雷公藤TwKS与TwCPS3在制备贝壳杉烷型二萜化合物中的应用的制作方法

本发明通过构建twcps3和twks真核及原核表达载体，通过体外酶促和酵母发酵的方法成功合成了16α-贝壳杉烷，其与赤霉素的生物合成相关。涉及雷公藤生长发育调控和活性成分的合成，属于药用植物基因工程领域。

背景技术：

药用植物雷公藤(tripterygiumwilfordii.hook.f.)是一味中草药，被广泛用于类风湿性关节炎和炎症的治疗。萜类成分为雷公藤的主要活性成分，包括雷公藤甲素(triptolide)、雷酚内酯(triptophenolide)和雷公藤红素(celastrol)等。现有研究表明贝壳杉烷型二萜是萜类天然产物家族中的主要组成部分，这类分子通常表现出抗菌、抗肿瘤、抗疟、抗病毒等多种重要生物活性。从中药活性成分开发新药是一种很有潜力的方式，然而由于植物的生长缓慢，再加上这些有效成分在植物体中的含量不多，因而大大限制了它的发展。通过探寻和阐释萜类成分，特别是探寻贝壳杉烷型二萜在雷公藤中的生物合成途径及其调控机制，能够为利用生物技术提高目标成分含量或直接生产有效成分或中间体带来广阔的应用空间。

赤霉素是一种四环双萜化合物，在植物的生长调节方面具有非常重要作用的物质。现有研究表明赤霉素在植物的种子萌发，茎的生长，开花和结果具有重要的调节作用。贝壳杉烷型二萜是一类双萜化合物，其具体种类和含量对于下游赤霉素的生物合成具有重要影响。从贝壳杉烷型二萜化合物前体到赤霉素生物合成途径的解析有助于调控雷公藤中雷公藤甲素、雷公藤红素等活性成分的生物合成。

技术实现要素：

本发明通过对雷公藤柯巴基焦磷酸合酶基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶基因twks进行表达载体的构建，成功合成了赤霉素的前体物16α-贝壳杉烷，这对雷公藤甲素等活性成分的生物合成调控具有重要的意义。

具体而言本发明将克隆得到的twcps3和twks基因的cdna克隆到原核表达载体pmal-c2x，构建带有twcps3和twks基因的重组表达载体；转入e.coli表达宿主菌，通过诱导后，表达产物经初步纯化后，加入到以ggpp为底物的体外酶促反应体系中，正己烷萃取反应产物，采用gc-ms检测到贝壳杉烷型二萜化合物的生成，经过对gc-ms图谱的分析结果表明，twcps3和twks联合使用能够将ggpp转化为贝壳杉烷型二萜类化合物，出乎意料的是，所述贝壳杉烷型二萜类化合物中除了目前已知的赤霉素前体对映贝壳杉烯以外，还能够产生ent-16α贝壳杉烷，另外产物中还发现一定量的泪杉醇。

通过将twcps3和twks基因的orf克隆到真核表达载体pesc-trp，构建带有twcps3和/或twks基因的重组表达载体并通过定点突变等方法，通过酵母by-t20发酵生成产物，利用气相色谱-质谱联用技术，分析twcps3和twks基因的功能。研究结果表明，真核表达的twcps3和twks能够将ggpp转化为贝壳杉烷型二萜，并且ent-16α贝壳杉烷的产量更高。本发明对雷公藤的生长发育以及活性成分的生物合成调控具有重要意义。

本发明提供一种雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，其特征在于以牻牛儿基焦磷酸ggpp为底物，催化产生贝壳杉烷型二萜化合物。

其中，所述的雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3的序列为seqidno：1，雷公藤贝壳杉烯合酶twks的序列为seqidno：3。

本发明还提供雷公藤柯巴基焦磷酸合酶基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶基因twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，其特征在于重组表达twcps3和twks基因获得twcps3和twks用于制备贝壳杉烷型二萜，其中雷公藤柯巴基焦磷酸合酶基因twcps3的序列为seqidno：2，雷公藤贝壳杉烯合酶基因twks的序列为seqidno：4。

本发明所述雷公藤柯巴基焦磷酸合酶基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶基因twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用其中所述twcps3和twks基因通过原核表达或真核表达获得twcps3和twks，优选将所述基因进行真核表达。

本发明所述雷公藤柯巴基焦磷酸合酶基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶基因twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，利用原核表达载体pmal-c2x分别构建带有twcps3或twks基因的重组原核表达载体；利用真核表达载体pesc-trp分别构建带有twcps3或twks基因的重组表达载体。

本发明所述雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3/或其基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶twks/或其基因twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，其中所述贝壳杉烷型二萜包括ent-贝壳杉烯和ent-16α贝壳杉烷。

本发明所述雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，其特征在于产物中还包括泪杉醇。

本发明所述雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3/或其基因twcps3和雷公藤贝壳杉烯合酶twks/或其基因twks在制备贝壳杉烷型二萜中的应用，其特征在于雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3/或其基因twcps3，与雷公藤贝壳杉烯合酶twks/或其基因twks同时使用或先后使用。

本发明还提供一种酶催化制备贝壳杉烷型二萜的方法，其包括：(1)以牻牛儿基焦磷酸ggpp为底物加入雷公藤柯巴基焦磷酸合酶twcps3，正己烷萃取3次，弃有机相、取水相，氮气吹干后进行脱磷，(2)向步骤(1)中脱磷后获得的产物加入雷公藤贝壳杉烯合酶twks进行反应，正己烷萃取3次，取正己烷相用氮气吹干，(3)对步骤(2)获得的产物进行gc-ms分析。

本发明还提供一种酶催化制备贝壳杉烷型二萜的方法，其包括：(1)将twcps3基因表达盒和twks基因表达盒构建到同一个真核表达载体pesc-trp上，构建获得重组质粒pesc-(twcps3+twks)，转化酵母筛选获得重组酵母菌；(2)将pcr鉴定阳性的重组酵母菌进行诱导培养，收集菌液加入等体积正己烷，超声破菌、萃取、硫酸钠干燥、旋蒸浓缩至近干，过滤后4℃保存备用；(3)对步骤(2)获得的产物进行gc-ms分析。

本发明所述酶催化制备贝壳杉烷型二萜的方法，其特征在于gc-ms分析的步骤中第12.99分的峰为泪杉醇，第13.03分的峰为ent-贝壳杉烯，第13.96分的峰为ent-16α-贝壳杉烷。

附图说明

图1茉莉酸甲酯mj诱导雷公藤二萜合酶基因不同时间的相对表达量

图2宿主菌e.colitransb(de3)诱导表达产物sds-page蛋白电泳分析(c：阴性对照即空表达载体pmal-c2x表达产物；m：蛋白分子量标准，条带由上往下分别为200、116、97.2、66.4、29.0、20.1、14.3、6.5kda；箭头表示目的重组蛋白；1：重组质粒pmaltwcps1的表达；2：重组质粒pmaltwcps3的表达产物；3：重组质粒pmaltwks的表达产物；4：重组质粒pmaltwcps2的表达产物；5：重组质粒pmaltwges2表达产物；6：重组质粒pmaltwges1表达产物)

图3定点突变引物设计

图4雷公藤二萜合酶真核表达载体构建

图5cps催化底物ggpp形成产物提取离子色谱图，第13.83分的峰为cpp，质谱荷质此为275m/z。由上而下依次为twcps1、twcps2、twcps3、smcps1、atcps、空载体。

图6(cps+ks)催化ggpp形成产物提取离子色谱图，第13.06分的峰为次丹参酮二烯，第13.03分的峰为对映贝壳杉烯第13.83分的峰为cpp，第13.96分的峰为ent-16α-贝壳杉烷，第13.46分的峰为ggoh；质谱荷质此为272m/z。

图7twcps2c311d、twkst318d催化ggpp形成产物提取离子色谱图，第13.46分的峰为ggoh；质谱荷质此为275m/z、272m/z。

图8by-t20/pesc-trp-twcps3+twks、by-t20/pesc-trp-twcps3+twksa608m、by-t20/pesc-trp发酵产物提取离子色谱图，第13.03分的峰为对映贝壳杉烯；质谱荷质此为272m/z。

图9by-t20/pesc-trp、by-t20/pesc-trp-twcps1、by-t20/pesc-trp-twcps3+twks、by-t20/pesc-trp-twcps3+twksa608m发酵产物提取离子色谱图第12.99分的峰为泪杉醇，第13.03分的峰为对映贝壳杉烯，第13.83分的峰为cpp，第13.96分的峰为ent-16α-贝壳杉烷；质谱荷质此为272m/z。

具体实施方式

以下结合具体实施例，进一步阐述本发明。这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件或按照制造厂商所建议的条件。除非另行定义，文中所使用的所有专业与科学用语与本领域熟练人员所熟悉的意义相同。此外，任何与所记载内容相似或均等的方法及材料皆可应用于本发明方法中。文中所述的较佳实施方法与材料仅作示范之用。

下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

雷公藤(tripterygiumwilfordiihook.f.)悬浮细胞在文献“雷公藤4-(5’-二磷酸胞苷)-2-c-甲基-d-赤藓醇激酶基因的全长克隆与表达分析.中国中药杂志，2015，40(21)：4165-4170”中公开过，公众可从首都医科大学分子生药与中药资源实验室获得。

smartertmracecdnaamplificationkit，primestargxldnapolymerase购自takara公司；peasy-bluntsimplecloningkit购自北京全式金生物技术有限公司，ggpp购自sigma公司，产品目录号为g6025。

实施例一、雷公藤twcps3和twks原核表达载体构建(图1)

分别以含有雷公藤twcps3和twks基因全长cdna的载体pmd-19-tps质粒为模板，用含酶切位点引物，进行pcr扩增基因编码区(引物序列见表1)，插入原核表达载体中。dna聚合酶采用高保真dna聚合酶(primestarhsdnapolymerase)。pcr参数为98℃3min，1循环；98℃10s，60℃10s，72℃2min30s，30循环；72℃7min；4℃维持。扩增产物经genejetgelextractionkit胶回收(方法如下)。

genejetgelextractionkit胶回收步骤：

(1)取pcr产物与6×loadingbuffer预混合，在1.5％琼脂糖凝胶上以低电压(约5vcm-1)电泳30-60min；

(2)用解剖刀或剃刀片切割含有dna片段的凝胶，尽可能的靠近dna片段切割，以减小凝胶的含量，将胶片放在事先称重的1.5ml离心管并称重。记录胶片的重量。注意避免长时间暴露在紫外灯下，损害dna而影响后续实验；

(3)加1∶1量的bindingbuffer到胶片中(量以重量计，如每100毫克琼脂糖凝胶加100微升的bindingbuffer)；

(4)在50-60℃的条件下温育凝胶混合物10min，期间颠倒混匀2-3次，促进胶融化，保证胶全部溶解，在上柱前将凝胶混合物快速涡旋混匀一次；

(5)转移最多800μl凝胶溶解液到基因回收纯化柱，13000g离心1min，弃去流出液，然后将柱放回相同的收集管；

(6)加入700μlwashbuffer(已用乙醇稀释)到genejet纯化柱。13000g离心1min，弃去流出液，然后将柱放回相同的收集管；

(7)离心空genejet纯化柱13000g离心1min，彻底去除残留的washbuffer；

(8)将genejet纯化柱转移到一个干净的1.5ml离心管，加30-50μlddh2o(可60℃预热)于纯化柱膜，13000g离心1min；

(9)丢掉genejet纯化柱并储存纯化的dna在-20℃。

经纯化后的pcr产物用限制性内切酶进行双酶切，采用neb公司t4dna连接酶定向连入经相同双酶切的表达载体pmal-c2x中(方法如下)，连接产物经转化、蓝白菌落筛选及阳性克隆的初步筛选，并送样测序鉴定，得到经测序核苷酸序列无突变重组质粒pmaltps，并将经的重组质粒pmaltps转化至大肠杆菌e.colitransb(de3)表达感受态细胞。与此同时，将拟南芥中功能明确的atcps(催化ggpp形成ent-cpp)、atks(催化ent-cpp形成对映贝壳杉烯)及丹参中功能明确的smcps1(催化ggpp形成nor-cpp)、smksl1(催化nor-cpp形成次丹参酮二烯)构建到pmal-c2x原核表达载体上(smcps1、smksl1利用实验室保存的重组质粒pet32smcps1及pet32smksl1)，将雷公藤twcps3、twks分别与其他植物来源的cps、ks进行对此。

采用takaraquickcut酶进行双酶切反应，反应体系如下(50μl)：

内切酶1酶切完成后，加入1μl内切酶2继续酶切。注意：最适酶切温度较低的内切酶应先进行酶切，若最适酶切温度相同，可同时加入同时酶切。

采用nebt4dna快速连接试剂盒进行dna片段连接反应，连接反应体系如下：

连接反应(20μl体系)

＊dna与载体摩尔此约为3：1-10：1

25℃连接5min(可适当延长连接时间)。

表1构建原核表达载体引物序列

实施例二、重组蛋白诱导表达

诱导表达

100mmol·l-1iptg：称取238.3mg的iptg用10ml的ddh2o溶解，过滤分装-20℃保存；lb培养基：trytone1.0％，yeastextract0.5％，nacl1.0％，agar1.5％，ph7.0。

操作步骤：

(1)将酶切鉴定正确且经测序验证的含目的基因的重组质粒，取1μl转化至50μltransb(de3)感受态细胞中，涂板lb+amp(氨苄青霉素钠)固体平板，37℃倒置培养12-16h；

(2)挑取单克隆菌落经酶切鉴定后转到含100μg·ml-1amp的2mllb液体培养基中，37℃振荡培养至od600到0.6-1.0；

(3)取1ml菌液5000g4℃离心5min收集菌体，用新鲜lb+amp液体培养基混悬菌体，转接到100mllb+amp液体培养基中；

(4)37℃培养至宿主菌密度(od600)达到0.6-1.0时，加入适量iptg诱导剂(终浓度约0.4mm)，在低温下(16℃)诱导培养8h；

(5)4℃3000g离心20min收获菌体，预冷的5mlhepes缓冲液(50mmhepes，100mmkcl，7.5mmmgcl2，5mmdtt，1mmpmsf，5％甘油，ph7.2)重悬；

(6)置冰浴中超声破菌(30％功率，超声5s，间隔5s，持续3min)；大肠杆菌破碎液在4℃，15000g离心30min，取上清液；

(7)上清液经蛋白超滤管浓缩(4℃5000g40min)至1.5ml。

取上清进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺(sds-page)凝胶电泳检测。

以空质粒pmal-c2x转化transb(de3)表达菌进行表达为对照。

实施例三、十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sds-page)(图2)

试剂配制

30％丙烯酰胺贮存液(神经毒性，操作时配戴口罩及手套)：在通风橱中，称取丙烯酰胺29.2g，甲叉双丙烯酰胺0.8g，加ddh2o溶解后，定容到100ml。针头滤器过滤后置棕色瓶中，4℃保存；

ph8.8tris-hcl分离胶缓冲液：配制1.5mtris-hcl，并调节ph至8.8，4℃保存；

ph6.8tris-hcl浓缩胶缓冲液：配制1mtris-hcl，并调节ph至6.8，4℃保存；

10％sds：称取sds1.0g，蒸馏水10ml溶解，4℃保存；

10％过硫酸铵(aps)：取aps1.0g，蒸馏水10ml溶解，4℃保存；

temed(四乙基乙二胺)原液；

5×样品缓冲液(10ml)：0.6ml1mol·l-1的tris-hcl(ph6.8)，5ml50％甘油，2ml10％的sds，0.5ml巯基乙醇，1ml1％溴酚蓝，0.9ml蒸馏水。可在4℃保存数周，或在-20℃保存数月；

10×电泳缓冲液：称取tris30.38g，甘氨酸144g，sds10.8g，加蒸馏水约900ml，调ph8.3后，用蒸馏水定容至1000ml，置4℃保存，临用前稀释10倍。

实施例四、样品制备

将蛋白质样品与5×样品缓冲液在一个eppendorf管中混合，放入100℃加热5-10min，常温12000g离心3min，取上清点样。

实施例五、电泳

操作步骤

(1)将玻璃板、样品梳用洗涤剂洗净，用ddh2o冲洗数次，晾干；

(2)安装玻璃板；

(3)按如下体积配制10％分离胶15ml(配制两块胶)，混匀；

(4)向玻璃板间灌制分离胶，立即加入1mlddh2o压平胶面，大约20min后胶即可聚合；

(5)按如下体积配制5％浓缩胶5ml(配制两块胶)，混匀；

(6)将上层ddh2o倾去，滤纸吸干，灌制浓缩胶，插入样品梳；

(7)装好电泳系统，加入电泳缓冲液，上样5-10μl；

(8)恒流40ma，溴酚蓝跑出分离胶30min后，停止电泳；

(9)卸下胶板，剥离胶，染色，照胶。

实施例六、考马斯亮蓝染色

试剂配制

考马斯亮蓝r250染色液：0.25％考马斯亮蓝r250(w/v)，45％甲醇(v/v)，10％冰乙酸；

脱色液(1000ml)：100ml冰乙酸，250ml乙醇，蒸馏水补足至1000ml。

染色步骤

室温染色45min-60min(或微波炉快染，高火20s，两次)；用蒸馏水清洗3-5遍；加入脱色液，置于100rpm摇床上脱色，每20min更换一次脱色液至胶透明，脱色完成后，用umaxpowerlook2100xl扫描仪进行照胶。

实施例七、酶促反应

以ggpp为底物的酶促反应

取实施例二、步骤(7)获得的浓缩重组cps蛋白上清进行酶促反应。并以pmal-c2x空载体、pmal-c2x-atcps、pet32a(+)-smcps1转化大肠杆菌transb(de3)表达感受态细胞，所破碎浓缩得到的重组蛋白上清进行酶促反应作为对照。

酶促反应体系如下：

浓缩重组蛋白上清182μl

底物ggpp(200μm)18μl

反应产物充分混合(枪头吹打)，在室温(25℃)、黑暗的环境下反应2h；反应结束后用正己烷抽提3次，每次加入0.5ml，弃有机相，留水相(留一层正己烷覆盖水相，防止产物氧化)；然后用n2将水相中的正己烷彻底吹干，以免影响下一步的脱磷反应。

脱磷反应体系如下：

反应产物充分混合(枪头吹打)，在37℃下反应4h；脱磷后的产物再用正己烷抽提3次，每次加入0.5ml，将抽提所得有机相汇合在一起；用n2将提取液吹干，并加入60μl正己烷溶解，用于gc-ms分析。

以cpp为底物的酶促反应

对twks进行功能分析的酶促反应是以经cps酶催化ggpp所产生的产物(cpp)作为反应底物，分析twks酶催化所得产物的化学结构，从而鉴定twks功能。具体实验过程如下：

(1)配制如下酶促反应体系，在室温(25℃)黑暗条件下反应2小时，使ggpp充分转化成cpp；

浓缩重组ks蛋白上清182μl

底物ggpp(200μm)18μl

(2)向上述反应混合液中加入等体积的twks酶，并补充mgcl2至10mm，在室温(25℃)黑暗条件下，反应过夜(12-16h)；

(3)反应结束后，体系用正己烷抽提3次(每次0.5ml)，所得正己烷相用n2吹干，然后加入60μl正己烷溶解进行gc-ms分析。

实施例八、反应产物gc-ms检测

gc-ms分析条件为：取1μl的进样，无分流的模式下，50℃保持2min，20℃·min-1升至300℃，保持20min；进样口温度250℃，离子源温度250℃，电子能量70ev，对样品进行20-650m/z范围扫描。gc-ms仪器为thermoscientific公司thermotrace1310/tsq8000gaschromatograph，色谱柱为db-5ms(30m×0.25mm)。(图5、6)

实施例九、定点突变

采用全式金试剂盒fastmutagenesissystem对twcps2、twks进行定点突变操作。

定点突变引物设计

除突变位点外，两条引物长度大约25-30bp，5’端重叠区包含15-20bp，3’端延伸区包含至少10bp；突变位点位于两条引物上，分别位于正向突变引物重叠区下游、紧邻重叠区，反向突变引物5’端(见图3)。

根据以上原则设计定点突变引物，在‘dxdd’功能结构域处将twcps2dtdc(311)突变成dtdd(311)，twcps2c311d即，将twksdadt(318)突变成dadd(318)，即twkst318d；在twks第608位氨基酸处，将氨基酸a突变成m，即twksa608m，定点突变引物序列见表2。

表2定点突变引物序列

定点突变反应

定点突变反应体系：

(1)pcr反应条件：

(2)取10μlpcr产物，1.0％琼脂糖凝胶电泳检测。即使观察到多条扩增条带，如果目的条带大小正确，可继续用dmt消化及转化反应；

(3)加1μldmt酶于pcr产物中，混匀，37℃孵育1h；

(4)加入2-5μldmt酶消化产物于50μldmt感受态细胞中，轻轻混匀，冰浴30min；

(5)42℃准确热激45s，立即置于冰上2min；

(6)加入250μl平衡至室温的lb培养基，37℃225rpm培养1h；

(7)取200μl菌液涂板，37℃倒置培养过夜。

(8)蓝白菌落筛选及阳性克隆的初步筛选，方法同2.2.3.1.4，并送样测序验证能突变是否成功。

实施例十、酵母发酵

雷公藤二萜合酶真核表达载体构建

采用双酶切方法分别将二萜合酶基因twcps1、twges2及组合twcps3+twks、twcps3+twksa608m构建到真核表达载体pesc-trp上，方法同3.2.1。先将twcps1、twges2、twks、twksa608mpcr产物(纯化)及载体质粒pesc-trp用限制性内切酶进行双酶切，采用neb公司t4dna连接酶定向连接，连接产物经转化、蓝白菌落筛选及阳性克隆的初步筛选，并送样测序鉴定，得到经测序核苷酸序列无突变重组质粒pesctwcps1、pesctwges2、pesctwks及pesctwksa608m，再将twcps3pcr产物(纯化)及重组质粒pesctwks、pesctwksa608m用限制性内切酶进行双酶切，采用neb公司t4dna连接酶定向连接，连接产物经转化、蓝白菌落筛选及阳性克隆的初步筛选，并送样测序鉴定，得到经测序核苷酸序列无突变重组质粒pesc-(twcps3+twks)、pesc-(twcps3+twksa608m)。见图4，引物序列见表3。

表3构建真核表达载体引物序列

酵母感受态制备

sd-his固体平板：sd-his+2％葡萄糖+4％agar；不加agar则成为相应液体培养基；sd-his-trp固体平板：sd-his-trp+2％葡萄糖+4％agar；不加agar则成为相应液体培养基。

by-t20酵母菌是在缺陷型酵母菌株by4741(基因型：matahis3δ1leu2δ0met15δ0ura3δ0)基础上进行改造，致使其高效合成ggpp，并能回补his，故将by-t20酵母菌涂布sd-his(缺his)固体平板，30℃倒置培养72h。

采用zymoresearchfrozen-ezyeasttransformationii试剂盒做酵母感受态细胞：

(1)从sd-his平板上挑取新活化的单菌落，接种于10mlsd-his液体培养基中，30℃下振荡培养至od600＝0.8-1.0左右；

(2)室温，500g离心4min，去上清；

(3)加入10mlfrozen-ezsolution1悬浮菌体，室温，500g离心4min，去上清；

(4)加入1mlfrozen-ezsolution2悬浮菌体，分装至灭菌的1.5mlep管中，每管50μl；

(5)禁止用液氮速冻感受态细胞，应缓慢降温至-70℃(4℃，1h；-20℃，1h；-40℃，1h；-70℃保存)。

转化

(1)取0.2-1μg重组质粒(少于5μl)与50μl感受态细胞混合；

(2)加入500μlfrozen-ezsolution3，剧烈混匀；

(3)30℃孵育45min，期间在此混匀2-3次；

(4)取50-150μl孵育的菌液，涂布相应缺陷型sd平板(sd-his-trp)，晾干后，置于30℃倒置培养48-96h。

发酵

酵母质粒提取及鉴定

挑取sd-his-trp固体平板上长出来的单菌落，置于10mlsd-his-trp液体培养基中，30℃250rpm48h；提取质粒，用特异性引物pcr验证重组质粒是否转入by-t20酵母菌。

酵母质粒提取(天根公司酵母质粒小提试剂盒)：

(1)柱平衡：向吸附柱cp2中(吸附柱放入收集管中)加入500μl的平衡液bl，12000rpm离心1min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中(当天处理当天使用)；

(2)取1-5ml酵母培养物，12000rpm离心1min，尽量吸除上清(菌液较多时可以通过多次离心将菌体收集到一个离心管中)；

(3)向菌体中加入250μl溶液yp1(已加入rnasea)重悬沉淀，彻底悬浮菌体，加入直径为0.45-0.55mm的酸洗玻璃珠，涡旋振荡10min；

(4)向管中加入250μl溶液yp2，温和地上下翻转6-8次，使菌体充分混匀，室温放置5-10min(避免剧烈震荡，以免污染基因组dna)；

(5)向管中加入350μl溶液yp3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀，12000rpm离心20min；取上清部分，再次离心12000rpm离心20min，以得到无微小白色沉淀的上清液；

(6)小心将上清液加入吸附柱cp2中(吸附柱放入收集管中)，12000rpm离心1min，倒掉废液，将吸附柱cp2放入收集管中；

(7)向吸附柱cp2中加入500μl缓冲液pd，12000rpm离心1min，倒掉废液；

(8)向吸附柱cp2中加入600μl漂洗液(已加入无水乙醇)，12000rpm离心1min，倒掉废液，将吸附柱cp2放入收集管中；

(9)重复步骤8；

(10)将吸附柱cp2放入收集管中置于12000rpm离心2min，去除残余的漂洗液；

(11)将吸附柱cp2置于一个干净的1.5mlep管中，向吸附膜的中间部位滴加50-100μlddh2o，室温放置2min，12000rpm离心2min将质粒溶液收集到ep管中，保存-20℃。

所提取得质粒用于pcr鉴定重组质粒是否转入by-t20酵母菌中。

pcr反应体系：

pcr反应条件：

(备注：＊表示pcr产物的片段＞3kb，且每加1kb则延伸温度延长1min)

1.0％琼脂糖凝胶电泳检测，若出现目的片段条带，则可以证明重组质粒成功转入菌体。

半乳糖诱导发酵

诱导型sd-his-trp液体培养基：sd-his-trp+2％半乳糖(过滤除菌)

(1)将pcr鉴定的阳性菌液(即重组质粒成功转入的by-t20酵母菌)，转接入50mlsd-his-trp液体培养基中，30℃250rpm培养12-16h；

(2)室温5000g5min离心收集菌体，转接到100ml诱导型sd-his-trp液体培养基中，30℃250rpm诱导72h；

发酵产物提取

目标成分为萜类化合物，脂溶性，易溶于正己烷，因此选取正己烷为溶剂萃取目标萜类化合物。萃取步骤如下：

(1)收集发酵完成菌液，加入等体积的正己烷；

(2)超声破菌1h，期间多次振荡混摇；

(3)分液漏斗萃取两次；混合两次的萃取液，加入适量的无水硫酸钠(120℃烘干30min)，边加边摇，出去萃取液的水分；

(4)旋转蒸发仪上浓缩至近干，

(5)吸取浓缩液，过0.22μmptfe针头滤器，过滤液储存于液相小瓶中，封口膜密闭，保存于4℃冰箱。

提取物gc-ms检测

gc-ms分析条件为：取1μl的进样，无分流的模式下，50℃保持2min，20℃·min-1升至300℃，保持20min；进样口温度250℃，离子源温度250℃，电子能量70ev，对样品进行20-650m/z范围扫描。gc-ms仪器为thermoscientific公司thermotrace1310/tsq8000gaschromatograph，色谱柱为db-5ms(30m×0.25mm)。(图7、8、9)

上述说明并非对本发明的限制，本发明也并不限于上述举例。本技术领域的普通技术人员在本发明的实质范围内，作出的变化、改型、添加或替换，也应属于本发明的保护范围，本发明的保护范围以权利要求书为准。

sequencelisting

<110>首都医科大学

<120>雷公藤twks与twcps3在制备贝壳杉烷型二萜化合物中的应用

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<213>雷公藤

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<210>17

<211>32

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<213>人工序列

<400>17

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<210>18

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<400>18

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<210>19

<211>35

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<400>19

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