通过酶合成L-核酸的制作方法与工艺

本发明涉及一种用于添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3‘端的方法；一种用于扩增靶L-核酸的方法；一种包含酶活性展现部分的蛋白质；包含氨基酸序列的聚合酶，其中所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸；一种野生型聚合酶的聚合酶变体，其中所述野生型聚合酶由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成；包含酶活性展现部分的蛋白质在用于添加一个或多个L-核苷酸的方法中的用途；包含酶活性展现部分的蛋白质在用于扩增靶L-核酸的方法中的用途；一种用于鉴别结合靶分子的L-核酸分子的方法；以及一种用于分别产生所述蛋白质和聚合酶的方法。基因技术的可利用性在广义上对医学和诊断领域以及基础研究在过去数十年间所取得的进展贡献良多。基因技术所提供的合成力超过了化学合成的合成力。确切地说，基因技术和基因工程允许使用原核细胞和真核细胞的酶机制来产生事实上无限量的L-肽和L-蛋白质。确切地说，酶和聚合酶，或是野生型形式或是这些野生型形式的变体，允许通过连接D-核酸的构筑块(即，D-核苷酸)到化学合成可实现的长度(至少未获得合理的产率)来合成所述D-核酸。由于手性特异性，基因技术中所使用的酶仅能对应地使用手性与其自身的手性相符的构筑块和底物。对应地具有相反手性的构筑块和底物可能不受酶活性影响。由于手性互易原则，对应地具有相反手性的构筑块和底物的处理要求酶也具有相反的手性。举例来说，这种手性互易原则广泛用于产生靶结合L-核酸，这些靶结合L-核酸也是已知的并且称为镜像异构体。迄今为止，镜像异构体都是利用以下方法鉴别：在第一步骤中，使用D-核酸库针对诸如D-肽或D-蛋白质的靶分子或靶结构的对映异构形式进行体外选择。在第二步骤中，将如此鉴别的能结合靶分子或靶结构的对映异构形式的D-核酸制备为对应的L-核酸。由于手性互易原则，这些L-核酸(即镜像异构体)能够结合真实或实际的靶分子，诸如L-肽或L-蛋白质，而不结合用于选择过程的其对映异构形式，诸如D-肽或D-蛋白质。优选地，所述真实的或实际的靶分子或靶结构是诸如人体或动物体的生物学系统中存在的靶分子或靶结构。用于制备所述镜像异构体的方法描述于例如‘TheAptamerHandbook’(Klussmann编，2006)中。使鉴别镜像异构体的方法更容易的一种方式可能是重新设计所述方法，以便使用靶分子或靶结构直接从L-核酸库选择L-核酸，因为对映异构体形式由真实的或实际的靶分子或靶结构展现。由于所述方法的一部分是对最初对应地结合靶分子和靶结构的那些L-核酸进行扩增，故将会需要能添加至少一个核苷酸到L-引物的聚合酶。迄今为止，已知还没有聚合酶由能够这样做的L-氨基酸组成。因此，需要由D-氨基酸组成的聚合酶和类似的酶。由于基因技术不能提供这样的由D-氨基酸组成的功能活性聚合酶，故需要进行化学合成。然而，D-蛋白质或D-多肽的合成仅限于相对较小的分子。迄今合成的最大的D-蛋白质是由102个D-氨基酸组成的血管生成蛋白血管内皮生长因子(缩写VEGF-A)的D-蛋白质形式(Mandal等，2012)，然而，聚合酶通常由超过300个氨基酸组成。因此，本发明潜在的问题是提供了一种允许添加至少一个核苷酸到诸如引物的L-核酸的方法。本发明的另一个潜在问题是提供了一种使用L-核苷酸扩增靶L-核酸的方法。本发明的另一个潜在问题是提供了允许实施这些方法的手段。所附的独立权利要求的主题解决了本发明的这些及其他潜在问题。可以根据所附的从属权利要求来进行优选实施方案。更确切地说，以下实施方案也解决了本发明的这些及其他潜在问题。实施方案1：一种用于添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3′端的方法，其中所述方法包括在包含突变酶活性展现部分的蛋白质存在下使所述一个或多个L-核苷酸与所述第一L-核酸反应的步骤，其中所述酶活性能够添加一个或多个L-核苷酸到所述第一L-核酸的3′端，其中所述突变酶活性展现部分包含氨基酸序列，其中所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分是酶活性展现部分的变体，其中所述酶活性展现部分由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，并且其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同，和/或其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，以及其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列不同于根据SEQIDNO：15至22和51中的任一个的氨基酸序列。实施方案2：根据实施方案1所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列在根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的以下氨基酸位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置71、76、67或86中的至少一个，或b)氨基酸位置155或203和71；或c)氨基酸位置155或203和31；或d)氨基酸位置155或203和76；或e)氨基酸位置155或203和67；或f)氨基酸位置155或203和86；或g)氨基酸位置155或203和96，或h)氨基酸位置155或203和85，或i)氨基酸位置155和203以及71，或j)氨基酸位置155和203以及86，或k)氨基酸位置155和203以及31，或l)氨基酸位置155和203以及76，或m)氨基酸位置155和203以及67，或n)氨基酸位置155和203以及86，或o)氨基酸位置155和203以及96，或p)氨基酸位置155和203以及85，或其中优选地在a)至p)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案3：根据实施方案2所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO89至120中的任一个的氨基酸序列，优选根据SEQIDNO：89的氨基酸序列或根据SEQIDNO：90的氨基酸序列或根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，更优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，最优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列。实施方案4：根据实施方案1所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，其中所述截短形式缺乏根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的n个C末端氨基酸，其中n是选自包括1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14以及15的组的任何整数。实施方案5：根据实施方案1和4中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案6：根据实施方案1和4中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式是根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案7：根据实施方案6所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代，其中更优选所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列包含根据SEQIDNO：122至160、162至200、202至240、242至280以及282至338中的任一个的氨基酸序列，其中最优选所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列包含根据SEQIDNO135、174、214、254、294中的任一个的氨基酸序列。实施方案8：根据实施方案1所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案9：根据实施方案1所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式是根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案10：根据实施方案9所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案11：根据实施方案1和10中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分是聚合酶活性展现部分。实施方案12：根据实施方案1至11中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性是聚合酶活性。实施方案13：根据实施方案12所述的方法，其中所述聚合酶活性是热稳定的聚合酶活性。实施方案14：根据实施方案12至13中任一项所述的方法，其中所述聚合酶活性是DNA聚合酶活性。实施方案15：根据实施方案14所述的方法，其中所述DNA聚合酶活性是DNA依赖性DNA聚合酶活性。实施方案16：根据实施方案1至15中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分是酶。实施方案17：根据实施方案11至16中任一项所述的方法，其中所述聚合酶活性展现部分是聚合酶。实施方案18：根据实施方案1至17中任一项所述的方法，其中所述反应步骤是在允许所述添加所述至少一个或多个L-核苷酸到所述第一L-核酸，优选允许所述添加5至20,000个L-核苷酸、优选10至2,000个L-核苷酸、更优选50至500个L-核苷酸、最优选50至100个L-核苷酸的条件下进行。实施方案19：根据实施方案1至18中任一项所述的方法，其中所述添加所述至少一个或多个L-核苷酸到所述第一L-核酸是所述至少一个或多个L-核苷酸共价结合到所述第一L-核酸，优选通过在所述第一L-核酸的3′OH与所述至少一个或多个L-核苷酸之一的5′磷酸之间形成3′-5′磷酸二酯键。实施方案20：根据实施方案1至19中任一项所述的方法，其中所述第一L-核酸是由DNA、RNA、经修饰的DNA、经修饰的RNA或其组合组成的引物。实施方案21：根据实施方案1至20中任一项所述的方法，其中所述第一L-核酸由L-核苷酸和任选的修饰组成。实施方案22：根据实施方案1至21中任一项所述的方法，其中所述第一L-核酸由L-核苷酸组成。实施方案23：根据实施方案1至22中任一项所述的方法，其中所述反应还包含第二L-核酸，其中优选通过沃森-克里克碱基配对使一个分子的所述第一L-核酸与一个分子的所述第二L-核酸杂交。实施方案24：根据实施方案23所述的方法，其中所述聚合酶活性展现部分合成与所述第二L-核酸互补的第三L-核酸，其中所述第三L-核酸包含所述第一L-核酸和添加到所述第一L-核酸的3′端的L-核苷酸。实施方案25：一种用于在L-核苷酸和包含突变酶活性展现部分的蛋白质存在下扩增靶L-核酸的方法，其中所述突变酶活性展现部分能够扩增所述靶L-核酸，其中所述突变酶活性展现部分包含氨基酸序列，其中所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分是酶活性展现部分的变体，其中所述酶活性展现部分由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，并且其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同，和/或其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，以及其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列不同于根据SEQIDNO：15至22和51中的任一个的氨基酸序列。实施方案26：根据实施方案25所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列在根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的以下氨基酸位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置71、76、67或86中的至少一个，或b)氨基酸位置155或203和71；或c)氨基酸位置155或203和31；或d)氨基酸位置155或203和76；或e)氨基酸位置155或203和67；或f)氨基酸位置155或203和86；或g)氨基酸位置155或203和96，或h)氨基酸位置155或203和85，或i)氨基酸位置155和203以及71，或j)氨基酸位置155和203以及86，或k)氨基酸位置155和203以及31，或l)氨基酸位置155和203以及76，或m)氨基酸位置155和203以及67，或n)氨基酸位置155和203以及86，或o)氨基酸位置155和203以及96，或p)氨基酸位置155和203以及85，或其中优选地在a)至p)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案27：根据实施方案26所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO89至120中的任一个的氨基酸序列，优选根据SEQIDNO：89的氨基酸序列或根据SEQIDNO：90的氨基酸序列或根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，更优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，最优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列。实施方案28：根据实施方案25所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，其中所述截短形式缺乏根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的n个C末端氨基酸，其中n是选自包括1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14以及15的组的任何整数。实施方案29：根据实施方案25和28中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案30：根据实施方案25和28中任一项所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式是根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案31：根据实施方案30所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代，其中更优选所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列包含根据SEQIDNO122至160、162至200、202至240、242至280以及282至338中的任一个的氨基酸序列，其中最优选所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列包含根据SEQIDNO135、174、214、254、294中的任一个的氨基酸序列。实施方案32：根据实施方案25所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案33：根据实施方案25所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式是根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案34：根据实施方案33所述的方法，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案35：根据实施方案25至34中任一项所述的方法，其中所述酶活性展现部分是聚合酶活性展现部分。实施方案36：根据实施方案25至35中任一项所述的方法，其中所述酶活性是聚合酶活性。实施方案37：根据实施方案36所述的方法，其中所述聚合酶活性是热稳定的聚合酶活性。实施方案38：根据实施方案36至37中任一项所述的方法，其中所述聚合酶活性是DNA聚合酶活性。实施方案39：根据实施方案38所述的方法，其中所述DNA聚合酶活性是DNA依赖性DNA聚合酶活性。实施方案40：根据实施方案25至39中任一项所述的方法，其中所述酶活性展现部分是酶。实施方案41：根据实施方案35至40中任一项所述的方法，其中所述聚合酶活性展现部分是聚合酶。实施方案42：根据实施方案25至41中任一项所述的方法，其中所述反应步骤是在允许扩增所述靶L-核酸的条件下进行。实施方案43：根据实施方案25至42中任一项所述的方法，其中所述方法使用至少一种引物，优选使用两种引物，其中所述至少一种引物由L-核苷酸和任选的修饰组成。实施方案44：根据实施方案43所述的方法，其中所述引物由L-核苷酸组成。实施方案45：根据实施方案25至44中任一项所述的方法，其中所述靶L-核酸由L-核苷酸组成。实施方案46：根据实施方案25至45中任一项所述的方法，其中所述方法是聚合酶链式反应。实施方案47：根据实施方案25至46中任一项所述的方法，其中所述靶L-核酸由L-DNA组成。实施方案48：根据实施方案25至47中任一项所述的方法，其中所述靶L-核酸由20至20,000个L-核苷酸，优选30至2,000个L-核苷酸，更优选40至500个L-核苷酸，最优选50至100个L-核苷酸组成。实施方案49：一种包含突变酶活性展现部分的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含氨基酸序列，其中所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性能够添加一个或多个L-核苷酸到所述第一L-核酸的3’端，其中所述突变酶活性展现部分是酶活性展现部分的变体，其中所述酶活性展现部分由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，并且其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同，和/或其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，以及其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列不同于根据SEQIDNO：15至22和51中的任一个的氨基酸序列。实施方案50：根据实施方案49所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的酶活性展现部分的氨基酸序列在根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的以下氨基酸位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置71、76、67或86中的至少一个，或b)氨基酸位置155或203和71；或c)氨基酸位置155或203和31；或d)氨基酸位置155或203和76；或e)氨基酸位置155或203和67；或f)氨基酸位置155或203和86；或g)氨基酸位置155或203和96，或h)氨基酸位置155或203和85，或i)氨基酸位置155和203以及71，或j)氨基酸位置155和203以及86，或k)氨基酸位置155和203以及31，或l)氨基酸位置155和203以及76，或m)氨基酸位置155和203以及67，或n)氨基酸位置155和203以及86，或o)氨基酸位置155和203以及96，或p)氨基酸位置155和203以及85，或其中优选地在a)至p)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案51：根据实施方案50所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO89至120中的任一个的氨基酸序列，优选根据SEQIDNO：89的氨基酸序列或根据SEQIDNO：90的氨基酸序列或根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，更优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，最优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列。实施方案52：根据实施方案49所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，其中所述截短形式缺乏根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的n个C末端氨基酸，其中n是选自包括1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14以及15的组的任何整数。实施方案53：根据实施方案49和52中任一项所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案54：根据实施方案49和52中任一项所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式是根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案55：根据实施方案54所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代，其中更优选所述蛋白质的氨基酸序列包含根据SEQIDNO122至160、162至200、202至240、242至280以及282至338中的任一个的氨基酸序列，其中最优选所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列包含根据SEQIDNO135、174、214、254、294中的任一个的氨基酸序列。实施方案56：根据实施方案49所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案57：根据实施方案49所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式是根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案58：根据实施方案57所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列与SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案59：根据实施方案49至58中任一项所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分是聚合酶活性展现部分。实施方案60：根据实施方案49至59所述的蛋白质，其中所述突变酶活性是聚合酶活性。实施方案61：根据实施方案60所述的蛋白质，其中所述聚合酶活性是热稳定的聚合酶活性。实施方案62：根据实施方案60至61中任一项所述的蛋白质，其中所述聚合酶活性是DNA聚合酶活性。实施方案63：根据实施方案62所述的蛋白质，其中所述DNA聚合酶活性是DNA依赖性DNA聚合酶活性。实施方案64：根据实施方案49至63中任一项所述的蛋白质，其中所述突变酶活性展现部分是酶。实施方案65：根据实施方案59至63中任一项所述的蛋白质，其中所述聚合酶活性展现部分是聚合酶。实施方案66：一种野生型聚合酶的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含氨基酸序列，优选地所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述野生型聚合酶由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，优选地根据SEQIDNO：15的所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列与所述野生型聚合酶的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同，和/或其中所述聚合酶变体的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，以及其中所述聚合酶变体的氨基酸序列不同于根据SEQIDNO15至22和51中的任一个的氨基酸序列。实施方案67：根据实施方案66所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列与由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成的野生型聚合酶的氨基酸序列在根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的以下氨基酸位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置71、76、67或86中的至少一个，或b)氨基酸位置155或203和71；或c)氨基酸位置155或203和31；或d)氨基酸位置155或203和76；或e)氨基酸位置155或203和67；或f)氨基酸位置155或203和86；或g)氨基酸位置155或203和96，或h)氨基酸位置155或203和85，或i)氨基酸位置155和203以及71，或j)氨基酸位置155和203以及86，或k)氨基酸位置155和203以及31，或l)氨基酸位置155和203以及76，或m)氨基酸位置155和203以及67，或n)氨基酸位置155和203以及86，或o)氨基酸位置155和203以及96，或p)氨基酸位置155和203以及85，其中优选地在a)至p)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案68：根据实施方案67所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含根据SEQIDNO89至120中的任一个的氨基酸序列，优选根据SEQIDNO：89的氨基酸序列或根据SEQIDNO：90的氨基酸序列或根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，更优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列或根据SEQIDNO：97的氨基酸序列，最优选根据SEQIDNO：94的氨基酸序列。实施方案69：根据实施方案66所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式，其中所述截短形式缺乏根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的n个C末端氨基酸，其中n是选自包括1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14以及15的组的任何整数。实施方案70：根据实施方案66和69中任一项所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含根据SEQIDNO121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案71：根据实施方案66和69中任一项所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式的氨基酸序列至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的截短形式是根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列。实施方案72：根据实施方案71所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列与SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：121、161、201、241以及281中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代，其中更优选所述聚合酶变体的氨基酸序列包含根据SEQIDNO122至160、162至200、202至240、242至280以及282至338中的任一个的氨基酸序列，其中最优选所述聚合酶变体的氨基酸序列包含根据SEQIDNO135、174、214、254、294中的任一个的氨基酸序列。实施方案73：根据实施方案66所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含根据SEQIDNO339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案74：根据实施方案66所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体包含与根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式至少在一个氨基酸位置处、优选在三个氨基酸位置处不同的氨基酸序列，其中根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的突变形式是根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列。实施方案75：根据实施方案74所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列与SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列在根据SEQIDNO：339至343中的任一个的氨基酸序列的以下位置处或在与其对应的氨基酸位置处不同：a)氨基酸位置155和/或203和/或71，或b)氨基酸位置155和/或203和/或86，或c)氨基酸位置155和/或203和/或31，或d)氨基酸位置155和/或203和/或76，或e)氨基酸位置155和/或203和/或67，或f)氨基酸位置155和/或203和/或86，或g)氨基酸位置155和/或203和/或96，或h)氨基酸位置155和/或203和/或85，其中优选地在a)至h)中的任一个中，在位置155、203、71、67、85和96处的氨基酸被半胱氨酸取代，在位置31处的氨基酸被丝氨酸取代，在位置76处的氨基酸被甘氨酸或丙氨酸取代，并且在位置86处的氨基酸被甘氨酸或半胱氨酸取代。实施方案76：根据实施方案66至75中任一项所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸。实施方案77：根据实施方案66至75中任一项所述的聚合酶变体，其中所述聚合酶变体的氨基酸序列的氨基酸是L-氨基酸。实施方案78：包含突变酶活性展现部分的蛋白质在用于添加一个或多个L-核苷酸到L-核酸的3′端的方法中的用途，其中所述蛋白质是根据实施方案49至65中任一项所述的蛋白质。实施方案79：包含突变酶活性展现部分的蛋白在用于在L-核苷酸存在下扩增靶L-核酸的方法中的用途，其中所述蛋白质是根据实施方案49至65中任一项所述的蛋白质。实施方案80：根据实施方案79所述的用途，其中所述用于扩增靶L-核酸的方法是聚合酶链式反应。实施方案81：一种用于鉴别结合靶分子的L-核酸分子的方法，所述方法包括以下步骤：(a)产生L-核酸分子的异源群体；(b)使步骤(a)的L-核酸分子的异源群体与所述靶分子接触；(c)分离未被所述靶分子结合的所述L-核酸分子；以及(d)扩增被所述靶分子结合的所述L-核酸分子，其中所述扩增步骤使用蛋白质，其中所述蛋白质是根据实施方案49至65中任一项所述的蛋白质。实施方案82：根据实施方案81所述的方法，其还包括以下步骤：(e)对被所述靶分子结合的L-核酸分子进行测序；以及(f)合成核苷酸序列与步骤(e)中所测序的所述L-核酸分子的核苷酸序列一致的核酸分子。实施方案83：根据实施方案81至82中任一项所述的方法，其中步骤(a)的L-核酸分子的异源群体的核酸分子在其5′端及其3′端处包含引物结合位点和分别与引物结合位点互补的序列，这允许通过聚合酶链式反应来扩增步骤(d)中所获得的所述L-核酸分子，其中所述聚合酶链式反应中所使用的所述聚合酶是根据实施方案49至65中任一项所述的蛋白质，所述聚合酶链式反应中所使用的所述引物由L-核苷酸组成，并且所述聚合酶链式反应中所使用的所述核苷酸是L-核苷酸。实施方案84：根据实施方案81至83中任一项所述的方法，其中在步骤(d)之后引入以下步骤：(da)使所述扩增的核酸分子与所述靶分子接触，其中步骤(b)和任选的步骤(c)和/或(d)是在步骤(e)之前进行，其中步骤(da)、(b)、(c)和任选的(d)是按照这个顺序进行一次或若干次。实施方案85：根据实施方案81至84中任一项所述的方法，其中结合所述靶分子的L-核酸是DNA。实施方案86：根据实施方案81至85中任一项所述的方法，其中结合所述靶分子的L-核酸分子由L-核苷酸组成。实施方案87：一种用于产生蛋白质的方法，其中所述蛋白质由氨基酸序列组成，其中所述氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸，其中a)化学合成所述蛋白质的两个或更多个片段，其中所述片段以其整体形式形成所述蛋白质的氨基酸序列，优选通过固相肽合成来合成所述片段，以及b)通过区段缩合、天然化学连接、酶连接或其组合将步骤a)的所述片段彼此连接，其中所述蛋白质是根据实施方案49至65中任一项所述的蛋白质。实施方案88：根据实施方案87所述的用于产生蛋白质的方法，其中用于酶连接的所述酶是梭菌蛋白酶。本发明的发明人出人意料地发现，有可能化学合成由D-氨基酸组成的具有功能活性的蛋白质，由此所述蛋白质具有如聚合酶通常呈现的大小。更具体地说，本发明的发明人已经发觉了一种允许合成所述D-蛋白质和D-聚合酶(即，由D-氨基酸组成的聚合酶，其具有作为聚合酶的活性)的方法。基于这一出人意料的发现，L-核酸和L-核酸分子的酶促合成所需的蛋白质和酶活性现在是可用的。L-核酸和L-核酸分子的所述酶促合成包括但不限于用于添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3′端的方法和用于在L-核苷酸存在下扩增靶L-核酸作为L-核酸(即，扩增产物是L-核酸)的方法。由于这些方法和酶活性是用来鉴别镜像异构体的替代方法的一部分，故现在可以将所述鉴别镜像异构体的替代方法付诸实践。本发明的发明人已经开发出一种用于添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3′端的方法，其中所述方法包括在包含酶活性展现部分的蛋白质存在下使所述一个或多个L-核苷酸与所述第一L-核酸反应的步骤，其中所述酶活性能够添加一个或多个L-核苷酸到所述第一L-核酸的3′端。在一个优选实施方案中，酶活性能够添加5至20,000个L-核苷酸到所述第一L-核酸的3′端，优选10至2,000个L-核苷酸，更优选50至500个L-核苷酸，最优选50至100个L-核苷酸。如本文中优选使用的术语添加是分子之间的共价键合，根据本发明为L-核酸的共价键合和所述至少一个或多个L-核苷酸与所述L-核酸的共价键合，优选通过在所述第一L-核酸的3′OH与所述至少一个或多个L-核苷酸之一的5′磷酸之间形成3′-5′磷酸二酯键。根据本发明，添加到L-核酸的L-核苷酸形成了被所述L-核苷酸延长的L-核酸的3′端。在一个优选实施方案中，所述用于添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3′端的方法包括第二L-核酸，其中优选通过沃森-克里克碱基配对使一分子的第一L-核酸与一分子的第二L-核酸杂交。在一个更优选的实施方案中，所述方法允许合成与所述第二L-核酸互补的第三L-核酸，其中所述第三L-核酸包含所述第一L-核酸和添加到所述第一L-核酸的3′端的L-核苷酸，即，针对第一L-核酸，添加一个或多个L-核苷酸到第一L-核酸的3′端，从而产生所述第三L-核酸。根据本发明的包含酶活性展现部分的蛋白质包括仅具有酶活性展现部分的蛋白质和具有酶活性展现部分跟其它残基或部分的蛋白质，其中所述蛋白质的其它残基或部分不具有酶活性。根据本发明，所述酶活性展现部分的氨基酸序列包含介于300和900个之间的氨基酸，优选介于300和600个之间的氨基酸，更优选介于300和360个之间的氨基酸，最优选340至360个氨基酸。根据本发明的包含酶活性展现部分的蛋白质优选为聚合酶活性展现部分。根据本发明的包含聚合酶活性展现部分的蛋白质包括仅具有聚合酶活性展现部分的聚合酶和具有聚合酶活性展现部分跟其它残基或部分的聚合酶，其中所述聚合酶的其它残基或部分不具有聚合酶活性。根据本发明，所述聚合酶活性展现部分的氨基酸序列包含介于300和900个之间的氨基酸，优选介于300和600个之间的氨基酸，更优选介于300和360个之间的氨基酸，最优选340至360个氨基酸。根据本发明的聚合酶活性展现部分优选为热稳定的聚合酶活性展现部分，更优选为热稳定的DNA聚合酶活性展现部分，且最优选为热稳定的DNA依赖性DNA聚合酶活性展现部分。根据本发明的聚合酶活性展现部分优选为DNA聚合酶活性展现部分，更优选为DNA依赖性DNA聚合酶活性展现部分或热稳定的DNA聚合酶活性展现部分，最优选为热稳定的DNA依赖性DNA聚合酶活性展现部分。如本文中所使用的术语酶活性是催化特定反应，优选为添加一个或多个核苷酸到核酸的3′端、扩增核酸和/或聚合酶活性，更优选为添加一个或多个L-核苷酸到L-核酸的3′端和扩增L-核酸。根据本发明的术语聚合酶活性是酶使L-核苷酸聚合和/或L-核苷酸与L-核酸聚合的能力，其中L-核苷酸优选为L-核苷三磷酸。根据本发明的聚合酶活性优选为热稳定的聚合酶活性，更优选为热稳定的DNA聚合酶活性，且最优选为热稳定的DNA依赖性DNA聚合酶活性。根据本发明的聚合酶活性优选为DNA聚合酶活性，更优选为DNA依赖性DNA聚合酶活性或热稳定的DNA聚合酶活性，最优选为热稳定的DNA依赖性DNA聚合酶活性。已知的聚合酶来自于天然来源或者是来自于天然来源的聚合酶的经过优化或突变的变体。聚合酶由手性构筑块，即L-氨基酸组成。因此，聚合酶的结构也固有地是手性的，从而引起立体特异性底物识别。因此，这些酶仅接受呈胜任的，即对应的手性构型的底物分子。因此，已知的聚合酶使D-核苷酸或三磷酸D-核苷酸聚合，其中它们用作由D-核苷酸组成的模板链D-核酸以合成由D-核苷酸组成的互补D-核酸链。除模板链以外，聚合酶任选地使用与所述模板链杂交且由D-核苷酸组成的引物。因为天然存在的核酸是由D-核苷酸构成，且可以由确切地说由L-氨基酸组成的蛋白质和酶加以处理(例如扩增)，故由L-氨基酸组成的所述蛋白质和酶对应地不识别L-核酸。因此，结合靶分子或靶结构(也称为镜像异构体)的L-核酸不能通过体外选择方法使用所述靶分子或靶结构的天然存在的形式直接获得。本发明的发明人出人意料地发现，有可能产生一种可以添加L-核酸核苷酸到能与L-核酸模板链杂交的由L-核苷酸组成的引物的聚合酶。此外，本发明的发明人出人意料地发现，有可能产生一种可用于扩增L-核酸，优选用于被称为聚合酶链式反应(缩写PCR)的方法中的聚合酶。聚合酶是一种能使核苷三磷酸聚合的酶。聚合酶使用模板核酸链来合成与所述模板核酸链互补的核酸链。除模板核酸链以外，聚合酶任选地使用基于碱基互补性与模板核酸链杂交的引物。模板核酸链、引物和由聚合酶合成的核酸链可以独立地为DNA或RNA。如本文中优选使用的聚合酶包括DNA聚合酶和RNA聚合酶，优选为DNA依赖性DNA聚合酶、RNA依赖性DNA聚合酶(诸如逆转录酶)、RNA依赖性RNA聚合酶和RNA依赖性DNA聚合酶。更优选地，聚合酶是热稳定的聚合酶。聚合酶不需要含有对应的天然或野生型酶中所发现的所有氨基酸，而是仅需要含有足以允许所述聚合酶实现所要的催化活性的氨基酸。在一个实施方案中，聚合酶活性是催化活性，所述催化活性选自包括例如5′-3′聚合活性、5′-3′核酸外切酶活性和3′-5′核酸外切酶活性的催化活性。根据本发明的聚合酶由D-氨基酸组成且能使L-核苷酸或L-核苷三磷酸聚合，其中根据本发明的聚合酶用作由L-核苷酸组成的模板链L-核酸以合成由L-核苷酸组成的互补L-核酸链。除模板链以外，根据本发明的聚合酶任选地使用能与所述模板链杂交且由L-核苷酸组成的引物。模板链、引物和所合成的核酸链可以独立地为L-DNA或L-RNA。根据本发明的聚合酶包括由D-氨基酸组成的DNA聚合酶和由D-氨基酸组成的RNA聚合酶，优选包括由D-氨基酸组成的DNA依赖性DNA聚合酶、由D-氨基酸组成的RNA依赖性DNA聚合酶(诸如由D-氨基酸组成的逆转录酶)、由D-氨基酸组成的RNA依赖性RNA聚合酶和由D-氨基酸组成的RNA依赖性DNA聚合酶。更优选地，根据本发明的聚合酶是由D-氨基酸组成的热稳定的聚合酶。根据本发明的聚合酶不需要含有天然酶中所发现的所有氨基酸，而是仅需要含有足以允许根据本发明的聚合酶实现所要的催化活性的氨基酸。催化活性包括例如5′-3′聚合活性、5′-3′核酸外切酶活性和3′-5′核酸外切酶活性。仅由L-氨基酸组成的聚合酶在本文中优选地称为‘全L聚合酶’。仅由D-氨基酸组成的聚合酶在本文中优选地称为‘全D聚合酶’。在一个优选实施方案中，根据本发明的聚合酶选自由以下各项组成的组：非洲猪瘟病毒聚合酶X、嗜热细菌聚合酶X核心结构域、大鼠聚合酶β、真核生物聚合酶β、克列诺片段、克列诺外切聚合酶、T4DNA聚合酶、Phi29DNA聚合酶、测序酶、T7DNA聚合酶、SP6聚合酶、DNA聚合酶I、聚合酶λ、聚合酶DPO4(优选来自硫磺矿硫化叶菌、冰岛硫化叶菌、芝田硫化叶菌、腾冲硫化叶菌、东工大硫化叶菌、嗜酸热硫化叶菌)嗜热高温球菌DNA聚合酶、火球菌属某种DNA聚合酶、激烈火球菌DNA聚合酶、PfuturboTM聚合酶、硫磺矿硫化叶菌DNA聚合酶、嗜热古细菌DNA聚合酶、KOD聚合酶、Taq聚合酶、Tth聚合酶、Pyrobest聚合酶、Pwo聚合酶、Sac聚合酶、Bst聚合酶、Poc聚合酶、Pab聚合酶、Mth聚合酶、Pho聚合酶、ES4聚合酶、EX-TaqTM聚合酶、LA-TaqTM聚合酶、ExpandTM聚合酶、PlatinumrMTaq聚合酶、Hi-FiTM聚合酶、Tbr聚合酶、Tfl聚合酶、Tru聚合酶、Tac聚合酶、Tne聚合酶、Tma聚合酶、Tih聚合酶、Tfi聚合酶、AmpliTaqTM、Stoffel片段、9°NmTMDNA聚合酶、TherminatorTM、TherminatorIITM、PhusionHighFidelityTM聚合酶、Paq5000TM、Pfx-50TM、ProofstartTM、FideliTaqTM、ElongaseTM及其每一个和任一个的变体。在一个更优选的实施方案中，根据本发明的聚合酶是由根据SEQIDNO：1的氨基酸序列组成的非洲猪瘟病毒聚合酶X。在另一个更优选的实施方案中，根据本发明的聚合酶是非洲猪瘟病毒聚合酶X的变体，最优选为具有选自以下的氨基酸序列的所选氨基酸序列的非洲猪瘟病毒聚合酶X的变体：根据SEQIDNO：2的氨基酸序列、根据SEQIDNO：3的氨基酸序列和根据SEQIDNO：4的氨基酸序列。在一个更优选的实施方案中，根据本发明的聚合酶是聚合酶Dpo4的变体或突变体或突变形式或截短形式，其中所述聚合酶Dpo4由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，并且所述聚合酶Dpo4的变体或突变体或突变形式或截短形式包含根据SEQIDNO89至343中的任一个的氨基酸序列，其中优选地根据SEQIDNO15的聚合酶Dpo4的氨基酸和根据SEQIDNO89至343中的任一个的聚合酶Dpo4的变体或突变体或突变形式或截短形式的氨基酸是D-氨基酸。在另一个更优选的实施方案中，根据本发明的聚合酶是聚合酶Dpo4的变体，最优选为由选自以下的氨基酸序列的所选氨基酸序列组成的聚合酶Dpo4的变体：根据SEQIDNO：16的氨基酸序列、根据SEQIDNO：17的氨基酸序列、根据SEQIDNO：18的氨基酸序列、根据SEQIDNO：19的氨基酸序列、根据SEQIDNO：20的氨基酸序列、根据SEQIDNO：21的氨基酸序列和根据SEQIDNO：22的氨基酸序列。聚合酶的变体或突变体或突变形式或截短形式是在一个或多个氨基酸位置处与所述聚合酶的氨基酸序列不同的聚合酶。氨基酸序列中的氨基酸位置优选由其相对于聚合酶的N末端和C末端的位置和/或其相对于围绕所述氨基酸的氨基酸的位置确定，使得a)如果聚合酶在N末端被截短，则氨基酸的位置由其相对于聚合酶的C末端和相对于围绕所述氨基酸的氨基酸的位置确定，b)如果聚合酶在C末端被截短，则氨基酸的位置由其相对于聚合酶的N末端和相对于围绕所述氨基酸的氨基酸的位置确定，且b)如果聚合酶在N末端和C末端被截短，则氨基酸的位置由其相对于围绕所述氨基酸的氨基酸的位置确定。在本发明的一个实施方案中，所述突变酶活性展现部分是酶活性展现部分的变体或突变体或突变形式或截短形式，其中所述酶活性展现部分由根据SEQIDNO：15的氨基酸序列组成，其中优选地根据SEQIDNO：15的酶活性展现部分的氨基酸是D-氨基酸，其中所述突变酶活性展现部分如在此所公开进行突变，即至少在SEQIDNO：15的一个氨基酸位置处、优选在SEQIDNO：15的三个氨基酸位置处突变。优选地，所述突变酶活性展现部分包含根据SEQIDNO：89至343中的任一个的氨基酸序列，其中更优选地根据SEQIDNO89至343中的任一个的氨基酸序列的氨基酸是D-氨基酸。在本发明的另一实施方案中，所述突变酶活性展现部分如在本文所公开进行突变，即所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列相较于根据SEQIDNO：15的氨基酸序列至少在SEQIDNO：15的一个氨基酸位置处、优选在SEQIDNO：15的三个氨基酸位置处突变；换言之，除了所述突变之外，在所述突变酶活性展现部分的氨基酸序列的段中的突变酶活性展现部分残基的突变特征是根据SEQIDNO：15的氨基酸序列，并且因此在包含于所述突变酶活性展现部分和所述酶活性展现部分两种中的氨基酸序列中。结合所述实施方案，所述突变酶活性展现部分可包含为或连接至根据SEQIDNO：15的氨基酸序列的N末端和C末端中的任一个或两者的一个或多个另外的氨基酸。根据本发明的热稳定的聚合酶相对不受高温影响。在一个具体的非限制性实施例中，具有热稳定性的聚合酶不受至少50℃的温度，例如50℃、60℃、75℃、80℃、82℃、85℃、88℃、90℃、92℃、95℃或甚至更高的温度影响。在L-核苷三磷酸的聚合过程内，聚合酶添加一个核苷三磷酸到另一个核苷三磷酸，优选地产生寡核苷酸，也称为核酸。在一个优选的实施方案中，所述聚合酶仅添加一个核苷三磷酸到一个核苷三磷酸或到核酸的末端核苷酸，例如，如果核苷酸是诸如双脱氧核苷酸的链终止核苷酸的话。所述链终止核苷酸用于对核酸进行测序，并且是本领域技术人员已知的。L-核苷三磷酸的聚合过程可用于扩增L-核酸，优选为靶L-核酸。扩增是增加核酸(优选为靶L-核酸)的拷贝数的任何过程。在一个优选实施方案中，所述靶L-核酸由20至20,000个L-核苷酸，优选30至2,000个L-核苷酸，更优选40至500个L-核苷酸，最优选50至100个L-核苷酸组成。扩增的一个例子是其中使核酸与一对引物在允许所述引物与核酸模板杂交的条件下接触。聚合酶通过在合适的条件下添加一个或多个核苷三磷酸到引物来延伸引物，引物与核酸模板分离，然后进行再退火、延伸和分离以扩增核酸分子的拷贝数。可以使用标准技术通过电泳、限制性内切酶裂解模式、寡核苷酸杂交或连接、和/或核酸测序来表征体外扩增的产物。替代的体外扩增技术是本领域技术人员已知的，包括无转录等温扩增、链置换扩增和NASBATM无RNA转录扩增。一些扩增方法依赖于热循环，其由用于使核酸(优选为双链核酸)解链和酶促复制核酸的反应的重复加热和冷却循环组成。这些热循环步骤首先对于在高温下在称为核酸解链的过程中物理分离双链核酸中的两条链是必需的。在较低温度下，各链则在核酸合成中被聚合酶用作模板以便选择性地扩增靶核酸。含有与靶区互补的序列的引物连同聚合酶(所述方法是据此命名)是使得能够进行选择性和重复扩增的关键组分。由于扩增方法基于热循环进展，故将所产生的核酸本身用作复制模板，从而开始链反应，其中指数扩增核酸模板。利用热扩增的最突出的扩增方法是聚合酶链式反应(缩写PCR)。引物是由DNA或RNA或其组合，优选长度为10个核苷酸或更多的DNA寡核苷酸组成的短核酸分子。更优选地，较长的引物的长度可以是约15、20或25个核苷酸或更多。引物可以通过核酸杂交与互补的靶核酸链退火，以便在引物与靶核酸链之间形成杂交物，然后由聚合酶沿靶核酸链延伸引物。引物对可以用于扩增核酸，例如通过PCR或本领域中已知的其它核酸扩增方法。使用由D-氨基酸组成的本发明的聚合酶使得引物和互补靶核酸链由L-核苷酸组成很有必要。优选至少一个引物由L-核苷酸和任选的修饰组成。用于制备和使用核酸引物和探针的方法描述于例如Sambrook等(Sambrock等，1989)中。PCR引物对可以来源于已知序列，例如通过使用意在用于该目的的计算机程序，诸如Primer。本领域技术人员应了解，特定探针或引物的特异性随其长度而增加。根据本发明的聚合酶由D-氨基酸组成，优选仅由D-氨基酸组成。因此由D-氨基酸组成的根据本发明的聚合酶无法从天然来源分离且无法使用细菌、酵母、真菌、病毒或动物细胞通过重组表达产生并且不得不通过化学方法产生，所述化学方法优选诸如固相肽合成(缩写SPPS)与连接法的组合。固相肽合成是用于合成肽或蛋白质片段的现有技术：用可以在上面构筑肽链的功能单元(‘连接子’)处理不溶但多孔的小固体珠粒。肽将保持共价连接于珠粒，直到通过诸如无水氟化氢或三氟乙酸的试剂从它上面裂解。所述肽因而‘固定’在所述固相上且在过滤过程期间可以被保留，而液相试剂和合成副产物则被冲洗掉。SPPS的一般原理是重复偶合-洗涤-脱保护-洗涤循环的原理。固相连接肽的游离N末端胺偶合(见下文)于单个经N-保护的氨基酸单元。然后对这个单元进行脱保护，露出可能与另一氨基酸连接的新的N末端胺。这种技术的优越性部分在于能够在各反应之后进行洗涤循环，从而去除过量试剂，而所有正在生长的目的肽保持共价连接于不溶性树脂。有两种主要使用的SPPS形式，即Fmoc和Boc。氨基酸单体的N末端由这两个基团中的任一个加以保护且被添加到脱保护的氨基酸链上。SPPS受产率限制，且通常在70个氨基酸范围内的肽和蛋白质推进了合成可及性的极限。合成难度也具有序列依赖性。较大的合成寡肽和蛋白质可以通过使用诸如片段缩合、天然化学连接或酶促连接的连接法将两个肽偶合在一起来获取。然而，迄今合成的最大的D-蛋白质是由102个D-氨基酸组成的血管生成蛋白血管内皮生长因子(缩写VEGF-A)的D-蛋白质形式(Mandal等，2012)，片段缩合使用肽，其中所述肽的氨基酸的侧链完全由化学基团保护且所述肽在溶液中偶合。天然化学连接是在水溶液中进行。挑战是必需的无保护肽-硫酯构筑块的制备。在天然化学连接中，无保护肽2的N末端半胱氨酸残基的烃硫基在水性缓冲液中在pH7.0、20℃＜T＜37℃下攻击第二无保护肽1的C末端硫酯。这个可逆的转硫酯化步骤具有化学选择性和区域选择性，且导致形成硫酯中间物3。这种中间物通过分子内S，N-酰基位移进行重排，从而在连接位点上形成天然酰胺(‘肽’)键4。如实施例中所示，发明人可能令人惊讶地示出了天然化学连接所必需的C末端硫酯在酶促连接的条件下是稳定的，使得天然化学连接和酶促连接可以组合使用。D-肽的酶促连接通过使用蛋白酶实现，包括以下步骤：(a)制备氨基组分，其中所述氨基组分是唯一的D-肽；(b)制备羧基组分，其中所述羧基组分包含离去基团并且是唯一的D-肽；和(c)在蛋白酶存在下使所述氨基组分与所述羧基组分反应，以便在所述氨基组分与所述羧基组分之间形成肽键，在离去基团裂解的情况下得到唯一的D-多肽(参见WO2003047743)。优选所述蛋白酶为梭菌蛋白酶。本发明的聚合酶还应包括实质上与本发明的聚合酶且确切地说，与本文中所公开的特定序列同源的聚合酶。术语基本上同源的应理解为诸如同源性为至少75％，优选85％，更优选90％且最优选高于95％、96％、97％、98％或99％。本发明的聚合酶活性展现部分还应包括实质上与本发明的聚合酶活性展现部分且确切地说，与本文中所公开的特定序列同源的聚合酶活性展现部分。术语基本上同源的应理解为诸如同源性为至少75％，优选85％，更优选90％且最优选高于95％、96％、97％、98％或99％。本发明的聚合酶或本发明的聚合酶活性展现部分中所存在的同源氨基酸的实际百分比将取决于所述聚合酶或聚合酶活性展现部分中所存在的氨基酸的总数。修饰百分比可以基于所述聚合酶或聚合酶活性展现部分中所存在的氨基酸的总数。两个聚合酶或两个聚合酶活性展现部分之间的同源性可以如本领域技术人员已知来确定。更具体地说，可以使用序列比较算法基于所指定的程序参数来计算测试序列相对于参考序列的序列同源性百分比。所述测试序列优选为聚合酶或聚合酶活性展现部分，据称其与不同的聚合酶或聚合酶活性展现部分同源或将测试其是否与不同的聚合酶或聚合酶活性展现部分同源和如果同源的话达到何种程度，由此所述不同的聚合酶或聚合酶活性展现部分也称为同源性参考序列。可以对用于比较的聚合酶的氨基酸序列进行最佳比对，例如通过Smith和Waterman的局部同源性算法(Smith和Waterman，1981)、通过Needleman和Wunsch的同源性比对算法(Needleman&Wunsch，1970)、通过Pearson和Lipman的相似性查找法(Pearson&Lipman，1988)、通过计算机实施这些算法(威斯康星遗传学软件包中的GAP、BESTFIT、FASTA和TFASTA，GeneticsComputerGroup，575ScienceDr.，Madison，Wis.)或通过目视检查。适合于测定序列同一性百分比的算法的一个例子是基本局部比对搜索工具(在下文中，“BLAST”)中所使用的算法，参见例如Altschul等(Altschul等，1990和Altschul等，1997)。用于执行BLAST分析的软件可以通过美国国家生物技术信息中心(在下文中，“NCBI”)公开获得。使用可获自NCBI的软件，例如BLASTN(用于核苷酸序列)和BLASTP(用于氨基酸序列)测定序列同一性时所使用的缺省参数描述于McGinnis等(McGinnis等，2004)中。本发明的聚合酶还应包括相对于本发明的聚合酶且确切地说，相对于本文中所公开的和由它们的氨基酸序列定义的本发明的特定聚合酶具有某种程度的同一性的聚合酶。更优选地，本发明还包括相对于本发明的聚合酶且确切地说，相对于本文中所公开的和由它们的氨基酸序列或其部分定义的本发明的特定聚合酶具有至少75％、优选85％、更优选90％且最优选超过95％、96％、97％、98％或99％的同一性的聚合酶。本发明的聚合酶活性展现部分还应包括相对于本发明的聚合酶活性展现部分且确切地说，相对于本文中所公开的和由它们的氨基酸序列定义的本发明的特定聚合酶活性展现部分具有某种程度的同一性的聚合酶活性展现部分。更优选地，本发明还包括相对于本发明的聚合酶活性展现部分且确切地说，相对于本文中所公开的和由它们的氨基酸序列或其部分定义的本发明的特定聚合酶活性展现部分具有至少75％、优选85％、更优选90％且最优选超过95％、96％、97％、98％或99％的同一性的那些聚合酶活性展现部分。结合本申请，如果不存在明确相反的指示，则术语核酸分子和核酸是以可互换的方式使用。如本文中优选使用，“核酸”是指多核苷酸或寡核苷酸，诸如脱氧核糖核酸(缩写DNA)和核糖核酸(缩写RNA)。此外，术语“核酸”包括多种核酸。术语“核酸(nucleicacid)和核酸(nucleicacids)”还应理解为包括由核苷酸类似物制备的RNA或DNA的变体和类似物、单链(有义或反义)和双链多核苷酸或寡核苷酸作为等效物。脱氧核糖核苷酸包括脱氧腺苷、脱氧胞苷、脱氧鸟苷和脱氧胸苷。核糖核苷酸包括腺苷、胞苷、鸟苷和尿苷。称为“多核苷酸”的核酸分子以其最广泛的意义用于意指由共价键连接的两个或更多个核苷酸或核苷酸类似物，包括单链或双链分子。术语“寡核苷酸”在本文中还用于意指由共价键连接的两个或更多个核苷酸或核苷酸类似物，但是如本文中所定义，寡核苷酸包含少于一百个核苷酸。核酸的特征在于，形成核酸的所有连续核苷酸都是通过一个或多于一个共价键彼此连接。更具体地说，所述核苷酸各自优选通过磷酸二酯键或其它键与两个其它核苷酸连接或连接至两个其它核苷酸，从而形成连续核苷酸的延伸段。然而，在所述排列中，两个末端核苷酸，即，优选在5′端和3′端的核苷酸，各自仅连接到单个核苷酸，条件是所述排列是线性的而不是环形的排列，且因而是线性的而不是环形的分子。在本申请的另一个实施方案中，所述核酸包含至少两组连续核苷酸，由此在连续核苷酸的各组内，各核苷酸优选通过磷酸二酯键或其它键与两个其它核苷酸连接或连接至两个其它核苷酸，从而形成连续核苷酸的延伸段。然而，在所述排列中，两个末端核苷酸，即，优选在5′端和3′端的核苷酸，各自仅连接到单个核苷酸。然而，在所述实施方案中，两组连续核苷酸不是通过共价键彼此连接或连接至彼此，所述共价键通过共价键，优选通过所述两个核苷酸之一的糖部分与所述两个核苷酸或核苷中另一者的磷部分之间形成的共价键来连接一组中的一个核苷酸与另一组或其它组中的一个核苷酸。然而，在替代实施方案中，两组连续核苷酸是通过共价键彼此连接或连接至彼此，所述共价键通过共价键，优选通过所述两个核苷酸之一的糖部分与所述两个核苷酸或核苷中另一者的磷部分之间形成的共价键来连接一组中的一个核苷酸与另一组或其它组中的一个核苷酸。优选地，所述至少两组连续核苷酸不通过任何共价键连接。在另一个优选实施方案中，所述至少两个组是通过不同于磷酸二酯键的共价键连接。术语核酸优选地还涵盖D-核酸或L-核酸。优选地，核酸是L-核酸1。另外，可能的是核酸的一部分或若干部分作为D-核酸存在，且核酸的至少一部分或若干部分是L-核酸。术语核酸的“部分”应意指仅仅一个核苷酸。所述核酸在本文中一般对应地称为D-核酸和L-核酸。因此，在一个优选的实施方案中，根据本发明的核酸由L-核苷酸组成且包含至少一个D-核苷酸。优选地，所述D-核苷酸连接在任何延伸段和任何核酸的末端。如本文中所使用的L-核酸是由L-核苷酸组成，优选完全由L-核苷酸组成的核酸。如本文中所使用的D-核酸是由D-核苷酸组成，优选完全由D-核苷酸组成的核酸。此外，如果无相反指示，则本文中以5′→3′方向阐述任何核苷酸序列。不管核酸是由D-核苷酸、L-核苷酸或是两者的组合组成，其中所述组合是例如随机组合或限定顺序的由至少一个L-核苷酸和至少一个D-核酸组成的延伸段，所述核酸分子都可以由脱氧核糖核苷酸、核糖核苷酸或其组合组成。不考虑核酸是D-核酸、L-核酸、其混合物、DNA或RNA或其中每一者和任何组合，如本文中优选使用的术语核酸还将涵盖单链核酸和双链核酸，由此经历根据本发明的方法的核酸分子优选为单链核酸。如本文中优选使用的术语核酸还将涵盖经修饰的核酸。经修饰的核酸可以是核苷酸经修饰的RNA或核苷酸经修饰的DNA分子，由此所述RNA或DNA分子在个别核苷酸上经广泛修饰以便通过具有抗核酸酶基团的修饰增强稳定性，例如2′-氨基、2′-C-烯丙基、2′-氟基、2′-O-甲基、2′-H(关于综述，参见Usman&Cedergren，1992)。如本文中优选使用的术语核酸还将涵盖完全闭合的核酸。如果核苷酸序列根据本发明加以确定的核酸优选通过共价键闭合，则实现了核酸的完全闭合，即环形结构，由此更优选所述共价键在如本文中所公开的核酸分子序列的5′端与3′端之间制得。如优选使用的术语核酸还将涵盖包含非核酸分子部分的任何核酸分子。所述非核酸分子部分可以选自如下文将更详细概述的包括肽、寡肽、多肽、蛋白质、碳水化合物、各种基团的基团。术语核酸因而还将涵盖包含至少一个核酸部分和至少一个可用于促进核酸分子递送到生物系统(诸如细胞)中的其它部分的缀合物和/或复合物。所提供的缀合物和复合物可以通过越过细胞膜转移治疗性化合物、改变药物动力学和/或调节本发明的核酸的定位来赋予治疗活性。这些种类的缀合物和复合物优选地适合于越过细胞膜递送的分子，包括但不限于小分子、脂质、磷脂、核苷、核苷酸、核酸、抗体、毒素、带负电的聚合物及其它聚合物，例如蛋白质、肽、激素、碳水化合物、聚乙二醇或聚胺。一般来说，所描述的转运蛋白被设计成能在存在或不存在可降解的连接子的情况下单独地或作为多组分系统的一部分加以使用。期望这些化合物能改善核酸分子在存在或不存在血清的情况下在来源于不同组织的许多细胞类型中的递送和/或定位(参见美国专利US5,854,038)。本文中所描述的分子的缀合物可以经由可生物降解的连接子，诸如可生物降解的核酸连接子分子而连接到生物活性分子。如下文结合将测定序列的核酸所详述，非核酸部分可以是PEG部分，即聚(乙二醇)部分，或HES部分，即羟乙基淀粉部分。非核酸部分和优选地PEG和/或HES部分可以直接或通过连接子连接到核酸分子。核酸分子包含一个或多个修饰，优选地包含一个或多个PEG和/或HES部分也在本发明内。在一个实施方案中，个别连接子分子将多于一个PEG部分或HES部分连接到核酸分子。结合本发明使用的连接子本身可以是线性的或分支的。这些种类的连接子对于本领域技术人员是已知的且进一步描述于专利申请WO2005/074993和WO2003/035665中。在一个优选的实施方案中，所述连接子是可生物降解的连接子。由于修饰从核酸分子中释放，故可生物降解的连接子允许尤其在动物体(优选为人体)内停留时间方面对核酸分子的特征进行修饰。可生物降解的连接子的使用可以允许更好地控制核酸分子的停留时间。所述可生物降解的连接子的一个优选实施方案是可生物降解的连接子，诸如在但不局限于国际专利申请WO2006/052790、WO2008/034122、WO2004/092191和WO2005/099768中所描述的可生物降解的连接子，由此在国际专利申请WO2004/092191和WO2005/099768中，所述连接子是由一个或两个如本文中所描述的修饰、核酸分子和介于其之间的可生物降解的连接子组成的聚合寡核苷酸前药的一部分。如本文中优选使用，“核苷酸”包括但不限于天然存在的DNA核苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐：脱氧腺苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；脱氧鸟苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；脱氧胸苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；和脱氧胞苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐。(在本文中对应地称为dA、dG、dT和dC或A、G、T和C)。术语核苷酸还包括天然存在的RNA核苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐：腺苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；鸟嘌呤单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；尿苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐；和胞苷单磷酸盐、二磷酸盐和三磷酸盐(在本文中对应地称为A、G、U和C)是指碱基-糖-磷酸盐组合，即，核酸分子(即，DNA分子和RNA分子)的单体单元。然而，换言之，术语“核苷酸”是指含有环状呋喃糖苷型糖(RNA中的p-D/L-核糖和DNA中的P-D/L-2′-脱氧核糖)的任何化合物，其在5′位置经磷酸化且具有经由-葡糖基C1′-N键连接在C-1′糖位置的嘌呤或嘧啶型碱基。核苷酸可以是天然的或合成的，包括经过块修饰的核苷酸，尤其包括具有含经修饰碱基(例如5-甲基胞嘧啶)和经修饰糖基(例如2′-O-甲基核糖基、2′-O-甲氧基乙基核糖基、2′-氟基核糖基、2′-氨基核糖基等等)的经修饰核苷的核苷酸。术语“核碱基”覆盖天然存在的核碱基腺嘌呤(A)、鸟嘌呤(G)、胞嘧啶(C)、胸腺嘧啶(T)和尿嘧啶(U)以及非天然存在的核碱基，诸如黄嘌呤、二氨基嘌呤、8-氧代-N6-甲基腺嘌呤、7-脱氮黄嘌呤、7-脱氮鸟嘌呤、N4，N4-桥亚乙基胞嘧啶、N6，N6-桥亚乙基-2，6-二氨基嘌呤、5-甲基胞嘧啶、5～(C3-C6)-炔基-胞嘧啶、5-氟尿嘧啶、5-溴尿嘧啶、假异胞嘧啶、2-羟基-5-甲基-4-三唑并吡啶、异胞嘧啶、异鸟嘌呤、肌苷和美国专利US5,432,272中、Freier和Altmann的出版物(Freier&Altmann，1997)中所描述的“非天然存在的”核碱基。术语“核碱基”因而不仅包括已知的嘌呤和嘧啶杂环，而且包括其杂环类似物和互变异构体。单链核酸可以形成独特而又稳定的三维结构且特异性地结合靶分子(如抗体)在本发明范围内。由D-核苷酸构成的所述核酸分子称为适体。可以针对若干个例如小分子、蛋白质、核酸的靶分子和甚至细胞、组织、和生物体鉴别适体，并且适体可以抑制特定靶分子的体外和/或体内功能。通常由称为体外选择的靶定向选择方法或指数富集的配体系统进化(缩写SELEX)来鉴别适体(Bock等，1992；Ellington&Szostak，1990；Tuerk&Gold，1990)。未经修饰的适体主要由于核酸酶降解而快速从血流中清除，半衰期为数分钟到数小时，且通过肾从体内清除，因为适体的分子量固有地较低。因此，为了在治疗上使用适体，它们必须在糖(例如核糖)骨架的2′位置上经修饰(Burmester等，2006)。无所不在的核酸酶说明了适体的不稳定性，其由手性构筑块，即L-氨基酸组成。因此，核酸酶的结构也固有地是手性的，从而引起立体特异性底物识别。因此，这些酶仅接受呈胜任的手性构型的底物分子。因为适体和天然存在的核酸分子由D-核苷酸构成，故L-寡核苷酸将逃脱酶识别和随后的降解。不幸的是，由于相同的原理，在这种情况下，自然界未产生能扩增所述镜像核酸的酶活性。因此，L-核酸适体不能采用SELEX方法直接获得。但是，立体化学原理揭示了最终产生所要的功能L-核酸适体的迂回途径。如果体外选择的(D-)适体结合其天然靶，则这个适体的结构镜像以相同特征结合所述天然靶的镜像。这里，两种相互作用配偶体具有相同的(非天然的)手性。由于生命化学物和大部分生物化学化合物的同手性，所述对映RNA配体当然将具有受限制的实际用途。另一方面，如果针对(非天然的)镜像靶进行SELEX方法，则将获得识别这个(非天然的)靶的适体。所述适体，即所要的L-适体的相应镜像构型又识别天然靶。这种用于产生生物稳定的核酸分子的镜像选择方法在1996年首先公开(Klussmann等，1996；Nolte等，1996)，且产生了不仅对给定的靶分子呈现出高亲和力和特异性，而且同时还呈现出生物学稳定性的功能镜像核酸分子配体。在本发明内，单链核酸分子是这样的配体结合L-核酸，其称为‘镜像异构体’(来自于德语词语‘Spiegel’，镜像)(参见‘TheAptamerHandbook’；Klussmann编，2006)其中，根据本发明的核酸可以包含修饰，所述修饰优选地允许检测根据本发明的核酸。所述修饰优选地选自放射性标记、酶标记和荧光标记。所述修饰还选自本身可能被选自放射性标记、酶标记和荧光标记的修饰修饰过的D-核苷酸。各种SEQ.ID.No.、本文中所使用的核酸、肽、寡肽和蛋白质的化学性质、其实际序列和内部参考物编号汇总于下表中。表1(A)在本申请中提及的序列应理解，上文是分子结合本发明使用时的分子的代表。所附序列表仅反映仅氨基酸或其核苷酸序列，而不反映如上表所指示的所述分子的任何进一步特征。通过附图、实施例和序列表进一步说明本发明，由此可以获取其它特征、实施方案和优势，其中图1A示出了用于L-聚合酶X的活性测试的1-缺口D-DNA模板的组成；图1B示出了用于L-聚合酶X的活性测试的6-缺口D-DNA模板的组成；图2A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物Ac-MLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSL-OGp(1)的分析结果；图3A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物H-RREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKA-SMe(2)的分析结果；图4A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物H-CGERKCVLFIEWEKKTYQLDLFTALAEEKPYAIFHFTGPVSYLIRIRAALKKKNYKLNQYGLFKNQTLVPLKITTEKELIKELGFTYRIPKKRL-OH(3)的分析结果；图5A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物Ac-MLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSLRREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKA-SMe(4)的分析结果；图6A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和质谱法(B)对天然化学连接D-多肽产物Ac-MLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSLRREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKACGERKCVLFIEWEKKTYQLDLFTALAEEKPYAIFHFTGPVSYLIRIRAALKKKNYKLNQYGLFKNQTLVPLKITTEKELIKELGFTYRIPKKRL-OH(5)的分析结果；图7示出了用于D-聚合酶X的活性测试的1-缺口L-DNA模板的组成；图8示出了在1-缺口底物上进行的D-聚合酶X的L-DNA延伸活性测定的凝胶电泳；图9A示出了用于D-聚合酶X的活性测试的6-缺口L-DNA模板的组成；图9B示出了在6-缺口底物上进行的D-聚合酶X的L-DNA延伸活性测定的凝胶电泳；图10A示出了用于L-聚合酶X的活性测定的引物-模板复合物D-DNA底物；图10B示出了在恒温下进行的L-聚合酶X的D-DNA延伸活性测定的凝胶电泳；图10C示出了使用热循环进行的L-聚合酶X的D-DNA延伸活性测定的凝胶电泳；图11A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和LC-ESI质谱法(B)对合成的全L聚合酶dpo4变体A155C的分析结果；图12A示出了L-聚合酶dpo4变体A155C、V203C、C31S和A155C/V203C的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图12B示出了重组和合成的L-聚合酶dpo4的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图12C示出了L-聚合酶dpo4变体A71C/A155C/V203C、S86C/A155C/V203C和C31S/S86C/A155C/V203C的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图12D示出了L-聚合酶dpo4变体M76G/A155C/V203C和M76A/A155C/V203C的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图12E示出了L-聚合酶dpo4变体I67C/A155C/V203C、S86G/A155C/V203C和S96C/A155C/V203C的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图12F示出了L-聚合酶dpo4C-末端截短形式Δ3、Δ6、Δ9、Δ12和Δ15的D-DNAPCR活性测定的凝胶电泳；图13示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物H-RTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的分析结果；图14示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物Boc-VDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRG-OH(2)的分析结果；图15示出了通过质谱法对片段缩合D-多肽产物H-VDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(3)的分析结果；图16A-B示出了通过RP-HPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物Z-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-苄基-硫酯(4)的分析结果；图17A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物H-RKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SMe(7)的分析结果；图18A-B示出了通过UPLC(A)和质谱法(B)对合成的D-多肽产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPM-OGp(6)的分析结果；图19A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和ESI质谱法(B)对梭菌蛋白酶介导的D-多肽连接产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SMe(8)的分析结果；图20A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和LC-ESI质谱法(B)对全L聚合酶dpo4片段155-352(V203C)的天然化学连接产物的分析结果；图21示出了通过UPLC对合成的D-多肽产物H-CVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的分析结果；图22示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物H-CVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的分析结果；图23示出了通过UPLC对合成的D-多肽产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPN-SBzl(11)的分析结果；图24示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPN-SBzl(11)的分析结果；图25A-B示出了通过UPLC(A)和ESI-LC-MS(B)对合成的D-多肽产物Z-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-苄基-硫酯(7)的分析结果；图26A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和ESI-LC-MS(B)对全D肽天然化学连接产物H-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(8)的分析结果；图27A-B示出了通过SDS-PAGE(A)和ESI-LC-MS(B)对全D肽天然化学连接产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNCVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(11)的分析结果；图28A-C示出了通过SDS-PAGE(A和B)和ESI-LC-MS(C)对全D聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C天然化学连接产物的分析结果；图29示出了通过UPLC对合成的D-多肽产物H-RKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的分析结果；图30示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物H-RKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的分析结果；图31示出了通过UPLC对合成的D-多肽产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPG-OGp(10)的分析结果；图32示出了通过质谱法对合成的D-多肽产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPG-OGp(10)的分析结果；图33A-B示出了通过SDS-PAGE(a)和ESI-LC-MS(B)对蛋白酶催化的全D连接产物Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPGRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(11)的分析结果；图34示出了通过UPLC图谱(a)和质谱(b)对合成的粗全D肽H-KAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的分析结果；图35示出了通过UPLC图谱(a)和质谱(b)对合成的粗全D肽H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIP-OH(3)的分析结果；图36示出了通过UPLC图谱(a)和质谱(b)对通过片段缩合合成的H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(5)的分析结果；图37示出了通过UPLC图谱(a)和质谱(b)对合成的且纯化的全D肽H-CVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-NHNH2(9)的分析结果。实施例如实施例中所使用的缩写。ACN乙腈(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)DCM二氯甲烷(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)DIPEAN，N-二异丙胺(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)EDT(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)Fmoc9-芴基-甲氧基羰基-HATU(2-(7-氮杂-1H-苯并三唑-1-基)-1，1，3，3-四甲基脲六氟磷酸酯)(CreoSalus，LouisvilleKY，USA)HFIP1，1，1，3，3，3-六氟磷酸盐(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)HPLC高效液相色谱(有时称为高压液相色谱)MeIm甲基咪唑(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)MeOH甲醇(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)MSNT1-(均三甲苯-2-磺酰基)-3-硝基-1，2，4-三唑(MerckKGaA，Darmstadt，Germany)NMPN-甲基-吡咯烷酮(IrisBiotechGmbH，Marktredwitz，Deutschland)PyBOP(苯并三唑-1-基氧基)三吡咯烷基鏻六氟磷酸盐(MERCKKGAA，DARMSTADT，GERMANY)SDS十二烷基硫酸钠(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)TBTUO-(苯并三唑-1-基)-N，N，N′，N′-四甲基脲四氟硼酸盐(MerckKGaA，Darmstadt，Germany)tBu(叔丁基-)TFA三氟乙酸(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)TFE1，1，1-三氟乙醇(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)THF(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)TIS(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)TLC薄层色谱Tris三(羟甲基)氨基甲烷(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)UPLC超高效液相色谱实施例1-聚合酶X的野生型和变体的重组表达和纯化Oliveros等在1997年描述且表征了得自于非洲猪瘟病毒(缩写ASFV)的聚合酶X。聚合酶X的野生型基因具有仅有525个碱基对(包括起始密码子和终止密码子)的开放阅读框(缩写ORF)(Oliveros等，1997)。所编码的蛋白质的长度仅为174个氨基酸。本实施例描述了如何在大肠杆菌中表达和使用His6-Tag纯化聚合酶X以及其变体。1.1表达构建体由于ASFV的密码子用法不同于大肠杆菌，故从GeneArtAG(Regensburg，Germany)购买聚合酶X的经大肠杆菌密码子优化的合成基因。合成基因序列提供于pCR4-Blunt-TOPO载体(来源公司：Invitrogen，Karlsruhe，Germany)中。包括起始密码子和两个终止密码子的经密码子优化的开放阅读框具有以下序列：ATGCTGACCCTGATTCAGGGCAAAAAAATCGTGAACCATCTGCGTAGCCGTCTGGCCTTTGAATATAACGGCCAGCTGATTAAAATTCTGAGCAAAAACATTGTGGCGGTGGGCAGCCTGCGTCGTGAAGAAAAAATGCTGAACGATGTGGATCTGCTGATTATTGTGCCGGAAAAAAAACTGCTGAAACATGTGCTGCCGAACATTCGTATTAAAGGCCTGAGCTTTAGCGTGAAAGTGTGCGGCGAACGTAAATGCGTGCTGTTTATCGAATGGGAAAAAAAAACCTACCAGCTGGACCTGTTTACCGCGCTGGCCGAAGAAAAACCGTATGCGATCTTTCATTTTACCGGTCCGGTGAGCTATCTGATTCGTATTCGTGCGGCGCTGAAAAAAAAAAACTACAAACTGAACCAGTATGGCCTGTTTAAAAACCAGACCCTGGTGCCGCTGAAAATTACCACCGAAAAAGAACTGATTAAAGAACTGGGCTTTACCTATCGCATTCCGAAAAAACGCCTGTAATAA。为了获得聚合酶X(也称为全L聚合酶X)的表达构建体，从具有BamHI和PstI的pCR4-Blunt-TOPO中切出聚合酶X的基因且亚克隆在pRSET-A载体(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)中。亚克隆添加His6-Tag到N末端，且使基因在T7启动子的控制之下。将所述构建体命名为pMJ14且用于在大肠杆菌中表达全L聚合酶X。由pMJ14表达的蛋白质聚合酶X具有以下序列，其具有210个氨基酸：MRGSHHHHHHGMASMTGGQQMGRDLYDDDDKDRWGSMLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSLRREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKVCGERKCVLFIEWEKKTYQLDLFTALAEEKPYAIFHFTGPVSYLIRIRAALKKKNYKLNQYGLFKNQTLVPLKITTEKELIKELGFTYRIPKKRL。初始36个氨基酸表示包括几个间隔氨基酸的His6-Tag和一些其它序列标签(T7基因10前导序列，抗表达表位)。最后的174个氨基酸的部分与如在ASFV中发现的聚合酶X蛋白质序列一致。使用市售QuikChange试剂盒(StratageneGmbH，Waldbronn，Germany)，根据制造商的方案制备全L聚合酶X的变体的表达构建体。质粒pMJ14充当模板。QuikChange所需要的寡核苷酸是在NOXXON设备上合成(QC10_上、QC10_下)或从Purimex(Grebenstein，Germany)购买(QC26_上、QC26_下、QC27_上、QC27_下、QC31_上、QC31_下)。制备以下变体表达构建体且用于在大肠杆菌中表达全L聚合酶的变体：1.2大肠杆菌中的蛋白质表达使用表达构建体pMJ14在大肠杆菌中表达全L聚合酶X。由pMJ130、pMJ356、pMJ357或pMJ412表达全L聚合酶X的变体。对于表达来说，在感受态大肠杆菌菌株‘BL-2l(DE3)pLysS’(Novagen/VWR，Dresden，Germany)中转化适当的表达构建体且用抗生素氨苄青霉素来维持。使培养物在37℃下在2YT培养基中生长，直到在600nm下的光学密度达到约0.6。然后，通过加入异丙基β-D-1-硫代半乳糖苷(缩写IPTG)达到0.4mM的最终浓度来诱导蛋白质表达。在30℃下表达4小时。通过离心收集细胞且储存在-80℃下或立即处理。1.3蛋白质纯化将新鲜的或冷冻的大肠杆菌细胞再悬浮在冰上的‘溶解和结合缓冲液’(50mM磷酸钠(pH7.5)、500mMNaCl、40mM咪唑)中且使用‘FrenchPress’(G.Heinemann，Gmünd，Germany)细胞破坏剂溶解。在4℃下使用‘Ni-NTA超流体’材料(Qiagen，Hilden，Germany)进行纯化。利用洗脱缓冲液(50mM磷酸钠(pH7.5)、500mMNaCl、200mM咪唑)进行洗脱步骤。使用SDS-PAGE(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)分析级分，合并，且在需要时用阴离子交换色谱在‘纯化器’系统上使用‘Q琼脂糖凝胶快速流’材料(GEhealthcare，Freiburg，Germany)进行进一步纯化。通过MALDI质谱法证实蛋白质同一性且合并准确的级分，浓缩并且再缓冲。将经过纯化的蛋白质储存在由25mM磷酸钠(pH7.5)、250mMNaCl、50％甘油组成的-20℃缓冲液中。通过BCA-蛋白质测定(Pierce/PerbioScience，Bonn，Germany)，使用牛血清白蛋白(缩写BSA)标准物估计蛋白质浓度。实施例2-聚合酶X和聚合酶X的变体的活性证实利用由寡核苷酸形成的不同类型的底物复合物进行全L聚合酶X和全L聚合酶X的变体的活性测定(参见实施例1)，其中所述底物和寡核苷酸由D-DNA-核苷酸组成。2.1在具有1-核苷酸缺口的底物上进行活性测定1-缺口底物的寡核苷酸列表通过将由33个核苷酸组成的DNA寡核苷酸的模板链(也称为下链)与分别由15个和17个核苷酸组成且分别在其5′端和3′端与所述模板链杂交的两个不同的DNA寡核苷酸退火，从而在上链中产生一个核苷酸的缺口来制备底物复合物。所述复合物在缺口内的模板位置上含有A、C、G或T。在退火之前，通过标准激酶反应，采用γ-32P-三磷酸腺苷(ATP)和T4多核苷酸激酶将由15个核苷酸组成的寡核苷酸SP-1在其5′端用32P进行放射性标记。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。通过在NAP柱(GEhealthcare)上纯化来去除未并入的γ-32P-ATP。在活性测定中，将全L聚合酶X及其变体与D构型的1-缺口底物复合物(参见图1A)组合。作为阴性对照，也在无全L聚合酶X或其变体和D-脱氧核苷三磷酸(dNTP)的情况下孵育各底物。取决于1-缺口复合物内的模板碱基，在测定期间仅加入对应的D-dNTP。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、1.7ng/μlL-全L聚合酶X或其变体、8μM一种D-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)(pH7.5))。D-dNTP购自Rovalab(Teltow，Germany)。在37℃下，孵育时间是30分钟。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，加样在变性测序凝胶上且分离4小时。在-80℃下将凝胶暴露于KodakK屏过夜，且使用BioRadFx磷相仪系统读取。全L聚合酶X和变体I124G、V80A和V80G在这些条件下是活性的，且填充了两个上链DNA寡核苷酸之间的1核苷酸缺口。2.2在具有6-核苷酸缺口的底物上进行活性测定6-缺口底物的寡核苷酸列表：通过将由33个核苷酸组成的DNA寡核苷酸的模板链(称为下链)与分别由15个和12个核苷酸组成且分别在其5′端和3′端与所述模板链杂交的两个不同的DNA寡核苷酸退火，从而在上链中产生六个核苷酸的缺口来制备底物复合物。在退火之前，通过标准激酶反应，采用γ-32P-三磷酸腺苷(ATP)和T4多核苷酸激酶将由15个核苷酸组成的寡核苷酸SP-1在其5′端用32P进行放射性标记。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。通过在NAP柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上纯化来去除未并入的γ-32P-ATP。在活性测定中，将全L聚合酶X及其变体与D构型的6-缺口底物复合物(图1B)组合。作为阴性对照，也在无全L聚合酶X或其变体和脱氧核苷三磷酸(D-dNTP)的情况下孵育底物。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、至多1.3ng/μl全L聚合酶X或其变体、8μM每种D-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)，pH7.5)。D-dNTP购自Rovalab(Teltow，Germany)。在37℃下，典型的孵育时间是30分钟。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，加样在变性测序凝胶上且分离4小时。在-80℃下将凝胶暴露于KodakK屏过夜，且使用BioRadFx磷相仪系统读取。全L聚合酶X和变体(除了C86S)在这些条件下是活性的，且填充了两个上链DNA寡核苷酸之间的6核苷酸缺口。实施例3-由D-氨基酸组成的聚合酶PolX变体的合成在本实施例内，描述了全D聚合酶X变体V80A的合成。全D聚合酶X变体V80A的氨基酸序列是Ac-MLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSLRREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKACGERKCVLFIEWEKKTYQLDLFTALAEEKPYAIFHFTGPVSYLIRIRAALKKKNYKLNQYGLFKNQTLVPLKITTEKELIKELGFTYRIPKKRL-OH。所使用的所有氨基酸都根据固相肽合成Fmoc/tBu策略要求(EricAtherton等，1981)加以保护。所使用的所有氨基酸都是D-氨基酸(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。3.1HO-Gp(Boc)2的合成以类似于Sekizaki等(Sekizaki等，1996)的方式合成经叔丁氧基羰基保护的4-胍基苯酚。据此，将40mmolN，N′-双-(叔丁氧基羰基)-S-甲基异硫脲(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)和60mmol4-氨基苯酚(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)溶解于500ml圆底烧瓶中的250mlTHF中。此后，对所述溶液用氩气冲洗10分钟且在用CaCl2管密封的同时保持搅拌120小时。在蒸发溶剂之后，用冰冷的甲醇使残余物沉淀。在真空下经P4O10干燥沉淀物。最后，使用快速色谱法用DCM纯化产物。合并含有产物的级分且在减压下蒸发溶剂。使用TLC、反相HPLC、质谱法和NMR进行分析。实验测定的质量与计算质量351Da相对应。3.2H-D-Leu-OGp(Boc)2的合成将1mmolZ-D-Leu-OH(Bachem，Bubendorf，Switzerland)、0.9当量的TBTU和0.9当量的HO-Gp(Boc)2溶解于10mlDMF中。在加入2当量的DIPEA之后，将溶液搅拌2小时。在蒸发溶剂之后，利用快速色谱法使用DCM纯化粗产物。合并Z-D-Leu-OGp(Boc)2的纯级分且蒸发溶剂。将Z-D-Leu-OGp(Boc)2溶解于10mlMeOH中且用氩气冲洗。通过在2小时内加入Pd/C催化剂和H2来实现N末端Z-基团的水解裂解。过滤出H-D-Leu-OGp(Boc)2之后，在减压下蒸发MeOH。使用反相HPLC和质谱法进行分析。发现产物的正确质量是465Da且与计算质量一致。3.3全D肽AcMLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSL-OGp(1)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述，使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂(RappPolymere，Tübingen，Deutschland)装载有Fmoc-D-Ser(tBu)-OH(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Ser(tBu)-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433(AppliedBiosystems，FosterCity，USA)，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间为45分钟，且用含20％(v/v)哌啶(Sigma-AldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Deutschland)的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.01mmol经完全保护的肽、4当量的PyBOP和5当量的H-D-Leu-OGp(Boc)2溶解于6mlNMP中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)上，使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过HPLC/UPLC(图2A)和质谱法(图2B)表征最终产物。产物的测量质量4654,7Da与理论质量4652,7Da一致。3.4全D肽H-RREEKLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKA-SMe(2)的合成在6mlNMP中使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA历经45分钟使0.10mmolTentaGel-R-NH2树脂(RappPolymere，Tübingen，Deutschland)装载有Fmoc-D-Ala-OH。随后用THF洗涤树脂。通过与4当量的劳森试剂一起在THF中在80℃下孵育2小时实现转化成Fmoc-d-Ala-Ψ[CS-NH]-R-TentaGel。此后用NMP洗涤树脂。随后，将如此制备的树脂用于如先前所描述的自动化肽合成(参见实施例1.3)。此后，根据Sharma等(Sharma等，2011)，通过与甲基碘一起在DMF中孵育过夜来产生相应的硫酯。在过滤树脂之后，蒸发含有肽硫酯的溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。利用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA来裂解侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)上，使用ACN/水梯度进行肽硫酯的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过HPLC/UPLC(图3A)和质谱法(图3B)表征最终产物。实验测定的产物质量(4683.8Da)与理论值4681.7Da一致。3.5全D肽H-CGERKCVLFIEWEKKTYQLDLFTALAEEKPYAIFHFTGPVSYLIRIRAALKKKNYKLNQYGLFKNQTLVPLKITTEKELIKELGFTYRIPKKRL-OH(3)的合成使用含6当量的氨基酸、6当量的MSNT和4.5当量的MeIm的DCM使0.10mmolTentaGel-R-PHB树脂(RappPolymere，Tübingen，Deutschland)装载有Fmoc-D-Leu-OH。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在42个氨基酸之后进行双偶合步骤。使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA历经2小时实现N末端经Fmoc保护的肽的裂解。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行粗制N末端经保护的肽的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。随后在含20％胡椒碱的DMF中溶解经Fmoc保护的肽并且搅拌，以便裂解掉N末端Fmoc基团。在20分钟之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。随后，使用反相HPLC，利用C18柱与ACN/水梯度纯化沉淀的粗制肽。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过HPLC/UPLC(图4A)和质谱法(图4B)表征最终产物。产物的测定质量(11184,3Da)与理论质量11178,2Da相对应。3.6通过肽1与肽2的蛋白酶催化连接合成全D肽Ac-MLTLIQGKKIVNHLRSRLAFEYNGQLIKILSKNIVAVGSLRREEKMLNDVDLLIIVPEKKLLKHVLPNIRIKGLSFSVKA-SMe(4)将肽1以0.2mM且将肽2以0.6mM溶解于含有2％TritonX100(SigmaAldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Germany)的磷酸钠缓冲液(100mM，pH8.5，含100mMNaCl)。在加入20μM梭菌蛋白酶(内切蛋白酶Arg-C，WorthingtonBiochemicalCorporation，Lakewood，N.J.，USA)之后，在37℃下振荡反应混合物过夜。对沉淀的肽进行离心，溶解于H2O/ACN/甲酸60/40/0.5中且通过反相HPLC，使用RP-18柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)以30分钟内从30％到60％的ACN/水梯度进行纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用反相UPLC(图5A)和ESI-质谱法(图5B)分析最终肽。理论分子量(M理论＝9199.3Da)与实测分子量(M实测＝9199.4Da)相对应。3.7通过肽4与肽3的天然化学连接合成全D聚合酶X变体V80A将肽3和4都以0.2M溶解于含有6M盐酸胍(SigmaAldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Germany)、200mM巯苯基乙酸(SigmaAldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Germany)和5mmTris(2-羧乙基)膦盐酸盐(SigmaAldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Germany)的TRIS缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。然后，通过反相HPLC，使用RP-8柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)以30分钟内从30％到60％的ACN/水梯度纯化混合物。合并含有连接产物的级分并且干燥。将干粉末溶解于水中，且通过尺寸排除色谱法，使用SEC3000柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)，以磷酸钠缓冲液(SigmaAldrichChemieGmbH，Schnelldorf，Germany)(50mM，pH6.8，0.5％SDS)作为洗脱液进行纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用SDS-PAGE(图6A)和ESI-质谱法(图6B)分析最终产物。在介于14.4kDa与21.5kDa之间的泳道7中发现了清楚的条带，表明纯的全长聚合酶。如ESI-MS所示，理论分子量(M理论＝20342Da)与实测分子量(M实测＝20361Da)相对应。实施例4-由D-氨基酸组成的合成聚合酶X变体的活性证实将根据实施例3的干燥全D聚合酶X变体V80A溶解于6M盐酸胍中，且在4℃下通过在市售透析装置(Pierce/PerBio，Bonn，Germany)中以3,500的分子量截断值逐步透析来进行再折叠。最终缓冲液是50mM磷酸钠、500mM氯化钠(pH7.5)。通过在预制的凝胶(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)上使用标准系列的已知蛋白质浓度进行十二烷基硫酸钠(SDS)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)，随后进行SYPRO-RED染色(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)和在BioRadFx扫描仪上进行密度条带分析来估计蛋白质浓度。利用两种不同的底物类型进行全D聚合酶X变体V80A的活性测定：4.1在具有1-核苷酸缺口的底物上进行活性测定通过将33-聚体下链DNA寡核苷酸与两个17-聚体上链DNA寡核苷酸退火从而在上链中产生1个核苷酸的缺口来制备底物。合成了呈L-构型的寡核苷酸。在退火之前，通过标准激酶反应，采用γ-32P-三磷酸腺苷(γ-32P-ATP)和T4多核苷酸激酶将17-聚体上链寡核苷酸MJ_1_58_MD在其5′端用32P进行放射性标记。为了促进L-寡核苷酸MJ_1_58_MD的激酶反应，在寡核苷酸合成期间，在5′端添加两个D构型的鸟苷碱基。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。通过在NAP柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上纯化来去除未并入的γ-32P-ATP。所述复合物在缺口内的模板位置上含有A、C、G或T。关于底物复合物的设定，参见图7。在活性测定中，将合成的全D聚合酶X变体V80A与L构型的1-缺口底物复合物组合。作为阴性对照，也在无全D聚合酶X变体V80A和L-脱氧核苷三磷酸(dNTP)的情况下孵育各底物。取决于1-缺口复合物内的模板碱基，在测定期间仅加入相应的L-dNTP。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、1.7ng/μl全D聚合酶X变体V80A、8μM一种L-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)(pH7.5))。L-dNTP是以委托合成的方式购自Rasayan，Inc.(Encinitas，CA，USA)。在37℃下，孵育时间是30分钟。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，加样在变性测序凝胶上且分离4小时。在-80℃下将凝胶暴露于KodakK屏过夜，且使用BioRadFx磷相仪系统读取。如从图8可见，全D聚合酶X变体V80A在L-DNA1-缺口底物上得到了延伸产物，因而证实了所述合成蛋白质的活性。值得注意的是，仅与L-底物和L-dNTP组合的全D聚合酶X变体V80A得到了任何延伸产物。还有，仅含有对应于其模板碱基的L-dNTP的样品产生了延伸产物。这意味着A复合物上必须存在dTTP核苷酸、C-复合物上必须存在dGTP核苷酸、G-复合物上必须存在dCTP核苷酸且T-复合物上必须存在dATP核苷酸才能产生任何延伸产物。4.2在具有6-核苷酸缺口的底物上进行活性测定通过将33-聚体下链DNA寡核苷酸与两个17-聚体和12-聚体上链DNA寡核苷酸退火从而在上链中产生6个核苷酸的缺口来制备底物。合成了呈L-构型的寡核苷酸。在退火之前，通过标准激酶反应，采用γ-32P-三磷酸腺苷(ATP)和T4多核苷酸激酶将17-聚体上链寡核苷酸MJ_1_58_MD(L-构型)在其5′端用32P进行放射性标记。为了促进L-寡核苷酸MJ_1_58_MD的激酶反应，在寡核苷酸合成期间，在5′端添加两个D构型的鸟苷碱基。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。通过在NAP柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上纯化来去除未并入的γ-32P-ATP。关于底物复合物的设定，参见图9A。在活性测定中，将合成的全D聚合酶X变体V80A与L构型的6-缺口底物复合物组合。作为阴性对照，也在无全D聚合酶X变体V80A和脱氧核苷三磷酸(L-dNTP)的情况下孵育所述底物。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、至多1.3ng/μl全D聚合酶X变体V80A、8μM每种L-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)(pH7.5))。L-dNTP是以委托合成的方式购自Rasayan，Inc.(Encinitas，CA，USA)。在37℃下，典型的孵育时间是30分钟，但取决于批料的活性，可使用更久的孵育。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，加样在变性测序凝胶上且分离4小时。在-80℃下将凝胶暴露于KodakK屏过夜，且使用BioRadFx磷相仪系统读取。如从图9B可见，合成的全D聚合酶X变体V80A在L-DNA6-缺口底物上得到了N+6延伸产物，因而证实了所述合成蛋白质的活性。然而，在相同的6-缺口复合物上，N+6延伸产物的合成与N+1延伸产物相比不那么明显。还有必要增加孵育时间来填充6-缺口。值得注意的是，仅与L-底物加L-dNTP组合的全D聚合酶X变体V80A得到了任何延伸产物。实施例5-由聚合酶X和聚合酶X的变体进行DNA合成文献(Oliveros，1997)中将得自于非洲猪瘟病毒(缩写ASFV)的聚合酶X描述为一种具有缺口修复功能的高度分散的酶。如实施例2中所示，全L聚合酶X及其变体已示出在缺口化底物上进行各引发之后仅催化极少的核苷酸并入。这里，我们公开了一种允许使用全L聚合酶X和变体来合成更长DNA的方法，且示出83-聚体链的完全聚合。5.1引物-模板底物已使用引物-模板复合物来测试全L聚合酶X及其变体的活性。还使用同一复合物来测试全L聚合酶X的变体V80G和V80A。无缺口引物-模板复合物的D-寡核苷酸列表：通过将由83个核苷酸组成的模板链DNA寡核苷酸(MJ_1_1_DD)与由19个核苷酸组成的DNA寡核苷酸退火来制备底物。在NOXXON上合成寡核苷酸。寡核苷酸MJ_1_33_DD携带荧光染料Atto-532(AttoTec，Siegen，Germany)。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。图10A中描绘了引物-模板复合物。5.2在恒温下反应在活性测定中，将全L聚合酶X或全L聚合酶X的变体V80G或V80A与D构型的引物-模板复合物组合。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、至多1.3ng/μl全L聚合酶X或全L聚合酶X的变体V80G或V80A、8μM每种D-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)(pH7.5))。D-dNTP购自Rovalab(Teltow，Germany)。对于Pol-X样品，在37℃下的孵育时间是30分钟。作为阴性对照，还在无任何全L聚合酶X或全L聚合酶X变体V80G或V80A和无脱氧核苷三磷酸(D-dNTP)的情况下孵育底物。利用以0.083U/μl最终浓度使用的Taq聚合酶(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)在由制造商供应的Taq缓冲液中进行阳性对照。在60℃下将Taq样品孵育30分钟。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，且在变性凝胶上分离。使用BioRadFx磷相仪系统读取凝胶。全L聚合酶X或全L聚合酶X变体V80G或V80A是活性的，但不能完成完整83-聚体模板的聚合。Taq聚合酶阳性对照示出83-聚体模板完全聚合，参见图10B。5.3在热循环条件下的反应假定在引发之后全L聚合酶X催化仅一个核苷酸并入且然后暂停，同时停留在DNA底物上，那么我们进行重复热脉冲(50℃，2分钟)以便允许全L聚合酶X与模板解离和再缔合。通过使用这个重复热循环程序，我们能够进行83-聚体与全L聚合酶X的完全聚合。如上文针对恒温所描述来设定反应和对照，但全L聚合酶X样品的温度分布示出如下运行：5至25个(在20℃下30分钟//在50℃下2分钟)的循环然后是在20℃下30分钟的最终步骤。据观察，类似于阳性对照，从15个循环向前，全L聚合酶X能够使完整83-聚体模板链聚合，参见图10C。实施例6-用由D-氨基酸组成的合成聚合酶X变体进行引物延伸本实施例中所公开的方法使用L-构型的底物来测试全D构型的聚合酶。6.1引物-模板底物无缺口的引物-模板复合物的L-寡核苷酸列表：通过将83-聚体下链DNA寡核苷酸与19-聚体上链DNA寡核苷酸退火来制备底物。在NOXXON的自有设备上合成呈L-构型的寡核苷酸。在退火之前，通过标准激酶反应，采用γ-32P-三磷酸腺苷(ATP)和T4多核苷酸激酶将21-聚体上链寡核苷酸MJ_1_109_MD在其5′端用32P进行放射性标记。为了促进L-寡核苷酸MJ_1_109_MD的激酶反应，在寡核苷酸合成期间，在5′端添加两个D构型的鸟苷碱基。在10mMTris-HCl、5mMMgCl2(pH8.0)中通过在65℃下加热10分钟且缓慢冷却进行退火。通过在NAP柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上纯化来去除未并入的γ-32P-ATP。6.2在恒温下反应在活性测定中，将合成的全D聚合酶X变体V80A与L构型的引物-模板复合物组合。典型的6μl测定含有50nM底物复合物、至多1.3ng/μl全D聚合酶X变体、8μM每种L-dNTP和缓冲液(50mMTris-HCl、10mMMgCl2、4％甘油、0.1mg/ml牛血清白蛋白(BSA)(pH7.5))。L-dNTP是购自Rasayan，Inc.(Encinitas，CA，USA)。在37℃下的孵育时间至少是30分钟。作为阴性对照，还在无任何聚合酶和无脱氧核苷三磷酸(L-dNTP)的情况下孵育所述底物。将整个测定体积与样品缓冲液/染料混合，且在变性凝胶上分离。使用BioRadFx磷相仪系统读取凝胶。合成的全D聚合酶X变体V80A在这个条件下具有活性，但类似于全L聚合酶X对应物，不能够使完整的83核苷酸模板链聚合。6.3在热循环条件下的反应类似于实施例5，使用重复热循环程序以允许83-聚体L-底物与全D聚合酶X变体V80A完全聚合。如上文针对恒温所描述来设定反应和对照，但温度分布示出如下运行：5至25个(在20℃下30分钟//在50℃下2分钟)的循环然后是在20℃下30分钟的最终步骤。可以观察到，当使用热循环延伸时，类似于全L聚合酶X对应物，全D聚合酶X变体V80A能够使完整的83-聚体模板链聚合。实施例7-全部由L-氨基酸组成的聚合酶Dpo4和聚合酶Dpo4的变体的重组表达和纯化最初是在硫磺矿硫化叶菌(缩写Sso)中发现了聚合酶Dpo4(Boudsocq，2001)。野生型基因具有1,059个碱基对(包括起始密码子和终止密码子)的开放阅读框(缩写ORF)。所编码的蛋白质的长度为352个氨基酸。本实施例描述了如何在大肠杆菌中表达和使用Strep-Tag纯化聚合酶Dpo4和聚合酶Dpo4的变体。7.1表达构建体由于Sso的密码子用法不同于大肠杆菌，故从GeneArtAG(Regensburg，Germany)购买野生型Sso聚合酶Dpo4的经大肠杆菌密码子优化的合成基因。合成基因序列提供于pENTRY-IBA10载体(来源公司：IBAGmbH，Germany)中。包括起始密码子但不包括终止密码子的经密码子优化的开放阅读框具有以下序列：ATGATTGTGCTGTTTGTGGATTTTGATTATTTTTATGCCCAGGTGGAAGAAGTTCTGAATCCGAGCCTGAAAGGTAAACCGGTTGTTGTTTGTGTTTTTAGCGGTCGCTTTGAAGATAGCGGTGCAGTTGCAACCGCCAATTATGAAGCCCGTAAATTTGGTGTTAAAGCCGGTATTCCGATTGTTGAAGCCAAAAAAATTCTGCCGAATGCAGTTTATCTGCCGATGCGCAAAGAAGTTTATCAGCAGGTTAGCAGCCGTATTATGAATCTGCTGCGCGAATATAGCGAAAAAATTGAAATTGCCAGCATTGATGAAGCCTATCTGGATATTAGCGATAAAGTGCGCGATTATCGCGAAGCATATAATCTGGGCCTGGAAATTAAAAATAAAATCCTGGAAAAAGAAAAAATTACCGTGACCGTGGGCATTAGCAAAAATAAAGTGTTTGCCAAAATTGCAGCAGATATGGCAAAACCGAATGGCATTAAAGTGATTGATGATGAAGAAGTGAAACGTCTGATTCGCGAACTGGATATTGCAGATGTTCCGGGTATTGGCAATATTACCGCAGAAAAACTGAAAAAACTGGGCATTAATAAACTGGTTGATACCCTGAGCATTGAATTTGATAAACTGAAAGGCATGATTGGTGAAGCGAAAGCCAAATATCTGATTAGCCTGGCACGTGATGAATATAATGAACCGATTCGTACCCGTGTTCGTAAAAGCATTGGTCGTATTGTGACCATGAAACGCAATAGCCGTAATCTGGAAGAAATTAAACCGTACCTGTTTCGTGCAATTGAAGAAAGCTATTATAAACTGGATAAACGCATTCCGAAAGCCATTCATGTTGTTGCAGTTACCGAAGATCTGGATATTGTTAGCCGTGGTCGTACCTTTCCGCATGGTATTAGCAAAGAAACCGCCTATAGCGAAAGCGTTAAACTGCTGCAGAAAATCCTGGAAGAAGATGAACGTAAAATTCGTCGTATTGGTGTGCGCTTTAGCAAATTTATTGAAGCCATTGGCCTGGATAAATTTTTTGATACC。为了获得聚合酶Dpo4(也称为全L聚合酶Dpo4)的表达构建体，使用市售StarGate克隆试剂盒(IBAGmbH)将所述基因从pENTRY-IBA10亚克隆到pASG-IBA5载体(IBAGmbH，Germany)中。亚克隆添加Strep-TagII到N末端且添加终止密码子到C末端，并且使所述基因在tet启动子控制之下。将所述构建体命名为pMJ343且用于在大肠杆菌中表达全L聚合酶Dpo4。由pMJ343表达的全L聚合酶Dpo4具有以下368个氨基酸的序列：MASAWSHPQFEKSGMIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIAADMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLVDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDTGS。初始的14个氨基酸代表包括几个间隔氨基酸的Strep-TagII，最后的2个氨基酸代表间隔氨基酸，且中间的352个氨基酸部分与如在Sso中发现的聚合酶Dpo4序列一致。使用市售QuikChange试剂盒(StratageneGmbH，Waldbronn，Germany)，根据制造商的方案制备全L聚合酶Dpo4的变体的表达构建体。质粒pMJ343充当模板以制备pMJ361、pMJ362、pMJ363、pMJ502、pMJ503以及pMJ504。质粒pMJ343还充当模板以在两个步骤中制备pMJ365。然后pMJ365充当模板以制备pMJ508、pMJ509、pJA95、pJA96、pJA100、pJA103以及pJA104。然后pMJ509充当模板以制备pMJ511。QuikChange所需的寡核苷酸是在NOXXON上合成(QC_38_上、QC_38_下、QC_39_上、QC_39_下、QC_40_上、QC_40_下、QC_41_上、QC_41_下、QC_dpo4_M76G_有义、QC_dpo4_M76G_反义、QC_dpo4_M76A_有义、QC_dpo4_M76A_反义、QC_dpo4_I67C_有义、QC_dpo4_I67C_反义、QC_dpo4_S86G_有义、QC_dpo4_S86G_反义)或从Putimex(Gtebenstein，Germany)购买(QC_28_上、QC_28_下、QC_29_上、QC_29_下、QC_30_上、QC_30_下)。制备以下变体表达构建体且用于在大肠杆菌中表达全L聚合酶Dpo4的变体7.2大肠杆菌中的蛋白质表达使用表达构建体pMJ343在大肠杆菌中表达全L聚合酶Dpo4。由pMJ361、pMJ362、pMJ363、pMJ365、pMJ502、pMJ503、pMJ504、pMJ508、pMJ509、pMJ511、pJA95、pJA96、pJA100、pJA103或pJA104表达全L聚合酶Dpo4的突变变体。对于表达来说，使用‘转化和储存溶液’(Epicentre/Biozym，HessischOldendorf，Germany)在大肠杆菌菌株‘NEBexpress’(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)中转化适当的表达构建体且用抗生素氨苄青霉素来维持。在30℃下，使用200ng/ml脱水四环素(IBAGmbH，Germany)作为诱导剂在培养基‘EnBaseFlo’或‘EnPresso’(BioSilta，Oulu，Finland)中表达48小时。通过离心收集细胞且储存在-80℃下或立即处理。7.3蛋白质纯化将新鲜的或冷冻的大肠杆菌细胞再悬浮在冰上的‘缓冲液W’(100mMTris-HCl(pH8.0)、150mMNaCl、1mMEDTA)中且使用‘FrenchPress’(G.Heinemann，Gmünd，Germany)细胞破坏剂溶解。在4℃下，在装备有5mlStrepTrapHP柱的‘Express’系统(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上进行纯化。利用包括2.5mM脱硫生物素(IBAGmbH，Germany)的缓冲液W进行洗脱步骤。使用SDS-PAGE(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)分析级分，合并，且在需要时用阴离子交换色谱在装备有‘QHP’柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)的‘纯化器’系统上进行进一步纯化。利用LC-MS质谱法证实蛋白质同一性且合并准确的级分，浓缩并且使用10,000的分子量截断值(MWCO)的VivaSpin15R浓缩装置(VivaSciences/SartoriusStedimBiotech，Germany)进行再缓冲。将经过纯化的蛋白质储存在由100mMKCl、10mMTris-HCl(pH7.4)、0.1mMEDTA、1mMDTT、50％甘油组成的-20℃缓冲液中。通过凝胶密度测量术，在SDS-PAGE上使用牛血清白蛋白(缩写BSA)标准物且用SYPRORed(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)染色来估计蛋白质浓度。实施例8-由两个片段组成的合成聚合酶Dpo4的产生全L聚合酶Dpo4的长度是352个氨基酸。为了以化学方式产生全L聚合酶Dpo4，必须由可通过固相肽合成来合成的较短片段组装所述合成的全L聚合酶Dpo4，其中所述较短片段必须通过诸如天然化学连接等肽连接法来连接。本实施例描述了如何在大肠杆菌中表达Dpo4的连接片段1-154、155-352、155-202和203-352、纯化和通过天然化学连接而彼此连接以产生合成的全L聚合酶Dpo4。8.1表达构建体如实施例7中所公开，已经获得了呈来自于商业来源的合成基因构建体(GeneArt，Regensburg，Germany)形式的全L聚合酶Dpo4的基因。本实施例的所有片段都是基于那个经密码子优化的序列进行克隆。针对全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154、155-352、155-202和203-352制备了以下表达构建体：8.1.1全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154-硫酯-表达构建体pMJ370这个构建体依序含有全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154和用于产生硫酯的MxeGyrA内含肽，和壳多糖结合域(CBD)。所述构建体是由两种PCR产物组装。使用pMJ343作为模板且使用引物MJ_1_90_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGATGATTGTGCTGTTTGTGGATTTT-3′)和MJ_1_91_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGGCATGCAATTTTGGCAAACACTTT-3′)扩增全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154以制备PCR产物1。使用pTWIN1(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)作为模板且使用引物MJ_1_72_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGTGCATCACGGGAGAT-3′)和MJ_1_73_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGCCCTTGAAGCTGCCACAAGGCAGGAACGTT-3′)扩增MxeGyrA内含肽和CBD以制备PCR产物2。引物MJ_1_90_DD和MJ_1_91_DD是购自Purimex(Grebenstein，Germany)，而引物MJ_1_72_DD和MJ_1_73_DD是得自于IBAGmbH(Germany)。在快速凝胶系统(LONZA，Basel，Switzerland)上对两种PCR产物进行凝胶纯化，且使用StarGateMutagenesisENTRY克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)一起克隆在pENTRY-IBA20中以产生pMJ366。使用StarGateTransfer克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)从pMJ366亚克隆在pASG-IBAwtl(IBAGmbH，Germany)中产生了pMJ370。构建体pMJ370编码全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154-硫酯，其具有长度为154个氨基酸的以下蛋白质序列(在内含肽裂解/硫酯产生之后)：MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-硫酯。8.1.2全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段155-352-表达构建体pMJ384这个构建体依序含有‘ProfinityeXact’标签和全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段155-352。‘ProfinityeXact’标签是用于纯化和蛋白水解裂解。所述构建体是由两种PCR产物组装。使用pPAL7(Bio-Rad，München，Germany)作为模板且使用引物MJ_1_99_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGATGGGAGGGAAATCAAACGGGGAA-3′)和MJ_1_100_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGGCACAAAGCTTTGAAGAGCTTGTC-3′)制备PCR产物1以扩增‘ProfinityeXact’标签。使用pMJ361作为模板且使用引物MJ_1_96_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGTGCGATATGGCAAAACCGAATGGCATTAAA-3′)和MJ_1_97_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGCCCTTAGGTATCAAAAAATTTATCCAGG-3′)制备PCR产物2以扩增含有A155C突变的dpo4片段155-352。引物MJ_1_96_DD、MJ_1_97_DD、MJ_1_99_DD和MJ_1_100_DD都得自于Purimex(Grebenstein，Germany)。在快速凝胶系统(LONZA，Basel，Switzerland)上对2种PCR产物进行凝胶纯化，且使用StarGateMutagenesisENTRY克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)一起克隆在pENTRY-IBA20中以产生pMJ382。使用StarGateTransfer克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)从pMJ382亚克隆在pASG-IBA5(IBAGmbH，Germany)中产生了pMJ384。构建体pMJ384编码含有突变A155C的全L聚合酶Dpo4的片段155-352，其具有长度为198个氨基酸的以下蛋白质序列(在蛋白水解裂解之后)：CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLVDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT。8.1.3全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段203-352-表达构建体pMJ385这个构建体依序含有‘ProfinityeXact’标签和含有突变V203C的dpo4片段203-352。‘ProfinityeXact’标签是用于纯化和蛋白水解裂解。所述构建体是由两种PCR产物组装。使用pPAL7(Bio-Rad，München，Germany)作为模板且使用引物MJ_1_99_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGATGGGAGGGAAATCAAACGGGGAA-3′)和MJ_1_100_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGGCACAAAGCTTTGAAGAGCTTGTC-3′)制备PCR产物1以扩增‘ProfinityeXact’标签。使用pMJ362作为模板且使用引物MJ_1_98_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGTGTGATACCCTGAGCATTGAATTT-3′)和MJ_1_97_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGCCCTTAGGTATCAAAAAATTTATCCAGG-3′)制备PCR产物2以扩增含有V203C突变的dpo4片段203-352。引物MJ_1_97_DD、MJ_1_98_DD、MJ_1_99_DD和MJ_1_100_DD都得自于Purimex(Grebenstein，Germany)。在快速凝胶系统(LONZA，Basel，Switzerland)上对2种PCR产物进行凝胶纯化，且使用StarGateMutagenesisENTRY克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)一起克隆在pENTRY-IBA20中以产生pMJ383。使用StarGateTransfer克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)从pMJ383亚克隆在pASG-IBA5(IBAGmbH，Germany)中产生了pMJ385。构建体pMJ385编码dpo4片段203-352V203C，其具有长度为150个氨基酸的以下蛋白质序列(在蛋白水解裂解之后)：CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT8.1.4全L聚合酶Dpo4的片段155-202-表达构建体pMJ388这个构建体依序含有dpo4片段155-202和用于产生硫酯的MxeGyrA内含肽，和壳多糖结合域(CBD)。所述构建体是由两种PCR产物组装。使用pMJ343作为模板且使用引物MJ_1_101_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGATGGCAGATATGGCAAAACCGAAT-3′)和MJ_1_102_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGGCACAGTTTATTAATGCCCAGTTT-3′)制备PCR产物1以扩增dpo4155-202片段。使用pTWIN1(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)作为模板且使用引物MJ_1_72_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGTGCATCACGGGAGAT-3′)和MJ_1_73_DD(5′-磷酸-AGCGGCTCTTCGCCCTTGAAGCTGCCACAAGGCAGGAACGTT-3′)制备PCR产物2以扩增MxeGyrA内含肽和CBD。引物MJ_1_101_DD和MJ_1_102_DD是购自Purimex(Grebenstein，Germany)，而引物MJ_1_72_DD和MJ_1_73_DD是得自于IBAGmbH(Germany)。在快速凝胶系统(LONZA，Basel，Switzerland)上对2种PCR产物进行凝胶纯化，且使用StarGateMutagenesisENTRY克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)一起克隆在pENTRY-IBA20中以产生pMJ386。使用StarGateTransfer克隆试剂盒(IBAGmbH，Germany)从pMJ386亚克隆在pASG-IBAwt1(IBAGmbH，Germany)中产生了pMJ388。构建体pMJ388编码dpo4片段155-202，其具有长度为48个氨基酸的以下蛋白质序列(在大肠杆菌介导的初始甲硫氨酸裂解之后和在内含肽裂解/硫酯产生之后)：ADMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-硫酯8.2大肠杆菌中的蛋白质表达对于表达来说，使用‘转化和储存溶液’(Epicentre/Biozym，HessischOldendorf，Germany)在大肠杆菌菌株‘NEBexpress’(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)中转化适当的表达构建体且用抗生素氨苄青霉素来维持。在环境温度下，使用200ng/ml脱水四环素(IBAGmbH，Germany)作为诱导剂在培养基‘EnBaseFlo’或‘EnPresso’(BioSilta，Oulu，Finland)中表达过夜。通过离心收集细胞且储存在-80℃下或立即处理。8.3由具有MxeGyrA内含肽的构建体pMJ370和pMJ388纯化和产生硫酯将新鲜的或冷冻的大肠杆菌细胞再悬浮在冰上的‘柱缓冲液’(20mMHEPES(pH8.5)、500mMNaCl)中且使用‘FrenchPress’(G.Heinemann，Gmünd，Germany)细胞破坏剂溶解。在4℃下，在装备有含有结合壳多糖的珠粒(NewEnglandsBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)的柱的‘Express’系统(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上进行纯化。在应用细胞溶解物和用柱缓冲液洗涤直到基线之后，在4℃下将柱与50mM2-巯基乙烷磺酸酯(缩写MESNA)一起在柱缓冲液中孵育20小时以诱导内含肽介导的蛋白质裂解和硫酯形成。用柱缓冲液从柱中洗出携带硫酯的裂解蛋白质，浓缩且使用BioGelP60培养基材料(BioRad，München，Germany)在由5mMBis-Tris(pH6.5)、250mMNaCl组成的缓冲液中进行凝胶过滤。通过凝胶密度测量术，在SDS-PAGE上使用牛血清白蛋白(BSA)标准物且用SYPRORed(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)染色来估计蛋白质浓度。利用LC-MS质谱法证实蛋白质同一性和硫酯的存在。8.4由具有‘ProfinityeXact’标签的构建体pMJ384纯化和蛋白水解裂解如下进行由pMJ384纯化全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段155-352：将新鲜的或冷冻的大肠杆菌细胞再悬浮在冰上的‘缓冲液W’(100mMTris-HCl(pH8.0)、150mMNaCl、1mMEDTA)中且使用‘FrenchPress’(G.Heinemann，Gmünd，Germany)细胞破坏剂溶解。在4℃下，在装备有5mlStrepTrapHP柱的‘Express’系统(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上进行纯化。利用包括2.5mM脱硫生物素(IBAGmbH，Germany)的缓冲液W进行洗脱步骤。使用HiPrep26/10脱盐柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)在‘ProfinityeXact洗脱缓冲液’(0.1M磷酸钠(pH7.2)、0.1MNaF)中对洗脱的蛋白质进行缓冲液交换，然后缓慢泵送通过ProfinityeXact柱。浓缩样品，补充Tris(2-羧乙基)膦)(TCEP)到1mM最终浓度且使用HiLoad16/60Superdex75制备级柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)应用于凝胶过滤，在由5mMBis-Tris(pH6.5)、250mMNaCl组成的缓冲液中显色。浓缩蛋白质且储存在-80℃下。通过凝胶密度测量术，在SDS-PAGE上使用牛血清白蛋白(BSA)标准物且用SYPRORed(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)染色来估计蛋白质浓度。利用LC-MS质谱法证实蛋白质同一性。8.5由具有‘ProfinityeXact’标签的构建体pMJ385纯化和蛋白水解裂解如下进行由pMJ385纯化dpo4片段203-352V203C：如‘i-FOLD蛋白质再折叠系统’手册(Novagen/Merck-Millipore，Darmstadt，Germany)中所描述制备包涵体和使其变性。使用SephadexG-25精细材料(GEhealthcare，Freiburg，Germany)在‘缓冲液W’(100mMTris-HCl(pH8.0)、150mMNaCl、1mMEDTA)中对溶液化的蛋白质进行缓冲液交换，且在4℃下在装备有StrepTrapHP柱的‘Express’系统(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上纯化。利用包括2.5mM脱硫生物素(IBAGmbH，Germany)的缓冲液W进行洗脱步骤。向洗脱的蛋白质溶液补充NaF达到最终浓度0.1M和三(2-羧乙基)膦)(TCEP)达到最终浓度1mM，然后缓慢泵送通过ProfinityeXact柱。用去离子水对通过的流体进行1∶3稀释且使用HCl将pH值调节到7.2。通过阳离子交换色谱法，使用在‘BufferA’(50mM磷酸钠(pH7.2)、1mM2-巯基乙醇)中平衡的HiTrapSPHP柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)进一步纯化样品。使用17％、25％和100％‘缓冲液B’(50mM磷酸钠(pH7.2)、1MNaCl、1mM2-巯基乙醇)进行洗脱步骤。合并级分，浓缩且使用HiLoad16/60Superdex75制备级柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)应用于凝胶过滤，在去离子水中显色。在液氮中快速冷冻蛋白质且冻干。通过凝胶密度测量术，在SDS-PAGE上使用牛血清白蛋白(BSA)标准物且用SYPRORed(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)染色来估计蛋白质浓度。利用LC-MS质谱法证实蛋白质同一性。8.6通过片段1-154-硫酯和155-352的天然化学连接来合成合成的全L聚合酶Dpo4变体A155C将全L聚合酶Dpo4变体A155C的片段1-154-硫酯和155-352溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的50μMTRIS缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。之后，利用SDS-PAGE(图11A)和LC-ESI质谱法(RP18柱，梯度ACN+0.1％TFA的水溶液+0.1％TFA，20分钟内5％到95％，图11B)分析连接成功率。在41kDa左右的泳道中发现了清楚的条带，表明全长聚合酶。如ESI-MS所示，理论分子量(M理论＝40223Da)与实测分子量(M实测＝40265Da)相对应。8.7通过片段155-202-硫酯和203-352的天然化学连接来合成片段155-352将全L聚合酶Dpo4的片段155-202-硫酯和203-352V203C溶解于含有2％SDS、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的0.2MTRIS缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。利用SDS-PAGE(图20A)和LC-ESI质谱法(RP18柱，梯度ACN+0.1％TFA的水溶液水+0.1％TFA，20分钟内5％至95％，图20B)分析连接成功率。在21.5kDa左右的泳道7中发现了表明连接产物的清楚的条带。如ESI-MS所示，理论分子量(M理论＝22749Da)与实测分子量(M实测＝22769Da)相对应。实施例9-全部由L-氨基酸组成的聚合酶Dpo4的截短形式的重组表达和纯化最初是在硫磺矿硫化叶菌(缩写Sso)中发现了聚合酶Dpo4(Boudsocq，2001)。野生型基因具有1,059个碱基对(包括起始密码子和终止密码子)的开放阅读框(缩写ORF)。所编码的蛋白质的长度为352个氨基酸。本实施例描述了如何在大肠杆菌中表达和使用Strep-Tag纯化聚合酶Dpo4的截短形式。9.1表达构建体由于Sso的密码子用法不同于大肠杆菌，故从GeneArtAG(Regensburg，Germany)购买野生型Sso聚合酶Dpo4的经大肠杆菌密码子优化的合成基因。此外，3、6或9个氨基酸从C末端缺失的截短型式由GeneArt定制制备。合成基因序列提供于pASK-IBA5plus载体(来源公司：IBAGmbH，Germany)中，其添加Strep-Tag至N末端。3个氨基酸在C末端缺失的dpo4的截短形式是从此系列的质粒表达的最长变体，称为克隆3.C11(变体Δ3)，并且具有368个氨基酸的以下序列(序列从N末端至C末端示出)：MASWSHPQFEKGAETAVPNSIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIAADMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLVDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKF。初始20个氨基酸表示Strep-TagII，包括一些间隔区氨基酸，接着的序列然后表示硫磺矿硫化叶菌Dpo4氨基酸2-349。在此实施例中描述的其他截短型式在N末端具有相同序列，但在C末端具有较少氨基酸。例如，克隆9.C3(变体Δ6)具有6个氨基酸从C末端缺失并且克隆2.F12(变体Δ9)具有9个氨基酸从C末端缺失。使用市售QuikChange试剂盒(StratageneGmbH，Waldbronn，Germany)，根据制造商的方案制备Dpo4的其他截短形式的表达构建体。克隆2.F12(在pASK-IBA5plus中具有9个氨基酸从C末端缺失的dpo4)充当模板以制备pCK58和pCK59。QuikChange所需的寡核苷酸在NOXXON上。制备以下表达构建体且用于在大肠杆菌中表达聚合酶Dpo4的截短形式9.2大肠杆菌中的蛋白质表达使用基于pASK-IB5plus的表达构建体在大肠杆菌中表达Dpo4的截短形式Δ3、Δ6、Δ9、Δ12或Δ15。对于表达来说，使用‘转化和储存溶液’(Epicentre/Biozym，HessischOldendorf，Germany)在大肠杆菌菌株‘NEBexpress’(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)中转化适当的表达构建体且用抗生素氨苄青霉素来维持。在30℃下，使用200ng/ml无水四环素(IBAGmbH，Germany)作为诱导剂在培养基‘EnBaseFlo’或‘EnPresso’(BioSilta，Oulu，Finland)中表达48小时。通过离心收集细胞且储存在-80℃下或立即处理。9.3蛋白质纯化将新鲜的或冷冻的大肠杆菌细胞再悬浮在冰上的‘缓冲液W’(100mMTris-HCl(pH8.0)、150mMNaCl、1mMEDTA)中且使用‘FrenchPress’(G.Heinemann，Gmünd，Germany)细胞破坏剂溶解。在4℃下，在装备有5mlStrepTrapHP柱的‘Express’系统(GEhealthcare，Freiburg，Germany)上进行纯化。利用包括2.5mM脱硫生物素(IBAGmbH，Germany)的缓冲液W进行洗脱步骤。合并级分并且使用HiPrep_26/10柱(GEhealthcare，Freiburg，Germany)在50mM磷酸钠(pH7.2)中进行缓冲液交换。然后将蛋白质样品施加至5ml阳离子交换柱HiTrap_SP_HP(GEhealthcare，Freiburg，Germany)并且在50mM磷酸钠(pH7.2)中用达1MNaCl的梯度洗脱。将洗脱的峰值级分收集、合并且在20mMTris-HCl(pH7.4)、200mMKCl、0.2mMEDTA中进行缓冲液交换。使用SDS-PAGE(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)分析所有重要级分。通过LC-MS质谱法证实蛋白质同一性。将最终样品使用VivaSpin15R浓缩装置以10,000分子量截断值(MWCO)(VivaSciences/SartoriusStedimBiotech，Germany)浓缩且补充一体积甘油和DTT，以使得储存缓冲液由10mMTris-HCl(pH7.4)、100mMKCl、0.1mMEDTA、1mMDTT、50％甘油组成。将纯化的蛋白质储存在-20℃下。通过凝胶密度测量术，在SDS-PAGE上使用牛血清白蛋白(缩写BSA)标准物且用SYPRORed(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)染色来估计蛋白质浓度。实施例10-由L-氨基酸组成的聚合酶Dpo4和聚合酶Dpo4的变体的活性证实本实施例描述了根据实施例7的全L聚合酶Dpo4和全L聚合酶Dpo4的变体和根据实施例8的合成全L聚合酶Dpo4以及根据实施例9的Dpo4的截短形式的PCR活性测试。10.1用于PCR活性测定的模板用于PCR反应的模板是83聚体单链D-DNA寡核苷酸(MJ_1_1_DD)，在第一个热循环中，由此制备相对链。此后，两条链都充当指数扩增的模板。在NOXXON上合成呈D-构型的模板DNA寡核苷酸和DNA引物。用于PCR活性测定的寡核苷酸列表：10.2PCR反应15μlPCR反应含有0.2mM四种D-dNTP中的每一种、10nM83聚体ssDNA(MJ_1_1_DD)模板、1μM正向引物和反向引物、1×ThermoPol缓冲液(Invitrogen，20mMTris-HCl、10mMKCl、10mM(NH4)2SO4、2mMMgSO4、0.1％TritonX-100(pH8.8)在25℃下)和至少0.67ng/μl全L聚合酶Dpo4或全L聚合酶Dpo4变体或合成的全L聚合酶Dpo4。正向引物是DE4.40T7，反向引物是DE4.40R，产生长度为102个碱基对的PCR产物。D-dNTP是购自Rovalab(Teltow，Germany)。通过省略全L聚合酶Dpo4或全L聚合酶Dpo4变体或合成的全L聚合酶Dpo4来进行阴性对照。使用市售的全L-dpo4(NewEnglandBiolabs，FrankfurtamMain，Germany)进行阳性对照。热循环程序由1个循环(85℃，3分钟)，然后至少7个循环(85℃、30秒/56℃、1分钟/60℃、4分钟)，然后保持在4℃组成。将PCR反应的4μl等分试样与样品上样缓冲液混合且在TBE-PAGE上或琼脂糖凝胶(LONZA，Cologne，Germany)上进行分析。除了别的以外，将含有100bp条带的DNA标准梯应用于凝胶。10.3活性证实对全L聚合酶Dpo4，全L聚合酶Dpo4的变体A155C、V203C、C31S、A155C/V203C、S85C、S86C、S96C、A71C/A155C/V203C、S86C/A155C/V203C、C31S/S86C/A155C/V203C、M76G/A155C/V203C、M76A/A155C/V203C、I67C/A155C/V203C、S86G/A155C/V203C和S96C/A155C/V203C，和Dpo4的C末端截短形式Δ3、Δ6、Δ9、Δ12和Δ15以及合成全L聚合酶Dpo4进行了测试。所有测试的聚合酶都能够在PCR反应中扩增模板链。图12A示出了对利用全L聚合酶Dpo4变体A155C、V203C、C31S、A155C/V203C进行的PCR反应的分析，所述变体示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。所述条带未在省略了聚合酶的阴性对照中出现。此外，所述102bp条带的迁移程度高于83聚体模板。图12B示出了对利用重组全L聚合酶dpo4和利用由片段连接制备的合成的全L聚合酶dpo4进行的PCR反应的分析。凝胶示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。所述条带在省略了聚合酶的阴性对照中极弱。重组全L聚合酶dpo4和合成全L聚合酶dpo4显示可比较的活性。图12C示出了用重组全L-聚合酶dpo4和用变体A71C/A155C/V203C、S86C/A155C/V203C以及C31S/S86C/A155C/V203C进行的PCR反应的分析。凝胶示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。图12D示出了用重组全L-聚合酶dpo4和用变体M76G/A155C/V203C和M76A/A155C/V203C进行的PCR反应的分析。凝胶示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。图12E示出了用变体167C/A155C/V203C、S86G/A155C/V203C和S96C/A155C/V203C进行的PCR反应的分析。凝胶示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。图12F示出了用Dpo4的C末端截短形式Δ3、Δ6、Δ9、Δ12和Δ15进行的PCR反应的分析。凝胶示出与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。预期的PCR产物大小是102个碱基对。实施例11-由D-氨基酸组成的聚合酶Dpo4变体的合成在本实施例内，描述了全D聚合酶Dpo变体A155C/V203C的合成。全D聚合酶Dpo变体A155C/V203C的氨基酸序列是Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIACDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-OH。所使用的所有氨基酸都根据固相肽合成Fmoc/tBu策略要求(EricAtherton等，1981)加以保护。所使用的所有氨基酸都是D-氨基酸(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。11.1H-D-Met-OGp(Boc)2的合成将1mmolZ-D-Met-OH、0.9当量的TBTU和0.9mmolHO-Gp(Boc)2溶解于10mlDMF中。在加入2当量的DIPEA之后，将溶液搅拌2小时。在蒸发溶剂之后，利用快速色谱法使用DCM纯化粗产物。合并Z-D-Met-OGp(Boc)2的纯级分且蒸发溶剂。将Z-D-Met-OGp(Boc)2溶解于10mlMeOH中且用氩气冲洗。通过在2小时内加入Pd/C催化剂和H2来实现N末端Z-基团的水解裂解。过滤出H-D-Met-OGp(Boc)2之后，在减压下蒸发MeOH。使用反相HPLC和质谱法进行分析。计算质量482Da与测定质量483Da一致。11.2经完全保护的全D肽H-RTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的合成在Fmoc脱保护之后，使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA在6mlNMP中保持45分钟使0.1mmolFmoc-SieberrinkamideNovaSynTG树脂装载有Fmoc-D-Thr(tBu)-OH。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合42个氨基酸之后进行双偶合。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图13)。产物的计算质量(6244Da)与测量质量(6249Da)相对应。11.3经完全保护的全D肽Boc-VDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRG-OH(2)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Tritvl树脂装载有Fmoc-D-Gly-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在将树脂与6mlDCM中的0.6mmolFmoc-Gly-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。.使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合39个氨基酸之后进行双偶合。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图14)。实验测定的产物质量(11289Da)与理论值(11286Da)一致。11.4通过肽1与肽2的片段缩合合成全D肽H-VDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDIDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(3)。将5μmol(2)和1当量的(1)溶解于含25％(v/v)TFE的DCM中。在加入5当量的PyBOP和10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌过夜。在蒸发溶剂之后，使用冰冷的乙醚使肽沉淀并且过滤出来。利用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA来裂解肽的侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行N末端经Fmoc保护的肽的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图15)。实验测定质量(17531Da)与理论分子质量(17512Da)相对应。11.5全D肽Z-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-苄基-硫酯(4)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Leu-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Leu-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。.使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将N末端Z-和完全经侧链保护的肽4以1mM溶解于DMF中。在加入5当量的PyBOP、10当量的DIPEA和30当量的苄基硫醇之后，将混合物搅拌4小时。然后蒸发DMF，使肽沉淀并且用冰冷的乙醚洗涤。通过用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA处理2小时来去除侧链保护基。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。然后通过反相HPLC纯化肽-苄基-硫酯，且利用反相HPLC(图16A)和ESI-MS(图16B)进行分析。如ESI-MS所示，理论分子量(M理论＝5527Da)与实测分子量(M实测＝5533Da)相对应。11.6全D肽H-RKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SMe(7)的合成在6mlNMP中使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA历经45分钟使0.10mmolTentaGel-R-NH2树脂装载有Fmoc-D-Ala-OH。随后用THF洗涤树脂。随后用THF洗涤树脂。通过与4当量的劳森试剂一起在THF中在80℃下孵育2小时来实现转化成Fmoc-D-Ala-Ψ[CS-NH]-R-TentaGel。此后用NMP洗涤树脂。随后如先前所描述将如此制备的树脂用于自动化肽合成(ABI433，FASTmoc方案，使用9当量的HATU和20当量的DIPEA在NMP中使10当量的氨基酸活化；偶合时间是45分钟，且用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟)。在44个偶合氨基酸之后进行双偶合步骤。此后，根据Sharma等(Sharma等，2011)，通过与甲基碘一起在DMF中孵育过夜来产生相应的硫酯。在过滤树脂之后，蒸发含有肽硫酯的溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。利用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA来裂解侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽硫酯的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过HPLC(图17A)和质谱法(图17B)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(9155Da)与计算质量(9150Da)一致。11.7Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPM-OGp(6)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Pro-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Pro-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。.使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合46个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％(v/v)乙酸酐和10％(v/v)DIPEA的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.01mmol经完全保护的肽、4当量的PyBOP和5当量的H-D-Met-OGp(Boc)2溶解于6mlNMP中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过HPLC(图18A)和质谱法(图18B)表征最终产物。实验测定质量(8547Da)与理论分子质量(8541Da)相对应。11.8通过肽4与肽3的天然化学连接合成全D肽H-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-OH(5)将肽3和4两者以0.2M溶解于含有2％SDS、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的TRIS-缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。然后，利用反相HPLC纯化混合物。为了去除N末端Z-保护基，将肽溶解于270当量的TFA和50当量的大茴香硫醚(thioanisol)中，且在室温下振荡6小时(YoshiakiKiso等，1980)。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且利用冰冷的乙醚进行洗涤，并且利用反相HPLC(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)再次纯化。利用SDS-PAGE、反相UPLC和ESI-质谱法分析游离的肽5。发现了产物的准确质量。11.9通过肽6与肽7的蛋白酶催化连接合成全D肽Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SMe(8)将肽6以0.2mM且将肽7以0.6mM溶解于含有4M尿素的磷酸钠缓冲液(100mM(pH8.5)，含100mMNaCl)中。在加入20μM梭菌蛋白酶(内切蛋白酶Arg-C，WorthingtonBiochemicalCorporation，Lakewood，N.J.，USA)之后，在37℃下将反应混合物振荡过夜。对沉淀的肽进行离心，溶解于H2O/甲酸80/20中且将利用反相HPLC，使用RP-18柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)以在30分钟内从5％至95％的ACN水梯度进行纯化。利用SDS-PAGE(图19A)和ESI-质谱法(图19B)分析最终肽。在介于14,4kDa与21.5kDa之间的泳道1中发现了表明连接产物的条带。如ESI-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝17476Da)与实测分子量(M实测＝17486Da)相对应。11.10通过肽8与肽5的天然化学连接合成全D聚合酶Dpo变体A115C/V203C将肽5和8两者以0.2M溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的TRIS-缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。然后，利用反相HPLC纯化混合物，且利用SDS-PAGE、反相UPLC和ESI-质谱法加以分析。发现了连接产物的准确质量。实施例12-由D-氨基酸组成的聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C的合成在本实施例内，描述了全D聚合酶Dpo变体A71C/A155C/V203C的合成。全D聚合酶Dpo变体A71C/A155C/V203C的氨基酸序列是Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNCVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIACDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2。所使用的所有氨基酸都根据固相肽合成Fmoc/tBu策略要求(EricAtherton等，1981)加以保护。所使用的所有氨基酸都是D-氨基酸(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。12.1经完全保护的全D肽H-RTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的合成在Fmoc脱保护之后，使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA在6mlNMP中保持45分钟使0.1mmolFmoc-SieberrinkamideNovaSynTG树脂装载有Fmoc-D-Thr(tBu)-OH。使用ABI433合成仪，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合42个氨基酸之后进行双偶合。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图13)。产物的计算质量(6244Da)与测量质量(6249Da)相对应。12.2经完全保护的全D肽Boc-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRG-OH(3)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Gly-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在将树脂与6mlDCM中的0.6mmolFmoc-Gly-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合39个氨基酸之后进行双偶合步骤。在TFA裂解少量肽基树脂之后通过HPLC和质谱法表征合成的肽的身份(图14)。实验测定的产物质量(11289Da)与理论值(11286Da)一致。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。12.3通过肽1与肽3的片段缩合合成全D肽H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(5)。将5μmol(3)和1当量的(1)溶解于含25％(v/v)TFE的DCM中。在加入5当量的PyBOP和10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌过夜。在蒸发溶剂之后，使用冰冷的乙醚使肽沉淀并且过滤出来。利用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA来裂解肽的侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行N末端经Fmoc保护的肽的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图15)。实验测定质量(17531Da)与理论分子质量(17512Da)相对应。12.4全D肽H-CVYIPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKIIEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Ala-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Ala-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合44个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％(v/v)乙酸酐和10％(v/v)DIPEA的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.005mmol经完全保护的肽、5当量的PyBOP以及100当量的苄基硫醇溶解于6mlDCM中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并仅含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图21)和质谱法(图22)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(9926Da)与计算质量(9923Da)一致。12.5Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPN-SBzl(11)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Asn(Trt)-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Asn(Trt)-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合40个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％(v/v)乙酸酐和10％(v/v)DIPEA的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.005mmol经完全保护的肽、5当量的PyBOP以及100当量的苄基硫醇溶解于6mlDCM中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并仅含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图23)和质谱法(图24)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(7848Da)与计算质量(7845Da)一致。12.6全D肽Z-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-苄基-硫酯（7）的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Leu-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Leu-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将N末端Z-和完全经侧链保护的肽4以1mM溶解于DMF中。在加入5当量的PyBOP、10当量的DIPEA和30当量的苄基硫醇之后，将混合物搅拌4小时。然后蒸发DMF，使肽沉淀并且用冰冷的乙醚洗涤。通过用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA处理2小时来去除侧链保护基。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。然后通过反相HPLC纯化肽-苄基-硫酯，且利用反相UPLC(图25A)和ESI-MS(图25B)进行分析。如ESI-LC-MS所示，理论分子量(M理论＝5527Da)与实测分子量(M实测＝5534Da)相对应。12.7通过肽7与肽5的天然化学连接合成全D肽H-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(8)。将肽5和7两者以0.2M溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的磷酸钠缓冲液(100mM，具有100mMNaCl，pH8)中。在室温下将反应混合物振荡48小时。然后，通过反相HPLC，在RP-8柱(Vydac208TP，GraceGmbH&CoKG，Worms，Germany)上通过使用于水/1％TFA中30％至80％ACN/甲醇1∶1的梯度在30分钟内纯化混合物。将含有产物的级分合并且在第二步骤中通过尺寸排阻色谱法在Yarra3uSEC-2000-柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)上使用50mM磷酸钠缓冲液(pH6)作为流动相进行纯化。在使用HiTrap脱盐柱5ml(GEHealthcareGmbH，München，Germany)在水/1％甲酸中除去盐之后，将肽产物级分冷冻干燥。为了去除N末端Z-保护基，将肽溶解于270当量的TFA和50当量的大茴香硫醚(thioanisol)中，且在室温下振荡6小时(YoshiakiKiso等，1980)。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。利用SDS-PAGE(图26A)和ESI-LC-质谱法(图26B)进行游离肽8的分析。在分子量标准的介于20kDa条带与25kDa条带之间发现了指示连接产物的条带。如ESI-LC-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝22781Da)与实测分子量(M实测＝22796Da)相对应。12.8通过肽10与肽9的天然化学连接合成全D肽Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNCVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(11)将肽10和肽9以0.5mM溶解于含有6M胍-HCl、5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐以及2％苯硫酚的磷酸钠缓冲液(100mM，pH8，具有100mMNaCl)中。将反应混合物在室温下振荡72小时。随即，将苯硫酚沉淀离心，且将上清液通过尺寸排阻色谱法使用AgilentSEC-3-柱(AgilentTechnologiesDeutschlandGmbH，Germany)和于50mM磷酸钠缓冲液(pH6)中的6M胍-HCl作为流动相进行纯化。之后将含有肽的级分在HiTrap脱盐柱5ml(GEHealthcareGmbH，München，Germany)上在水/1％甲酸中脱盐。在冷冻干燥之后，利用SDS-PAGE(图27A)和ESI-LC-质谱法(图27B)分析级分。在分子量标准的介于15kDa条带与20kDa条带之间的泳道3至6中发现了指示连接产物的条带。如ESI-LC-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝17641Da)与实测分子量(M实测＝17641Da)相对应。12.9通过肽11与肽8的天然化学连接合成全D聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C将肽11和8两者以50μM溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的磷酸钠缓冲液(pH8，100mM具有100mMNaCl)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。之后，利用SDS-PAGE(图28A+B)和ESI-LC-质谱法(图28C)分析反应混合物。在考马斯染色的凝胶(A)的泳道3中和在银染色的凝胶(B)的对应泳道中发现了在分子量标准的介于37kDa-条带与50kDa-条带之间以及在天然L-Dpo4的精确高中指示连接产物的条带。如ESI-MS(C)所示，连接产物的理论分子量(M理论＝40298Da)与实测分子量(M实测＝40945Da)相对应。647Da更高测量的质量可能由TritonX-100加合物引起。实施例13-由D-氨基酸组成的聚合酶Dpo4变体M76G/A155C/V203C的合成在本实施例内，描述了全D聚合酶Dpo变体M76G/A155C/V203C的合成。全D聚合酶Dpo变体M76G/A155C/V203C的氨基酸序列是Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPGRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIACDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2。所使用的所有氨基酸都根据固相肽合成Fmoc/tBu策略要求(EricAtherton等，1981)加以保护。所使用的所有氨基酸都是D-氨基酸(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。13.1H-Gly-OGp(Boc)2的合成将1mmolZ-Gly-OH、0.9当量的TBTU和0.9mmolHO-Gp(Boc)2溶解于10mlDMF中。在加入2当量的DIPEA之后，将溶液搅拌2小时。在蒸发溶剂之后，利用快速色谱法使用DCM∶EE9∶1纯化粗产物。合并Z-Gly-OGp(Boc)2的纯级分且蒸发溶剂。将Z-Gly-OGp(Boc)2溶解于10mlMeOH中且用氩气冲洗。通过在2小时内加入Pd/C催化剂和H2来实现N末端Z-基团的水解裂解。在过滤出催化剂之后，将溶剂在减压下蒸发。使用反相HPLC和质谱法进行分析。计算质量408Da与实验测定质量409Da一致。13.2经完全保护的全D肽H-RTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的合成在Fmoc脱保护之后，使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA在6mlNMP中保持45分钟使0.1mmolFmoc-SieberrinkamideNovaSynTG树脂装载有Fmoc-D-Thr(tBu)-OH。使用ABI433合成仪，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合42个氨基酸之后进行双偶合。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图13)。产物的计算质量(6244Da)与测量质量(6249Da)相对应。13.3经完全保护的全D肽Boc-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRG-OH(3)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-Gly-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与6mlDCM中的0.6mmolFmoc-Gly-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合39个氨基酸之后进行双偶合步骤。在TFA裂解少量肽基树脂之后通过HPLC和质谱法表征合成的肽的身份(图14)。实验测定的产物质量(11289Da)与理论值(11286Da)一致。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。13.4通过肽1与肽3的片段缩合合成全D肽H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(5)。将5μmol(3)和1当量的(1)溶解于含25％(v/v)TFE的DCM中。在加入5当量的PyBOP和10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌过夜。在蒸发溶剂之后，使用冰冷的乙醚使肽沉淀并且过滤出来。利用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA来裂解肽的侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行N末端经Fmoc保护的肽的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图15)。实验测定质量(17531Da)与理论分子质量(17512Da)相对应。13.5全D肽H-RKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(9)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Ala-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，在6mlDCM中将树脂与0.6mmolFmoc-D-Ala-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合44个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％(v/v)乙酸酐和10％(v/v)DIPEA的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.005mmol经完全保护的肽、5当量的PyBOP以及100当量的苄基硫醇溶解于6mlDCM中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并仅含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图29)和质谱法(图30)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(9217Da)与计算质量(9217Da)一致。13.6Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPG-OGp(10)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Pro-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与在6mlDCM中的0.6mmolFmoc-D-Pro-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合45个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％(v/v)乙酸酐和10％(v/v)DIPEA的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.005mmol经完全保护的肽、5当量的PyBOP和10当量的H-Gly-OGp(Boc)2溶解于6mlDCM中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图31)和质谱法(图32)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(8481Da)与计算质量(8473Da)一致。13.7全D肽Z-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-苄基-硫酯(7)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Leu-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与在6mlDCM中的0.6mmolFmoC-D-Leu-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将N末端Z-和完全经侧链保护的肽4以1mM溶解于DMF中。在加入5当量的PyBOP、10当量的DIPEA和30当量的苄基硫醇之后，将混合物搅拌4小时。然后蒸发DMF，使肽沉淀并且用冰冷的乙醚洗涤。通过用含2.5％EDT、2.5％水、2.5％TIS的TFA处理2小时来去除侧链保护基。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。然后通过反相HPLC纯化肽-苄基-硫酯，且利用反相UPLC(图25A)和ESI-MS(图25B)进行分析。如ESI-LC-MS所示，理论分子量(M理论＝5527Da)与实测分子量(M实测＝5534Da)相对应。13.8通过肽7与肽5的天然化学连接合成全D肽H-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(8)将肽5和7两者以0.2M溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的磷酸钠缓冲液(100mM，具有100mMNaCl，pH8)中。在室温下将反应混合物振荡48小时。然后，通过反相HPLC，在RP-8柱(Vydac208TP，GraceGmbH&CoKG，Worms，Germany)上通过使用于水/1％TFA中30％至80％ACN/甲醇1∶1的梯度在30分钟内纯化混合物。将含有产物的级分合并且在第二步骤中通过尺寸排阻色谱法在Yarra3uSEC-2000-柱(Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)上进行纯化。将肽产物级分冷冻干燥。为了去除N末端Z-保护基，将肽溶解于270当量的TFA和50当量的大茴香硫醚(thioanisol)中，且在室温下振荡6小时(YoshiakiKiso等，1980)。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。利用SDS-PAGE(图26A)和ESI-LC-质谱法(图26B)进行游离肽8的分析。在分子量标准的介于20kDa条带与25kDa条带之间发现了指示连接产物的条带。如ESI-LC-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝22781Da)与实测分子量(M实测＝22796Da)相对应。13.9通过肽10与肽9的蛋白酶催化连接合成全D肽Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNAVYLPGRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-SBzl(11)。将肽10以0.2mM且将肽9以0.6mM溶解于含有4M尿素的磷酸钠缓冲液(100mM(pH8)，含100mMNaCl)中。在加入20μM梭菌蛋白酶(内切蛋白酶Arg-C，WorthingtonBiochemicalCorporation，Lakewood，N.J.，USA)之后，在37℃下将反应混合物振荡过夜。随即，添加6M胍-HCl，并且将混合物使用用于50mM磷酸钠缓冲液(pH6)中的6M胍-HCl作为流动相的AgilentSEC-3-柱(AgilentTechnologiesDeutschlandGmbH，Germany)通过尺寸排阻色谱法进行纯化。之后将含有肽的级分在HiTrap脱盐柱5ml(GEHealthcareGmbH，München，Germany)上在水/1％甲酸中脱盐。在冷冻干燥之后，利用SDS-PAGE(图33A)和ESI-LC-质谱法(图33B)分析级分。在介于15kDa与20kDa之间的泳道3和4中发现了指示连接产物的条带。如ESI-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝17612Da)与实测分子量(M实测＝17641Da)相对应。13.10通过肽11与肽8的天然化学连接合成全D聚合酶Dpo4变体M76G/A155C/V203C将肽11和8两者以0.2M溶解于含有2％TritonX100、1％苯硫酚和5mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的TRIS-缓冲液(pH8.6)中。在室温下将反应混合物振荡72小时。然后，利用反相HPLC纯化混合物，且利用SDS-PAGE、反相UPLC和ESI-质谱法加以分析。发现了连接产物的准确质量。实施例14-通过替代合成策略合成由D-氨基酸组成的聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C在本实施例内，描述了全D聚合酶Dpo变体A71C/A155C/V203C的合成。全D聚合酶Dpo变体A71C/A155C/V203C的氨基酸序列是Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNCVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIACDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2。所使用的所有氨基酸都根据固相肽合成Fmoc/tBu策略要求(EricAtherton等，1981)加以保护。所使用的所有氨基酸都是D-氨基酸(Bachem，Bubendorf，Switzerland)。14.1经完全保护的全D肽H-KAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(1)的合成在Fmoc脱保护之后，使用5当量的氨基酸、4.9当量的HATU和10当量的DIPEA在6mlNMP中保持45分钟使0.1mmolFmoc-SieberrinkamideNovaSynTG树脂装载有Fmoc-D-Thr(tBu)-OH。使用ABI433合成仪，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％哌啶(v/v)的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合42个氨基酸之后进行双偶合。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图34)。产物的计算质量(8148Da)与测量质量(8156Da)相对应。14.2经完全保护的全D肽H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIP-OH(3)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Pro-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与在6mlDCM中的0.6mmolFmoc-D-Pro-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％哌啶(v/v)的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合40个氨基酸之后进行双偶合步骤。N末端半胱氨酸衍生物是Boc-D-Cys(Trt)-OH。在TFA裂解少量肽基树脂之后通过HPLC和质谱法表征合成的肽的身份(图35)。实验测定的产物质量(9393Da)与理论值(9382Da)一致。通过在10ml含1％(v/v)TFA的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出树脂之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使肽沉淀。最后分离并干燥肽。14.3通过肽1与肽3的片段缩合合成全D肽H-CDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(5)。将5μmol(3)和1当量的(1)溶解于含25％(v/v)TFE的DCM中。在加入5当量的PyBOP和10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌过夜。在蒸发溶剂之后，使用冰冷的乙醚使肽沉淀并且过滤出来。利用含2.5％EDT(v/v)、2.5％水(v/v)、2.5％TIS(v/v)的TFA来裂解肽的侧链保护基，历经2小时。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行N末端经Fmoc保护的肽的反相HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。利用HPLC和质谱法表征最终产物(图36)。实验测定质量(17529Da)与理论分子质量(17512Da)相对应。14.4全D肽H-CVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-NHNH2(9)的合成如Zheng等(Zheng等，2013)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有酰肼。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM和含50％DMF(v/v)的DCM洗涤。在此之后，将树脂与DMF中的5％NH2NH2(v/v)一起孵育两次，历经30分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。第一氨基酸的偶合通过将树脂与溶解于NMP中的1mmolFmoc-D-Ala-OH、0,9mmolHATU、2mmolDIPEA孵育一小时来实现。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％哌啶(v/v)的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合43个氨基酸之后进行双偶合。通过将肽基树脂在TFA中的2.5％EDT(v/v)、2.5％水(v/v)、2.5％TIS(v/v)中孵育2小时来实现肽酰肼从树脂的裂解。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并仅含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图37A)和质谱法(图37B)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(9843Da)与计算质量(9830Da)一致。14.5Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPN-SBzl(11)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Asn(Trt)-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与在6mlDCM中的0.6mmolFmoc-D-Asn(Trt)-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％哌啶(v/v)的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在偶合40个氨基酸之后进行双偶合。利用含10％乙酸酐(v/v)和10％DIPEA(v/v)的DMF将N末端乙酰化三次，历经10分钟。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.005mmol经完全保护的肽、5当量的PyBOP以及100当量的苄基硫醇溶解于6mlDCM中。在加入10当量的DIPEA之后，将混合物搅拌4小时。此后，蒸发减少溶剂且利用冰冷的乙醚使残余物沉淀。干燥沉淀的肽酯，且随后使用含2.5％EDT(v/v)、2.5％水(v/v)、2.5％TIS(v/v)的TFA经2小时裂解掉保护基。蒸发TFA之后，用冰冷的乙醚使肽沉淀。在C18柱上使用ACN/水梯度进行肽酯的反相HPLC纯化。合并仅含有产物的级分并且冷冻干燥。通过UPLC(图23)和质谱法(图24)表征最终产物。通过质谱法测定的产物分子质量(7848Da)与计算质量(7845Da)一致。14.6全D肽lipo-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKL-4-乙酰胺基苯硫基酯(7)的合成如Barlos等(Barlos等，1989)所描述使0.10mmolTentaGel-R-Trityl树脂装载有Fmoc-D-Leu-OH。因此，将0.10mmol树脂与0.6mmol亚硫酰氯一起孵育两次，历经30分钟，且随后用DCM洗涤。此后，将树脂与在6mlDCM中的0.6mmolFmoc-D-Leu-OH、2.4mmolDIPEA一起孵育90分钟。然后，使用含10％MeOH(v/v)、10％DIPEA(v/v)的DCM溶液将树脂阻断三次，历经10分钟，且用DCM洗涤。使用ABI433，利用FASTmoc方案进行自动化合成。使用含9当量的HATU和20当量的DIPEA的NMP使10当量的氨基酸活化。偶合时间是45分钟，且利用含20％(v/v)哌啶的NMP进行三次Fmoc脱保护，历经7分钟。在最终偶合步骤之后，进行Fmoc-脱保护。根据Garcia-Echeverria(Garcia-Echeverria，C.1995)通过将树脂与10当量的4-硝基苯基-2-(十八烷基磺酰基)碳酸乙酯、10当量的HOBt和10当量的DIPEA在NMP中孵育过夜来引入lipo标签。此后用NMP和DCM洗涤树脂。通过在10ml含30％(v/v)HFIP的DCM中将肽基树脂孵育两次，历经2小时来实现经完全保护的肽酸的裂解。在过滤出肽之后，蒸发溶剂且使用冰冷的乙醚使残余物沉淀。分离并干燥沉淀的肽。将0.05mmolN末端lipo-和完全经侧链保护的肽4溶解于DCM中。在加入5当量的PyBOP、10当量的DIPEA和30当量的4-乙酰胺基苯硫酚之后，将混合物搅拌4小时。然后蒸发DCM，使肽沉淀并且用冰冷的乙醚洗涤。通过用含2.5％EDT(v/v)、2.5％水(v/v)、2.5％TIS(v/v)的TFA处理2小时来去除侧链保护基。在蒸发TFA之后，使肽沉淀且用冰冷的乙醚洗涤。然后通过反相HPLC纯化肽-4-乙酰胺基苯硫基酯，且利用反相UPLC和质谱法进行分析。如ESI-LC-MS所示，理论分子量(M理论＝5844)与实测分子量(M实测＝5847)相对应。14.7通过肽7与肽5的天然化学连接合成全D肽H-CDMAKPNGIKVIDDEEVKRLIRELDIADVPGIGNITAEKLKKLGINKLCDTLSIEFDKLKGMIGEAKAKYLISLARDEYNEPIRTRVRKSIGRIVTMKRNSRNLEEIKPYLFRAIEESYYKLDKRIPKAIHVVAVTEDLDIVSRGRTFPHGISKETAYSESVKLLQKILEEDERKIRRIGVRFSKFIEAIGLDKFFDT-NH2(8)。将肽5和7两者以2mM溶解于含有200mM巯基苯基乙酸和50mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的磷酸钠缓冲液(200mM，6M胍HCl，pH8)中。在室温下将反应混合物振荡24小时。然后，通过反相HPLC，在RP-4柱(Jupiter5μm，Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)上通过使用30％至95％ACN(0.1％TFA)的梯度在30分钟内纯化混合物。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。根据Garcia-Echeverria(Garcia-Echeverria，C.1995)通过将干燥的产物与TFE中的10％NH4OH孵育过夜来实现lipo标签的裂解。使用如上所述的相同HPLC条件来进行最终产物的纯化。如ESI-LC-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝22781Da)与实测分子量(M实测＝22796Da)相对应。14.8通过肽10与肽9的天然化学连接合成全D肽Ac-MIVLFVDFDYFYAQVEEVLNPSLKGKPVVVCVFSGRFEDSGAVATANYEARKFGVKAGIPIVEAKKILPNCVYLPMRKEVYQQVSSRIMNLLREYSEKIEIASIDEAYLDISDKVRDYREAYNLGLEIKNKILEKEKITVTVGISKNKVFAKIA-NHNH2(11)将肽10和肽9以2mM溶解于含有200mM巯基苯基乙酸和50mM三(2-羧乙基)膦盐酸盐的磷酸钠缓冲液(200mM，6M胍HCl，pH8)中。在室温下将反应混合物振荡24小时。使用C4柱(Jupiter5μm，Phenomenex，Aschaffenburg，Germany)和30％-95％ACN(0.1％TFA)的梯度在30分钟中进行HPLC纯化。合并含有产物的级分并且冷冻干燥。如ESI-LC-MS所示，连接产物的理论分子量(M理论＝17641Da)与实测分子量(M实测＝17641Da)相对应。14.9通过肽11与肽8的天然化学连接合成全D聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C根据Zheng等(Zheng等，2013)进行肽11的酰肼官能团的氧化，转化成硫酯和天然化学连接。将肽11以2mM溶解于磷酸钠缓冲液(200mM，6M胍-HCl，pH3)中并且置于-15℃冰浴中。通过添加NaNO2以得到50mM的最终浓度来实现氧化。在15分钟之后，将溶液与肽8于含有200mM巯基苯基乙酸和50mMTCEP的磷酸钠缓冲液(200mM，6M胍-HCl，pH8)中的2mM溶液混合。在室温下将反应混合物振荡24小时。之后，利用SDS-PAGE和ESI-LC-质谱法分析反应混合物。实施例15-由D-氨基酸组成的合成聚合酶dpo4的活性证实本实施例描述了根据实施例11、12、13和14的全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C、A71C/A155C/V203C和M76G/A155C/V203C的PCR活性测试，其中全D聚合酶Dpo4变体A71C/A155C/V203C可根据实施例13或14的合成和连接产生。出人意料地，合成的全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C、A71C/A155C/V203C和M76G/A155C/V203C在不试图额外再折叠的情况下具有活性，且因而不进行进一步再折叠程序即使用。通过在预制的凝胶(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)上使用标准系列的已知蛋白质浓度进行十二烷基硫酸钠(缩写SDS)聚丙烯酰胺凝胶电泳(缩写PAGE)，随后进行SYPRO-RED染色(Invitrogen，Karlsruhe，Germany)和在BioRadFx扫描仪上进行密度条带分析来估计蛋白质浓度。14.1用于PCR活性测定的模板用于PCR反应的模板是83聚体单链L-DNA寡核苷酸(MJ_1_105_LD)，在第一个热循环中，由此制备相对的链。此后，两条链都充当指数扩增的模板。在NOXXON上合成呈L-构型的模板DNA寡核苷酸和DNA引物。用于PCR活性测定的寡核苷酸列表：14.2PCR反应15μlPCR反应含有0.2mM四种L-dNTP中的每一种、10nM83-聚体ssDNA(MJ_1_105_LD)模板、1μM正向引物和反向引物、1×ThermoPol缓冲液(Invitrogen，20mMTris-HCl、10mMKCl、10mM(NH4)2SO4、2mMMgSO4、0.1％TritonX-100(pH8.8)在25℃下)和至少0.67ng/μl全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C。正向引物是MJ_oligo_187_LD，产生了102bp的PCR产物，这与83-聚体模板不同。反向引物是MJ_oligo_189_LD。L-dNTP是以委托合成的方式购自Rasayan，Inc.(Encinitas，CA，USA)。通过省略全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C来进行阴性对照。热循环程序由1个循环(85℃、3分钟)，然后至少7个循环(85℃、30秒/56℃、1分钟/60℃、4分钟)，然后保持在4℃组成。将PCR反应的4μl等分试样与样品上样缓冲液混合且在TBE凝胶上进行分析。除了别的以外，将含有100bp条带的DNA标准梯应用于凝胶。14.3活性证实具有全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C和L-DNA底物和L-核苷酸的PCR反应产生了与DNA标准梯相比在约100bp范围内的条带。所述条带未在省略了聚合酶的阴性对照中出现。此外，所述102bp条带的迁移程度高于83-聚体模板。L-DNA扩增产物的全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C依赖性出现因而证实了合成全D聚合酶Dpo4变体A155C/V203C在热扩增过程中的活性。实施例15-D-或L-核酸的合成通过固相合成，利用ABI394合成器(AppliedBiosystems，FosterCity，CA，USA)，使用具有标准环外胺保护基的2′TBDMSDNA亚磷酰胺化学产生L-DNA核酸或D-DNA核酸(Damha和Ogilvie，1993)。对于DNA合成，应用呈D-构型和L-构型的dA(N-Bz)-、dC(N-Ac)-、dG(N-ibu)-和dT。所有亚磷酰胺都是购自ChemGenes，Wilmington，MA。在合成和脱保护之后，通过凝胶电泳纯化L-DNA核酸或D-DNA核酸。参考文献如果不存在相反指示，则本文中所述的文献的完整书目数据如下，由此所述参考文献的公开内容以引用的方式并入本文中。AltschulS.F.，GishW.，etal.(1990)Basiclocalalignmentsearchtool.JMolBiol.215(3)：403-10.AltschulS.F.，MaddenT.L.，etal.(1997)GappedBLASTandPSI-BLAST：anewgenerationofproteindatabasesearchprograms.NucleicAcidsRes.25(17)：3389-402.AthertonE.，LoganC.J.andSheppardR.C.(1981)Peptidesynthesis.Part2.Proceduresforsolid-phasesynthesisusingNα-fluorenylmethoxycarbonylamino-acidsonpolyamidesupports.SynthesisofsubstancePandofacylcarrierprotein65-74decapeptideJ.Chem.Soc.，PerkinTrans.1，538-546Barlos，K.，Gatos，D.，Kallitsis，J.，Papaphotiu，G.，Sotiriu，P.，Yao，W.Q.andW.(1989)DarstellunggeschützterPeptid-FragmenteunterEinsatzsubstituierterTriphenylmethyl-Harze.TetrahedronLetters.30(30)：3943-3946BockL.C.，GriffinL.C.，LathamJ.A.，VermaasE.H.andTooleJ.J.(1992)Selectionofsingle-strandedDNAmoleculesthatbindandinhibithumanthrombin.Nature.355(6360)：564-6.Boudsocq，F.，S.Iwai，etal.(2001).″SulfolobussolfataricusP2DNApolymeraseIV(Dpo4)：anarchaealDinB-likeDNApolymerasewithlesion-bypasspropertiesakintoeukaryoticpoleta.″NucleicAcidsRes29(22)：4607-16.BurmeisterP.E.etal(2006)2′-Deoxypurine，2′-O-methylpyrimidine(dRmY)aptamersascandidatetherapeutics.Oligonucleotides.16(4)：337-51.DamhaMJ，OgilvieKK.(1993)Oligoribonucleotidesynthesis.Thesilyl-phosphoramiditemethod.MethodsMolBiol.20：81-114Garcia-Echeverria，C.(1995)Ontheuseofhydrophobicprobesinthechromatographicpurificationofsolid-phasesynthesizedpepitdes.J.Chem.Soc.，Chem.Commun.779-780EllingtonA.D.andSzostakJ.W.(1990)InvitroselectionofRNAmoleculesthatbindspecificligands.Nature.346(6287)：818-22.FreierS.M.andAltmannK.H.(1997)Theupsanddownsofnucleicacidduplexstability：structure-stabilitystudiesonchemically-modifiedDNA：RNAduplexes.NucleicAcidsRes.25(22)：4429-43.KlussmannS.(2006).TheAptamerHandbook-FunctionalOligonucleotidesandtheirApplications.EditedbyS.Klussmann.WILEY-VCH，Weinheim，Germany，ISBN3-527-31059-2KlussmannS.，NolteA.，BaldR.，ErdmannV.A.andFürsteJ.P.(1996)Mirror-imageRNAthatbindsD-adenosine.NatBiotechnol.14(9)：1112-5.KusserW.(2000)Chemicallymodifiednucleicacidaptamersforinvitroselections：evolvingevolution.JBiotechnol74(1)：27-38.MairalT.，OzalpV.C.，LozanoSánchezP.，etal.(2008)Aptamers：moleculartoolsforanalyticalapplications.AnalBioanalChem.390(4)：989-1007MandalK.，UppalapatiM.，Ault-RichéD.，KenneyJ.，LowitzJ.，SidhuS.S.andKentS.B.H.(2012)ChemicalsynthesisandX-raystructureofaheterochiral{D-proteinantagonistplusvascularendothelialgrowthfactor