本发明涉及生物
技术领域：
，具体地说，涉及能够在较高温度下同时降解菊芋块根中菊糖，并去除其中葡萄糖，生产高纯果糖糖浆，果糖生产速率大幅度提高的耐热工程酵母。该菌株可以利用未灭菌菊芋块根粉，不补充额外营养物质的条件下快速高效生产高纯果糖糖浆。即，本发明通过工程菌改造构建高温下利用菊芋一步高纯果糖糖浆生产法。
背景技术：
：从上世纪80年代开始，随着对天然的，更健康的低能量食品需求的不断增加，大量的替代糖出现了(Limaetal.,2011)。有营养的甜味剂(例如蔗糖，果糖)被美国食品与药物管理局认为是安全的(generallyrecognizedassafe(GRAS))(Duffy&Sigman-Grant,2004)。果糖是自然界中最甜的单糖，其甜度是蔗糖的1.7倍、葡萄糖的2倍，具有甜味纯正、热值低、冷甜性、高溶解度、渗透压高、保湿性好、发酵性能好等特点，广泛应用于食品和医药工业领域(Hanover&White,1993)。果糖由于甜度比蔗糖高，富含果糖的高果糖浆作为天然甜味剂用以替代和补充蔗糖供应量的不足，而且高果糖浆还具有优越的代谢特性和营养保健功能，如可被直接吸收，毋须依靠胰岛素参与代谢、减缓体内蛋白质消耗、不会引起龋齿等等，因此高果糖浆得到越来越多的青睐和应用。果糖可在在药品，药用糖浆和溶液中作为赋形剂。由于它的高甜度和在食品中的安全性，它可以用于让药物更加易于服用(Barclayetal.,2012；Bowe,2000)。它抑制水结晶的能力使其可以用于抗冻剂(Dateetal.,2010)。果糖的高溶解性使它可以用于促进药物溶解以及调整溶液渗透压使药物更适合肠胃外服用(Barclayetal.,2012)。果糖还可以作为冻干保护剂在冷冻和脱水过程中保护药物活性(Croweetal.,1990)而目前果糖通常与其他糖(主要是葡萄糖)混在一起组成高果玉米糖浆或转化糖糖浆(Limaetal.,2011)，其中的果糖含量通常为42％，55％或90％，果糖含量越高其价值越高。以玉米淀粉为材料工业规模的生产果糖大幅度提高了果糖的消费。高果糖浆，一种葡萄糖和果糖的混合溶液，由于它比蔗糖有功能和技术上的便利性，成为例如糖果，面包，果酱等多种加工食品以及饮料中主要的甜味剂和食品添加剂。通过葡萄糖异构酶，以淀粉水解物为材料很容易生产42％的高果糖浆。55％的高果糖浆则通过高温下的葡萄糖异构酶生产(Limaetal.,2011；Liuetal.,2015)或者添加纯果糖来制备(Limaetal.,2011)。含有更高浓度果糖的高果糖浆，例如90％果糖，这需要通过大规模层析技术从42％的高果糖浆中纯化获得。另外，这种高果糖浆也可以通过菊糖的水解获得。(Mutandaetal.,2009；Singhetal.,2007)。虽然有限研究显示高果糖浆可能提高肥胖和糖尿病的风险。然而这有个过量食用的前提。果糖是否是唯一原因也是未知的，更可能的原因是能量的过量摄取(Administration,2014；Forsheeetal.,2007；Kmietowicz,2015；Kuzmaetal.,2015；Sievenpiperetal.,2012)。由于果糖在未来的消费仍会增长，需要更多的更廉价的商业生产和加工方法。要降低制造成本，采用含有高比例果糖的原材料，比如菊糖是个很好的选择。它可以大幅度降低加工的步骤(Barclayetal.,2012)。菊芋能够在贫瘠的土地上生长，能够耐受干旱和盐碱(Zhangetal.,2011)。它的块根中包含的糖为菊糖。菊糖是由果糖糖链与末端的一个葡萄糖残基相连而成的多糖(Pandeyetal.,1999)，能够很容易被菊糖酶水解成果糖和普通糖。但是这个过程需要制备较纯的菊糖酶。这是一个成本较高且过程繁琐的过程，而且还不能去除其中混合的葡萄糖。虽然有在酿酒酵母中构建能够利用菊糖生产果糖的报道，但是速度较慢，产量也比较低,而且需要重组表达外来聚糖酶(Yu,etal.,2011)。马克思克鲁维酵母能够直接利用菊糖而不需要额外添加菊糖酶，它被用于利用菊芋生产乙醇(Huetal.,2012；Yuanetal.,2012；Yuanetal.,2008)。这个过程将菊糖酶的生产、菊糖的水解和乙醇发酵结合在一起(Yuanetal.,2012)。由于产菊糖酶的马克思克鲁维酵母能够在40℃–50℃生长(Chietal.,2009)可以在高温下直接利用菊芋使之可能成为生产果糖的重要候选菌。技术实现要素：本发明中构建了一种能够在高温下一步法利用菊芋高效生产高纯果糖的菌株，及其用于生产果糖，尤其是高纯果糖糖浆的用途。具体而言，本发明涉及以下方面：在本发明的一个方面，涉及一种耐热酵母菌株，其通过在马克思克鲁维酵母YHJ010菌株中敲除或基本上敲除己糖激酶基因KmHXK，并过表达葡萄糖激酶基因KmGLK获得。在一个优选的实施方案中，向所述耐热酵母菌株中回补亮氨酸的营养缺陷性。在一个优选的实施方案中，所述回补优选通过转入马克思克鲁维酵母的β-丙基苹果酸脱氢酶基因KmLEU2实现。在一个优选的实施方案中，所述耐热酵母菌株为马克思克鲁维酵母(Kluyveromycesmarxianus)YGR003，其已经于2016年6月20日保存在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所)，保藏号为CGMCCNo.12643。本发明的另一个方面涉及一种构建耐热酵母菌株的方法，所述方法包括以下步骤：1)在马克思克鲁维酵母YHJ010菌株中敲除或基本上敲除己糖激酶基因KmHXK；2)在其中过表达葡萄糖激酶基因KmGLK。在一个优选的实施方案中，所述方法还包括向所述菌株回补亮氨酸的营养缺陷性。在一个优选的实施方案中，所述回补优选通过转入马克思克鲁维酵母的β-丙基苹果酸脱氢酶基因KmLEU2实现。本发明的另一个方面涉及所述耐热酵母菌株用于消化葡萄糖果糖混合糖中的葡萄糖而不或基本上不消化果糖的用途。本发明的另一个方面涉及所述耐热酵母菌株用于一步水解菊糖，并消耗葡萄糖获得纯果糖糖浆的用途。在一个优选的实施方案中，所述菊糖来自菊芋。在一个优选的实施方案中，，所述菊芋优选未灭菌的。在一个优选的实施方案中，所述用途在较高温度进行。在一个优选的实施方案中，所述较高温度在37至45℃的范围内，优选在37至42℃的范围内，最优选为42℃。发明详述本发明通过基因工程的方法(如图1所示)，首先将马克思克鲁维酵母YHJ010菌株中己糖激酶基因(KmHXK)进行了敲除，使得该敲除菌株的己糖利用能力大幅度下降。获得的菌株对葡萄糖及果糖的利用能力都非常弱。然后，过表达葡萄糖激酶基因(KmGLK)，恢复该酵母利用葡萄糖的能力，同时保持很低的果糖利用能力。最终获得了在较高温度(42℃)下能够一步利用葡萄糖果糖混合物中葡萄糖，能够水解菊芋中菊糖，并消耗葡萄糖获得纯果糖糖浆的耐热酵母K.marxianus菌株，特别是本申请中所述的菌株YLM005，再通过回补亮氨酸的营养缺陷性获得利用菊糖生长更好的菌株，特别是本申请中所述的菌株YGR003。并基于此提供使用菊芋为原材料一步法生产高纯果糖的方法。本发明中的最终构建的耐热酵母K.marxianus菌株，特别是YGR003菌株在42℃条件下，以350g/l未经灭菌的菊芋为材料，生产了232.6g/l的果糖，生产速率为9.7g/l/h。在45℃虽然生产果糖能力下降，但是仍可以生产果糖。具体地，本发明提供一种在较高温度(>42℃)下能够一步水解菊芋中菊糖去除葡萄糖获得纯果糖糖浆的耐热酵母菌株，特别是YGR003,其保藏号为CGMCCNo.12643。所述耐热酵母菌株通过在马克思克鲁维酵母YHJ010菌株中敲除了己糖激酶基因，过表达了葡萄糖激酶基因获得，这使得该酵母能快速利用葡萄糖却不能利用果糖。其中，所述己糖激酶基因(KmHXK)的敲除框在pGEMT-easy(Promega)中构建。此敲除框的构建过程为:⑴以马克思克鲁维酵母的基因组DNA为模板，进行PCR扩增，得到的产物即为KmHXK,并将基因加“A"后连接进入pGEMT-easy载体中，从而构建得到质粒pKmHXK-T。⑵以pKmHXK-T质粒为出发质粒，利用HindIII酶切去除KmHXK基因中部1.4kb长的片段并进行平端化处理(破坏KmHXK的开放阅读框)。同时提取酿酒酵母(SaccharomycescerevisiaeW303)基因组，根据NCBI提供的ScURA3基因序列设计引物进行PCR扩增，得到的ScURA3片段，长度为2.2kb，对片段进行磷酸化处理后，连入pKmHXK-T载体酶切片段中，形成pKmHXK-ScURA3-T载体。再通过PCR扩增将其中的KmHXK-ScURA3扩增出来作为KmHXK基因的敲除框。其中，所述葡萄糖激酶基因的过表达质粒构建过程如下：⑴以马克思克鲁维酵母的基因组DNA为模板，进行PCR扩增，得到的产物即为KmGLK,并将基因加“A"后连接进入pGEMT-easy载体中，从而构建得到质粒pKmGLK-T。⑵以pKmGLK-T质粒为出发质粒，通过PCR扩增获得1.4Kb的开发阅读框。然后将KmGLK的开放阅读框插入到酵母表达载体yEGAP得到表达质粒yEGAP-KmGLK。将yEGAP-KmGLK转入马克思克鲁维酵母中即可过表达KmGLK。本文中所述的基因KmHXK和KmGLK均来源于马克思克鲁维酵母。用于构建本发明的耐热工程酵母菌株的原始菌株YHJ010是申请人构建以马克思克鲁维酵母NBRC1777为出发菌株构建的，其构建方法与过程见文献(2007Hong.etal)。在构建得到所述多个质粒后，构建所述耐热工程酵母菌株，构建过程主要包括以下步骤：(1)将上述构建完成的质粒pKmHXK-ScURA3-T以KmHXK–F、KmHXK–R为引物扩增后。转化酵母菌株YHJ010,在无尿嘧啶的合成培养基平板上筛选获得KmHXK基因敲除菌株YLM001。(2)以yEGAP-KmGLK为模板，以amp-200-F和amp-200-R为引物扩增的得到过表达KmGLK片段，将片段转化到YLM001，通过无色氨酸和尿嘧啶的合成培养基平板筛选得到的菌株命名为YLM005。为了对本发明的耐热工程酵母菌株进行评价，还将空质粒YEUGAP转化YHJ010,获得YWD016,作为YLM001的空白对照。同时，将空质粒YEGAP转化YLM001,获得YGR002，作为YLM005的空白对照。进一步地，将质粒YKmLEU2(本实验室保存)(Hong.etal2007)转化YLM005,获得营养缺陷型标签去除的菌株YGR003。在进一步的验证试验中，将菌株YLM001在使用葡萄糖或果糖为碳源在42℃进行培养时，其利用葡萄糖和果糖的生长能力很弱。而将菌株YLM005在使用葡萄糖与果糖为碳源在42℃进行培养时，该菌株能特异性的利用葡萄糖，最终保留果糖基本不被消耗。将菌株YLM005在使用菊糖为碳源在42℃进行培养时，该菌株可以高效的水解菊糖并能特异性的利用葡萄糖，生产高纯果糖糖浆。进一步地，YGR003菌株能够在37至45℃，特别是42℃利用菊芋生产高纯果糖糖浆，但是45℃下生产能力比37和42℃弱一些。利用本发明所述的耐热工程酵母菌株YGR003使用一步法(在42℃),以菊芋(350g)为材料对其中的菊糖进行水解，并去除其中产生的葡萄糖，获得高纯果糖糖浆。本发明的菌株能提高利用菊芋等含菊糖的材料生产高纯果糖的生产速度，减少杂菌污染及降低能耗具有非常重要的意义。本发明通过基因工程改造，最终获得菌株YGR003在降解菊芋块根中菊糖的同时去除其中葡萄糖生产高纯果糖糖浆，是一株生产速率大幅度提高的耐热工程酵母。该菌株可以单独使用未灭菌菊芋块根粉，并且生产过程中不需外加营养物质；该菌株大幅度提高果糖的生产速率；该菌株生产的果糖浓度比以前的类似方法更高；速度更快；本发明菌株可以在高温下生产，可以大幅度降低冷却费用，并使得生产可以在热带地区已经高温季节进行。在低成本高效生产高纯果糖糖浆的工业上有很巨大的应用前景。优点和积极效果本发明获得的菌株，特别是菌株YGR003可以在37至45℃，特别是42℃条件下，在24h内利用(未灭菌未加热处理的)菊芋(例如350g/l)生产含232.6g/l纯果糖，无葡萄糖的糖浆，生产速率为9.7g/l/h。这一结果说明，本发明获得的菌株，特别是菌株YGR003可以在高温下高效利用菊芋生产高纯果糖糖浆的能力，高温下的工业化生产与较低温度下的生产相比，可以带来几个好处：1.降低冷却能耗，由于大型工业发酵中会产生大量的热量需要消耗大量的水及能量降温。2.减少污染。随着培养温度的升高，能够在该温度下生存的微生物急剧减少，因而较少杂菌污染，本发明中的菊芋无需灭菌直接使用；3.提高反应速度，提高产物的生产速率；这是以前构建的其他菌株所不具有的。需要指出，本发明使用的酵母KmHXK和KmGLK基因的并没有验证过，只是从序列对比上推断，而且与其他酵母不同，本发明的酵母KmHXK的敲除会严重阻碍酵母对己糖的利用，必须通过过表达KmGLK才能恢复，说明本酵母己糖相关激酶的表达与酿酒酵母不同。本发明生产采用温度高达42℃。工业的冷却以水能为主，但环境温度(水温)超过微生物培养温度时，冷却就不能进行。本发明生产采用温度高达42℃，使得热带地区和夏季高温地区都能够比较方便的使用，由于这些特点，本发明的酵母菌株能够在更大范围更高效的生产高纯果糖糖浆。本发明的菌株生产速率很高，达9.7g/L，产量也很高，最高达到了232.6g/l。这远超以前的报道，可以大幅度缩短生产时间，节约成本。附图说明图1本发明的菌株的构建流程图。图2.YLM001KmHXK敲除的基因组PCR验证结果。左侧为以YHJ010基因组PCR(对照)图3构建的菌株利用葡萄糖(A,C)或果糖(B,D)生长情况分析。YLM001(△KmHXK)与对照YWD016相比利用葡萄糖生长的能力大幅度下降，而利用果糖生长能力更差。而YLM005(在YLM001基础上表达KmGLK)利用葡萄糖生长能力恢复，但仍旧不能利用果糖生长,YGR002(YLM001基础上空载体对照)不能利用葡萄糖和果糖生长。图4菌株YLM005在混合糖培养中利用葡萄糖和果糖情况。可以看出YLM005在混合糖为碳源的培养基中快速生长，消耗葡萄糖，而果糖不消耗。图5菌株YGR003和YLM005在利用100g/l纯菊糖为碳源时的生长(A)和糖消耗状况(B)。图6菌株YGR003在不同温度下利用100g/l菊芋粉(A)以及42℃利用350g/l菊芋粉(B)一步法生产纯果糖的结果。具体实施方式试剂和菌株：本发明中的所有试剂均是市场购买的试剂级以上试剂。其中，果糖，葡萄糖、甘油、酵母基本氮源、尿嘧啶、色氨酸、亮氨酸、胶回收试剂盒以及所有的限制性内切酶均来源于上海生工生物工程公司。PrimeSTARHSDNA聚合酶购自大连宝生物公司，T4DNA连接酶购自于NEB生物公司，pGEMT-easy载体购自于promega生物公司。大肠杆菌EscherichiacoliXL10-gold菌株作为DNA操作时使用的宿主菌(美国加利福利亚Stratagene公司)，包含100μg/ml氨苄青霉素的Luria-Bertani(LB)培养基用作培养E.coli。葡萄糖合成培养基(葡萄糖20g/l，酵母基本氮源6.7g/l，及依据需要添加尿嘧啶，亮氨酸或色氨酸)主要用于转化。质粒YEGAP,YELGAP,YEUGAP由本实验室提供(Hongetal.,2007a)。YPD培养基(10g/l酵母提取物,20g/l细菌学蛋白胨,20g/l葡萄糖)用于酵母的前培养。混合糖合成培养基(酵母基本氮源6.7g/l，70g/l果糖，80g/l葡萄糖，亮氨酸2mg/ml)用于测试菌株的糖利用情况，菊糖培养基(酵母基本氮源6.7g/l，100g/l菊糖，亮氨酸2mg/ml)用于测试构建菌株水解菊糖及对产物的利用情况。而一定浓度的未灭菌的菊芋粉直接用于测试构建的菌株在不同温度及不同浓度底物时，一步法生产果糖的能力。马克思克鲁维酵母YZJ010菌株为本研究室保存菌株，该菌株由马克思克鲁维酵母NBRC1777构建而来。构建方法及过程见(Hongetal.,2007b)。而NBRC1777可以购自日本生物资源中心(BiologicalResourceCenter,NITE(NBRC),JAPAN).实施例1菌株的制备：1.提取酵母基因组的具体操作步骤为：①.马克思克鲁维酵母NBRC1777菌株，在YPD平板上划线，挑取单克隆，接入5ml液体YPD中，37℃，250rpm，培养24h。②.常温下12000rpm，5sec离心收菌，弃上清。③.500μl蒸馏水重悬菌体，12000rpm，5sec离心收菌，弃上清。④.取200μl实验室自配1xbreaking缓冲液(TritonX-100(2％(w/v))，SDS(1％(w/v)),NaCl(100mM),Tris-Cl(10mM,pH8.0),EDTA(1mM))重悬菌体，并将菌液转入到含有0.3g玻璃珠(425-600um，sigma，美国)的EP管内。⑤.加入200μl酚氯仿溶液后，高速震荡3min，加入200μl1xTE(10mMTris-Cl,pH8.0,1mMEDTA)。轻微震荡。⑥.12000rpm，离心5min，取最上层清液转入新的EP管内，加入1ml预冷的无水乙醇。⑦.12000rpm,4℃，离心10min，弃上清，室温下干燥沉淀，并用400μl1xTE重悬沉淀。⑧.加入2μlRNase(RNA水解酶,中国上海生工生物)，2mg/ml)到EP管内，混匀，37℃，酶切1h。⑨.取40μl3M醋酸钠(pH5.2)加入到管内，混匀并加入1ml预冷的无水乙醇。⑩.12000rpm，4℃，离心30min，弃上清室温下干燥。用100μl无菌水重悬沉淀，此即酵母基因组DNA。2.KmHXK的克隆提取马克思克鲁维酵母(K.marxianusyeastNBRC1777)的基因组，根据NCBI提供的KmHXK基因序列(GenBankKX270227)为模板设计引物，利用PrimeSTARHSDNA聚合酶，以KmHXK-F(SEQIDNo：1)，KmHXK-R(SEQIDNo：2)为引物进行扩增，得到的片段即为KmHXK，长度为3.2kb，将基因片段加A后连接插入pGEM-TEasy(美国Promega公司)载体中形成pKmHXK-T质粒。具体如下：(1)以K.marxianusyeastNBRC1777基因组作模板扩增得KmHXK片段。KmHXKPCR体系：PCR程序：(2)得到KmHXK后，通过凝胶回收后得到基因片段，之后在DNA末端加“A”后，通过TA克隆将KmHXK插入pGEM-TEasy载体中。加A体系：72℃温育1h之后对DNA进行纯化处理后进行TA连接，载体：片段(浓度比)＝1：10。TA克连接体系：16℃温育18h(3)将连接产物转化大肠杆菌，待菌落形成后利用菌落PCR检测阳性克隆(4)提取阳性克隆中包含的质粒，通过EcoRI酶切检测正确后进行测序(5)序列比对完全正确的KmHXK基因，将质粒标记为pKmHXK-T并保存3.KmHXK基因敲除框的构建以pKmHXK-T质粒为出发质粒，利用HindIII酶切去除KmHXK基因中部1.4kb长的片段，对片段进行去磷酸化处理后胶回收剩余4.8kb片段，之后对片段进行平端化处理。同时提取酿酒酵母(SaccharomycescerevisiaeW303)基因组，根据NCBI提供的ScURA3基因序列，利用PrimeSTARHSDNA聚合酶，以ScURA3-SMAI-FULL-F(SEQIDNo：3)，ScURA3-SMAI-FULL-R(SEQIDNo：4)为引物进行扩增，得到的ScURA3片段，长度为2.2kb，对片段进行磷酸化处理，将ScURA3片段连入pKmHXK-T载体酶切片段中，形成pKmHXK-ScURA3-T载体。具体如下：(1)以S.cerevisiaeW303基因组作模板扩增得ScURA3片段。ScURA3PCR体系：PCR程序：(2)通过凝胶回收后得到ScURA3基因片段，对片段进行磷酸化处理。磷酸化体系：37℃温育30min，之后对片段进行纯化处理。(3)从大肠杆菌中抽取pKmHXK-T质粒，以HindIII酶切处理载体。载体酶切体系：37℃温育过夜酶切过后向体系中加入10μlFastAP去磷酸化酶进行载体去磷酸化，37℃温育1h。然后通过凝胶回收回收4.8kb片段(4)对回收的载体片段进行平端化补齐平端化体系：68℃温育30min并对片段进行纯化处理(5)最后进行载体与片段的连接，载体：片段(浓度比)＝1：3。连接体系：16℃温育18h(6)将连接产物转化大肠杆菌，待菌落形成后利用菌落PCR检测阳性克隆(7)提取阳性克隆中包含的质粒，通过SmaI检测正确后进行测序(8)序列比对完全正确，将质粒标记为pKmHXK-ScURA3-T并保存4.KmGLK的克隆提取马克思克鲁维酵母(K.marxianusNBRC1777)的基因组，根据NCBI提供的KmGLK基因序列(GenBankKX270228)为模板设计引物，利用PrimeSTARHSDNA聚合酶，以KmGLK-F(SEQIDNo：5)，KmGLK-R(SEQIDNo：6)为引物进行扩增，得到的片段即为KmGLK，长度为2.9kb，将基因加A后连接插入pGEM-TEasy(美国Promega公司)载体中形成pKmGLK-T质粒。具体如下：(1)以K.marxianusyeastNBRC1777基因组作模板扩增得KmGLK片段。KmGLKPCR体系：PCR程序：(2)得到KmGLK后，通过凝胶回收后得到基因片段，之后在DNA末端加“A”后，通过TA克隆将KmGLK插入pGEM-TEasy载体中。加A体系：72℃温育1h之后对DNA进行纯化处理后进行TA连接,载体：片段(浓度比)＝1：10。TA克连接体系：16℃温育18h(3)将连接产物转化大肠杆菌，待菌落形成后利用菌落PCR检测阳性克隆(4)提取阳性克隆中包含的质粒，通过EcoRI酶切检测正确后进行测序(5)序列比对完全正确KmGLK基因，将质粒标记为pKmGLK-T并保存5.KmGLK基因过表达质粒的构建以pKmGLK-T质粒为模板，根据NCBI提供的KmGLK基因序列为模板设计引物，利用PrimeSTARHSDNA聚合酶，以KmGLK-F-EcoRI(SEQIDNo：7)，KmGLK-R-NotI(SEQIDNo：8)为引物进行扩增，得到KmGLK的开放阅读框(ORF)，长度为1.4kb，利用EcoRI和NotI酶切片段以及质粒载体yEGAP(穿梭质粒，有氨苄抗性可在原核生物中扩增。同时有酿酒酵母GAPDH的启动子和终止子，两者之间有多克隆位点)，回收纯化后进行连接构建yEGAP-KmGLK质粒。具体如下。(1)以pKmGLK-T作模板扩增得KmGLK的表达框片段。KmGLK的表达框PCR体系：PCR程序：(2)通过凝胶回收1.4kb片段后得到KmGLK的表达框片段，对片段进行酶切。片段酶切体系：37℃温育过夜后对片段进行纯化处理(3)从大肠杆菌中抽取yEGAP质粒，以NotI、EcoRI酶切处理质粒。载体酶切体系：37℃温育过夜后对片段进行凝胶回收7kb片段(4)最后进行载体与片段的连接，载体：片段(浓度比)＝1：3连接体系：16℃温育18h(5)将连接产物转化大肠杆菌，待菌落形成后利用菌落PCR检测阳性克隆(6)提取阳性克隆中包含的质粒，通过NotI、EcoRI酶切检测正确后进行测序(7)序列比对完全正确，将质粒标记为yEGAP-KmGLK并保存6.将构建的载体转化进行基因工程改造马克思克鲁维酵母工程菌株1)酵母化学转化步骤:①.各种改造菌株在YPD平板上划线，37℃培养24h。②.取5ml液体YPD,并分别在YPD平板上挑取单克隆，37℃，250rpm，培养18h。③.取1ml培养物转接与装入9ml液体YPD的50ml三角瓶内，37℃，250rpm，摇床培养5h。④.取出培养物，常温下离心5000rpm，3min，弃上清液，保留菌体。⑤.配制1ml转化缓冲液：800μl50％PEG4000；50μl4M醋酸锂；50μlddH2O；100μl1MDTT(溶于10mM醋酸钠,pH5.2)。⑥.使用200μl转化缓冲液重悬菌体，5000rpm，离心3min，去上清。⑦.用100μl转化缓冲液重悬浮菌体，加入5μl(1-10μg)线性化的质粒,轻微震荡30sec。⑧.在47℃条件下水浴15min。⑨.将菌体涂布于含有亮氨酸(Leu)或色氨酸(Trp)的合成培养基，37℃培养2天。⑩.挑取板上克隆在液体YPD中培养，提取基因组，并通过PCR鉴定转化结果。2)本专利中构建各种耐热酵母表达菌株的具体过程:(1)YLM001菌株的构建：上述构建完成的质粒pKmHXK-ScURA3-T以KmHXK–F、KmHXK–R为引物PCR扩增包含破坏了的KmHXK及ScURA3表达框的敲除片段。利用上述的酵母转化方法转化酵母菌株YHJ010，同源重组后，使菌株YHJ010内的KmHXK基因被敲除，同时获得尿嘧啶的合成的能力。在无尿嘧啶的合成培养基(配方：葡萄糖20g/L，酵母基本氮源6.7g/L，色氨酸和亮氨酸各2mg/ml，琼脂15g/L)平板上筛选KmHXK敲除菌株，获得的菌株命名为YLM001。鉴定YLM001酵母KmHXK基因敲除的阳性菌株的PCR体系：对应PCR程序：通过PCR检测结果鉴定，YHJ010菌株的扩增产物为3.2kb，而YLM001由于插入了ScURA3基因，扩增产物为4Kb(图2)。如图2所示为基因组PCR结果，表明YLM001菌株中KmHXK基因被敲除成功。(2)YLM005的构建：以YEGAP-KmGLK为模板，以amp-200-F和amp-200-R(SEQIDNo：9和10)为引物扩增的得到过表达KmGLK片段,将片段转化到YLM001，通过无色氨酸的合成培养基平板(配方：葡萄糖20g/l，酵母基本氮源6.7g/l，亮氨酸2mg/ml,琼脂15g/l)筛选得到的菌株命名为YLM005PCR扩增体系：对应PCR程序：(3)对照菌株YWD016的构建：将空质粒YEUGAP用EcoRI酶切以后转化YHJ010,通过无尿嘧啶的合成培养基平板(配方：葡萄糖20g/l，酵母基本氮源6.7g/l，亮氨酸和色氨酸2mg/ml,琼脂15g/l)筛选得到的菌株命名为YWD016,作为YLM001的空白对照。(4)对照菌株YGR002的构建：将空质粒YEGAPEcoRI酶切以后转化YLM001,通过无尿嘧啶和色氨酸的合成培养基平板(配方：葡萄糖20g/l，酵母基本氮源6.7g/l，亮氨酸2mg/ml,琼脂15g/l)筛选得到的菌株命名为YGR002,作为YLM005的空白对照。(5)无营养缺陷性菌株YGR003的构建：质粒YKmLEU2(本实验室保存)(Hong.etal.,2007)EcoRI酶切以后转化YLM005,通过在没有补充氨基酸的合成培养基平板(配方：葡萄糖20g/l，酵母基本氮源6.7g/l，琼脂15g/l)筛选获得营养缺陷型标签去除的菌株YGR003。实施例2构建的各种菌株YLM001,LM005及对照菌株YWD016和YGR002的葡萄糖及果糖利用情况该实施例用于比较构建的各种过程菌株利用葡萄糖及果糖的能力。结果表明YLM001丧失了果糖利用能力，但是葡萄糖利用能力很差，YLM005的葡萄糖利用能力得到了恢复，并保持了不利于果糖的特性(图3)。1.在YPD培养基平板上复苏菌株。对照株：YWD016，YGR002。实验株：YLM001和YLM005。37℃培养1天。2.分别挑取单克隆，接于5ml液体YPD培养基。37℃，250rpm，过夜。3.配制6瓶50ml葡萄糖或果糖的培养基分装于250ml锥形瓶中。配方：20g/l果糖或葡萄糖，酵母基本氮源6.7g/L，色氨酸和亮氨酸各2mg/ml。灭菌待用。4.取适量过夜培养物接入50ml葡萄糖或果糖培养基中，使他们的初始OD600达到0.2,42℃,250rpm培养。5.在0h，3h，7h，11h，14h，22h，25h取样，测定OD600(图3)。6.从图3可知YLM001(△KmHXK)与对照YWD016相比利用葡萄糖生长的能力大幅度下降，而利用果糖生长能力更差。而YLM005(在YLM001基础上表达KmGLK)利用葡萄糖生长能力恢复，并保持了不利用果糖的特性。YGR002(YLM001基础上空载体对照)不能利用葡萄糖和果糖生长。实施例3构建的YLM005利用葡萄糖果糖的混合糖情况该实施例用于分析在葡萄糖和果糖都存在时，YLM005是否只利用葡萄糖。结果表明在混合糖中YLM005的保持利用葡萄糖,不利用果糖的特性(图4)。1.在YPD培养基平板上复苏菌株YLM005，37℃培养1天。2.分别挑取单克隆，接于5ml液体YPD培养基。37℃，250rpm，过夜。3.配制3瓶10g/l葡萄糖和70g/l果糖的培养基分装于250ml锥形瓶中。配方：10g/l葡萄糖和70g/l果糖，酵母基本氮源6.7g/L，亮氨酸2mg/ml。灭菌待用。4.取适量过夜培养物接入50ml葡萄糖和果糖培养基中，使他们的初始OD600达到0.2,42℃,250rpm培养。5.在0h，5h，10h，15h，22h，27h，32h,37h,45h,50h,60h,70h取样，测定OD600(图4)。6.从图4可知：YLM005在混合糖为碳源的培养基中快速生长，消耗葡萄糖，而果糖不消耗。实施例4构建的菌株YLM005、YGR003对菊糖的利用情况该实施例用于比较构建菌株YLM005、YGR003对菊糖的利用情况。结果表明YGR003和YLM005都具有利用菊糖生长，消耗葡萄糖积累果糖的能力，但是YGR003利用菊糖生长的更好，水解和利用菊糖中葡萄糖的速度也更快。1.在YPD培养基平板上复苏菌株YLM005、YGR003。37℃培养1天。2.分别挑取单克隆，接于5ml液体YPD培养基。37℃，250rpm，过夜。3.配制6瓶分装于250ml锥形瓶中50ml含菊糖的培养基。配方：100g/l菊糖，酵母基本氮源6.7g/L，色氨酸和亮氨酸各2mg/ml。灭菌待用。4.取适量过夜培养物接入50ml菊糖培养基中(每种菌3瓶)，使他们的初始OD600达到0.5,42℃,250rpm培养。6.在0h，3h，5h,8h,10h,13h，15h，20h，25h，28h,32h,43h,48h取样，测定OD600(图5)并测地培养上清中的葡萄糖和果糖含量。7.从图5A可知YGR003在培养8h后OD600就达到了12，而YLM005在8h后OD600仅达到了5。说明YGR003的利用菊糖生长的能力比YLM005高很多。同时从图5B可以看出，YGR003的培养中，13h后葡萄糖的含量已经接近0，而YLM005的培养需要28h才能达到同样水平。虽然最终上清中果糖的积累达到相似水平，但是YGR003只需要15小时就达到了80g/l的水平，而YLM005至少需要20h。这说明YGR003利用菊糖，水解菊糖积累果糖的能力比YLM005强。因此，本发明最终是用YGR003菌株进行利用菊芋一步生产纯果糖的应用。实施例5构建的菌株YGR003在不同温度下利用菊芋一步生产纯果糖的情况该实施例中YGR003在37，42，45℃利用100g/l菊芋一步生产纯果糖的情况进行了研究，结果显示在37和42℃下，生产果糖能力差别不大，而45℃生产果糖能力下降。1.YGR003按实施例4中复苏和前培养。3.配制9瓶50ml菊芋粉于250ml锥形瓶中。配方：称取5g菊芋粉加入到250ml锥形瓶中,加水至50ml，不用灭菌。4.取适量过夜培养物接入50ml菊芋粉中，使他们的初始OD600达到1.0,在37,42,45℃,250rpm培养。6.在0h，5h，10h，15h，23h，28h，32h,37h，44h取样，并取上清通过HPLC检测分析(图6A)。7.从图6A可知，在37和42℃，第10h,葡萄糖完全消耗完毕，产生了70g/l的果糖，而在45℃，虽然5h即没有了葡萄糖，但是最终果糖浓度没有超过50g/l。说明，37和42℃，YGR003能够快速生产果糖，而在45℃虽然有生产果糖的能力，但是能力下降。实施例6构建的菌株YGR003利用菊芋一步生产纯果糖的情况该实施例中YGR003利用350g/l菊芋一步生产纯果糖的情况进行了研究，结果显示在42℃下，生产了232.6g/l的果糖，生产速率为9.7g/l/h.1.按实施例4中复苏YGR003并进行前培养。3.配制3瓶50ml菊芋粉于250ml锥形瓶中。配方：称取17.5g菊芋粉加入到250ml锥形瓶中,加水至50ml，不用灭菌。4.取适量过夜培养物接入50ml菊芋粉中，使他们的初始OD600达到1.0,42℃,250rpm培养。6.在0h，4h，8h，10h，14h，20h，24h,28h，32h取样，并取上清通过HPLC检测分析(图6)。7.从图6可知，在第24h,葡萄糖完全消耗完毕，产生了232.6g/l的果糖，生产速率为9.7g/l/h。最终，本发明中的YGR003菌株，在42℃条件下，能在24h利用350g/l菊芋粉生产232.6g/l的纯果糖，生产速率为9.7g/l/h，无论是生产果糖的浓度还是生产速率，这个结果是已报道的高温下利用菊芋直接生产纯果糖的的最佳结果。并且由于本发明是在高温下生产，原材料菊芋无需灭菌，这可以节省大量的能源上花费，同时大规模生产时提高生产温度可以大幅度降低冷却的花费，因而本发明构建的菌株与以前的研究相比具有很大的优势。参考文献Administration,U.S.F.a.D.2014.HighFructoseCornSyrup:QuestionsandAnswers.Barclay,T.,Ginic-Markovic,M.,Cooper,P.,Petrovsky,N.2012.Thechemistryandsourcesoffructoseandtheireffectonfunctionalityandhealthimplications.JournalofExcipientsandFoodChemicals,3(2),67-82.Bowe,M.K.2000.Placeboevaluationofselectedsugar-basedexcipients:inpharmaceuticalandnutraceuticaltableting.PharmaceuticalTechnology24,34-44.Chi,Z.M.,Chi,Z.,Zhang,T.,Liu,G.L.,Yue,L.X.2009.lnulinase-expressingmicroorganismsandapplicationsofinulinases.ApplMicrobiolBiot,82(2),211-220.Crowe,J.H.,Carpenter,J.F.,Crowe,L.M.,Anchordoguy,T.J.1990.AreFreezingandDehydrationSimilarStressVectors-aComparisonofModesofInteractionofStabilizingSoluteswithBiomolecules.Cryobiology,27(3),219-231.Date,P.V.,Samad,A.,Devarajan,P.V.2010.Freezethaw:asimpleapproachforpredictionofoptimalcryoprotectantforfreezedrying.AAPSPharmSciTech,11(1),304-13.Duffy,V.B.,Sigman-Grant,M.2004.PositionoftheAmericanDieteticAssociation:Useofnutritiveandnonnutritivesweeteners.JournaloftheAmericanDieteticAssociation,104(2),255-275.Forshee,R.A.,Storey,M.L.,Al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