本发明涉及生物技术,特别涉及一种具有启动子功能的落叶松dna分子、获取及鉴定方法。
背景技术:
落叶松具有众多优良特征,如适应性广,易于栽培,成林快,材质优良等。落叶松已经成为北方地区退耕还林和荒山绿化的主要造林树种之一。因此落叶松的育苗造林具有很大发展前景。启动子是能够促使转录开始的一段dna序列,启动子本身不被转录,通常位于基因5‘端转录起始位点上游。启动子就像“开关”,调控基因的表达。因此,对启动子的研究尤为重要。落叶松中启动子的分析与鉴定,对于深入了解其基因组信息提供重要的支撑。
技术实现要素:
发明目的:本发明目的是提供具有启动子功能的落叶松dna分子。
本发明另一目的是提供所述具有启动子功能的落叶松dna分子的获取方法及鉴定方法。
技术方案:本发明提供一种具有启动子功能的落叶松dna分子,dna序列如seqidno.1。
所述的具有启动子功能的落叶松dna分子的获取方法,包括如下步骤:用特异引物以日本落叶松(larixkaempferi)的基因组dna为模板,扩增得到1179bp的扩增产物,即得。
进一步地,所述特异引物序列如下:
正向:5’-gagtgtcgtgctccaccatgcaatgagacttcaaaccggc-3’;
反向:5’-ctcttcttcttaggagccatgtaccaaaatttgaagggcgg-3’。
进一步地,落叶松rna-seq:将落叶松针叶和落叶松愈伤组织分别进行转录组测序,对转录本进行注释;atac-seq:将诱导培养的落叶松愈伤组织进行atac-seq测序,确定开放染色质信息;组蛋白chip-seq:将诱导培养的落叶松愈伤组织进行h3k27acchip-seq测序,明确h3k27ac的分布特征,整合组学分析结果,预测潜在调控元件,综合测序数据,通过拼装获得落叶松序列seqidno.2,该序列中包括一个转录本,启动子位于基因的转录起始位点(tss)上游,并且位于开放染色质区,能调控下游基因的表达,将其转录本tss上游1.5kb具有开放染色质的序列扩增(引物同上),最终获得seqidno.1。
所述的具有启动子功能的落叶松dna分子的鉴定方法,包括如下步骤:
(1)将启动子dna序列seqidno.1插入p1300lv载体中替换原有的camv35s启动子,构建lkpro2启动报告基因的载体;
(2)正对照载体采用p1300lv:
(3)落叶松原生质体的制备与转化;
(4)转化后对启动子活性进行荧光验证。
进一步地,所述lkpro2启动报告基因的载体的构建方法:使用限制性内切酶ncoi和bamhi将p1300lv载体线性化,后用无缝连接试剂盒将其与启动子序列片段连接,转化至大肠杆菌dh5α中,筛选阳性转化子,即得。
鉴定原理:将一段有启动子活性的dna分子驱动gfp荧光蛋白基因表达,在荧光显微镜下可观察到荧光,证实该序列有功能。反之,则不能。
有益效果:本发明提供了落叶松启动子序列,本质是dna分子,1179bp,能够启动转录,同时提供了快捷的鉴定方法。
附图说明
图1是正对照载体p1300lv结构示意图,是camv35s启动gfp表达;落叶松启动子lkpro2载体示意图和瞬时表达的检测结果。
具体实施方式
本实施例的启动子获取及鉴定方法如下:
1.lkpro2介绍
落叶松rna-seq:将落叶松针叶和落叶松愈伤组织分别进行转录组测序,对转录本进行注释;atac-seq:将诱导培养的落叶松愈伤组织进行atac-seq测序,确定开放染色质信息;组蛋白chip-seq:将诱导培养的落叶松愈伤组织进行h3k27acchip-seq测序,明确h3k27ac的分布特征,整合组学分析结果,预测落叶松中启动子。本研究综合测序数据,通过拼装获得一段长片段(4895bp,seqidno.2)的落叶松序列。在这段序列中包括一个转录本,其表达量较高,fpkm值为20.7499。因为启动子位于基因的转录起始位点(tss)上游,并且位于开放染色质区,能调控下游基因的表达。因此将其转录本tss上游1.5kb具有开放染色质的序列扩增(引物同下),最终获得lkpro2(seqidno.1)。
设计序列特异性引物,制备如下引物:
正向:5’-gagtgtcgtgctccaccatgcaatgagacttcaaaccggc-3’;
反向:5’-ctcttcttcttaggagccatgtaccaaaatttgaagggcgg-3’。
用以上引物以日本落叶松的基因组dna为模板,扩增得到1179bp的扩增产物。经测序,扩增产物的核苷酸序列如seqidno.1的自5’端第一位-1179位所示。
2.检测
将seqidno.1所示的片段插入p1300lv载体中的ncoi和bamhi酶切位点中,构建lkpro2驱动gfp蛋白的载体(如图1所示)。
3.落叶松原生质体制备
(1)愈伤准备。取无菌培养14天左右生长良好的落叶松愈伤组织。
(2)酶解。将愈伤组织用锋利刀片切成细小的块状,并转入盛有10ml酶解液的培养皿中,置于60rpm转速的摇床上25℃黑暗条件下酶解。
(3)过滤。将粗酶液通过预先用2mlw5washingbuffer润洗过的孔径40μm的细胞筛进行过滤,去除酶解不充分的杂质。
(4)提纯。将过滤过的细胞酶解液转移到两个15ml离心管中,每管6ml细胞酶解液,用装有长针头的注射器吸取16ml0.55m蔗糖,每管细胞酶解液底部加入8ml0.55m蔗糖,注意:加蔗糖时,针头伸入底部,推动注射器,随着液面升高,缓慢上移注射器,动作要轻柔,防止对原生质体细胞造成破坏。1000g离心5min。
(5)清洗。取50ml离心管一个,加入10mlwashingbuffer,置于试管架上。用装有长针头的注射器吸取8mlwashingbuffer,再将针头伸到上步离心后的中间细胞层,慢慢吸取该层的所有原生质体,然后小心转移至盛有10mlwashingbuffer的50ml离心管中。轻弹混匀,100g室温离心5min。
(6)重复清洗一次。移除上清,沿壁慢慢加入10mlwashingbuffer,轻弹混匀,100g离心2min。
(7)重悬。去掉上清,加入5mlwashingbuffer,注意沿壁缓慢加入,轻弹混匀,使细胞保持悬浮。
(8)计数。吸取100μl细胞用于计数,取10μl细胞置于细胞计数板进行计数,如果细胞数目太多可采用mgg稀释后再进行计数。
(9)细胞稀释。根据计数结果取适量细胞悬浮液进行离心,然后用mggbuffer重悬细胞,最终将细胞稀释至1×106个/ml,用于原生质体转化。
4.落叶松原生质体的转化:
(1)质粒的准备。采用质粒小提试剂盒(tiangen,cat#dp-106)提取以下质粒:camv35s-gfp和lkpro2-gfp质粒。确保其浓度尽量在500ng/μl以上,整个过程最好为无菌操作。质粒置于-20℃冰箱冻存。使用前以离心机最高转速进行离心10min处理,使杂质沉淀于离心管底部,避免因杂质影响原生质体转化的效率。处理好的质粒用mggbuffer稀释到实验所需质粒浓度,稀释后充分混匀备用。
(2)peg介导的转化。将上述准备好的质粒(camv35s-gfp和lkpro2-gfp)中加入200μl制备好的原生质体细胞,轻弹混匀。然后,每管加入210-230μl40%peg(peg加入量与质粒体积相关,确保等体积加入),轻弹混匀,直至细胞均匀悬浮于peg当中,从第一管加入peg开始计时,计时20min。从第一管加入到最后一管加入的时间尽量控制在5min以内。
(3)清洗。加入peg反应20min后,每管加入1mlw5washingbuffer,终止反应,轻轻颠倒混匀,250g离心5min。
(4)重复清洗一次。用枪轻轻吸掉上清,重新加入800μlwashingbuffer,轻轻颠倒混匀,150g离心5min,轻轻吸掉上清。
(5)细胞重悬与培养。取40mm培养皿加入2mlw5buffer,再取培养皿中的w5buffer重悬离心管中的细胞,并全部转移至培养皿中,25℃黑暗培养,两天后在显微镜下观察荧光。
5.荧光显微镜观察
使用荧光显微镜进行观察。所有的荧光实验至少重复三次。
序列表
<110>扬州大学
<120>一种具有启动子功能的落叶松dna分子、获取及鉴定方法
<160>2
<170>siposequencelisting1.0
<210>1
<211>1179
<212>dna
<213>2ambystomalateralexambystomajeffersonianum
<400>1
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<210>2
<211>4895
<212>dna
<213>人工序列(artificialsequence)
<400>2
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ccgagtagacaacaacagaactgaaaatgatagagaacgctgaaccgataatgccgataa120
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