一种瓶植蛹虫草制备活体虫草酒的环境因子控制方法与流程

文档序号:14378761阅读:325来源:国知局
本项发明专利涉及一种瓶植蛹虫草制备活体蛹虫草酒的技术,属食用菌种植加工业。
背景技术
:众所周知,蛹虫草是一种食用药用真菌,根据几年的研究和应用可以证明,常食蛹虫草有助于提高免疫力、促进微循环和促进新陈代谢的作用。据现代科学试验和化验分析,蛹虫草中含有的虫草素、虫草酸、虫草多糖等物质,有明显的降低血压、降血糖、降血脂的作用及防癌、抗癌的功能。白酒属于有机溶剂,用白酒去浸泡新鲜的蛹虫草子实体,蛹虫草中的活性物质更易被浸出。因而,多年来人们一直渴望用白酒去浸泡活体蛹虫草。用白酒去浸泡活体蛹虫草,不但蛹虫草子实体中的有效成分易被浸出,利于食用者的吸收利用,同时又是酒文化的传承,从另一个方面讲,又是酒文化的创新。当前保健品众多,良莠不齐,广大消费者很难放心。活体蛹虫草酒,活体虫草原本就生长在瓶中,即是美丽的又是生态,广大消费者看得清、摸得着、食用放心,创新了一种新型保健品。瓶栽式活体蛹虫草虽然有这么多益处,但蛹虫草有受自然条件制约性强的特性,利用瓶栽在质量和产量上都不如盘栽的好,由于瓶栽产量低、质量差,这就影响到产业的利润空间,因而瓶栽活体蛹虫草项目,难以大面积推广。技术实现要素:为解决现有技术的问题,本发明从15个因素上分析了瓶栽同盘栽的差异根本原因,提供一种瓶栽制备活体蛹虫草酒一整套方法,使活体蛹虫草酒成为现实。本发明的目的通过以下技术方案来实现:一种瓶植蛹虫草制备活体虫草酒方法,包括以下步骤:(1)按照液体菌种配方称取原料,经过高压灭菌后冷却至30℃;(2)120g蛹虫草菌种加至100l液体菌种配方中,23~25℃培养72~100小时;(3)按照固体培养基配方称取原料,搅拌均匀制备固体培养基;(4)按照营养液配方称取原料,搅拌均匀制备营养液;(5)将50g固体培养料和71ml营养液装入瓶内,经过高压灭菌后冷却至30℃;将8ml步骤(2)获得的液体菌种接入到瓶内;(6)菌丝培养阶段:将瓶于23~25℃,湿度65%~70%的黑暗环境中培养至发菌结束;(7)子实体原基分化阶段:22℃,8小时,湿度:75~95%,强化通气的光谱环境中培养至菌丝穿透培养基为准;(8)子实体生长阶段:将瓶于15~18℃,湿度:75~95%,光照:200~300lx的环境中培养至子实体成熟;(9)用蒸馏水冲洗瓶内,注入白酒。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述瓶底规格为9cm~11cm。根据上文的技术方案,更为优选的情况下,所述瓶底规格为10cm。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(1)中的液体菌种配方:葡萄糖粉10克,酵母粉1克,磷酸二氢钾2克,硫酸镁1克,蚕蛹粉3克,维生素b125毫克,蛋白胨12克,土豆100g/300ml。所述土豆100g/300ml为将土豆100g加入到300ml水中煮汁,高温灭菌。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(1)中的高压灭菌条件为:压力0.12mpa,时间30分钟。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(3)中的固体培养基配方:高粱70重量份,小麦30重量份。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(4)中的营养液配方:葡萄糖粉10克,鸡蛋清50ml,蛋白胨12克,维生素b125毫克,蚕蛹粉5克,硫酸镁1克,磷酸二氢钾2克,酵母粉2克,水100毫升。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(5)中的高压灭菌条件为:压力0.15mpa,时间60分钟。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(7)中的强化通气的风速为1.5~5.5m/s。根据上文的技术方案,更为优选的情况下,所述步骤(7)中的强化通气的风速为3.5m/s。根据上文的技术方案,优选的情况下,所述步骤(7)中光谱选自白炽灯、红光、黄光、蓝光、紫光或蓝紫光。本发明的有益效果:本发明通过环境因子控制方法从通气的影响、光照的影响、温差变化的影响和湿差的影响角度分析了瓶栽同盘栽的差异根本原因,并提出了相应的对策。(1)通气的影响采用瓶栽,因栽培容器改变了也影响到了环境的变化,瓶栽同传统的盘式栽培比较,一个重大的区别是通气环境,盘式栽培发菌结束后,进入子实体分化阶段,打开盘上的塑料布,盘面全部暴露在空气中,菌丝料面接触空气即直接又面积大,可谓通气良好,而瓶式栽培,因有瓶颈效应,通气就没有盘式栽培面积大,经用希玛ar866r热敏式针型风速仪测定盘表面风速2.5m/s时,瓶中风速只有0.2m/s,可见差距之大。根据两种栽培容器通气条件影响的不同力度,提出强化通气的方法,在刺激子实体原基分化阶段。(2)光照的影响传统栽培光照面积大且又直接,而瓶式栽培,有瓶颈和玻璃的影响,光照也受到影响。根据两种栽培容器对光的敏感程度及影响,对瓶栽容器的光照进行了研究,创造出蓝紫光的最佳照度。(3)温差变化的影响蛹虫草生长发育期间,需要温差刺激,但瓶栽同盘栽相比较,由于栽培容器不一样,这样受温差变化的影响度也不一样。盘栽的,当栽培场所温度变化2小时后,品温就同环境的温度达到同值。而瓶栽时,要达到品温与环境温度同值的时间需要4小时。根据观察栽培容器的不同,温差变化有很大差异,差异的时间是2小时,因而在瓶栽时,制造温差的时间再增加2小时。(4)湿差的影响瓶栽不同盘栽,由于栽培容器不同,湿度的影响力度也不一样,通过用针插式湿度计检验,湿差平衡的时间也需要30分钟。根据观察栽培容器的不同,湿差变化有差异的实际问题,制造湿差时,要减少5%,实际操作为盘栽的,湿差由95%降到80%时,瓶栽由95%降到75%。新鲜蛹虫草含有丰富的虫草多糖、虫草素、虫草酸和一些活性物质,常食之有防癌、治癌、降低血糖、降低血压,调节微循环,促进人体新陈代谢的功能,以及延缓衰老,美容养颜,清除人体自由基的作用。酒是有机溶剂,又是人们日常所饮用的饮品,人们一直想把新鲜蛹虫草放置酒中,制成新鲜活体蛹虫草酒。这样不经烘干阶段,有机物浸出的更多,并减少损耗。只有将酒置于新鲜的活体蛹虫草上,才能制成活体蛹虫草酒。本发明经广泛的研究、试验,通过在蛹虫草子实体生长期间风速3.5m/s,蓝紫光光谱照射,加大制造温差,加大并延长温差的新技术解决了这些难题,使活体蛹虫草达到了集饮用、观赏、保健为一体的效果,促进了农业供给侧结构的调整和酒文化的新提升。具体实施方式下述非限定性实施例可以使本领域的普通技术人员更全面地理解本发明,但不以任何方式限制本发明。实施例1一种瓶植蛹虫草制备活体虫草酒方法,包括以下步骤:(1)按照液体菌种配方称取原料,经过高压灭菌,压力0.12mpa,时间30分钟,冷却至30℃;所述液体菌种配方:葡萄糖粉10克,酵母粉1克,磷酸二氢钾2克,硫酸镁1克,蚕蛹粉3克,维生素b125毫克,蛋白胨12克,土豆100g/300ml;所述土豆100g/300ml为将土豆100g加入到300ml水中煮汁,高温灭菌;(2)无菌操作下100l液体菌种培养器接入20×200mm试管种12支(蛹虫草共120g),23~25℃培养72~100小时;(2)按照固体培养基配方称取原料,搅拌均匀制备固体培养基;所述固体培养基配方:高粱70克,小麦30克;(4)按照营养液配方称取原料,搅拌均匀制备营养液;所述营养液配方:葡萄糖粉10克,鸡蛋清50ml,蛋白胨12克,维生素b125毫克,蚕蛹粉5克,硫酸镁1克,磷酸二氢钾2克,酵母粉2克,水100毫升;(5)将固体培养料和营养液装入瓶内,每瓶装固体培养料量50克,每瓶营养液量71毫升,经过高压灭菌,压力0.15mpa,时间60分钟,冷却至30℃;无菌操作下将步骤(2)获得的液体菌种接入到瓶内,每瓶接种量8ml;(6)菌丝培养阶段:将瓶于23~25℃,湿度:65%~70%的黑暗环境中培养至发菌结束;(7)子实体原基分化阶段:制造温差,比常规大于2℃,并延长2小时(22℃,8小时),湿度:75~95%,强化通气的蓝紫光光谱环境中培养至菌丝穿透培养基为准;(8)子实体生长阶段:将瓶于15~18℃,湿度:75~95%,光照:200~300lx的环境中培养至子实体成熟;(9)当子实体成熟时,用蒸馏水冲洗瓶内3次,将子实体生长期间附着在瓶内和子实体上的微粒冲掉,注入500ml(约瓶颈和瓶肚接合部)浓度52度的白酒。其中所述瓶底规格为10cm;其中步骤(6)中通风良好:co2浓度≤1000ppm;其中步骤(7)中的强化通气的方法,在刺激子实体子实体原基分化阶段,分别设4个处理:处理1:风速1.5m/s;处理2:风速2.5m/s;处理3:风速3.5m/s;处理4:风速5.5m/s;经比较,处理4风速5.5m/s的子实体原基分化最多,但成菇率低;处理3风速3.5m/s的原基分化少于处理4,但成菇率高于处理4,总体评价,处理3差异较显著。虽然注入的是52度的白酒,但培养基的含水量达65%,子实体的含水量达90%,浸泡20天后,酒的浓度略有下降。实施例2一种瓶植蛹虫草制备活体虫草酒方法,包括以下步骤:(1)按照液体菌种配方称取原料,经过高压灭菌,压力0.12mpa,时间30分钟,冷却至30℃;所述液体菌种配方:葡萄糖粉10克,酵母粉1克,磷酸二氢钾2克,硫酸镁1克,蚕蛹粉3克,维生素b125毫克,蛋白胨12克,土豆100g/300ml;所述土豆100g/300ml为将土豆100g加入到300ml水中煮汁,高温灭菌;(2)无菌操作下100l液体菌种培养器接入20×200mm试管种12支(蛹虫草共120g),23~25℃培养72~100小时;(2)按照固体培养基配方称取原料,搅拌均匀制备固体培养基;所述固体培养基配方:高粱70克,小麦30克;(4)按照营养液配方称取原料,搅拌均匀制备营养液;所述营养液配方:葡萄糖粉10克,鸡蛋清50ml,蛋白胨12克,维生素b125毫克,蚕蛹粉5克,硫酸镁1克,磷酸二氢钾2克,酵母粉2克,水100毫升;(5)将固体培养料和营养液装入瓶内,每瓶装固体培养料量50克,每瓶营养液量71毫升,经过高压灭菌,压力0.15mpa,时间60分钟,冷却至30℃;无菌操作下将步骤(2)获得的液体菌种接入到瓶内,每瓶接种量8ml;(6)菌丝培养阶段:将瓶于23~25℃,湿度:65%~70%的黑暗环境中培养至发菌结束;(7)子实体原基分化阶段:制造温差,比常规大于2℃,并延长2小时(22℃,8小时),湿度:75~95%,强化通气的不同光谱环境中培养至菌丝穿透培养基为准;(8)子实体生长阶段:将瓶于15~18℃,湿度:75~95%,光照:200~300lx的环境中培养至子实体成熟;(9)当子实体成熟时,用蒸馏水冲洗瓶内3次,将子实体生长期间附着在瓶内和子实体上的微粒冲掉,注入500ml(约瓶颈和瓶肚接合部)浓度52度的白酒。其中所述瓶底规格为10cm;其中步骤(6)中通风良好:co2浓度≤1000ppm;其中步骤(7)中的强化通气为风速3.5m/s;步骤(8)中通风良好,风速3.5m/s;其中步骤(7)中不同光谱照射环境的制备方法如下:选择发满菌的菌瓶777瓶(已发菌结束,菌丝刚刚长满菌料,菌丝长满程度基本一致),将777瓶分别置于床架上,每111瓶为一组,为一个小区,共7个小区,7个小区分别隔离,用黑红布遮掩互不透光,分别照射7天,白日照射,晚间关闭,照射7天后观察子实体原基分化率,结果如表1所示,分化率的比较依次是处理6、处理2、处理5和处理7(对照组)、处理4、处理3、处理1,得出蓝紫光为最佳照度。表1不同光谱照射培养的子实体原基分化率试验光谱子实体原基分化率处理115w白炽灯泡49%处理215w红灯泡73%处理315w黄灯泡51%处理415w蓝灯泡68%处理515w紫灯泡71%处理615w蓝紫灯泡75%处理7(对照组)正常光71%虽然注入的是52度的白酒,但培养基的含水量达65%,子实体的含水量达90%,浸泡20天后,酒的浓度略有下降。实施例3将蛹虫草在培养基中培养,研究其投量、产量及其比值(即生物学效率)的关系,找出了最佳投量值。本试验采用梯度法,分别设6个处理,每处理75次重复,其结果如表2所示,经生物统计法统计产量比较:处理6鲜草产量54.1g,产量最高,但生物学率90.1%,低于处理5,处理5生物学效率91.6%,高于处理6,处理5生物学效率最高;生物学效率的比较:处理6生物学效率90.1%,处理5的生物学效率最高91.6%,本发明研究出了容量与产量的比值关系,最佳值为每瓶容量55g。表2培养基投量、产量及其比值关系当前第1页12
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