本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种锦鲤gtpch2基因、编码蛋白及其应用。
背景技术:
体色是鱼类的重要表型性状之一,由色素细胞形成。鱼类皮肤及鳞片中色素细胞的种类、数量和分布都会影响其体色。色素细胞由外胚层神经嵴细胞分化形成。在胚胎发育过程中,神经嵴细胞沿背腹轴分化成包括色素细胞在内的不同类型细胞。相对于哺乳动物只具有一种黑色素细胞,鱼类具有六种色素细胞,包括黑色素细胞、红色素细胞、黄色素细胞、虹彩细胞、蓝色素细胞和白色素细胞。蝶啶代谢通路在斑马鱼(daniorerio)和花鳉(poeciliareticulata)等鱼类中是调控体色变化的一条重要代谢通路。蝶啶代谢通路的终产物为黄色和微红的蝶啶色素。碟啶是由嘧啶和吡嗪环组成的杂环复合物,根据结构可以分为蝶呤和黄素两种类型。这些喋啶色素是以gtp为底物经过该通路转化而来,gtpch(gtpcyclohydrolase)是碟啶合成通路的关键酶,对黄色素、蝶啶、果蝇蝶呤等色素的合成起重要的调控作用。gtpch参与三个途径用于bh4和蝶啶色素化合物的合成:bh4的从头合成,氧化bh4的补救合成途径和参与生成黄色嘌呤色素/红色蝶啶色素。
锦鲤(cyprinuscarpiovar.koi)属于鲤科(cyprinidae)、鲤属(cyprinus),因体色丰富且组合形式多样化深受人们喜爱,是研究鱼类乃至脊椎动物体色变化的重要模式动物。目前为止,所有的锦鲤品系基本由杂交选育获得。但经杂交选育的锦鲤性状极不稳定,具有较高观赏价值的锦鲤个体很少。gtpch蛋白参与生成黄色嘌呤色素/红色蝶啶色素。通过解析gtpch2基因的功能,确定其在锦鲤黄色素和红色素形成中的作用,有助于定向培养体色遗传性状稳定的锦鲤,降低了锦鲤选育的成本,同时提高观赏鱼类的观赏性,对锦鲤乃至观赏鱼养殖业具有重要意义。
技术实现要素:
本发明的目的是提供了一种锦鲤gtpch2基因及含有该基因的重组表达载体、重组菌株及其在检测鱼类gtpch2免疫印迹、免疫组化和组织定位分布中的应用。
本发明为实现上述目的采用如下技术方案,锦鲤gtpch2基因,其特征在于:该锦鲤gtpch2基因的核苷酸序列如seqidno:2所示。
本发明克隆了锦鲤gtpch2基因,并得到了3'utr和部分5'utr。克隆的方法是常规的基因克隆方法,利用同源物种的基因比对设计简并引物,经过pcr后得到中间片段,然后根据中间片段的序列分别设计两个5'race的下游引物和两个3'race的上游引物,在利用通用引物upm-l和upm-s进行5'和3'嵌套pcr得到了gtpch2的orf、5'utr和3'utr。最后设计克隆orf的引物,pcr后把得到目的基因连接到pmd-19载体为pmd-19-gtpch2。
本发明构建了含有锦鲤gtpch2的大肠杆菌表达载体,这个载体的构建方法是按常规方法利用自己所构建的载体pmd-19-gtpch2为模板,通过pcr方法合成带有酶切接头的锦鲤gtpch2基因,经酶切和分离纯化后接入到已有的载体pet32a的相应酶切位点即bamhi和saci之间,即构建成所需的含有锦鲤gtpch2基因的表达载体pet32a-gtpch2。
本发明还用上述含有锦鲤gtpch2基因的相应表达载体构建了能高效表达锦鲤gtpch2基因的大肠杆菌重组株。
本发明的上述能表达锦鲤gtpch2大肠杆菌重组菌株由含有锦鲤gtpch2基因的表达载体pet32a-gtpch2转化大肠杆菌bl21而得到的菌株,命名为pet32a-gtpch2-bl21。
本发明还提供了利用上述大肠杆菌重组株生产锦鲤gtpch2的方法。将该菌种接种在lb液体培养基中,37℃,200转/分培养至od600达到0.4-0.6,然后加入iptg至终浓度为1mm,37℃,200转/分培养4小时后5000g离心10min收集菌体,超声破碎后12000g离心10min收集上清,经分离纯化得到重组锦鲤gtpch2蛋白。
锦鲤具有较高的经济价值,采用常规的基因工程技术,可利用本发明的锦鲤gtpch2基因重组株pet32a-gtpch2-bl21,生产重组锦鲤gtpch2蛋白,并可进一步通过免疫组化和免疫印迹的方法检测gtpch2蛋白在鱼类组织的分布和定位。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
本发明首次克隆获得锦鲤gtpch2基因,并将该基因构建表达载体和重组大肠杆菌菌株,利用重组大肠杆菌菌种在体外获得大量表达的锦鲤gtpch2蛋白,该蛋白可以用于免疫组化和免疫印迹等组织免疫学实验,检测和分析gtpch2蛋白鱼类组织中的表达和定位。
附图说明
图1是以棉鲤的反转录cdna为模板进行pcr扩增gtpch2orf产物的凝胶电泳分析图,其中,m:marker;1和2:pcr扩增产物;
图2是5'race和3'race的pcr电泳图;a是5'race第一轮产物的凝胶电泳图,其中m:marker;1:pcr扩增产物;b是3'race第一轮产物的凝胶电泳图,其中m:marker;1:pcr扩增产物;c是5'race第二轮产物的凝胶电泳图,其中m:marker;1:pcr扩增产物;d是克隆gtpch2中间片段产物的凝胶电泳图,其中m:marker;1:pcr扩增产物;e是3'race第二轮产物的凝胶电泳图,其中m:marker;1:pcr扩增产物;
图3中a是带酶切位点gtpch2的pcr扩增凝胶电泳分析图,其中,m:marker;1、2:pcr扩增产物;b是pcr扩增产物的电泳鉴定图;c是重组质粒pet32a-gtpch2的酶切鉴定凝胶电泳分析图,其中,m:marker;1:pet32a-gtpch2bamhi和saci双酶切;2:pet32a-gtpch2未酶切;
图4中a是重组株pet32a-gtpch2-bl21表达产物gtpch2的sds-page电泳分析图,其中:m:蛋白marker;1:空载;2:未诱导菌液;3:重组株pet32a-gtpch2-bl21表达产物;4:纯化后的重组株pet32a-gtpch2-bl21表达产物;b是westernblot检测gtpch2抗血清鉴定图谱;其中,m:蛋白marker;1、2、3为gtpch2在纯红锦鲤的鳍条、鳞片、皮肤的表达;4、5、6为gtpch2在纯白锦鲤的鳍条、鳞片、皮肤的表达;c是重组锦鲤gtpch2的单克隆抗体ecl显色图。
具体实施方式
以下通过实施例对本发明的上述内容做进一步详细说明,但不应该将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实施例,凡基于本发明上述内容实现的技术均属于本发明的范围。
实施例1
gtpch2基因中间片段的克隆
对已报道的尼罗罗非鱼(oreochromisniloticus),剑尾鱼(xiphophorusmaculatus),秀美花鳉(poeciliaformosa),斑马鱼(daniorerio)中所获得的gtpch2序列进行比对,找到相对保守区域,设计克隆锦鲤gtpch2序列中间片段的一对简并引物,上游引物为5'ggcagaactgaacggtttgt3',下游引物为5'ctccacgcatgaccatacac3';以锦鲤总rna反转录后的cdna为模板做pcr。pcr条件为:94℃3min;94℃30s,60℃30s,72℃2min,35个循环;72℃5min;4℃∞。pcr反应后的凝胶电泳图见图1。
实施例2
gtpch2基因5’race和3’race
根据已经获得的中间片段序列分别设计5'race和3'race各两条引物并利用通用引物upm-l和upm-s。
5'raceout引物为:
aap:5'acatcgtagatggtctcgtggtagc3'、
5'racein引物为:
r1:5'actgtcagctcgctaaagccgttac3';
3'raceout引物为:
f1:5'gatggtctcgtggtagcctttggtc3';
3'racein引物:
r15'caagcttactgaggccaacgacctt3'。
以锦鲤总rna反转录后的cdna为模板做pcr。pcr条件为:94℃3min;94℃30s,56℃30s,72℃60s,35个循环;72℃10min;4℃∞。pcr反应后的凝胶电泳图见图2中的a、b、c、d、e。
实施例3
gtpch2orf的克隆
根据实施例1和实施例2的结果,设计一对克隆gtpch2orf的引物,上游引物f-orf的核苷酸序列为5'atggaataccaaaaggcggcaga3'、下游引物r-orf的核苷酸序列为5'tcatcttctgcacgccacgcata3',以锦鲤总rna反转录后的cdna为模板做pcr。pcr条件为:94℃3min;94℃30s,61℃30s,72℃2min,35个循环;72℃2min;12℃∞。经过pcr后把得到的产物与pmd-19载体连接在一起为pmd-19-gtpch2。pcr反应后的凝胶电泳图见图3中a。
实施例4
带酶切位点的斜带石斑鱼gtpch2基因合成
根据自己克隆到的锦鲤gtpch2基因的序列及限制性内切酶bamhi和saci的识别序列以及保护碱基,设计合成一对特异性引物,上游引物f为5'cgggatccgaggcgtacacaaccatcct3'是在gtpch2基因的成熟肽序列前添加了bamhi酶切识别位点和6×his标签,下游引物r为5'cgagctcaagcttactgaggccaacga3'是在gtpch2基因成熟肽序列后添加了保护碱基及saci酶切识别位点。利用自己构建的pmd-19-gtpch2为模板进行pcr反应,pcr反应条件为:94℃3min;94℃30s,60℃30s,72℃2min,35个循环;72℃5min;12℃∞。pcr扩增产物的电泳鉴定图见图3中b。
实施例5
锦鲤gtpch2基因的大肠杆菌表达载体pet32a-gtpch2的构建
pcr产物用限制性内切酶bamhi和saci双酶切后,酶切产物用e.z.n.a.®gelextractionkit回收,进行琼脂糖凝胶电泳,分离纯化锦鲤gtpch2基因片段;载体质粒pet32a经限制性内切酶bamhi和saci双酶切后分离纯化,与分离纯化斜带石斑鱼gtpch2基因片段混合,用t4连接酶16℃连接过夜后用标准氯化钙转化法转入大肠杆菌dh5a中,用lb平板筛选具ampicillin抗性的转化子,以标准方法提取质粒,用限制性内切酶bamhi和saci双酶切重组质粒,得到大和小两个片段,大小分别与锦鲤gtpch2基因和表达载体pet32a大小相同,证明锦鲤gtpch2基因已克隆入大肠杆菌表达载体pet32a中,重组质粒命名为pet32a-gtpch2。酶切分析图分别见图3中的c。
实施例6
能高效表达锦鲤gtpch2的大肠杆菌重组株pet32a-gtpch2-bl21的构建
制备好的重组质粒pet32a-gtpch2用热激法转入大肠杆菌bl21感受态细胞中,在含ampicillin的lb平板上37℃进行培养。过夜后长出单克隆,挑取单克隆经诱导培养与鉴定筛选出能高效表达锦鲤gtpch2的大肠杆菌重组株pet32a-gtpch2-bl21。
实施例7
利用大肠杆菌基因工程菌pet32a-gtpch2-bl21生产重组锦鲤gtpch2
挑取大肠杆菌工程菌pet32a-gtpch2-bl21单菌落接种在10mllb液体培养基中,37℃,200转/分培养过夜,然后按照1:100的比例接种于1llb液体培养基中,37℃,200转/分培养至od600到0.4-0.6,然后加入iptg使其终浓度为1mm,37℃,200转/分培养4小时后5000g离心10min收集菌体,超声破碎后12000g离心10min收集上清,经分离纯化得到重组锦鲤gtpch2蛋白。取3μl菌液加2×电泳上样缓冲液,煮沸10min后按标准方法跑sds-page凝胶电泳,同时取阴性对照按同样方法处理后电泳。阴性对照为空载质粒pet32a转化bl21后长出的单克隆培养后的菌液。结果见图4中的a。pet32a-gtpch2-bl21表达破碎后上清用novagen公司的his-bindresin进行纯化处理,结果见图4中a。
将重组锦鲤gtpch2蛋白采用免疫印迹(westernblot)方法进行鉴定。一抗为鼠抗his单克隆抗体(购自novagen公司),二抗为羊抗鼠igg-hrp(购自索莱宝生物工程有限公司)。结果见图4中b。
实施例8
重组锦鲤gtpch2的单克隆抗体制备
锦鲤gtpch2抗血清的制备:将纯化的gtpch2融合蛋白和等体积弗氏完全佐剂充分混合后,每只小鼠皮下和腹腔注射融合蛋白300μg;初次免疫4周后加强免疫1次,接下来1周后眼球采血检测抗体效价。分离血清,分装后置-20℃保存。westernblot检测gtpch2抗血清:将锦鲤皮肤、鳍条、鳞片分别提取蛋白以25μg的蛋白量上样,经sds-page凝胶电泳后,并转膜,依次加入按1:100稀释的锦鲤gtpch2多克隆抗体及二抗hrp羊抗鼠igg,ecl显色后观察结果。结果见图4中c。
以上实施例描述了本发明的基本原理、主要特征及优点,本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明原理的范围下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进均落入本发明保护的范围内。
序列表
<110>河南师范大学
<120>锦鲤gtpch2基因、编码蛋白及其应用
<130>2019
<141>2019-10-25
<160>13
<170>siposequencelisting1.0
<210>1
<211>209
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