1.一种大量提取质粒的方法，其特征在于使用了新型的核酸染料。
2.根据权利要求1所述的一种大量提取质粒的方法，其特征在于所述使用的新型核酸染料为GoldenView。
3.根据权利要求1所述的一种大量提取质粒的方法，其特征在于包括：P1缓冲液、P2缓冲液、P3溶液，其组分如下：
P1缓冲液：25-70mmol/L Tris-HCl,5-30mmol/L EDTA,100ug/mL Rnase A,pH＝7.0-8.5；
P2缓冲液：100-350mmol/L NaOH,0.1-3％SDS；
P3溶液：1-6mol/L KAc，pH＝4.0-5.5。
4.根据权利要求1所述的一种大量提取质粒的方法，其特征在于包括如下步骤：
步骤1，质粒的制备。将含有目的质粒的大肠杆菌接种至400mL TB培养基中，37℃，200rpm培养过夜。然后4℃，6000g离心10min，弃上清，倒置离心管使残余的液体流出。加入预冷至4℃的P1缓冲液至终体积到10mL，震荡重悬使沉淀的细菌均匀分散，然后加入20mg固体溶菌酶(hen egg white lysozyme)，完全重悬沉淀，室温放置10min；再加入20mL新鲜制备的P2溶液，用移液管轻轻混匀直至溶液均一透明，室温放置5-10min；最后加入预冷至4℃的P3溶液10mL，轻轻但完全地震荡混匀数次，直至两个液相不再分离，原有的黄色消失，白色絮状物出现，然后置于冰上10min。4℃，8000rpm离心10min，弃沉淀，将上清通过四层纱布过滤到量筒中，然后加入0.6倍体积的异丙醇，混匀，室温放置10-15min，置于50mL离心管中，再8000rpm离心15min后，将上清弃处干净，回收核酸沉淀。
步骤2，质粒的纯化。洗涤核酸沉淀：在室温下，用2mL 70％乙醇涮洗管底及管壁。然后将乙醇倒出，并吸干管壁上的液滴；或8000rpm，常温离心10min，弃上清。敞开离心管管口10-15min，使剩余的乙醇完全挥发掉。接着加入7mL 1×TE溶液溶解沉淀，并加入7mL该溶液冲洗管壁。加入氯化铯12.5g，溶解混匀后加入GoldenView核酸染料10微升后混匀。转移上述溶液至超速离心管中，充满离心管并平衡密封。室温下55000rpm离心至少12h，或65000rpm离心4h。离心结束后，将离心管取出，置于锡箔纸包裹的试管架上，在仅有微光的室内，可见两条DNA区带，上层区带是染色体和线性DNA，下层为所需的cccDNA。用18号针管，小心收集cccDNA，置于50mL离心管中。加入等体积的水饱和异戊醇，盖紧管盖，震荡混合有机相和水相。室温下450g离心3min，使水相和有机相分离，并将上层有机相(粉红色)转移至合适的废液桶中。重复抽提上述三个步骤4-6次，直到水相和有机相均不见绿色。加入2.2倍体积的水，0.6倍体积的异丙醇，混匀。室温下，8000rpm离心15min，完全弃上清，并回收核酸沉淀。加入8mL超纯水重悬沉淀，再加入10mol/L醋酸铵溶液至终浓度2mol/L，充分混匀后加入2.5-3倍体积，预冷至-20℃的乙醇(-20℃)，混匀，置于干冰或-80℃冰箱中，孵育10min。4℃，8000rpm离心10min，弃上清。加入20mL 70％乙醇，混合，4℃，12000g离心10min，弃上清，最后将离心管置于超净台中风干2min，加入TE溶解质粒。