一种同步糖化发酵生产L-乳酸的方法与流程

文档序号:24876217发布日期:2021-04-30 12:51阅读:304来源:国知局

本发明属于生物化工领域,具体涉及一株同步糖化发酵生产l-乳酸的方法。



背景技术:

乳酸,是世界上公认的三大有机酸之一,具有旋光异构体,分为d-乳酸、l-乳酸和dl-乳酸,其中l-乳酸为左旋型乳酸,是人体唯一可以分解利用的乳酸类型。l-乳酸在食品、医药、农业、化妆品等众多领域有着广泛的应用,特别是高光学纯度的l-乳酸,因其可作为生物降解材料l-聚乳酸的前体,市场需求量巨大。据估计,食品级l-乳酸的需求量以每年5%-8%的速率增长,远远超出了目前的供给能力。

目前,大部分乳酸的生产是通过微生物发酵制备的。传统的生物发酵法制备l-乳酸是以粮食基淀粉为原材料,经糖化降解为葡萄糖,被菌种利用发酵制备l-乳酸。原材料的成本占到了l-乳酸发酵成本的70%,且以粮食为原材料发酵制备化学品,存在与人争粮的问题,缺乏发展潜力。因此,寻找廉价碳源高效发酵生产l-乳酸是生物法制备l-乳酸技术的研究热点之一。

利用廉价的木质纤维素作为原料发酵制备l-乳酸可以有效降低l-乳酸的生产成本。每年,地球上会产生大量的木质纤维素质废料如秸秆、纤维废渣、废纸等,因其含量丰富、廉价、可再生等优点成为发酵生产l-乳酸的研究方向。木质纤维素中含有大量的纤维素,可被酶解生成纤维二糖和葡萄糖,作为l-乳酸发酵的碳源。木质纤维素在作为碳源之前需要进行预处理和酶解糖化。纤维素原料的预处理成本较高,纤维素酶的成本占生物质转化成本的60%左右,因此在发酵过程中要不断提高纤维素酶的酶解效率,并减少纤维素酶的用量,从而降低发酵成本。一般纤维素酶制剂是酶的混合物,是能够水解纤维素生成纤维二糖和葡萄糖的一组酶的总称,主要包括内切葡聚糖酶、外切葡聚糖酶以及β-葡萄糖苷酶等。纤维素酶糖化产物葡萄糖和纤维二糖的积累会抑制纤维素酶的活力,因此生物质转化过程通常采用同步糖化发酵,即将纤维素酶和发酵菌种同时加入反应器,降低糖化产物的抑制作用。但是,同步糖化发酵的缺点是,纤维素酶的最适酶解温度和菌种发酵温度不一致,纤维素酶制剂水解的最适温度在45-50℃,而大多数产l-乳酸的微生物的最适温度低于45℃,因此温度的差异造成水解和发酵不能同时达到最佳状态,降低了酶解效率,增加了纤维素酶的用量,提高了成本。因此,采用能够高温发酵产l-乳酸的菌株,有利于减少酶的用量,降低发酵成本。此外,大多数产l-乳酸的菌株不能利用纤维二糖,纤维二糖的累积会抑制纤维素酶的酶活,因此通常需要在纤维素酶制剂中复配β-葡萄糖苷酶,水解纤维二糖为葡萄糖,减少纤维二糖的累积,降低产物抑制作用,这同样会增加酶的用量,提高发酵成本。

发酵法生产乳酸常用的菌种为米根霉、乳酸菌、乳杆菌等。米根霉在氧气充足的条件下,直接利用淀粉质原料生产l-乳酸,但其理论转化率较低,生产速率下降较快。大部分乳酸菌发酵产物为l-乳酸和d-乳酸的混合物,对糖和乳酸的耐受性较差。乳杆菌发酵的产物l-乳酸中往往会含有较多的d型或dl型乳酸,造成乳酸的光学纯度较低,给后续分离带来困难。通过对发酵工艺的改进可以提高乳酸的产量,降低发酵成本。

李秀康等(产高光学纯度l-乳酸菌株hy-38发酵培养基优化,中国酿造,2017,36(02))以粪肠球菌hy-38为出发菌株进行培养基的优化,l-乳酸的产量提高了24.3%。姜旭等(基因工程菌发酵生产l-乳酸研究进展,生物工程学报,2013,29(10))综述了基因工程菌在l-乳酸发酵生产中的应用。虽然基因工程在微生物菌种改造方面取得了很多成功,但是目前很多微生物菌种在工业环境下的适应能力、胁迫抗性和代谢能力方面还远不能满足实际应用。

cn106834368a公开了一种利用木质纤维素发酵生产l-乳酸的方法,采用的菌株为凝结芽孢杆菌。该方法不能解除酶解产物纤维二糖的反馈抑制作用。

cn101736042a公开了一种利用农作物秸秆水解糖液发酵生产l-乳酸的方法,采用的菌种为米根霉。该工艺中发酵与酶解不能同步进行,发酵温度为32℃-34℃,温度较低,容易染菌,且无法解决酶解产物的反馈抑制问题。

因此,在现有的l-乳酸发酵技术中存在菌株发酵温度低,同步糖化发酵效率不高,酶解产物的反馈抑制作用造成酶用量的增多等问题,造成生产成本的升高。



技术实现要素:

针对现有技术的不足,本发明提供了一种同步糖化发酵生产l-乳酸的方法。本发明以木质纤维素为原料,利用新分离筛选的粪肠球菌dly-lfyc能够在较高温度下进行同步糖化发酵,发酵产l-乳酸的浓度和光学纯度较高,特别是菌株可以利用纤维二糖,反馈抑制作用较小,提高了乳酸发酵效果。

本发明提供的同步糖化发酵生产l-乳酸的方法,包括以下步骤:

(1)将木质纤维素原料进行预处理,固液分离得到残渣ⅰ和液体ⅱ;

(2)制备粪肠球菌dly-lfyc种子液,所述的粪肠球菌(enterococcusfaecalis)dly-lfyc的保藏编号为cgmccno.15821;

(3)将粪肠球菌dly-lfyc种子液、残渣ⅰ、纤维素酶以及不加糖的mrs培养基加入发酵罐,在酶解条件下进行同步糖化发酵,同时流加步骤(1)液体ⅱ,直至发酵结束。

本发明中,步骤(1)所述的木质纤维素原料包括一切含纤维素的原料,如秸秆、木屑和农林废弃物等中至少一种,优选玉米秸秆。

本发明中,步骤(1)所述的预处理是将木质纤维素原料机械粉碎到粒径为0.1-50mm,优选为2-10mm,然后加入质量浓度为1%-5%碱液,所述碱为naoh、koh、ca(oh)2、氨水等中的至少一种;控制固液质量比为1:5-1:10,随后在105-125℃处理5-30min,经固液分离得到残渣ⅰ和液体ⅱ。

本发明中,步骤(2)所述的粪肠球菌(enterococcusfaecalis)dly-lfyc,已经于2018年5月28日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为cgmccno.15821。保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所。

本发明中,步骤(2)粪肠球菌发酵种子液的制备采用mrs培养基。具体制备方法为:将甘油保藏菌接种至试管进行培养,在45-50℃静置培养12-24h,得到一级种子液;随后接入摇瓶进行扩大培养,接种量为5%-20%,在45-50℃静置培养8-12h,得到二级种子液。

本发明中,步骤(3)粪肠球菌dly-lfyc种子液的加入量为发酵液体积的5%-20%。

本发明中,步骤(3)残渣ⅰ的加入量根据发酵培养基中纤维素的浓度确定,最终使发酵培养液中纤维素的浓度为70g/l-170g/l。残渣ⅰ可以一次性加入,也可以分批次流加。

本发明中,步骤(3)所述的纤维素酶为本领域常规使用的纤维素酶,主要包括内切葡聚糖酶、外切葡聚糖酶和β-葡萄糖苷酶等,纤维素酶的加入量为2-10fpiu/g纤维素。

本发明中,步骤(3)所述的酶解条件为温度为45-50℃,ph为4.5-6.5,搅拌转速为200-400rpm,发酵时间为72-168h。

本发明中,步骤(3)通过ph控制步骤(1)液体ⅱ的流加,使ph为4.5-6.5。随着发酵的进行,液体ⅱ不满足要求,可以流加碱液控制发酵,所述的碱液可以是naoh溶液、koh溶液、ca(oh)2溶液、氨水等中的至少一种。

与现有技术相比,本发明的有益效果是:

(1)本发明以木质纤维素为原料,利用新分离筛选的粪肠球菌dly-lfyc能够在较高温度下进行同步糖化发酵,发酵产l-乳酸的浓度和光学纯度较高,特别是菌株可以同时以葡萄糖、纤维二糖为底物,在同步糖化发酵过程中,酶解底物的反馈抑制作用较小,不需要额外添加β-葡萄糖苷酶,提高了乳酸发酵效果。

(2)本发明菌株可以在较高温度下进行同步糖化发酵,与纤维素酶的最适温度基本重合,在此条件下,纤维素酶的活性较高,有利于减少酶的用量,降低发酵成本。

(3)本发明采用木质纤维素作为底物发酵生产l-乳酸,原料成本低廉,降低了生物法生产l-乳酸的成本。

具体实施方式

下面通过实施例对本发明作进一步的详细说明。实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方式和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。

以下实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为本领域常规方法。下述实施例中所用的实验材料,如无特殊说明,均从常规生化试剂商店购买得到。

本发明实施例采用hplc测定l-乳酸和d-乳酸浓度,采用色谱柱chirex3126(d)-penicillamine(250mm×4.6mm),流动相:v(异丙醇):v(2mm硫酸铜溶液)=5:95,紫外检测器。色谱条件为:流速0.7ml/min,柱温40℃,紫外检测波长254nm,进样量5μl。l-乳酸的光学纯度计算公式为:l-乳酸光学纯度=(l-乳酸浓度-d-乳酸浓度)/(l-乳酸浓度+d-乳酸浓度)×100%。

本发明中,mrs培养基的配方为:蛋白胨10g/l,牛肉膏10g/l,酵母膏5g/l,柠檬酸氢二铵2g/l,葡萄糖20g/l,吐温801ml/l,乙酸钠5g/l,磷酸氢二钾2g/l,硫酸镁0.58g/l,硫酸锰0.25g/l。

实施例1

(1)取玉米秸秆1kg,粉碎成5mm左右的颗粒,加入质量浓度为1%的naoh溶液5kg,在105℃条件下处理10min,通过压滤进行固液分离,得到玉米秸秆残渣ⅰ和液体ⅱ。

(2)粪肠球菌发酵种子液制备:在试管中加入15mlmrs培养基,将甘油保藏管中的粪肠球菌接种至试管培养基中,在45℃静置培养20h,得到一级种子液;在250ml摇瓶中加入135mlmrs培养基,接入15ml一级种子液,在45℃静置培养8h,得到二级种子液。

(3)在2.5l发酵罐中加入1.5l不加糖mrs培养基,加入玉米秸秆残渣ⅰ,使发酵液中纤维素浓度为70g/l,按5fpiu/g纤维素的浓度加入纤维素酶(celluclast1.5l,购自sigma公司),同时加入二级种子液150ml,在温度为45℃,搅拌速度200rpm,不通气,控制ph为4.5进行同步糖化发酵。发酵过程中流加液体ⅱ,控制发酵ph为4.5,如果液体ⅱ不足采用naoh溶液代替,发酵培养96h。

发酵结束后,取发酵体系中的清液,测定l-乳酸浓度,计算乳酸得率和光学纯度。共进行3次重复实验,l-乳酸浓度达到69.3g/l,光学纯度为99.9%,l-乳酸得率为0.99g/g纤维素。

实施例2

(1)取玉米秸秆2kg,粉碎成4mm左右的颗粒,加入质量浓度为2%的naoh溶液10kg,在105℃条件下处理10min,通过压滤进行固液分离,得到玉米秸秆残渣ⅰ和液体ⅱ。

(2)粪肠球菌发酵种子液制备:在试管中加入35mlmrs培养基,将甘油保藏管中的粪肠球菌接种至试管培养基中,在50℃静置培养20h,得到一级种子液;在500ml摇瓶中加入315mlmrs培养基,接入35ml一级种子液,在50℃静置培养8h,得到二级种子液。

(3)在5l发酵罐中加入3.5l不加糖mrs培养基,加入玉米秸秆残渣ⅰ,使发酵液中纤维素浓度为170g/l,按10fpiu/g纤维素的浓度加入纤维素酶(celluclast1.5l,购自sigma公司),同时加入二级种子液350ml,在温度为50℃,搅拌速度200rpm,不通气,控制ph为6.5进行同步糖化发酵。发酵过程中流加液体ⅱ,控制发酵ph为6.5,如果液体ⅱ不足采用naoh溶液代替,发酵培养144h。

发酵结束后,取发酵体系中的清液,测定l-乳酸浓度,计算乳酸得率和光学纯度。共进行3次重复实验,l-乳酸浓度达到151.5g/l,光学纯度为99.8%,l-乳酸得率为0.89g/g纤维素。

实施例3

(1)取玉米秸秆1.5kg,粉碎成2mm左右的颗粒,加入质量浓度为2%的naoh溶液10kg,在105℃条件下处理10min,通过压滤进行固液分离,得到玉米秸秆残渣ⅰ和液体ⅱ。

(2)粪肠球菌发酵种子液制备:在试管中加入35mlmrs培养基,将甘油保藏管中的粪肠球菌接种至试管培养基中,在50℃静置培养20h,得到一级种子液;在500ml摇瓶中加入315mlmrs培养基,接入35ml一级种子液,在50℃静置培养8h,得到二级种子液。

(3)在5l发酵罐中加入3.5l不加糖mrs培养基,加入玉米秸秆残渣ⅰ,使培养基中纤维素浓度为120g/l,按2fpiu/g纤维素的浓度加入纤维素酶(celluclast1.5l,购自sigma公司),同时加入二级种子液350ml,在温度为50℃,搅拌速度200rpm,不通气,控制ph为5.0进行同步糖化发酵。发酵过程中流加液体ⅱ,控制发酵ph为5.0,如果液体ⅱ不足采用naoh溶液代替,发酵培养144h。

发酵结束后,取发酵体系中的清液,测定l-乳酸浓度,计算乳酸得率和光学纯度。共进行3次重复实验,l-乳酸浓度达到105.3g/l,光学纯度为99.8%,l-乳酸得率为0.88g/g纤维素。

实施例4

同实施例2,不同在于:作为底物的玉米秸秆残渣ⅰ分5个批次流加至发酵体系中,使体系中纤维素的总浓度为170g/l,纤维素酶与底物混匀后加入。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到164.9g/l,光学纯度为99.7%,l-乳酸得率为0.97g/g纤维素。

实施例5

同实施例1,不同在于:木质纤维素原料采用木屑。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到67.9g/l,光学纯度为99.7%,l-乳酸得率为0.97g/g纤维素。

实施例6

同实施例1,不同在于:纤维素酶采用诺维信的ctec2酶。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到66.5g/l,光学纯度为99.5%,l-乳酸得率为0.95g/g纤维素。

实施例7

同实施例1,不同在于:预处理碱采用氨水。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到65.1g/l,光学纯度为99.4%,l-乳酸得率为0.93g/g纤维素。

比较例1

同实施例1,不同在于:采用粪肠球菌cicc20423(购买于中国微生物菌种保藏管理中心)进行发酵实验。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到38.5g/l,光学纯度为99.1%,l-乳酸得率为0.55g/g纤维素。

比较例2

同实施例1,不同在于:同步糖化发酵温度为40℃。发酵共进行3次重复实验,经检测和计算,l-乳酸的浓度达到55.3g/l,光学纯度为99.5%,l-乳酸得率为0.79g/g纤维素。

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