如，若为mg2+，则为0.1质量ppm以上)。另外，在可得到更优异的本发明的效果的观点上，培养液优选含有k+、mg2+、ca2+、so42-及cl-，关于各自相对于培养液的总质量的含有率，k+优选为5.0质量ppm以上，mg2+优选为5.0质量ppm以上，ca2+优选为15质量ppm以上，so42-优选为10质量ppm以上，cl-优选为5.0质量ppm以上。培养液优选含有一种以上的第1离子和一种以上的第2离子，更优选含有第1离子全部和一种以上的第2离子，进一步优选含有第1离子全部和第2离子全部。另外，作为该情况下的各个第1离子及各个第2离子在培养液中的含量，如已说明的那样。制备培养液的方法并不受特别限制。在纯化纯水、蒸馏水及自来水等之后，例如通过添加成为离子源的成分以使第1离子及第2离子的含有率在上述范围等来制作。当使用自来水制备培养液时，可以将自来水中所包含的离子用作培养液的成分来制备培养液，也可以一旦除去离子之后再次加入相同的成分来制备所希望的培养液。工序2的营养液栽培能够利用公知的方法来实施。当通过土耕栽培实施了工序1时，将生长的植物移植到营养液栽培用装置中，并供给上述规定的培养液即可。并且，当通过营养液栽培实施了工序1时，将上述培养液供给到植物，来代替在工序1中所使用的水及肥料即可。工序2中的其他条件(空气中的co2含有率、日照、昼长、温度及湿度等)并不受特别限制，可以与在工序1中所说明的条件相同。尤其关于昼长，优选为小于17小时，更优选为15小时以下。在上述生产方法中，当将工序2至的昼长设为小于17小时时，能够更高效率地生产cqa的含有率高的植物。作为工序2的期间并不受特别限制，但在植物中产生更大量的cqa的观点上，一般优选为5天以上，更优选为7天以上，进一步优选为10天以上。并且，在能够更高效率地回收cqa的观点上，虽然并不受特别限制，但一般优选为30天以下，更优选为25天以下。根据具有上述工序1及工序2的上述植物的生产方法，可得到cqa(尤其是tcqa)的含量多的植物。本说明书中，cqa是指咖啡酰奎尼酸化合物，作为咖啡酰奎尼酸化合物，可以举出单咖啡酰奎尼酸(3-o-咖啡酰奎尼酸、4-o-咖啡酰奎尼酸、5-o-咖啡酰奎尼酸及1-o-咖啡酰奎尼酸)、二咖啡酰奎尼酸(3,4-o-二咖啡酰奎尼酸、3,5-o-二咖啡酰奎尼酸、4,5-o-二咖啡酰奎尼酸、1,3-o-二咖啡酰奎尼酸、1,4-o-二咖啡酰奎尼酸及1,5-o-二咖啡酰奎尼酸)、三咖啡酰奎尼酸(3,4,5-o-三咖啡酰奎尼酸、1,4,5-o-三咖啡酰奎尼酸、1,3,5-o-三咖啡酰奎尼酸及1,3,4-o-三咖啡酰奎尼酸)以及四咖啡酰奎尼酸(1,3,4,5-o-四咖啡酰奎尼酸)。根据上述植物的生产方法，可得到cqa的含有率高的植物，其中，尤其在可得到三咖啡酰奎尼酸(tcqa)的含有率高的植物的观点上有用。已知tcqa在cqa当中具有特别强的生理活性，但含有tcqa的植物是有限的，并且在该植物中的含有率非常少。另一方面，根据上述植物的生产方法，能够得到tcqa的含有率多的植物，这是有用的。通过上述植物的生产方法得到的植物的每单位质量中的cqa的含有率高，并且每单位根中的cqa的产量也多。因此，从上述植物中能够回收大量的cqa(尤其是tcqa)。若将所回收的cqa例如添加到食品等中，则能够制造具有生理功能的食品。作为从通过上述植物的生产方法得到的植物中回收cqa的方法并不受特别限制。作为从植物中提取cqa的方法，例如将植物或植物的干燥物以原样或粉碎之后，加入水、有机溶剂或它们的混合物并进行搅拌等，由此得到提取液，并且将该提取液根据目的进行浓缩、干燥或纯化即可。在该情况下，植物的cqa的含有率越高，则在一次提取操作中可得到的cqa的量变得越多，单位量的cqa的回收所需要的成本变得越少。例如，在植物的cqa含有率为0.01质量％左右的情况和植物的cqa含有率为0.1质量％左右的情况下，在相同的生产设备中一次可得到的cqa的量理论上成为约10倍。若为相同的生产设备，则一次运转费用大致相同。因此，若植物中的cqa含量多，则能够以更低的成本回收cqa。并且，通过上述植物的生产方法得到的植物，尤其其叶子的cqa(尤其是tcqa)的含有率高，因此通过以原样或与其他材料混合等，也能够用作功能性食品。并且，通过上述植物的生产方法得到的植物也可以在干燥后利用。一般而言，通过干燥而植物中的成分被浓缩，因此优选。另外，可以从干燥的植物中提取并使用cqa。作为cqa的提取方法并不受特别限制，能够使用公知的方法。一般而言，cqa在植物中的含有率相对于干重为0.1～2.0质量％左右的情况较多。另一方面，通过上述植物的生产方法得到的植物的cqa含有率相对于植物的总质量(干重)，优选为4.0质量％以上，更优选为6.0质量％以上，进一步优选为8.0质量％以上。并且，若为tcqa，则其含有率相对于植物的总质量(干重)，优选为0.1质量％以上，更优选为0.3质量％以上，进一步优选为0.6质量％以上。并且，若为二咖啡酰奎尼酸化合物(dcqa)，则其含有率相对于植物的总质量(干重)，优选为2.0质量％以上，更优选为4.0质量％以上，进一步优选为6.0质量％以上。通过上述生产方法得到的植物的cqa的含有率高。关于该含有率，例如若为红薯，则与利用通常的方法生产的红薯相比，dcqa优选为1.2倍以上，更优选为1.5倍以上，进一步优选为2.0倍以上。tcqa优选为5.0倍以上，更优选为10倍以上，进一步优选为30倍以上。cqa优选为1.5倍以上，更优选为2.0倍以上，进一步优选为2.5倍以上。[植物加工品的制造方法]上述植物加工品的制造方法为如下的植物加工品的制造方法：将通过上述中所说明的生产方法得到的植物的根部去除而得到叶茎部，并在不供给水分的状态下干燥上述叶茎部而得到植物加工品。另外，本说明书中，“植物加工品”是指通过上述制造方法制造出的物品。作为从植物去除其根部的方法并不受特别限制，只要将植物的根部与叶茎部进行分离而得到叶茎部即可。另外，本说明书中，叶茎部是指将植物的叶部与茎部合在一起的部分，在通过土耕栽培生长的植物中，其含义与地上部分相同。作为得到叶茎部的方法，例如可以举出用刀具等切割根部及用手折取根部等。当用刀具等切割时，根据植物的种类适当地调节切割位置即可。当将切割位置设在茎中途时，可以举出如下方式：使用锋利的修枝剪、修枝刀、镰刀、推子及链锯等刀具，相对于茎正交或相对于茎保持倾斜角度而进行切割。当保持倾斜角度而切割茎时，该倾斜角度并不受特别限制。另外，在上述植物加工品的制造工序中，在去除根部之后从叶茎部会产生新的根，这并不妨碍用于得到本发明的效果。(干燥工序)上述植物加工品的制造方法具有在不供给水分的状态下干燥叶茎部的干燥工序。作为在不供给水分的状态下干燥叶茎部的方法并不受特别限制，例如可以举出从营养液栽培等装置中取出并在控制了温度及湿度的空间进行干燥的方法。本说明书中，“不供给水分”是指不供给植物的生长所需要的水分，具体而言，是指不供给培养液。作为干燥时的温度及湿度并不受特别限制，但在可得到具有更优异的本发明的效果的植物加工品的观点上，干燥时的温度优选为20～35℃，更优选为25～30℃。相对湿度优选为30～95％，更优选为50～90％。若温度及湿度在上述范围内，则可得到cqa的含有率更高的植物加工品。并且，作为干燥工序的天数，优选为3～16天，更优选为3～15天，进一步优选为4～12天，尤其优选为5～10天。若干燥时的温度为20℃以上，则植物中的cqa的产生反应更提前进行，可得到具有更优异的本发明的效果的植物加工品。另一方面，若干燥时的温度为35℃以下，则植物中的cqa降解酶(breakdownenzyme)的活性更低，因此其结果，纯化的cqa更难以降解，可得到cqa的含有率更高的植物加工品。若干燥时的湿度为30％以上，则cqa的产生与植物的干燥容易更平衡地进行。并且，若干燥时的湿度为95％以下，则对植物的干旱胁迫(droughtstress)容易变得更大，进一步促进植物中的cqa的产生，其结果，可得到cqa的含有率更高的植物加工品。另外，作为干燥方法并不受特别限制，例如可以举出在含有水蒸气的空间放置叶茎部的方法等。在干燥工序中，可以对叶茎部照射光。用于对叶茎部照射光的光源并不受特别限制，可以举出太阳光、荧光灯、氙气灯、汞灯、卤素灯及led等。每天的光照射时间优选为5～24小时，更优选为8～16小时，进一步优选为10小时～14小时。实施例以下，根据实施例对本发明进行进一步详细的说明。以下实施例所示的材料、使用量、比例、处理内容及处理步骤等只要不脱离本发明的宗旨，则能够适当地进行变更。因此，本发明的范围不应通过以下所示的实施例进行限定性解释。[试验例1：比较例1、实施例1]根据具有第2工序的植物的生产方法，为了确认可得到本发明的效果，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在以下栽培条件下使红薯幼苗生长。即，在水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中放入纯水10l、液体肥料(hyponica液肥，kyowakagakuco.,ltd.制造)的a液8ml、液体肥料(hyponica液肥，kyowakagakuco.,ltd.制造)的b液8ml，并移植了红薯幼苗6株。此时的幼苗的平均质量为2.0g/根(鲜重)。栽培在30℃及湿度50％的条件下且在环境气体中的co2的含有率与通常的大气下相同的条件下实施。即，未追加供给co2。照明用光源使用led(showadenkok.k.制造的dpt″rb120q3340型)，将光合成光量子通量密度设为300μmol/m2/sec(将r光/b光之比为2/1)，使用定时器以点灯12小时、灭灯12小时的循环栽培了14天。第1工序结束时点的植物(红薯)的平均质量为28.0g/根(鲜重)。另外，关于该栽培方法，在表1中记载为“水耕，30℃，50％，led300μmol”。第1工序结束时的红薯叶子的dcqa含有率为干重的2.73质量％，并且不含有tcqa，总cqa含有率为干重的3.60质量％，每一根红薯的叶子的平均产量为1.26g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例1。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入纯水10l，在相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了14天。第2工序结束时的红薯的平均质量为31.8g/根(鲜重)。所回收的每一根红薯的叶子的平均产量为1.35g/根(干重)。红薯叶子的dcqa含有率为干重的3.87质量％，tcqa含有率为干重的0.25质量％，总cqa含有率为干重的6.03质量％，与比较例1相比得到了大幅提高。将结果示于表1的实施例1。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“30℃，50％，led300μmol”。根据试验例1的结果可知，通过具有第2工序的实施例1的生产方法生产的红薯具有本发明的效果。另一方面，可知通过不具有第2工序的比较例1的生产方法生产的红薯不具有本发明的效果。[试验例2：比较例2、实施例2～7]为了确认在第2工序中使用的培养液的成分的差异对本发明的效果产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在与试验例1的第1工序相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。另外，试验例2与试验例1的实施日期时间不同。第1工序结束后的红薯叶子中的dcqa含有率为干重的2.47质量％，tcqa含有率为干重的0.01质量％，总cqa含有率为干重的3.15质量％，叶子的产量为1.60g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例2。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与试验例1的第2工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了14天(关于实施例4，继续栽培了13天)。将第2工序结束后的红薯叶子中的tcqa含有率等的测定结果示于表1的实施例2～7。另外，关于各培养液，使用自来水作为原水，并且使用离子交换树脂来制造纯水，向上述纯水中适当地溶解na2b4o5(oh)4·8h2o、mncl2·4h2o、znso4·7h2o、cuso4·5h2o、na2moo4·2h2o、kcl或cacl2，使培养液中的各离子的含有率成为表2中所记载的那样。另外，培养液中的各离子的含有率通过后述的方法进行了测定。另外，关于用作原水的自来水及制备后的培养液中所包含的各成分，示于表2。根据试验例2的结果，与通过实施例2的生产方法生产的红薯相比，通过培养液含有第1离子的实施例3的生产方法生产的红薯在叶子中包含更多的dcqa及更多的总cqa，并且叶子的产量也更多。并且，与通过实施例2的生产方法生产的红薯相比，通过培养液含有第2离子的实施例4的生产方法生产的红薯在叶子中包含更多的dcqa及更多的总cqa，并且叶子的产量也更多。并且，与通过实施例2的生产方法生产的红薯相比，通过培养液含有第1离子及第2离子的实施例5～7的生产方法生产的红薯在叶子中包含更多的dcqa、更多的tcqa及更多的总cqa，并且叶子的产量更多。[试验例3：比较例3、实施例8～11]为了确认在第2工序中使用的培养液的成分的差异的影响，进而为了实施植物加工品的制造，且为了确认干燥工序的条件对植物加工品的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在与试验例1相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。另外，试验例3与上述各试验例的实施日期时间不同。第1工序结束后的红薯叶子中的dcqa含有率为干重的2.50质量％，tcqa含有率为干重的0.01质量％，总cqa含有率为干重的3.36质量％，叶子的产量为1.66g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例3。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与试验例1的第2工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了14天(关于实施例9，继续栽培了15天。)。将第2工序结束后的红薯叶子的tcqa含有率等示于表1的实施例8及实施例10。(植物加工品的制造)用剪刀切割第2工序结束后的红薯茎的未浸泡于培养液中的部分(是叶茎部，其含义与“地上部分”相同)，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例9及实施例11。根据试验例3的结果，与通过在第2工序中所使用的培养液相同的实施例8及10的生产方法生产的红薯的叶子相比，通过实施例9及实施例11的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率更高。并且，与通过在第2工序中所使用的培养液不同的实施例8的生产方法生产的红薯的叶子及通过实施例9的制造方法制造的植物加工品相比，通过实施例10的生产方法生产的红薯叶子及通过实施例11的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率更高，并且叶子的产量更多。[试验例4：比较例4～6、实施例12～15]为了确认第2工序的有无的影响，为了实施植物加工品的制造及为了确认干燥工序的条件对植物加工品的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在与试验例1相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。另外，试验例4与上述各试验例的实施日期时间不同。第1工序结束后的红薯叶子中的dcqa含有率为干重的2.82质量％，tcqa含有率为干重的0.02质量％，总cqa含有率为干重的3.62质量％，叶子的产量为1.12g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例4。并且，同样地将第1工序中的栽培天数设为26天的结果示于比较例5。基于以与比较例4相同的方式得到的红薯，未实施第2工序而制造出植物加工品的结果示于比较例6。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与试验例1的第2工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了13天或14天。将第2工序结束后的红薯叶子的tcqa含有率等示于表1的实施例12及实施例14。(植物加工品的制造)用剪刀切割第2工序结束后的红薯茎的未浸泡于培养液中的部分(叶茎部，其含义与“地上部分”相同)，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例13及实施例15。根据试验例4的结果，与通过在第2工序中所使用的培养液相同的实施例12及14的生产方法生产的红薯的叶子相比，通过实施例13及实施例15的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率更高。并且，与比较例4相比，通过比较例5的生产方法生产的红薯叶子因增加第1工序的栽培天数而dcqa、总cqa的含有率变得更高，叶子的产量也有所增加，但与通过包括第2工序的栽培天数大致相同的实施例12及实施例14的生产方法生产的红薯叶子相比，dcqa、tcqa及总cqa的含有率均低，尤其tcqa含有率存在很大的差。并且，与通过具有第2工序的实施例13及实施例15的制造方法制造出的植物加工品相比，通过比较例6的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率均低。[试验例5：实施例16～23]为了确认制造植物加工品时的干燥工序的条件对植物加工品的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在与试验例1相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。另外，试验例5与上述各试验例的实施日期时间不同。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与第1工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了13天。(植物加工品的制造)用剪刀切割第2工序结束后的红薯的叶茎部，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造出的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例16～23。[试验例6：实施例24～30]为了确认制造植物加工品时的干燥工序的条件对植物加工品的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在与试验例1相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。另外，试验例6与上述试验例的实施日期时间不同。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与第1工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了15天。(植物加工品的制造)用剪刀切割第2工序结束后的红薯的叶茎部，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造出的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例24～30。[试验例7：实施例31～33]为了确认第1工序及第2工序中的温湿度条件对植物的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。＜实施例31＞(第1工序)作为第1工序，在以下栽培条件下使红薯幼苗生长。即，在水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中放入纯水10l、液体肥料(hyponica液肥，kyowakagakuco.,ltd.制造)的a液8ml、液体肥料的b液8ml，并移植了红薯幼苗。使用荧光灯(toshibacorporation制造的植物栽培用荧光灯：bioluksfl40sbr)作为照明用光源，将光合成光量子通量密度设为300μmol/m2/sec，以点灯12小时、灭灯12小时的循环栽培了14天。另外，照明点灯时的12小时设为温度30℃、湿度70％，照明灭灯时的12小时设为温度25℃、湿度90％条件。除了上述以外，在与上述试验例1相同的条件下进行了栽培。在表1中记载为“水耕，白天：30℃，70％，夜晚：25℃，90％，荧光灯300μmol”。另外，试验例7与上述各试验例的实施日期时间不同。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入纯水10l，在与上述第1工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了15天。将所得到的红薯叶子的tcqa含有率(相对于干重的质量％)等的结果示于表1的实施例31。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“白天：30℃，70％夜晚：25℃，90％荧光灯300μmol”。＜实施例32＞(第1工序)作为第1工序，在以下栽培条件下使红薯幼苗生长。即，在水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中放入纯水10l、液体肥料(hyponica液肥，kyowakagakuco.,ltd.制造)的a液8ml、液体肥料的b液8ml，并移植了红薯幼苗。使用荧光灯(toshibacorporation制造的植物栽培用荧光灯：bioluksfl40sbr)作为照明用光源，将光合成光量子通量密度设为450μmol/m2/sec，以点灯12小时、灭灯12小时的循环栽培了14天。另外，将栽培中的温度设为35℃，将湿度设为70％，供给co2气而将环境气体中的co2含有率设为1500ppm(体积基准)。除了上述以外，在与上述试验例1相同的条件下进行了栽培。在表1中记载为“水耕，35℃，50％，荧光灯450μmol，co2：1500ppm”。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1中所记载的培养液10l，在与上述相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了15天。将所得到的红薯叶子的tcqa含有率(相对于干重的质量％)等的结果示于表1的实施例32。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“35℃，50％，荧光灯450μmol，co2：1500ppm”。＜实施例33＞(植物加工品的制造)用剪刀切割实施例32的第2工序结束后的红薯的叶茎部，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造出的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例33。[试验例8：比较例7、实施例34、35]为了确认第1工序中的栽培方法对植物的cqa含有率产生的影响，在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在以下栽培条件下栽培了红薯。即，在放入有金色粒状培养土(irisohyamainc.制造)的盆(pot)中移植红薯幼苗，并在温度30℃、湿度45％的条件下使用荧光灯(toshibacorporation制造的植物栽培用荧光灯：bioluksfl40sbr)作为照明用光源，除了将光合成光量子通量密度设为70mol/m2/sec以外，以与试验例1相同的方式进行了栽培。第1工序结束后的红薯叶子的tcqa含有率为干重的0.11质量％，总cqa含有率为干重的2.47质量％，叶子的产量为0.24g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例7。另外，试验例8与上述各试验例的实施日期时间不同。(第2工序)从第1工序结束后的红薯定期地采集处于规定的生长状态的部分(因此，在表1的第1工序的天数栏中记载为“继续”。)，并将其移植到放入有表1中所记载的培养液的水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中。将其在温度30℃、湿度50％的条件下，使用led作为照明用光源，将光合成光量子通量密度设为300mol/m2/sec，在与试验例1的第2工序相同的条件下进行了栽培。将第2工序结束后的红薯叶子的tcqa含有率等示于表1的实施例34及实施例35。[试验例9：比较例8、实施例36、37]在以下条件下实施了试验。(第1工序)作为第1工序，在以下栽培条件下栽培了koganesengan(红薯一般品种，在表1中简单地记载为“koganesengan”。)。即，在水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中放入纯水10l、液体肥料(hyponica液肥，kyowakagakuco.,ltd.制造)的a液8ml、液体肥料的b液8ml，并移植了koganesengan的幼苗。接着，在温度30℃、湿度60％的条件下，使用荧光灯(toshibacorporation制造的植物栽培用荧光灯：bioluksfl40sbr)作为照明用光源，除了将光合成光量子通量密度设为140μmol/m2/sec以外，在与试验例1相同的条件下进行了栽培。第1工序结束后的koganesengan的叶子中的dcqa含有率为干重的2.22质量％，tcqa含有率为干重的0.02质量％，总cqa含有率为干重的2.86质量％，叶子的产量为2.11g/根(干重)，较低。将结果示于表1的比较例8。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“水耕，30℃，60％，荧光灯140μmol”。(第2工序)接着，对于上述第1工序结束后的koganesengan，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入纯水10l，在与上述相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了14天。将所得到的koganesengan的叶子中的tcqa含有率等的结果示于表1的实施例36。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“30℃，60％，荧光灯140μmol”。(植物加工品的制造)用剪刀切割上述第2工序结束后的koganesengan的叶茎部，并将叶茎部载置于调节为表1中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表1中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造出的植物加工品的tcqa含有率等示于表1的实施例37。[试验例10：比较例9、实施例38、39]在以下条件下实施了试验。(第1工序)在室外的一般田地中，不进行温湿度、光量等的调节而在自然环境下栽培而准备了处于规定的生长状态的茼蒿。上述茼蒿中的dcqa含有率为干重的0.43质量％，并且不含有tcqa，总cqa含有率为干重的0.61质量％，叶子的产量为0.54g/根，较低。将结果示于表1的比较例9。另外，在表1中，将上述栽培方法记载为“土耕，室外田地”。(第2工序)接着，将上述茼蒿移植到放入有表1中所记载的培养液10l的水耕栽培器(homehyponica601，kyowalimited制造)中。接着，在温度23℃、湿度70％的条件下，使用荧光灯(toshibacorporation制造的植物栽培用荧光灯：bioluksfl40sbr)作为照明用光源，除了将光合成光量子通量密度设为100μmol/m2/sec以外，在与试验例1相同的条件下将上述茼蒿栽培了6天。将所得到的茼蒿叶子的tcqa含有率(相对于干重的质量％)等的结果示于表1的实施例38及实施例39。[测定方法]在本实施例中，通过以下方法实施了各成分的测定。＜培养液中的离子的含量＞关于第1离子及fe离子，通过icp(inductivelycoupledplasma：电感耦合等离子体)发光分光分析法测定了培养液(及自来水)中所包含的离子的含量。icp发光分光分析的测定条件如下。喷雾室：旋风分离器(gascyclone)等离子气体流量：15l/min辅助气体流量：0.2l/min雾化器气体流量：1l/min重复次数：3次样品延迟时间：30s通过离子色谱对除上述以外的离子进行了测定。离子色谱的测定条件如下。另外，根据各成分的校准曲线求出了培养液中的各成分的含量。柱：shodexys-50游离液：4mmhno3流速：0.8ml/min柱温：40℃＜植物及植物加工品中的cqa的含有率＞关于植物及植物加工品中所包含的cqa，利用以下方法从植物及植物加工品中得到测定用提取液，并对上述提取液进行hplc(highperformanceliquidchromatography：高效液相色谱)测定而求出。(提取方法)用剪刀切割所得到的植物或植物加工品的叶子及叶柄，进一步用剪刀裁剪叶子及叶柄部，并在真空干燥器中在80℃条件下干燥处理8小时而得到了叶子的干燥物(干燥叶)。然后，用手揉松并粉碎真空干燥而得到的干燥叶来得到了干燥叶的粉末。接着，精确称量干燥叶的粉末50mg，加入etoh/水＝80/20vol比的混合溶剂2.5ml，并在80℃下加热提取1小时而得到了粗提取液。向所得到的粗提取液中加入etoh/水＝80/20vol比的混合溶剂7.5ml并用过滤器进行过滤而得到了提取液。[测定方法]将上述提取液作为被检体，在下述条件下进行了hplc测定。根据校准曲线计算出cqa(dcqa、tcqa及总cqa)的含有率。柱：tosohcorporation制造的tskgelods100v流速：0.3ml/min展开溶剂：使用a液：0.1％h3po4h2o、b液：0.1％h3po4mecn，进行从b液浓度10％(0min)到40％(15min)的梯度洗脱柱温：40℃检测：uv(ultraviolet；紫外线)检测器(330nm)[表1]表1(其1)-1[表2]表1(其1)-2[表3]表1(其1)-3[表4]表1(其2)-1[表5]表1(其2)-2[表6]表1(其2)-3另外，表1分割为表1(其1)-1～表1(其1)-3及表1(其2)-1～表1(其2)-3，各个实施例所涉及的栽培条件及结果记载在上述分割的各表的对应的各行中。例如，若为试验例1的实施例1，则将结果记载在表1(其1)-1～表1(其1)-3中。即，在实施例1中，表示如下：使用红薯作为植物，第1工序的栽培条件为“水耕，30℃，50％，led300μmol”，天数为14天，在第2工序中所使用的培养液为纯水，栽培条件为“30℃，50％，led300μmol”，天数为14天，未实施干燥工序，其结果，叶子中所包含的dcqa相对于叶子的干重为3.87质量％，tcqa为0.25质量％，总cqa为6.03质量％，叶子的产量为在一根植物中以干重为1.35g。关于其他实施例及比较例也与上述相同。[表7]表2(其1)po43-no3-nh4+fena+自来水0.24.80.10.027.9纯水＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.1水①＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2水②＜0.1＜0.1＜0.1＜0.02＜0.1水③-1＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2水③-2＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2水③-3＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2水③-4＜0.1＜0.1＜0.10.680.5水③-5＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2[表8][表9]在表2中记载了自来水及各培养液的成分。各培养液(及自来水)的成分记载在表2(其1)～表2(其3)的各行中。即，若为纯水，则表示如下：磷酸根离子、硝酸根离子、nh4+及fe离子均小于定量下限值，na+的含有率为0.1质量ppm，作为第1离子，b离子、mn离子、zn离子、cu离子及mo离子均小于定量下限值，作为第2离子，cl-小于定量下限值，so42-为0.1质量ppm，k+为0.1质量ppm，mg2+小于定量下限值，ca2+为0.1质量ppm。关于除上述以外的培养液等也相同。另外，表中“＜(数值)”表示在该测定方法中小于定量下限值。并且，表2中的各数值表示各成分相对于培养液的总质量的质量ppm。[试验例11及12：比较例10、实施例40～47]为了确认在第2工序中使用的培养液的成分的差异对本发明的效果产生的影响，在以下条件下实施了试验。另外，tcqa等的测定方法如已说明的那样。并且，试验例11及12与上述各试验例的实施日期时间不同。(第1工序)将作为实施例1所涉及的第1工序而说明的栽培方法中的栽培温度由30℃变更为25℃，将栽培期间由14天变更为15天，除此以外，在与试验例1的第1工序相同的栽培条件下使红薯幼苗生长。第1工序结束后的红薯叶子中的dcqa含有率为干重的2.10质量％，tcqa含有率为干重的0.01质量％，总cqa含有率为干重的2.82质量％，叶子的产量为1.46g/根(干重)，较低。将结果示于表3的比较例10。(第2工序)接着，关于上述第1工序结束后的红薯，废弃水耕栽培器内的液体肥料总量，取而代之放入表1的培养液栏中所记载的培养液，在与第1工序相同的温湿度、光条件下进一步继续栽培了14天。将第2工序结束后的红薯叶子中的tcqa含有率等的测定结果示于表1的实施例40～43。另外，各培养液通过已说明的方法进行了调节，使各成分成为表4中记载的那样。另外，培养液中的各离子的含有率的测定方法如已说明的那样。并且，用作原水的自来水如表2中所记载的那样。根据试验例11的结果，与通过实施例42的生产方法生产的红薯相比，通过培养液含有两种以上的第1离子且第1离子的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0质量ppm以下的实施例41的生产方法生产的红薯在叶子中包含更多的dcqa、更多的tcqa及更多的总cqa，并且叶子的产量也更多。并且，根据试验例11的结果，与通过实施例43的生产方法生产的红薯相比，通过培养液含有两种以上的第2离子(在此为cl-、so42-、k+及ca2+)、其中cl-、k+及ca2+的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0～300质量ppm的实施例41的生产方法生产的红薯在叶子中包含更多的dcqa、更多的tcqa及更多的总cqa，并且叶子的产量也更多。(植物加工品的制造)用剪刀切割第2工序结束后的红薯茎的未浸泡于培养液中的部分(是叶茎部，其含义与“地上部分”相同)，并将叶茎部载置于调节为表3中所记载的温度及湿度的恒温器中，干燥表3中所记载的期间而制造出植物加工品。将所制造出的植物加工品的tcqa含有率等示于表3的实施例44～47。根据试验例12的结果，与通过在第2工序中所使用的培养液相同的实施例40～43的生产方法生产的红薯的叶子相比，通过实施例44～47的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率分别更高。并且，与实施例44的植物加工品相比，通过第2工序中的培养液含有第1离子的实施例47的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率分别更高。并且，与实施例47的植物加工品相比，通过第2工序中的培养液含有两种以上的第2离子(在此为cl-、so42-、k+及ca2+)、其中cl-、k+及ca2+的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0～300质量ppm的实施例45的制造方法制造出的植物加工品的dcqa及总cqa的含有率分别更高。并且，与通过实施例46的制造方法制造出的植物加工品相比，通过第2工序中的培养液含有第1离子、各自的含有率为1.0质量ppm以下且培养液含有两种以上的第2离子(在此为cl-、so42-、k+及ca2+)、其中cl-、k+及ca2+的各自的含有率相对于培养液的总质量为1.0～300质量ppm的实施例45的制造方法制造出的植物加工品的dcqa、tcqa及总cqa的含有率分别更高。[表10][表11][表12]另外，表3分割为表3-1～表3-3，将各个实施例所涉及的栽培条件及结果记载在上述分割的各表的对应的各行中。更具体而言，若为试验例11的实施例40，则表示如下：使用红薯作为植物，第1工序的栽培条件为“水耕，25℃，50％，led300μmol”，天数为15天，在第2工序中所使用的培养液为纯水，栽培条件为“25℃，50％，led300μmol”，天数为14天，未实施干燥工序，其结果，叶子中所包含的dcqa相对于叶子的干重为3.65质量％，tcqa为0.14质量％，总cqa为5.46质量％，叶子的产量在一根植物中以干重为2.21g。关于其他实施例及比较例也与上述相同。[表13]表4(其1)po43-no3-nh4+fena+纯水＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.1水③-2＜0.1＜0.1＜0.1＜0.020.2水④0.00.1＜0.1＜0.021.7水⑤0.00.2＜0.1＜0.020.3[表14][表15]在表4中记载了各培养液的成分。将各培养液的成分记载于表4(其1)～表4(其3)的各行中。即，若为纯水，则表示如下：磷酸根离子、硝酸根离子、nh4+及fe离子均小于定量下限值，na+的含有率为0.1质量ppm，作为第1离子，b离子、mn离子、zn离子、cu离子及mo离子均小于定量下限值，作为第2离子，cl-小于定量下限值，so42-为0.1质量ppm，k+为0.1质量ppm，mg2+小于定量下限值，ca2+为0.1质量ppm。关于除上述以外的培养液等也相同。另外，表中“＜(数值)”表示在该测定方法中小于定量下限值。并且，表4中的各数值表示各成分相对于培养液的总质量的质量ppm。当前第1页12