一种山药多糖、其制备方法及其用途与流程

本发明涉及山药多糖，具体涉及了一种从山药(dioscoreaoppositathunb.)当中提取得到的山药多糖dop0.2-s-3、其制备方法，以及其在制备预防和/或治疗肠道菌群紊乱的药物或保健品中的用途。

背景技术：

肠道菌群的稳态和多样性与宿主细胞增殖、神经信号通路等有密切的关系。在成人体内，肠道微生物群形成一个明显的核心微生物群，以此降低内部与外部环境变化产生的影响，维持身体的平衡。然而，在人体的衰老进程中，运动减少、营养改变、药物以及居住状态的变化均会影响微生物及其代谢产物，带来生理以及免疫的变化。

山药(rhizomadioscoreae)是薯蓣科植物薯蓣(dioscoreaoppositathunb.)的干燥根茎，是一种药食两用的中药。据《本草纲目》记载，山药性甘、温、平、无毒，主治脾胃虚弱、湿热虚泄、肿毒初起等症状。山药中含皂苷、胆碱、淀粉、氨基酸等化学成分。

技术实现要素：

本发明用一种简单有效的提取和纯化植物多糖的工艺和方法，以河北产地的山药为原料获得了一种混合多糖组分，并进一步进行了纯化获得了均一的多糖dop0.2-s-3。通过体内实验证明，该多糖可以缓解复合抗生素(克林霉素，氨苄青霉素，头孢曲松钠，万古霉素)造成的急性腹泻症状。因此该多糖具有潜在的治疗急性腹泻，调节肠道紊乱的效果，有望开发成为一种治疗肠道紊乱疾病的糖类药物。

本发明提供了一种山药多糖dop0.2-s-3，其是一种1,4-α-半乳糖醛酸聚糖，具有如下结构：

[→4)-α-d-galap(1→4)-α-d-galap(1→]n

其重均分子量范围为1-65kda。

本发明还提供了所述山药多糖dop0.2-s-3的制备方法，其包括如下步骤：

(1)多糖的提取：山药沸水提取，得到提取液，提取液浓缩后加入乙醇进行沉淀，收集沉淀得山药粗多糖dop；

(2)多糖的纯化：粗多糖dop经deaesepharose^tmfastflow阴离子交换柱分离，收集0.2mnacl洗脱液的洗脱组分，得到山药次级粗多糖dop0.2，该次级粗多糖dop0.2再经过sephacryls-300hr凝胶柱进一步纯化，得到所述山药多糖dop0.2-s-3。

优选地，步骤(1)中，在进行沸水提取前，先用乙醇对山药药材浸泡3～10天(比如7天)，然后风干；

优选地，步骤(1)中，沉淀所用乙醇为体积分数95％的乙醇；沉淀所用的乙醇体积为浓缩液的3～6倍(比如5倍)；

优选地，步骤(1)中，在进行乙醇沉淀前，先对浓缩液进行离心，然后对离心上清液进行透析，透析时间优选为24～48h；

优选地，步骤(1)得到的粗多糖在进行步骤(2)的多糖纯化前进行洗涤，采用乙醇和丙酮交替洗，各洗涤2-4次；

优选地，步骤(1)中，在收集沉淀后或在将沉淀用乙醇和丙酮交替洗后对其进行干燥，例如冻干；

优选地，步骤(2)所述阴离子交换柱分离时依次使用去离子水、0.1m、0.2m的nacl溶液进行梯度洗脱，收集0.2mnacl洗脱液的洗脱组分；

优选地，步骤(2)所述sephacryls-300hr凝胶柱进一步纯化时，使用0.2mnacl洗脱液进行洗脱，收集得到的洗脱组分为山药多糖dop0.2-s-3。

本发明对所得到的山药多糖dop0.2-s-3的鉴定，包括进行纯度及分子量的测定，然后采用糖组成的测定及核磁共振等方法对其结构特征进行分析。

本发明还提供了一种药物组合物，其包含所述山药多糖dop0.2-s-3，以及药学上可接受的辅料。

本发明还提供了所述山药多糖dop0.2-s-3或所述药物组合物在制备预防和/或治疗肠道菌群紊乱的药物或保健品中的用途。所述肠道菌群紊乱包括，例如急性腹泻。所述急性腹泻例如为复合抗生素(克林霉素，氨苄青霉素，头孢曲松钠，万古霉素)造成的急性腹泻。

附图说明

图1为制备实施例1中制得的山药多糖dop0.2-s-3高效液相色谱的纯度图。

图2为制备实施例1中制得的山药多糖dop0.2-s-3的¹hnmr(a)和¹³cnmr图谱(b)。

图3为制备实施例1中制得的山药多糖dop0.2-s-3对抗生素造成小鼠急性腹泻模型中小鼠体重的影响折线图。

图4为制备实施例1中制得的山药多糖dop0.2-s-3对抗生素造成小鼠急性腹泻模型中小鼠排便次数散点图，其中a为第7天计数结果，b为第14天计数结果。

图5为制备实施例1中制得的山药多糖dop0.2-s-3对抗生素造成小鼠急性腹泻模型中小鼠粪便含水量柱状图，其中a为第7天检测结果，b为第14天检测结果。

具体实施方式

制备实施例1山药多糖组分dop0.2-s-3的提取分离纯化和结构表征

(1)多糖的提取分离

将山药多糖用沸水提取法进行多次提取，硫酸-苯酚法检测提取液的糖含量，直至糖反应不明显。合并提取液，浓缩至小体积后，离心去沉淀。将上清液用对流水透析两天。透析内液用体积分数95％的乙醇以提取液与乙醇的体积比为1：3(v/v)进行醇沉，静置过夜。弃掉上层多余乙醇，沉淀离心后将沉淀用乙醇和丙酮交替洗三次，干燥后得山药水提粗多糖dop(4.4％)。

(2)多糖的纯化

每次取7.3g粗多糖溶解于80ml去离子水中，搅拌过夜，离心取上清上样于deaesepharose^tmfastflow阴离子交换柱，用去离子水和不同浓度的nacl溶液(0.1m、0.2m)进行梯度洗脱，流速控制在13ml/15min，用自动收集仪收集。每管取100μl用硫酸-苯酚法显色并用酶标仪在490nm下检测其吸光度，用吸光度和洗脱体积绘制洗脱曲线。根据洗脱曲线收集分离的多糖进行减压浓缩、透析、冷冻干燥，最后得到0.2mnacl洗脱液的洗脱组分，干燥后得到次级粗多糖dop0.2(261mg)。

每次将85mg的次级粗多糖dop0.2溶于3ml去离子水中，离心(4,000r/min)取上清上样于sephacryls-300hr凝胶柱，经0.2mnacl洗脱液洗脱，流速控制在5ml/15min，自动收集仪收集。经过硫酸苯酚法显色、酶标仪检测吸光度并绘制洗脱曲线，收集所需的分离组分进行浓缩透析，最后冷冻干燥得到该均一的山药多糖dop0.2-s-3(21mg，24.7％)。

(3)多糖的结构鉴定

多糖dop0.2-s-3在串联ultrahydrogel^tm2000(7.8mm×300mm，排阻极限5×10⁴-10×10⁶da)和ultrahydrogel^tm500(7.8mm×300mm,排阻极限1×10⁴-4×10⁵da)分析凝胶柱上的特征图谱如图1所示，其色谱条件为：流动相：0.1mnano3；流速：0.5ml/min；柱温：25℃；agilent1260液相色谱仪；检测器：示差检测器和紫外检测器。样品的重均分子量根据多糖标准曲线来计算：取已知分子量的标准品葡聚糖系列(180da，667da，6,000da，11,300da，21,700da，48,800da，113,000da，210,000da，393,000da，805,000da)分别溶于流动相，配置成浓度为2mg/ml溶液，离心，取上清液，自动进样分析。由gpc专用软件绘制标准曲线。

取山药多糖组分样品dop0.2-s-335mg，加d2o0.5ml溶解，加2.5μl丙酮为内标(δh＝2.29ppm，δc＝31.5ppm)，于brukeravanceiii500m核磁共振仪上，25℃分别测定一维核磁共振谱，结果如图2所示。图2的a表示多糖的¹hnmr图谱，半乳糖醛酸聚糖中h1-h5的化学位移分别为5.13ppm，3.82/3.84ppm，4.05/4.07ppm，4.48ppm和4.83ppm。图2的b表示多糖的¹³cnmr图谱，c1-c6的化学位移分别为100.24ppm，69.34ppm，70.04ppm，79.14ppm，72.49ppm和176.55ppm。所述的多糖dop0.2-s-3具体结构为：

[→4)-α-d-galap(1→4)-α-d-galap(1→]n

经高效凝胶渗透色谱法(hpgpc)测定山药多糖组分样品dop0.2-s-3的重量平均相对分子质量为14kda。

测试实施例1山药多糖组分dop0.2-s-3的调节肠道菌群生长的活性

(1)抗生素诱导的急性腹泻模型检测山药多糖组分dop0.2-s-3对动物体重的影响

此次动物实验遵行实验动物管理和使用指南，获得中国科学院上海药物研究所动物伦理委员会批准，iacuc审批号2019-02-dk-74。

从上海灵畅生物科技有限公司购得四周龄雄性c57bl/6小鼠20只。动物随机分为三组，对照组6只，模型组6只，实验组8只，每4-6只一牢饲养，鼠牢可以自由获取无菌饮水和食物。在温度(25℃±2℃)恒定，光照循环(12小时光照，12小时黑暗)环境中饲养，适应环境饲养一周后开始实验。

模型组和实验组饮水中加入浓度为500ug/ml的混合抗生素(克林霉素：氨苄青霉素：头孢曲松钠：万古霉素＝3：1：1：1)，持续一周。一周后更换为无菌饮水，持续一周。从实验第一天起给与实验组动物30mg/kgdop0.2-s-3多糖每天一次，持续十四天，每次0.2ml，模型组和对照组给予等体积生理盐水。每周检测动物体重三次。

结果如图3所示，抗生素处理四天后模型组(15.98±0.22)动物体重显著低于对照组(18.78±0.35,***p<0.001)和实验组(18.41±0.33,***p<0.001)。动物实验结束时，与对照组(22.56±0.34)相比，模型组(20.08±0.17，***p<0.001)，实验组(21.13±0.35，*p<0.05)体重均显著下降，但实验组体重高于模型组(p＝0.0504)，说明多糖dop0.2-s-3可以减轻抗生素诱导的急性腹泻症状。

(2)排便次数计数检测dop0.2-s-3对排便次数的影响

用无菌透明鼠牢将每只动物单独放置，统计每只动物五分钟和十分钟之内的排便次数，在第七天和第十四天进行计数。结果如图4所示。

从图4的a中可以看出，第七天时与对照组(2.83±0.17，4.83±0.31)相比，模型组的排便次数在五分钟(5.5±0.5,**p<0.01)和十分钟(9.0±0.61,***p<0.001)内显著增高，与模型组相比，实验组的排便次数在五分钟(2.87±0.44,**p<0.01)和十分钟(4.62±0.50,***p<0.001)内显著下降，对照组与实验组间无显著差异。从图4的b中可以看出，第十四天时与对照组(0.40±0.40,3.4±0.92)相比，模型组的排便次数在五分钟(4.00±0.26,***p<0.001)和十分钟(7.33±0.42,**p<0.01)内显著增高，与模型组相比，实验组的排便次数在五分钟(2.25±0.41,**p<0.01)和十分钟(4.00±0.46,**p<0.01)内显著下降，对照组与实验组间十分钟内排便次数无差异。说明多糖dop0.2-s-3可以降低抗生素诱导的急性腹泻造成的排便次数增加。

(3)粪便含水量检测动物粪便中的含水量

用无菌透明鼠牢将每只动物单独放置，收集十分钟内动物的全部粪便，在第七天和第十四天进行检测。称量新鲜粪便重量后，放置于100℃烘箱中烘干24小时，称量粪便干重。计算公式如下：粪便含水量(％)＝(新鲜粪便重量-粪便干重)/新鲜粪便重量。实验结果如图5所示。

从图5的a可以看出，在第七天时与对照组(59.86±1.61)相比，模型组(79.28±0.98,***p<0.001)的粪便含水量显著增高，与模型组相比，实验组(73.76±0.52,**p<0.01)给药后粪便含水量显著下降，从图5的b可以看出，在第十四天时与对照组(53.65±0.81)相比，模型组(67.80±0.90,***p<0.001)的粪便含水量显著增高，与模型组相比，实验组(58.76±1.11,***p<0.001)给药后粪便含水量显著下降。说明多糖dop0.2-s-3可以降低抗生素诱导的急性腹泻模型中动物粪便中的含水量。

综上，通过测试实施例可知，山药多糖组分dop0.2-s-3能够降低抗生素诱导的急性腹泻症状，包括维持动物的体重，减少动物排便次数，降低动物粪便中的含水量。该多糖组分dop0.2-s-3可成为治疗急性腹泻，调节肠道菌群紊乱的潜在糖类药物。