本发明属于甾族化合物制备技术领域，具体涉及一种生长细胞转化植物甾醇制备a环降解物的方法。
背景技术：
近代，有关使用微生物法转化植物甾醇制备甾体中间体的研究成果被广泛报道和研究，相关报道最早可追溯到1937年，mamoli和vercellone在他们发表的两篇专利ber.70470和ber.702079中，公开了通过酵母发酵将17-酮-类固醇还原成17-β-羟类固醇。此后，peterson和murray在美国专利n0.2602769中公开一种用根霉属真菌产生孕酮的11-a-羟化方法。1972年，kraychy等在美国专利n0.3684657中公开了用mycobacteriumsp.nrrlb-3683降解17位脂肪链制备4-ad，add的方法。1973年，marsheck等在美国专利n0.3759791中公开了用mycobacteriumsp.nrrlb-3805，以胆甾烷等17位有8个以上碳原子的甾体原料制备4-ad。
a环降解物是合成雌酚酮和雌二醇及其衍生物的重要中间体，但转化过程中甾核a环、b环开环，非常容易降解，产品难以积累，从而难以达到产业化标准。a环降解物在国内目前主要利用微生物在油相中转化植物甾醇生产，例如专利号为cn104404099a的专利公开了一种发酵植物甾醇生产a环降解物的方法，在发酵转化中用到大豆油，提取困难，废油难以处理且环境影响大。
技术实现要素：
有鉴于此，本发明的目的是一种生长细胞转化植物甾醇制备a环降解物的方法，可以减少废油产生和缩短转化时间，提高a环降解物的产率和纯度。
为了解决上述技术问题，本发明所采用的技术方案如下:
本发明提供一种生长细胞转化植物甾醇制备a环降解物的方法，包括以下步骤：
(1)生长细胞转化：将偶发分枝杆菌(mycobacteriumfortuitum)nk-xhx-103菌种经过斜面培养和液体种子培养后接种至转化培养基中，得到发酵产物；
(2)分离提取：转化完成后进行过滤，滤液调酸至ph＝2.0，用氯仿提取分层，水层用氯仿再萃取2次，分层，氯仿层合并减压浓缩，得a环降解物粗品；
(3)精制：所述a环降解物粗品进行精制提纯，得到a环降解物产品。
优选地，偶发分枝杆菌(mycobacteriumfortuitum)nk-xhx-103的保藏编号是cctccm2013543。
优选地，所所述步骤(1)中nk-xhx-103菌种种子培养的方法包括以下步骤：
(1)斜面培养：培养基配方：蛋白胨0.1-10g/l，酵母膏0.1-10g/l，葡萄糖0.1-10g/l，磷酸氢二钠0.1-10g/l，琼脂20g/l；ph＝7.5-8.0，121℃灭菌30分钟；
(2)一级种子培养：培养基配方：蛋白胨0.1-10g/l，酵母膏0.1-10g/l，葡萄糖0.1-10g/l，磷酸氢二钠0.1-10g/l，接种后，于30℃，30℃，200rpm摇床培养48h；
(3)二级种子培养：培养基配方：蛋白胨0.1-10g/l，酵母膏0.1-10g/l，葡萄糖0.1-10g/l，磷酸氢二钠0.1-10g/l，ph＝7.5-8.0，121℃灭菌30分钟；将一级种子液按体积比10％接种至二级种子培养基，接种后，于30℃，200rpm摇床培养48h；
优选地，步骤(1)所述的发酵基础培养基的配方：玉米浆1-6％，硝酸钠0.1-0.6％，磷酸氢二铵0.01-0.08％，ppe0.1-0.2％，植物甾醇1-10％，羟丙基环糊精0.1-40％；121℃灭菌30分钟。
优选地，所述植物甾醇粉碎至200目。
优选地，所述步骤(4)分离提取方法具体为：将转化完的菌液进行抽滤或离心，去除其中的菌体，滤液加入20％硫酸调ph至2.0，搅拌30分钟；加入20％体积的氯仿，搅拌萃取30分钟，静置8h以上，分层；下层氯仿层分出减压浓缩至干；上层水层加入发酵液20％体积的氯仿再重复萃取2次，得到的氯仿层合并，继续减压浓缩，加水0.05v(相对与发酵液)，带干氯仿，浓缩成糊状；将浓缩得到的物质加入4v(相对于底物量)甲苯升温至60℃减压浓缩至小体积，降温至0-4℃过滤，滤饼用少量甲苯淋洗，抽滤干，滤饼挖出，70℃烘干。
优选地，所述步骤(3)精制方法具体为：将提取得到的粗品，加入甲醇2v(相对于底物量)，活性炭0.05w，升温60℃搅拌脱色2h，过滤，并用少量甲醇洗碳；在60℃减压浓缩至干，加少量水带干残余的甲醇，加入4v甲苯，减压浓缩，带出其中的水分并浓缩至1v左右，冷却至0-4℃，养晶2h，抽滤并淋洗，70℃烘干。
本发明的有益效果在于：
(1)本发明的植物甾醇无油转化a环降解物的方法转化时间短，产品收率和hplc纯度高，经济效益好，更适合产业化生产。
(2)本发明的制备方法还能减少化学试剂的使用，减少污染物的产生，有利于环境保护。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合本发明实施例，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
下述实施例中所用植物甾醇为β-谷甾醇，购自四川省维克奇生物科技有限公司。保藏编号为cctccm2013543的偶发分枝杆菌(mycobacteriumfortuitum)nk-xhx-103保藏于中国典型培养物保藏中心。
以下通过实施例对本发明作进一步阐述，但不作为对本发明的限定。
实施例1种子培养
(1)斜面培养
配方：蛋白胨0.1-10g/l，酵母膏0.1-10g/l，葡萄糖0.1-10g/l，磷酸氢二钠0.1-10g/l，琼脂：20g/l，ph＝7.5-8.0。
121℃灭菌30分钟。凝固成型后，在无菌条件下接入分枝杆菌。
接种后，30℃培养4天，入4℃冰箱保存，保存时间不超过1个月。
(2)摇瓶种子培养
配方：蛋白胨0.1-10g/l，酵母膏0.1-10g/l，葡萄糖0.1-10g/l，磷酸氢二钠0.1-10g/l，ph＝7.5-8.0。121℃灭菌30分钟。冷却至室温。
一级培养：在无菌条件下接种，接种量：每100毫升刮取1环斜面菌体。接种后，30℃，200rpm摇床培养48h。
二级培养：在无菌条件下接种，接种量：10％。接种后，30℃，200rpm摇床培养48h。
实施例2发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆5.4％，硝酸钠0.54％，磷酸氢二铵0.06％，ppe0.1％，200目植物甾醇1％，羟丙基环糊精0.1％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。
121℃灭菌30分钟，冷却至室温，于无菌条件下接种，接种量：20％。
摇瓶转化条件：30℃，200rpm，转化时间160h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率33.1％。
(3)提取
转化完成，80℃灭活30分钟，冷却至30℃，过滤，滤饼用少量清水淋洗。滤液加20％硫酸调ph至2.0左右，搅拌30分钟，加入1.2升氯仿，搅拌萃取30分钟，静置2h，分层。上层水相用氯仿再萃取2次，每次使用1.2升氯仿；下层氯仿分出，减压浓缩至小体积，加水300毫升，带干氯仿，浓缩成糊状，加入240毫升甲苯，60-80℃减压浓缩，带出体系中的水分，降温0-4℃，慢搅拌养晶2h，离心。滤饼用少量4℃冷甲苯淋洗，离心甩干，出料，70℃烘干，得白色晶体，液相归一含量为98.54％。
(4)精制
提取得到的a环降解物粗品加入甲醇120毫升，活性炭3克，升温60℃搅拌脱色2h，过滤，并用少量甲醇洗碳；60℃减压浓缩至干，加少量水带干残余的甲醇，加入240毫升甲苯，减压浓缩，带出其中的水分并浓缩至60毫升左右，冷却至0-4℃，养晶2h，抽滤并淋洗，70℃烘干。收白色针状晶体，归一含量99.11％。
实施例3发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆1％，硝酸钠0.1％，磷酸氢二铵0.01％，ppe0.1％，200目植物甾醇2％，羟丙基环糊精1％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间96h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率32.5％。
(3)提取和精制
按照实施例2的提取和精制方法进行后处理，除提取氯仿用量与实例2保持一致，其它试剂用量均为实例2的2倍，得白色针状晶体，液相归一含量为99.32％。
实施例4发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆5.4％，硝酸钠0.54％，磷酸氢二铵0.06％，ppe0.1％，200目植物甾醇4％，羟丙基环糊精2％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
摇瓶转化条件：30℃，200rpm，转化时间120h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率33.1％。
(3)提取和精制
按照实施例2的提取和精制方法进行后处理，除提取氯仿用量与实例2保持一致，其它试剂用量均为实例2的4倍，得白色针状晶体，液相归一含量为99.11％。
实施例5发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆6％，硝酸钠0.6％，磷酸氢二铵0.08％，ppe0.2％，200目植物甾醇10％，羟丙基环糊精5％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间186h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率31.3％。
(3)提取和精制
按照实施例2的提取方法进行后处理，除提取氯仿用量与实例2保持一致，其它试剂用量均为实例2的10倍，得白色晶体，液相归一含量为98.35％。
实施例6发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆1％，硝酸钠0.1％，磷酸氢二铵0.01％，ppe0.1％，200目植物甾醇1％，羟丙基环糊精0.25％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间144h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率32.5％。
(3)提取
按照实施例2的提取方法进行后处理，得白色晶体，液相归一含量为99.31％。
实施例7发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆1％，硝酸钠0.1％，磷酸氢二铵0.01％，ppe0.1％，200目植物甾醇2％，羟丙基环糊精0.5％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间160h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率32.5％。
(3)提取和精制
按照实施例3的提取与精制方法进行后处理，得白色针状晶体，液相归一含量为99.14％。
实施例8发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(2)转化
转化培养基配方：玉米浆5.4％，硝酸钠0.54％，磷酸氢二铵0.06％，ppe0.1％，200目植物甾醇4％，羟丙基环糊精1％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
121℃灭菌30分钟，冷却至室温，于无菌条件下接种，接种量：20％。
摇瓶转化条件：30℃，200rpm，转化时间144h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率33.1％。
(3)提取和精制
按照实施例4的提取和精制方法进行后处理，得白色针状晶体，液相归一含量为98.73％。
实施例9发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(3)转化
转化培养基配方：玉米浆6％，硝酸钠0.6％，磷酸氢二铵0.08％，ppe0.2％，200目植物甾醇10％，羟丙基环糊精2.5％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间240h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率31.3％。
(3)提取和精制
按照实施例5的提取方法进行后处理，得白色晶体，液相归一含量为98.41％。
实施例10发酵转化
(1)种子培养
按照实例1进行种子培养；
(4)转化
转化培养基配方：玉米浆6％，硝酸钠0.6％，磷酸氢二铵0.08％，ppe0.2％，200目植物甾醇10％，羟丙基环糊精40％，ph＝7.5-8.0。接种后10升罐装样量6升。将培养好的二级种子接种入消毒好的10升罐转化培养基中，接种量20％，开始转化。
转化条件：29-30℃，200rpm，转化时间168h，tlc点板监控转化情况，待转化完毕，取样送液相检测，产品收率32.4％。
(3)提取和精制
按照实施例5的提取方法进行后处理，得白色晶体，液相归一含量为98.23％。