本发明涉及果蔬采后病害生物防治领域，尤其涉及一株用于果蔬采后病害生物防治的拜耳接合酵母(zygosaccharomycesbailii)，该菌株对苹果、葡萄、草莓、柑橘、圣女果的主要采后病害均具有显著的防治效果。
背景技术：
虽然新鲜果蔬品质劣变受诸多因素的影响，但病害是最主要的原因。其中，真菌性病害引起的腐烂变质是果实采后损失中最严重的因素。虽然可以通过农业防治、物理防治、化学防治和生物防治等很多途径进行防治果蔬采后病害，但目前的主要措施是化学防治(eckert&ogawa，1985，1988)。然而，长期使用化学农药不但导致病原菌产生耐药性而降低杀菌效果(pruskyetal.，1985；
迄今为止，国内外已经筛选出了许多对水果采后病原真菌具有明显抑菌效果的细菌、酵母菌和小型丝状真菌，其中利用拮抗酵母菌防治果实采后病害是当前已被证明的安全、高效的新技术，这主要由于大多数病原菌通过伤口入侵果实，而酵母菌主要通过与病原菌进行营养和空间竞争来防治病害，而且拮抗酵母菌能够适应低温、低氧、高二氧化碳等果实采后贮藏条件(王友升，2012)。
然而，虽然目前国内外报道的拮抗酵母菌有近百种，但大多数拮抗酵母菌的生防效果仅在少数果实上得到验证。而由于同一酵母菌的不同菌株之间的生防效果有很大差异(filonowetal.，1996)，因此，大多数拮抗酵母菌的缺乏抑菌谱广、效果稳定的菌株。
技术实现要素：
针对上述技术难题，本发明的目的在于提供一株用于果蔬采后病害生物防治的抑菌谱广、效果稳定的拜耳接合酵母zygosaccharomycesbailii及其制备和使用方法。该种用于果蔬采后病害生物防治的拜耳接合酵母zygosaccharomycesbailiiby39，在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为cgmccno.14912。
该拜耳接合酵母菌株进行果蔬采后病害防治和贮藏保鲜的方法，按照以下步骤进行：将拜耳接合酵母活化，用ypd液体培养基发酵培养，离心得到菌体，将菌体用无菌水配制成浓度为1×108细胞/ml的菌悬液；将苹果、葡萄、草莓、柑橘和圣女果等果蔬放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干；放入保鲜盒中，密封后，放入常温贮藏。
该拜耳接合酵母by39的制备方法为，将菌株从-80℃冰箱取出，用ypda培养基活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min收集菌体，用无菌水洗3遍。所述ypda培养基是：酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min。
所述的拜耳接合酵母菌株可同时用于控制苹果黑斑病，葡萄灰霉病、曲霉病和镰孢霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。
本发明所提供的菌株是从自然发酵的酿酒葡萄醪液中筛选分离到的对苹果、葡萄、草莓、柑橘、圣女果采后病害具有显著防治效果的拜耳接合酵母by39，可广泛用于果蔬采后病害的防治，减少采后病害造成的损失，具有很好的应用前景。
本发明的优点：(1)本发明所提供的拜耳接合酵母by39为本实验室从葡萄酒发酵醪液中筛选得到，其对人体无害，安全性高。(2)本发明所使用的拜耳接合酵母by39抑菌谱广，可以同时控制苹果黑斑病，葡萄灰霉病、曲霉病和镰孢霉病，草莓灰霉病和曲霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。(3)本发明所提供的拜耳接合酵母by39在ypd培养基中生长良好，易于培养，性状稳定，且单独使用一定浓度该菌悬液就能有效防治多种果蔬采后病害，使用成本低，市场前景广阔。(4)本发明所提供的拜耳接合酵母by39可以代替化学杀菌剂防治水果采后病害，避免使用化学杀菌剂对人的危害，且不污染环境，社会和生态效益显著。
通过以下实施实例更加详细的说明本发明。以下实施实例仅是说明性的，本发明并不受这些实施实例的限制。
附图说明
图1为本发明拜耳接合酵母zygosaccharomycesbailiiby39的26srdnad1/d2区核酸序列进化关系图。
图2为拜耳接合酵母by39对苹果黑斑病的抑制效果。注：control：无菌水，即对照组；z.b：1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。不同字母代表差异显著(p＜0.05)。
图3为拜耳接合酵母by39对葡萄灰霉病、曲霉病和镰孢霉病的抑制效果。注：control：无菌水，即对照组；z.b：1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。不同字母代表差异显著(p＜0.05)。
图4为拜耳接合酵母by39对草莓灰霉病和曲霉病的抑制效果。注：control：无菌水，即对照组；z.b：1×108细胞/ml的拜耳接合酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(p＜0.05)。
图5为拜耳接合酵母by39对柑橘青霉病的抑制效果。注：control：无菌水，即对照组；z.b：1×108细胞/ml的拜耳接合酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(p＜0.05)。
图6为拜耳接合酵母by39对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果。注：control：无菌水，即对照组；z.b：1×108细胞/ml的拜耳接合酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(p＜0.05)。
具体实施方式
实施例1：拜耳接合酵母zygosaccharomycesbailii菌株by39的生物学特性
1.形态学特征
(1)ypda培养基(酵母浸粉1％，蛋白胨2％，葡萄糖2％，琼脂1.8％，121℃灭菌20min)上26℃培养48h，菌落呈圆形、白色，菌落边缘光滑圆润。细胞形态呈椭球型。
(2)在ypda液体培养基中培养24h后，不形成醭，菌液浑浊，有沉淀，镜检酵母细胞呈椭圆形，芽殖。
2.分子生物学鉴定
以通用正向引物nl-1(5’-gcatatcaataagcggaggaaaag-3’)和反向引物nl-4(5’-ggtccgtgtttcaagacgg-3’)进行pcr扩增酵母26srdnad1/d2区核酸序列，将pcr产物的测序结果输入网站www.ncbi.nlm.nih.gov进行blast，从genbank数据库中下载同源序列，通过mega6软件构建进化树如图1，确定筛选到的菌株为拜耳接合酵母(zygosaccharomycesbailii)。
本发明的拜耳接合酵母by39已保藏于中国北京市朝阳区北辰西路1号院3号的中国科学院微生物研究所的中国微生物菌株保藏委员会普通微生物中心，保藏时间为2017年11月15日，保藏编号为cgmccno.14912，建议的分类命名为拜耳接合酵母zygosaccharomycesbailii。
实施实例2拜耳接合酵母by39对苹果黑斑病的抑制效果
1.实验方案
将拜耳接合酵母by39从-80℃冰箱取出，用ypda培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。
将链格孢菌(alternariatenuissima)在pda培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/ml的链格孢菌孢子悬浮液。
将健康无损的苹果果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打5个孔，表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μl以下处理液：(1)1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μl链格孢菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价拜耳接合酵母by39的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计苹果的发病率结果如图2所示，对照组苹果黑斑病发病率为100％，经过拜耳接合酵母by39处理的苹果黑斑病发病率为80％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制苹果黑斑病病害。
实施实例3拜耳接合酵母by39对葡萄采后病害的抑制效果
1.实验方案
将拜耳接合酵母by39从-80℃冰箱取出，用ypda培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。
将灰霉菌(botrytisporri)、刺孢曲霉(aspergillusaculeatus)或芬芳镰孢菌(fusariumredolens)在pda培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/ml的灰霉菌、刺孢曲霉或芬芳镰孢菌孢子悬浮液。
将健康无损的梨果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μl以下处理液：(1)1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μl灰霉菌、刺孢曲霉或芬芳镰孢菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价拜耳接合酵母by39的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计葡萄果实的发病率结果如下：
(1)拜耳接合酵母by39对葡萄果实灰霉病的抑制效果
如图3所示，对照组葡萄果实灰霉病发病率为100％，经过拜耳接合酵母by39处理的葡萄果实灰霉病发病率为0，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制葡萄果实灰霉病病害。
(2)拜耳接合酵母by39对葡萄果实曲霉病的抑制效果
如图3所示，对照组葡萄果实曲霉病的发病率为100％，经过拜耳接合酵母by39处理的葡萄果实曲霉病发病率为46％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制由造成的葡萄果实曲霉病病害。
(3)拜耳接合酵母by39对葡萄果实镰孢霉病的抑制效果
如图3所示，对照组葡萄镰孢霉病的发病率为100％，经过拜耳接合酵母by39处理的葡萄镰孢霉病发病率为80％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制葡萄镰孢霉病病害。
实施实例4拜耳接合酵母by39对草莓果实灰霉病和曲霉病的抑制效果
1.实验方案
将拜耳接合酵母by39从-80℃冰箱取出，用ypda培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。
将灰霉病菌(botrytisporri)或刺孢曲霉(aspergillusaculeatus)在pda培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/ml的灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。将健康无损的草莓果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μl以下处理液：(1)1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μl灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价拜耳接合酵母by39的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计草莓果实的发病率结果如下
(1)拜耳接合酵母by39对草莓果实灰霉病的抑制效果
图4所示，对照组草莓果实灰霉病发病率为80％，经过拜耳接合酵母by39处理的草莓果实灰霉病发病率为30，因此拜耳接合酵母能够有效控制草莓果实灰霉病病害。
(2)拜耳接合酵母by39对草莓果实曲霉病的抑制效果
图4所示，对照组草莓果实曲霉病发病率为60％，经过拜耳接合酵母by39处理的草莓果实曲霉病发病率为0，因此拜耳接合酵母能够有效控制草莓果实曲霉病病害。
实施实例5拜耳接合酵母by39对柑橘青霉病的抑制效果
1.实验方案
将拜耳接合酵母by39从-80℃冰箱取出，用ypda培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。
将青霉病菌(penicilliumitalicum)在pda培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/ml的青霉病菌(孢子悬浮液。
将健康无损的草莓果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μl以下处理液：(1)1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μl青霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价拜耳接合酵母by39的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计柑橘果实的发病率结果如图5所示，对照组柑橘果实青霉病发病率为73％，经过拜耳接合酵母by39处理的柑橘果实青霉病发病率为60％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制柑橘果实青霉病病害。
实施实例6拜耳接合酵母by39对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果
1.实验方案
将拜耳接合酵母by39从-80℃冰箱取出，用ypda培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然ph，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至ypd液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液。
将灰霉病菌(botrytisporri)或刺孢曲霉(aspergillusaculeatus)在pda培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/ml的灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。将健康无损的圣女果用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔，表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μl以下处理液：(1)1×108细胞/ml的拜耳接合酵母by39菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μl灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价拜耳接合酵母菌株by39的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计圣女果发病率结果如下：
(1)拜耳接合酵母by39对圣女果灰霉病的抑制效果
如图6所示，对照组圣女果灰霉病发病率为100％，经过拜耳接合酵母by39处理的圣女果灰霉病发病率为60％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制由灰霉病菌造成的圣女果灰霉病病害。
(2)拜耳接合酵母by39对圣女果曲霉病的抑制效果
如图6中所示，对照组圣女果曲霉病的发病率为90％，经过拜耳接合酵母by39处理的圣女果曲霉病发病率为20％，因此拜耳接合酵母by39能够有效控制圣女果曲霉病病害。