多部分萤光素酶肽和多肽的制作方法

多部分萤光素酶肽和多肽
1.相关申请的交叉引用
2.本技术要求2019年11月27日提交的美国临时专利申请序列第62/941,255号的优先权，所述美国临时专利申请据此通过引用以其整体并入。
发明领域
3.本文提供了用于组装三部分或多部分生物发光复合物的生物发光多肽和组合物以及方法。在特定实施方案中，生物发光复合物在三个或更多个肽和/或多肽组分的相互作用时形成。
4.发明背景
5.生物过程和分析物检测依赖于分子、大分子和分子复合物之间的共定位和相互作用。为了理解此类过程以及开发技术和化合物来操纵它们用于研究、临床和其它实际应用，有可用的工具来检测和监测这些共定位/相互作用是必要的。对这些相互作用(特别是在生理条件下(例如，在用于监测蛋白质相互作用的正常表达水平下)或在复杂的样品基质(例如，血液样品、环境样品)中)的研究，需要高灵敏度。


技术实现要素：

6.本文提供了用于组装三部分或多部分生物发光复合物的生物发光多肽和组合物以及方法。在特定实施方案中，生物发光复合物在三个或更多个肽和/或多肽组分的相互作用时形成。
7.在本文的实施方案开发过程中进行的实验显示了由一种或多种互补多肽和一种或多种互补肽进行的生物发光复合物的组装，所述生物发光复合物能够在合适的底物(例如，腔肠素或腔肠素类似物底物)存在的情况下产生发光，所述互补多肽和互补肽共同跨越萤光素酶基本序列的长度(或＞长度的75％、＞长度的80％、＞长度的85％、＞长度的90％、＞长度的95％或更长)(或共同包含至少40％的与萤光素酶基本序列的序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％＞80％、＞85％、＞90％、＞95％或更高))。在一些实施方案中，一种或多种“互补”多肽和一种或多种互补肽是单独的分子，所述分子各自对应于萤光素酶基本序列的一部分。通过结构互补性，它们组装形成生物发光复合物。
8.在本文实施方案的开发过程中进行了附加的实验，以开发具有增强的特性(例如，稳定性、发光性等)的单体生物发光多肽。
9.在一些实施方案中，一种或多种互补多肽和一种或多种肽是萤光素酶基本序列的片段，所述片段组装形成生物发光复合物。在一些实施方案中，片段共同包含萤光素酶基本序列的全长。在一些实施方案中，片段共同包含萤光素酶基本序列全长的至少75％(例如，＞长度的75％、＞长度的80％、＞长度的85％、＞长度的90％、＞长度的95％或更长)。
10.在一些实施方案中，一种或多种互补多肽和一种或多种互补肽是萤光素酶基本序列的部分的变体，其各自包含至少40％的与萤光素酶基本序列的相应部分的序列同一性
(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％＞80％、＞85％、＞90％、＞95％或更高)，所述变体组装形成生物发光复合物。在一些实施方案中，一种或多种互补多肽和一种或多种互补肽是萤光素酶基本序列的部分的变体，其共同包含至少40％的与整个萤光素酶基本序列的序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％＞80％、＞85％、＞90％、＞95％或更高)，所述变体组装形成生物发光复合物。在一些实施方案中，片段共同包含萤光素酶基本序列的全长。在一些实施方案中，一种或多种互补多肽和一种或多种肽共同包含萤光素酶基本序列全长的至少75％(例如，＞长度的75％、＞长度的80％、＞长度的85％、＞长度的90％、＞长度的95％或更长)。
11.萤光素酶基本序列的实例包括seq id no：1、seq id no：3、seq id no：788和seq id no：789。本文的一些实施方案提供了为萤光素酶基本序列(例如，seq id no：1、seq id no：3、seq id no：788和seq id no：789)的片段或其变体(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％＞80％、＞85％、＞90％、＞95％的序列同一性)的多肽组分，和共同跨越萤光素酶基本序列的其余部分的一种或多种互补肽和/或一种或多种互补多肽。例如，如果萤光素酶基本序列的长度为170个氨基酸残基，则示例性多肽组分的长度可以是例如102个、124个、133个或148个氨基酸，1个、2个、3个、4个、5个或更多个互补肽对应于剩余的68个、46个、37个或22个氨基酸。在一些实施方案中，每个多肽组分各自包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％或更高)的与萤光素酶基本序列的相应部分的序列同一性。
12.在一些实施方案中，本文提供了系统或试剂盒，其包含：(a)多肽组分，其包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或seq id no：789的多肽片段的序列同一性；和(b)一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽，其共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或seq id no：789的互补部分的序列同一性；其中当与单独由多肽组分或一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽和腔肠素底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下，由多肽组分和一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽组装的生物发光复合物产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：794的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：795的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：796的序
列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：797的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：798的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：799的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：800的序列同一性。在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id 801的序列同一性。在一些实施方案中，当多肽组分与一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，多肽组分和/或一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽包含不是天然存在的序列或其片段的氨基酸序列。在一些实施方案中，多肽组分和/或一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。在一些实施方案中，多肽组分和/或一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽以与一种或多种附加氨基酸序列的融合物的形式存在。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。在一些实施方案中，本文提供了生物发光复合物，其包含本文所述的系统或试剂盒的多肽组分和一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽。
13.在一些实施方案中，本文提供了系统或试剂盒，所述系统或试剂盒包含两种或更多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分，所述组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或seq id no：789的序列同一性；其中当与单独由多肽或一种或多种互补肽和腔肠素底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下，由生物发光复合物产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，试剂盒的系统包括多肽组分和一种或多种互补肽、互补二肽和/或互补三肽，所述多肽组分与seq id no：790具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，所述一种或多种互补肽、互补二肽和/或互补三肽共同与seq id no：794具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：795的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：796的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：797的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：798的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：799的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：800的序列同一性。在一些实施方案中，多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：801的序列同一性。在一些实施方案中，当多肽与一种或多种互补肽缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，多肽和/或一种或多种互补肽包含不是天然存在的序列或其片段的氨基酸序列。在一些实施方案中，多肽和/或一种或多种互补肽包含非天然氨基酸、氨基酸
类似物和/或类肽氨基酸。在一些实施方案中，多肽和/或一种或多种互补肽以与一种或多种附加氨基酸序列的融合物的形式存在。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。在一些实施方案中，本文提供了包含本文所述的系统或试剂盒的两种或更多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分的生物发光复合物。
14.在一些实施方案中，本文提供的方法包括：(a)组合：(i)包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或seq id no：789的多肽片段的序列同一性的多肽组分；(ii)一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽，其共同包含40％或更多(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更多)的与seq id no：788或seq id no：789的互补部分的序列同一性；和(iii)腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(b)检测发光，其中与单独由多肽组分和腔肠素或腔肠素类似物产生的发光水平相比时，更高的发光水平表明所述多肽组分和所述一种或多种互补肽的生物发光复合物的形成。在一些实施方案中，使多肽组分以及第一肽和第二肽中的一种或多种在细胞中表达，外源性添加到细胞中，并且/或者添加到样品中。在一些实施方案中，(i)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：794的序列同一性；(ii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：795；(iii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：796的序列同一性；(iv)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：
797的序列同一性；(v)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：798的序列同一性；(vi)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：799的序列同一性；(vii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：800的序列同一性；或者(viii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，以及一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id 801的序列同一性。
15.在一些实施方案中，本文提供了方法，所述方法包括：(a)组合：(i)两种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分，所述组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或seq id no：789的全长的序列同一性；和(ii)腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(b)检测发光，其中与由肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分和腔肠素或腔肠素类似物产生的发光水平相比，更高的发光水平表明所述肽和所述多肽组分的生物发光复合物的形成。在一些实施方案中，多肽组分以及第一肽和第二肽中的一种或多种可在细胞中表达，外源性添加到细胞中，并且/或者添加到样品中。在一些实施方案中，(i)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：794的序列同一性；(ii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：795；(iii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：796的序列同一性；(iv)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例
如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：797的序列同一性；(v)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：798的序列同一性；(vi)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：791的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：799的序列同一性；(vii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：792的序列同一性，并且一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：800的序列同一性；或者(viii)多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：793的序列同一性以及一种或多种互补肽、互补二肽、互补三肽和/或互补多肽共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id 801的序列同一性。
16.在一些实施方案中，本文提供了检测第一分子实体与第二分子实体之间相互作用的方法，所述方法包括：(a)用第一肽标签、第一二肽标签或第一三肽标签给第一分子实体加标签；(b)用第二肽标签、第二二肽标签或第二三肽标签给第二分子实体加标签；(c)组合所述加标签的第一分子实体和所述加标签的第二分子实体并且/或者使所述加标签的第一分子实体与所述加标签的第二分子实体彼此接触；(d)添加一种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分，其中第一肽标签、第一二肽标签或第一三肽标签、第二肽标签、第二二肽标签或第二三肽标签，以及肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分共同包含与seq id no：788或789的整体具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列，并且能够组装形成生物发光复合物；(e)添加腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(f)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中发光信号的量值与第一分子实体与第二分子实体之间的相互作用的强度相关。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是目标蛋白质或目标肽，并且加标签包括产生第一分子实体和/或第二分子实体与第一标签和/或第二标签的融合物。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是小分子，并且加标签包括将第一分子实体和/或第二分子实体与第一标签和/或第二标签直接或间接连接。在一些实施方案中，第一分子实体和第二分子实体之一是药物或药物候选物，另一者是药物靶标或候选药物靶标，并且生物发光信号指示药物或药物候选物与作为药物靶标或候选药物靶标的另一者的结合。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体包括在细胞内表达一者或两者并且/或者将一者或两者添加到细胞中。
17.在一些实施方案中，本文提供了用细胞检测第一蛋白质或肽实体与第二蛋白质或肽实体之间的相互作用的方法，所述方法包括：(a)在细胞内表达包含第一蛋白质或肽实体
和第一肽标签、第一二肽标签或第一三肽标签的融合物，所述标签包含与seq id no：788或789的第一部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(b)在细胞内表达包含第二蛋白质或肽实体和第二肽标签、第二二肽标签或第二三肽标签的融合物，所述标签包含与seq id no：788或789的第二部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(c)在细胞内表达一种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分，所述组分包含与seq id no：788或789的第三部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一标签、所述第二标签和所述组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或789的整体的序列同一性，并且被配置成在所述第一蛋白质或肽实体与所述第二蛋白质或肽实体相互作用时产生生物发光复合物；(d)向细胞中加入腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中发光信号的量值与第一蛋白质或肽实体与第二蛋白质或肽实体之间的相互作用的强度相关。
18.在一些实施方案中，本文提供了检测第一分子实体和第二分子实体的共定位的方法，所述方法包括：(a)用第一肽标签、第一二肽标签或第一三肽标签给第一分子实体加标签，所述标签包含与seq id no：788或789的第一部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(b)用第二肽标签、第二二肽标签或第二三肽标签给第二分子实体加标签，所述标签包含与seq id no：788或789的第二部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(c)在同一系统中组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体；(d)向系统中加入一种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分，所述组分与seq id no：788或789的第三部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或789的整体的序列同一性，其中第一肽标签、第二肽标签和组分被配置成在所述第一分子实体和所述第二分子实体共定位时产生生物发光复合物；(e)向系统中加入腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(f)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在指示所述第一分子实体和所述第二分子实体在系统内的共定位，并且/或者其中发光信号的量值与所述第一分子实体和所述第二分子实体在系统内的共定位的量相关。在一些实施方案中，所述系统包括细胞样品、组织样品、器官样品、整个生物体样品、和/或生化样品、非细胞样品。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是目标蛋白质或目标肽，并且加标签包括产生第一分子实体和/或第二分子实体与第一标签和/或肽标签的融合物。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是小分子，并且加标签包括将第一分子实体和/或第二分子实体与第一标签和/或第二标签直接或间接连接。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体包括在系统中表达一者或两者并且/或者向系统中添加一者或两者。
19.在一些实施方案中，本文提供了用细胞检测第一蛋白质或肽实体与第二蛋白质或肽实体的共定位的方法，所述方法包括：(a)在细胞内表达包含第一蛋白质或肽实体和第一肽标签、第一二肽标签或第一三肽标签的融合物，所述标签包含与seq id no：788或789的第一部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(b)在细胞内表达包含第二蛋白质或肽实体和第二肽标签、第二二肽标签或第二三肽标签的融合物，所述标签包含与seq id no：788或789的第二部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(c)在细胞内表达一种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分或多肽组分，所述组分与seq id no：788或789的第三部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或789的整体的序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分被配置成在所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体共定位时产生生物发光复合物；(d)向细胞中加入腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在指示所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体在细胞内的共定位，并且/或者其中发光信号的量值与所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体在系统内的共定位的量相关。
20.在一些实施方案中，本文提供了检测靶分子的方法，其中靶分子展示第一抗原、第一表位或第一序列和不同的第二抗原、第二表位或第二序列，所述方法包括：(a)使含有靶分子的样品与(i)识别第一抗原、第一表位或第一序列的第一初级结合部分和(ii)识别第二抗原、第二表位或第二序列的第二初级结合部分接触，并使第一初级结合部分和第二初级结合部分与第一抗原、第一表位或第一序列和第二抗原、第二表位或第二序列结合；(b)使样品与(i)与第一标签缀合的第一次级结合部分和(ii)与第二标签缀合的第二次级结合部分接触，其中第一次级结合部分识别第一初级结合部分，并且第二次级结合部分识别第二初级结合部分，其中第一标签或第二标签包含与seq id no：788或789的第一部分和第二部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列；(c)使第一次级结合部分和第二次级结合部分与第一初级结合部分和第二初级结合部分结合；(d)使样品与一种或多种肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽组分接触，所述组分与seq id no：788或789的第三部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性；其中第一标签、第二标签和组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或789的整体的序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分被配置成在相互作用时产生生物发光复合物；(d)使样品与腔肠素或腔肠素类似物底物接触；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在表明靶分子的存在，并且/或者其中发光信号的量值与样品中靶分子的量相关。在一些实施方案中，结合部分独立地选自由以下组成的组：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构
域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，靶分子是蛋白质、核酸或小分子。在一些实施方案中，样品是体外或体内的。
21.在一些实施方案中，本文提供了检测靶分子的方法，其中靶分子展示第一抗原、第一表位或第一序列和不同的第二抗原、第二表位或第二序列，所述方法包括：(a)使样品与(i)与第一标签缀合的第一结合部分和(ii)与第二标签缀合的第二结合部分接触，其中第一结合部分识别第一抗原、第一表位或第一序列，并且第二结合部分识别第二抗原、第二表位或第二序列，其中第一标签包含与seq id no：788或789的第一部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的氨基酸序列，并且其中第二标签包含具有seq id no：788或789的第一部分的氨基酸序列；(b)使第一结合部分和第二结合部分与第一抗原、第一表位或第一序列和第二抗原、第二表位或第二序列结合；(c)使样品与肽组分、二肽组分、三肽组分或多肽组分接触，所述组分与seq id no：788或789的第三部分具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：788或789的整体的序列同一性，其中第一标签、第二标签和组分被配置成在相互作用时产生生物发光复合物；(d)使样品与腔肠素或腔肠素类似物底物接触；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在表明靶分子的存在，并且/或者其中发光信号的量值与样品中靶分子的量相关。在一些实施方案中，结合部分独立地选自由以下组成的组：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，靶分子是蛋白质、核酸或小分子。在一些实施方案中，样品是体外样品、体内样品或生化样品。
22.在一些实施方案中，本文提供了表1、表9或表10中所列的肽、二肽、三肽和/或多肽。在一些实施方案中，提供了表1、表9或表10中所列的单一肽、单一二肽、单一三肽或单一多肽(例如，作为试剂、作为标签等)。在一些实施方案中，提供了表1、表9或表10中所列的一对(2种)或一组(例如，2种、3种、4种、5种或更多种)肽、二肽、三肽和/或多肽。特别地，提供了成对或成组的肽、二肽、三肽和/或多肽，它们是互补的，并且能够在彼此相互作用(例如，促进的、非促进的)时形成生物发光复合物。
23.在一些实施方案中，所述多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：909、911、913、915、917、919、921、923、925、927、929、931、933、935、937、939、941、943、945、947、949、951、953、955、957、959、961、963、965、967、969、117、119、121、123、125、127、129、131、596、598、600、602、604、606、608、610、612、614、616、618、620、622、624、626、628、630、632、634、636、638、640、642、644、646、648、650、652、654、656、658、660、662、664、666、668、670、672、674、676、678、680、682、684、686、688、690、692、694、696、698、700、702、704、706、708、710、712、714、
716、718、720、722、724、726、728、730、732、734、736、738、740、742、744、746、748、750、752、754、756、758、760、762、764、766、768、770、772、774、776、778、780、782、784、786、802、804、806、808、813、815或829之一的序列同一性。在一些实施方案中，提供了包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：909、911、913、915、917、919、921、923、925、927、929、931、933、935、937、939、941、943、945、947、949、951、953、955、957、959、961、963、965、967、969、117、119、121、123、125、127、129、131、596、598、600、602、604、606、608、610、612、614、616、618、620、622、624、626、628、630、632、634、636、638、640、642、644、646、648、650、652、654、656、658、660、662、664、666、668、670、672、674、676、678、680、682、684、686、688、690、692、694、696、698、700、702、704、706、708、710、712、714、716、718、720、722、724、726、728、730、732、734、736、738、740、742、744、746、748、750、752、754、756、758、760、762、764、766、768、770、772、774、776、778、780、782、784、786、802、804、806、808、813、815或829之一的序列同一性的多肽和一种或多种能够形成生物发光复合物的肽或二肽。在一些实施方案中，提供了与seq id no：909、911、913、915、917、919、921、923、925、927、929、931、933、935、937、939、941、943、945、947、949、951、953、955、957、959、961、963、965、967、969、117、119、121、123、125、127、129、131、596、598、600、602、604、606、608、610、612、614、616、618、620、622、624、626、628、630、632、634、636、638、640、642、644、646、648、650、652、654、656、658、660、662、664、666、668、670、672、674、676、678、680、682、684、686、688、690、692、694、696、698、700、702、704、706、708、710、712、714、716、718、720、722、724、726、728、730、732、734、736、738、740、742、744、746、748、750、752、754、756、758、760、762、764、766、768、770、772、774、776、778、780、782、784、786、802、804、806、808、813、815或829之一具有％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性的多肽的seq id no：909、911、913、915、917、919、921、923、925、927、929、931、933、935、937、939、941、943、945、947、949、951、953、955、957、959、961、963、965、967、969、117、119、121、123、125、127、129、131、596、598、600、602、604、606、608、610、612、614、616、618、620、622、624、626、628、630、632、634、636、638、640、642、644、646、648、650、652、654、656、658、660、662、664、666、668、670、672、674、676、678、680、682、684、686、688、690、692、694、696、698、700、702、704、706、708、710、712、714、716、718、720、722、724、726、728、730、732、734、736、738、740、742、744、746、748、750、752、754、756、758、760、762、764、766、768、770、772、774、776、778、780、782、784、786、802、804、806、808、813、815或829的合适片段。在一些实施方案中，此类片段能够与本文提供的合适的肽组、二肽组、三肽组、多肽组等形成生物发光复合物。
24.在一些实施方案中，所述肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id nos：900-907之一的序列同一性。在一些实施方案中，提供了包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id nos：900-907之一的序列同一性的多肽和一种或多种能够形成生物发光复合物的肽、二肽、三肽、多肽等。
25.在一些实施方案中，本文提供了与表1、表9或表10中所列的肽、二肽、三肽和/或多肽中的一种或多种具有至少40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的肽、二肽、三肽和/或多肽。在一些实施方案中，
提供了与表1、表9或表10中所列的肽、二肽、三肽和/或多肽中的一种或多种具有至少40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的单一肽、单一二肽、单一三肽或单一多肽(例如，作为试剂、作为标签等)。在一些实施方案中，提供了与表1、表9或表10中所列的肽、二肽、三肽和/或多肽中的一种或多种具有至少40％(例如40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的一对(2种)或一组(例如，2种、3种、4个种、5种或更多种)肽、二肽、三肽和/或多肽。特别地，提供了成对或成组的肽、二肽、三肽和/或多肽，它们是互补的，并且能够在彼此相互作用(例如，促进的、非促进的)时形成生物发光复合物。
26.在一些实施方案中，本文提供了多肽，所述多肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：790、791、792或793之一的序列同一性。在一些实施方案中，多肽单独提供或与一种或多种互补肽、互补二肽和/或互补三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了本文的多肽与目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件等的融合物。在一些实施方案中，提供了编码多肽及其融合物的核酸和载体。
27.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：817、818、819、13、15、23或25的肽。在一些实施方案中，本文提供了肽，所述肽包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的与seq id no：817、818、819、13、15、23或25之一的序列同一性。在一些实施方案中，肽单独提供或与互补多肽和/或其它肽、二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了本文中的肽与目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件等的融合物。在一些实施方案中，提供了编码肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文中的肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
28.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：817和818的β6-7样二肽。在一些实施方案中，本文提供了与seq id no：817和818具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β6-7样二肽。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码二肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文中的二肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
29.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：818和819的β7-8样二肽。在一些实施方案中，本文提供了与seq id no：818和819具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β7-8样二肽。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码二肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文中的二肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
30.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：819/23或819/25的β8-9样二肽。在一些实施方案中，本文提供了与no：819/23或819/25具有40％或更高(例如，40％、45％、
50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β8-9样二肽。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码二肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文中的二肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
31.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：23/13、23/15、25/13或25/15的β9-10样二肽。在一些实施方案中，本文提供了与nos：seq id no：23/13、23/15、25/13或25/15具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β8-9样二肽。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，二肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码二肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文中的二肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
32.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：817-819的β6-8样三肽。在一些实施方案中，本文提供了与nos：seq id no：817-819具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β6-8样三肽。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码三肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文的三肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
33.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：818/819/23或818/819/25的β7-9样三肽。在一些实施方案中，本文提供了与nos：seq id nos：818/819/23或818/819/25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β7-9样三肽。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码三肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文的三肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
34.在一些实施方案中，本文提供了包含seq id no：819/23/13、819/23/15、819/25/13或819/25/15的β8-10样三肽。在一些实施方案中，本文提供了与seq id no：819/23/13、819/23/15、819/25/13或819/25/15具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性的β7-9样三肽。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发
光复合物。在一些实施方案中，三肽单独提供或与互补多肽和/或其它的一种或多种肽、一种或多种二肽和/或三肽成对/成组提供，用于形成生物发光复合物。在一些实施方案中，提供了编码三肽及其融合物的核酸和载体。在一些实施方案中，用本文的三肽给目标分子和/或目标蛋白质加标签。
35.在一些实施方案中，本文提供了肽，其包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％序列同一性的氨基酸序列，其中当所述肽接触由seq id no：25组成的第二肽和由seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302组成的多肽互补物时，与单独由所述肽和所述腔肠素或腔肠素类似物底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，当所述肽与第二肽和多肽互补物缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：6和/或seq id no：9的肽相比，所述肽表现出一种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与第二肽和多肽互补物组合时，对第二肽和多肽互补物的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，氨基酸序列不是天然存在的蛋白质(例如，不是seq id no：1)，不是其突变形式(例如，不是seq id no：3)，不是天然存在的蛋白质的片段(例如，不是seq id no：5-7)，也不是其突变形式的片段(例如，不是seq id no：8-10之一)。在一些实施方案中，所述氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。在一些实施方案中，肽与接头、反应性部分、检测元件(例如，荧光团)、相互作用/结合元件等化学缀合。
36.在一些实施方案中，本文提供了融合多肽(例如，基因融合物(或者可选地，化学缀合物或合成产生的))，其包含前述段落中描述的肽和附加氨基酸序列或化合物(例如，小分子药物)。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和/或结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(例如，多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer、纯化的蛋白质(例如，分析物或结合分析物的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
37.在一些实施方案中，本文提供了肽，其包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％序列同一性的氨基酸序列，其中当所述肽接触由seq id no：23组成的第二肽和由seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302组成的多肽互补物时，当与单独由所述肽和所述腔肠素或腔肠素类似物底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号在显著增强。在一些实施方案中，当所述肽与第二肽和多肽互补物缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：7和/或seq id no：10的肽相比，所述肽表现出一
种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与第二肽和多肽互补物组合时，对第二肽和多肽互补物的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，氨基酸序列不是天然存在的蛋白质(例如，不是seq id no：1)，不是其突变形式(例如，不是seq id no：3)，不是天然存在的蛋白质的片段(例如，不是seq id no：5-7)，也不是其突变形式的片段(例如，不是seq id no：8-10之一)。在一些实施方案中，所述氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。在一些实施方案中，肽与接头、反应性部分、检测元件(例如，荧光团)、相互作用/结合元件等化学缀合。
38.在一些实施方案中，本文提供了融合多肽(例如，基因融合物、合成产生的融合物、化学缀合物或酶促缀合物等)，其包含前述段落中描述的肽和附加氨基酸序列。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白质l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白质m、蛋白质m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
39.在一些实施方案中，本文提供了组合物，其包含：(a)第一肽，其包含与seq id no：25具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)但低于100％的序列同一性，但与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；和(b)第二肽，其包含与seq id no：23具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)但低于100％的序列同一性，但与seq id no：6、seq id no：9和seq id no：29具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；其中当所述第一肽接触所述第二肽和由seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302组成的多肽互补物时，当与单独由所述第一肽和/或所述第二肽和所述腔肠素底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，当第一肽与第二肽和多肽互补物缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：7和/或seq id no：10的肽相比，第一肽表现出一种或多种特性的增强，并且与seq id no：6、seq id no：9和seq id no：29的肽相比，第二肽表现出一种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与第二肽和多肽互补物组合时，对第二肽和多肽互补物的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，第一肽和/或第二肽的氨基酸序列不是天然存在的蛋白质或其片段。在一些实施方案中，第一肽和/或第二肽的氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。
40.在一些实施方案中，本文提供了包含融合多肽的组合物，所述融合多肽包含前述段落所述的第一肽和第二肽以及附加氨基酸序列。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案
中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白质l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白质m、蛋白质m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
41.在一些实施方案中，本文提供了多肽，其包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中当所述多肽接触由seq id no：23组成的第一肽和由seq id no：25组成的第二肽时，当与单独由所述肽和腔肠素或腔肠素类似物底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，当多肽与第一肽和第二肽缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：5和/或seq id no：8的多肽相比，所述多肽表现出一种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与第一肽和第二肽组合时，对第一肽和/或第二肽的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，氨基酸序列不是天然存在的蛋白质(例如，不是seq id no：1)，不是其突变形式(例如，不是seq id no：3)，不是天然存在的蛋白质的片段(例如，不是seq id no：5-7)，也不是其突变形式的片段(例如，不是seq id no：8-10之一)。在一些实施方案中，所述氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。
42.在一些实施方案中，本文提供了融合多肽(例如，基因融合物、合成产生的融合物、化学缀合物、酶促缀合物等)，其包含前述段落所述的多肽和附加氨基酸序列、核酸序列或其它融合或附加分子。在一些实施方案中，附加序列或其它分子选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加序列或其它分子是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或结合分析物的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加序列或其它融合或附加分子是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加序列或其它融合或附加分子是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加序列或其它融合或附加分子是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
43.在一些实施方案中，本文提供了多肽，其包含与seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于
100％的序列同一性的氨基酸序列，其中当所述多肽接触由seq id no：23组成的第一肽和由seq id no：25组成的第二肽时，当与单独由所述肽和腔肠素或腔肠素类似物底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，当多肽与第一肽和第二肽缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：5和/或seq id no：8的多肽相比，所述多肽表现出一种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与第一肽和第二肽组合时，对第一肽和/或第二肽的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，氨基酸序列不是天然存在的蛋白质(例如，不是seq id no：1)，不是其突变形式(例如，不是seq id no：3)，不是天然存在的蛋白质的片段(例如，不是seq id no：5-7)，也不是其突变形式的片段(例如，不是seq id no：8-10之一)。在一些实施方案中，所述氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。
44.在一些实施方案中，本文提供了融合多肽(例如，基因融合物、合成产生的融合物、化学缀合物或酶促缀合物等)，其包含前述段落中描述的肽和附加氨基酸序列。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白质l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白质m、蛋白质m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
45.在一些实施方案中，本文提供了β9/β10样二肽，其包含与seq id no：35具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)但低于100％的序列同一性并且与seq id no：205和seq id no：206具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中当所述肽接触由seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302组成的多肽互补物时，当与单独由所述肽和腔肠素或腔肠素类似物底物产生的生物发光信号相比时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，二肽(例如，β9/β
10
样二肽)与本文所述的多肽组分(例如，β
1-8
样多肽)在无促进作用(例如，来自相互作用元件)的情况下缔合(例如，形成生物发光复合物)。在其它实施方案中，本文所述的二肽(例如，β9/β
10
样二肽)和多肽组分(例如，β
1-8
样多肽)在无促进作用(例如，来自相互作用元件)的情况下将不会形成生物发光复合物，但将在来自适当相互作用元件的促进作用下缔合(例如，形成生物发光复合物)。在一些实施方案中，当肽与多肽互补物缔合时，生物发光信号得以显著增强。在一些实施方案中，与seq id no：205和/或seq id no：206的肽相比，所述肽表现出一种或多种特性的增强，其中所述特性选自：当与多肽互补物组合时，对多肽互补物的亲和力或增强的表达、溶解度、稳定性和/或生物发光活性。在一些实施方案中，氨基酸序列不是天然存在的蛋白质或其片段。在一些实施方案中，所述氨基酸序列包含非天然氨基酸、氨基酸类似物和/或类肽氨基酸。
46.在一些实施方案中，本文提供了融合多肽(例如，基因融合物、合成产生的融合物、化学缀合物、酶促缀合物等)，其包含本文所述的β9/β10样二肽和附加氨基酸序列。在一些实施方案中，附加氨基酸序列选自由以下组成的组：目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件和结合部分。在一些实施方案中，附加氨基酸序列或其它融合或附加分子是选自由以下组成的组的结合部分：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、肽核酸、darpin、affimer，纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合域。在一些实施方案中，附加氨基酸序列或其它融合或附加分子是第一相互作用多肽，其被配置成在第一相互作用多肽与第二相互作用多肽接触时与第二相互作用多肽形成复合物。在一些实施方案中，附加氨基酸序列或其它融合或附加分子是第一共定位多肽，其被配置成与第二共定位多肽在细胞区室、细胞、组织或生物体内共定位。在一些实施方案中，附加氨基酸序列或其它融合或附加分子是目标蛋白质，并且是候选药物靶标。
47.在一些实施方案中，本文提供了编码本文所述的肽、多肽和/或融合多肽的核酸和/或载体。在一些实施方案中，本文提供了表达编码本文所述的肽、多肽和/或融合多肽的核酸和/或载体的细胞。在一些实施方案中，提供了本文所述的肽、多肽和/或融合多肽的合成产生。在一些实施方案中，本文所述的肽、多肽和/或融合多肽化学缀合于另外的部分(例如，相互作用元件、共定位元件、目标蛋白质、目标分子等)。
48.在一些实施方案中，本文提供了生物发光复合物，其包含：(a)多肽，其包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(b)第一肽，其包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；和(c)第二肽，其包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与eq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；其中当在单独的多肽、单独的第一肽、单独的第二肽以及所述多肽、所述第一肽和所述第二肽中的任意两种存在的情况下与腔肠素或腔肠素类似物底物相比时，所述生物发光复合物在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生显著增强的生物发光。在一些实施方案中，第一肽是第一肽标签，其中第二肽是第二肽标签，并且其中第一肽标签和第二肽标签各自与独立地选自由以下组成的组的部分连接：目标分子、目标肽、目标蛋白质、相互作用元件、共定位元件或结合部分。在一些实施方案中，第一肽标签或第二肽标签与药物或药物候选物连接，而另一肽标签与药物靶标或候选药物靶标连接，并且其中来自生物发光复合物的生物发光强度与药物或药物候选物对药物靶标或候选药物靶标的亲和力相关。在一些实施方案中，第一肽标签与第一相互作用元件连接，第二肽标签与第二相互作用元件连接，并且其中在所测定的条件下，来自生物发光复合物的生物发光强度与第一相互作用元件对第二相互作用元件的亲和力相关(例如，在一些实施方案中，在相互作用元件之间不存在相互作用的情况下，第一肽、第二肽、多肽组分和底物的组合不形成生物发光复合物(并且不产生显著的光输出
(例如，高于背景))。在一些实施方案中，第一肽标签与第一共定位元件连接，第二肽标签与第二共定位元件连接，并且其中在所测定的条件下，显著增强的生物发光指示所述第一共定位元件和所述第二共定位元件的共定位，但不一定是相互作用。
49.在一些实施方案中，本文提供的肽和多肽不是较大(例如，先前存在的)蛋白质的片段。在其它实施方案中，本文提供的一种或多种肽和/或多肽是较大(例如，先前存在的)蛋白质的片段。
50.在一些实施方案中，本文提供的方法包括：(a)组合：(i)第一肽，其包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，(ii)第二肽，其包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，(iii)肽组分，其包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述第一分子实体与所述第二分子实体相互作用时产生生物发光复合物，和(iv)腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(b)检测发光，其中与单独由多肽组分和腔肠素或腔肠素类似物产生的发光水平相比，更高的发光水平指示所述多肽组分和所述第一肽及第二肽的生物发光复合物的形成。在一些实施方案中，使多肽组分以及第一肽和第二肽中的一种或多种在细胞中表达，外源性添加到细胞中，并且/或者添加到样品中。
51.在一些实施方案中，本文提供了检测第一分子实体与第二分子实体之间相互作用的方法，所述方法包括：(a)用第一肽标签给第一分子实体加标签，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(b)用第二肽标签给第二分子实体加标签，所述第二肽标签包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(c)组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体；(d)添加多肽组分，所述多肽组分包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述第一分子实体与所述第二分子实体相互作用时产生生物发光复合物；(e)添加腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(f)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中发光信号的量值与第一分子实体和第二分子实体之间的一种或多种相互作用的数量、强度、有利性和/或稳定性相关(例如，成比例、成正比等)。在一些实施方案中，所得生物发光复合物的催化效率、底物周转和/或比活性与第一分子实体和第二分子实体之间的一种或多种相互作用的数量、强度、有利性和/或稳定性相关(例如，成比例、成正比等)。在一些实施方案中，第一分
子实体和/或第二分子实体是目标蛋白质或目标肽，并且加标签包括产生第一分子实体和/或第二分子实体与第一肽标签和/或第二肽标签的融合物(或合成缀合物)。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是小分子，并且加标签包括将第一分子实体和/或第二分子实体与第一肽标签和/或第二肽标签直接或间接连接。在一些实施方案中，第一分子实体和第二分子实体之一是药物或药物候选物，而另一者是药物靶标或候选药物靶标，并且生物发光信号指示药物或药物候选物与作为药物靶标或候选药物靶标的另一者的结合。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体包括在细胞内表达一者或两者并且/或者将一者或两者添加到细胞中。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体在体外、在非细胞样品中等进行。在一些实施方案中，使用本文的系统和方法，通过将未标记的药物靶标或候选药物靶标滴定到系统中，来确定药物或候选药物对药物靶标或候选药物靶标的亲和力。在一些实施方案中，同时执行步骤(a)-(f)中的两个或更多个步骤。在一些实施方案中，分开执行步骤(a)-(f)中的两个或更多个步骤。
52.在一些实施方案中，本文提供了进行竞争性测定以检测第一分子实体与第二分子实体之间的相互作用的方法，所述方法包括：(a)组合：(i)包含用第一肽标签加标签的第一分子实体的示踪剂，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，(ii)用第二肽标签加标签的第二分子实体，所述第二肽标签包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，(iii)腔肠素或腔肠素类似物底物，(iv)多肽组分，其包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，和(v)怀疑含有未加标签的第一分子实体的样品；其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生生物发光复合物并产生生物发光信号；(b)检测由生物发光复合物产生的生物发光信号；以及(c)将在样品存在的情况下产生的生物发光信号与在样品不存在的情况下产生的对照生物发光信号进行比较，其中生物发光信号的减弱指示样品中未加标签的第一分子实体的存在或量。在一些实施方案中，第一分子实体是小分子或肽(例如，药物或候选药物)。在一些实施方案中，第二分子实体是药物靶标或候选药物靶标(例如，蛋白质)。
53.在一些实施方案中，本文提供了检测细胞内第一蛋白质、第一肽或第一分子实体与第二蛋白质、第二肽或第二分子实体之间的相互作用的方法，所述方法包括：(a)在细胞内表达(或添加到细胞或其它系统(例如，非细胞样品)中)包含第一蛋白质、第一肽或第一分子实体和第一肽标签的融合物(例如，基因融合物、合成融合物、化学缀合物等)，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(b)在细胞内表达(或添加到细胞或其它系统(例如，非细胞样品)中)包含第二蛋白质、第二肽或第二分子实体和第二肽标签的融合
物(例如，基因融合物、合成融合物、化学缀合物等)，所述第二肽标签包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(c)在细胞内表达(或添加到细胞或其它系统(例如，非细胞样品)中)多肽组分，所述多肽组分包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述第一蛋白质、第一肽或第一分子实体与所述第二蛋白质、第二肽或第二分子实体相互作用时产生生物发光复合物；(d)向细胞中添加腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中发光信号的量值与第一蛋白质、第一肽或第一分子实体与第二蛋白质、第二肽或第二分子实体之间的相互作用的强度相关。在一些实施方案中，同时执行步骤(a)-(e)中的两个或更多个步骤。在一些实施方案中，分开执行步骤(a)-(e)中的两个或更多个步骤。
54.在一些实施方案中，本文提供了检测第一分子实体和第二分子实体的共定位的方法，所述方法包括：(a)用第一肽标签给第一分子实体加标签，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(b)用第二肽标签给第二分子实体加标签，所述第二肽标签包与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(c)在同一系统中组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体；(d)向系统中添加多肽组分，所述多肽组分包含与seq id no：17、seq id no：21或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述第一分子实体和所述第二分子实体共定位时产生生物发光复合物；(e)向系统中添加腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(f)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在指示所述第一分子实体和所述第二分子实体在系统内的共定位，并且/或者其中发光信号的量值与所述第一分子实体和所述第二分子实体在系统内的共定位的量相关。在一些实施方案中，所述系统包括细胞、组织、器官或整个生物体。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是目标蛋白质或目标肽，并且加标签包括产生第一分子实体和/或第二分子实体与第一肽标签和/或第二肽标签的融合物(例如，基因融合物、合成融合物、化学缀合物、酶促缀合物等)。在一些实施方案中，第一分子实体和/或第二分子实体是小分子，并且加标签包括将第一分子实体和/或第二分子实体与第一肽标签和/或第二肽标签直接或间接连接。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体在体外、在非细胞样品等中进行。在一些实施方案中，组合加标签的第一分子实体和加标签的第二分子实体包括在系统中表达一者或两者并且/或者向系统中添加一者或两者。在一些实施方案中，同时执行步骤(a)-(f)中的两个或更多个步骤。在
一些实施方案中，分开执行步骤(a)-(f)中的两个或更多个步骤。
55.在一些实施方案中，本文提供了检测第一蛋白质、第一肽或第一分子实体和第二蛋白质、第二肽或第二分子实体在细胞内共定位的方法，所述方法包括：(a)在细胞内表达包含第一蛋白质或肽实体和第一肽标签的融合物，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(b)在细胞内表达包含第二蛋白质或肽实体和第二肽标签的融合物，所述第二肽标签包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)的序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10；具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；(c)在细胞内表达多肽组分，所述多肽组分包含与seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体共定位时产生生物发光复合物；(d)向细胞中添加腔肠素或腔肠素类似物底物；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在指示细胞内所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体的共定位，并且/或者其中发光信号的量值与所述第一蛋白质或肽实体和所述第二蛋白质或肽实体在系统内的共定位的量相关。在一些实施方案中，同时执行步骤(a)-(e)中的两个或更多个步骤。在一些实施方案中，分开执行步骤(a)-(e)中的两个或更多个步骤。
56.在一些实施方案中，本文提供了试剂盒，其包含：(a)与第一肽标签缀合的第一结合部分，所述第一肽标签包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：6和seq id no：9具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；和(b)与第二肽标签缀合的第二结合部分，所述第二肽标签包含与seq id no：25具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：7和seq id no：10具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列。在一些实施方案中，第一结合部分和第二结合部分独立地选自由以下组成的组：抗体(例如，多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，第一结合部分和第二结合部分是初级结合部分，其被配置成结合相同靶实体上的抗原、表位或序列。在一些实施方案中，第一结合部分和第二结合部分是次级结合部分，其被配置成结合初级结合部分上的抗原、表位或序列。在一些实施方案中，试剂盒还包含多肽试剂，所述多肽试剂包含与seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列。在一些实施方案中，试剂盒还包含腔肠素或腔肠素类似物。
id no：21和/或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性(并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性)，其中所述第一肽标签、所述第二肽标签和所述多肽组分被配置成在相互作用时产生生物发光复合物；(d)使样品与腔肠素或腔肠素类似物底物接触；以及(e)检测由生物发光复合物产生的发光信号，其中高于背景的发光信号的存在指示靶分子的存在，并且/或者其中发光信号的量值与样品中靶分子的量相关。在一些实施方案中，结合部分独立地选自由以下组成的组：抗体(多克隆的、单克隆的和/或重组的)、抗体片段、蛋白a、蛋白a的ig结合结构域、蛋白g、蛋白g的ig结合结构域、蛋白a/g、蛋白a/g的ig结合结构域、蛋白l、蛋白l的ig结合结构域、蛋白m、蛋白m的ig结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域。在一些实施方案中，靶分子是蛋白质、肽、核酸、化学物质或药物。在一些实施方案中，样品是体外或体内的。
59.在一些实施方案中，本文提供的方法包括：(a)组合：(i)肽组分，其包含与seq id no：35具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：205和seq id no：206具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，(ii)多肽组分，其包含与seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或更高)序列同一性，并且与seq id no：5和seq id no：8具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列，和(iii)腔肠素或腔肠素类似物底物，其中肽组分和多肽组分被配置成在相互作用时产生生物发光复合物；以及(b)检测发光，其中与单独由多肽组分和腔肠素或腔肠素类似物产生的发光水平相比，更高的发光水平指示多肽组分与肽的生物发光复合物的形成。在一些实施方案中，所述肽是与第一相互作用元件的融合物(例如，基因缀合物、合成缀合物、化学缀合物、酶促缀合物等)，并且多肽组分是与第二相互作用元件融合物(例如，基因缀合物、合成缀合物、化学缀合物、酶促缀合物等)，其中所述肽组分和所述多肽组分在相互作用元件的相互作用时形成生物发光复合物，但在不存在相互作用元件之间的相互作用的情况下不形成生物发光复合物。在一些实施方案中，肽和多肽组分在不存在促进作用(例如，通过相互作用元件)的情况下形成生物发光复合物。在一些实施方案中，所述肽是与目标蛋白质、目标肽或目标分子(例如，不是相互作用元件)的融合物或缀合物(例如，基因缀合物、合成缀合物、化学缀合物、酶促缀合物等)，并且/或者所述多肽组分是与目标蛋白质、目标肽或目标分子(例如，不是相互作用元件)的融合物或缀合物(例如，基因缀合物、合成缀合物、化学缀合物、酶促缀合物等)。在一些实施方案中，肽组分和多肽组分在共定位(例如，在样品、细胞、组织、受试者等中)时，在没有通过相互作用元件产生的促进作用的情况下形成生物发光复合物。在一些实施方案中，肽组分和多肽组分在通过相互作用元件产生的促进作用(但并非无促进作用)时形成生物发光复合物。
60.在一些实施方案中，本文提供了包含单体多肽的组合物，所述单体多肽包含与seq id no：788或789具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间的范围)但低于100％的序列同一性并且与seq id no：1或3具有低于100％的序列同一性的氨基酸序列；其中所述多肽在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下显示发光。在一些实施方案中，所述肽包含与seq id no：780、782、784、786、
802、804、806、808、813、815或829中的一个或多个具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间范围)的序列同一性的氨基酸序列。在一些实施方案中，所述多肽还包含附加的氨基酸序列。在一些实施方案中，提供了本文所述多肽的融合蛋白。
61.在一些实施方案中，本文提供了包含编码氨基酸序列的序列的核酸，所述氨基酸序列与seq id no：788或789具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间的范围)但低于100％的序列同一性并且与seq id no：1或3具有低于100％的序列同一性；其中所述多肽在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下显示发光。在一些实施方案中，核酸编，码与seq id no：780、782、784、786、802、804、806、808、813、815或829中的一个或多个具有高于40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间范围)的序列同一性的氨基酸序列。在一些实施方案中，提供了编码本文所述多肽的融合蛋白的核酸。
62.在一些实施方案中，本文提供了检测生物发光的方法，其包括使本文所述的单体生物发光多肽与腔肠素或腔肠素类似物底物接触，并检测发光。
63.在一些实施方案中，本文提供了包含氨基酸序列的多肽，所述氨基酸序列与seq id no：15具有高于40％的序列同一性，连接至与seq id no：17、21或302之一具有高于40％的序列同一性的氨基酸序列的n-末端；其中当所述多肽接触包含由seq id no：23组成的氨基酸序列的肽或多肽时，在腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下产生的生物发光信号与单独由多肽和腔肠素底物产生的生物发光信号相比显著增加。在一些实施方案中，提供了包含编码本文所述多肽的序列的核酸。在一些实施方案中，提供了本文所述多肽与附加的氨基酸序列的融合物。
64.在一些实施方案中，本文提供了如下方法，其包括(a)使包含与seq id no：15具有高于40％的序列同一性的氨基酸序列的多肽与腔肠素或腔肠素类似物底物和肽或多肽接触，所述氨基酸序列连接至与seq id no：17、21或302之一具有高于40％的序列同一性的氨基酸序列的n末端，所述肽或多肽包含与seq id no：23具有40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间范围)的序列同一性的氨基酸序列；以及(b)检测发光。
65.在一些实施方案中，本文提供了如下系统，其包括：(a)传感器多肽，其包含与seq id no：11具有至少40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间范围)的序列同一性的第一氨基酸序列，所述第一氨基酸序列与定位于特定细胞位置的氨基酸序列连接；以及(b)与肽标签连接的目标蛋白质，所述肽标签包含与seq id no：23具有至少40％(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间范围)的序列同一性的氨基酸序列；其中在特定细胞位置中共定位时，在所述多肽与肽标签之间形成生物发光复合物。在一些实施方案中，特定细胞位置选自质膜、细胞核、线粒体和内质网。在一些实施方案中，本文提供了如下方法，其包括(a)在细胞中表达本文所述的系统；(b)使细胞与腔肠素或腔肠素类似物底物接触；以及(c)检测发光，其中发光的增加表明生物发光复合物的形成以及多肽和肽标签的共定位。在一些实施方案中，该方法还包括诱导与肽标签连接的目标蛋白易位至特定细胞位置的步骤。
附图说明
66.本专利或申请文件包含至少一幅用彩色绘制的图。带有彩色附图的本专利或专利申请出版物的副本将按请求并在支付必要的费用后由专利局提供。
67.图1.演示缺乏β9和β10部分的多肽(lgtrip 2098；seq id no：17)显示出与lgbit(seq id no：11)相比减弱的背景发光，并且通过与对应于β9和β10的肽互补而被激活的图。
68.图2.演示lgtrip 2098(seq id no：17)被分别对应于β9和β10的单独肽激活的图。
69.图3.描绘示例性lgtrip 2098突变体的相对稳定性的图。
70.图4.描绘lgtrip 2098突变体的位置42处的氨基酸位点饱和度的相对发光活性的图。
71.图5.描绘lgtrip 2098突变体的位置42处的氨基酸变化的相对稳定性的图。
72.图6a-图6c.描绘lgtrip 2098突变体的(a)位置4、(b)位置30和(c)位置106处的氨基酸变化的相对发光活性的图。
73.图7.描绘lgtrip 3092突变体的(a)位置101、(b)位置117、(c)位置127、(d)位置120和(e)位置126处的氨基酸变化的相对发光活性的图。
74.图8.描绘lgtrip 2098(wt)(seq id no：31)、lgtrip 3092(seq id no：19)和lgbit(seq id no：11)在37℃下的相对稳定性的图。
75.图9.描绘lgtrip变体在(a)42℃和(b)60℃下的相对稳定性的图。
76.图10.描绘(a)用smtrip9 pep286(seq id no：37)滴定各种lgtrip变体，(b)用smtrip10 pep86(seq id no：25)滴定各种lgtrip变体，和(c)各种lgtrip变体对smtrip9 pep286和smtrip10 pep86的亲和力的图。
77.图11a-图11b.描绘各种lgtrip变体在60℃下的(a)稳定性(半衰期)和(b)相对稳定性的图。
78.图12a-图12b.描绘(a)在tbs+0.01％bsa中测定的以及(b)用测定缓冲液测定的在smtrip9 pep286(seq id no：37)和smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)存在的情况下相较于在nanoluc(seq id no：3)和lgbit(seq id no：11)和smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)存在的情况下的lgtrip变体的动力学曲线的图。
79.图13a-图13b.描绘通过雷帕霉素诱导的frb/fkbp复合物形成产生的各种三部分系统的促进性互补作用的图：(a)smtrip10 pep86(seq id no：25)、smtrip9 pep245(seq id no：23)和lgtrip 2098(seq id no：31)；和(bsmbit(seq id no：13)、smtrip9 pep245(seq id no：23)和lgtrip 2098(seq id no：31)。
80.图14a-图14b.比较lgbit(seq id no：11)和lgtrip 2098(wt)(seq id no：31)在(a)tbs+0.01％bsa和(b)被动裂解缓冲液(plb)中于37℃下的稳定性的图。
81.图15a-图15b.比较lgbit(seq id no：11)、lgtrip 3546(seq id no：51)和nanoluc(seq id no：31)在60℃下的稳定性的图；(a)时间过程和(b)半衰期。
82.图16a-图16b.比较(a)在nacl存在的情况下和(b)在暴露于nacl 26小时后的lgbit(seq id no：11)、nanoluc(seq id no：3)、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(wt)(seq id no：31)的图。
83.图17a-图17b.比较(a)在尿素存在的情况下和(b)在暴露于尿素26小时后的lgbit(seq id no：11)、nanoluc(seq id no：3)、lgtrip3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(wt)
(seq id no：31)的图。
84.图18a-图18b.比较(a)在不同ph值下和(b)在暴露于不同的ph值26小时后的lgbit(seq id no：11)、nanoluc(seq id no：3)、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(wt)(seq id no：31)变体的图。
85.图19.比较lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)的自发光的图。
86.图20a-图20b.比较lgbit(seq id no：11)+smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)、lgbit(seq id no：11)+pep263(seq id no：35)(β9/β10二肽)和lgtrip 3546(seq id no：51)+pep263(β9/β10二肽)(seq id no：35)的发光的图：(a)rlu和(b)信号/背景(s/b)。
87.图21a-图21c.lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)分别与smtrip 10 pep86(seq id no：25)和smtrip9 pep245(seq id no：23)的促进性互补作用：(a)测定系统的示意图，(b)rlu和(c)信号/背景(s/b)。
88.图22.比较各种smtrip10序列对lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)的亲和力的图和表。
89.图23.比较标准取向(pep263)(seq id no：35)和反向取向(pep326)(seq id no：179)二肽对lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)的激活的图和表。
90.图24.描绘包含hibit或smbit序列的二肽对互补多肽的激活的图和表。具有hibit序列pep263(seq id no：35)的二肽或具有smbit序列pep274(seq id no：147)的二肽
91.图25a-图25b.(a)描绘由多肽组分(相对于lgtrip 3546具有添加或缺失)与smtrip9 pep286(seq id no：37)和各种β10样肽(smtrip10肽)的各种组合的互补作用产生的发光的图；(b)描绘由lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)与各种β10样肽(smtrip10肽)的互补作用产生的发光的图。
92.图26a-图26c.(a-c)描绘由在多肽组分与对应于β9链的肽之间或β9与β10样肽之间具有重叠(相对于基本萤光素酶序列)的多肽/肽组合产生的发光的图。
93.图27a-图27b.描绘了由(a)在恒定的lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip10 pep86(seq id no：25)浓度存在的情况下滴定各种β9样肽(smtrip9肽)，以及(b)在恒定的lgtrip 3546(seq id no：51)和各种β9样肽(smtrip9肽)浓度存在的情况下滴定smtrip10 pep86(seq id no：25)产生的发光的图和表。
94.图28.描绘了由在恒定浓度的lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)存在的情况下滴定各种β10样肽(smtrip 10肽)产生的发光的图和表。
95.图29a-图29b.描绘在恒定浓度的各种β10样肽(smtrip10肽)和lgtrip 3546(seq id no：51)多肽组分存在的情况下滴定β9样肽(a)smtrip9 pep286(seq.id 37)和(b)smtrip9 pep287(seq id no：148)的图和表。
96.图30.描绘在hek293细胞中构建体取向(β9-fkbp、fkbp-β9、β10-fkbp、fkbp-β10、β9-frb、frb-β9、β10-frb或frb-β10)对促进性互补作用的影响的图。
97.图31.描绘在大肠杆菌(e.coli)细胞中构建体取向(β9-fkbp、fkbp-β9、β10-fkbp、fkbp-β10、β9-frb、frb-β9、β10-frb或frb-β10)对促进性互补作用的影响的图。
98.图32.描绘各种β10样肽与lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)的计算的kd值的图。
99.图33.描绘来自在多肽组分lgtrip 3546(seq id no：51)与β9样肽之间具有不同
pep86(seq id no：25)或smtrip10 pep289(seq id no：150))产生的诱导倍数(促进性互补作用/自发互补作用)的影响的图。
114.图48.描绘在具有lgtrip 3546(seq id no：51)的hek293裂解物中β9序列截短和延伸以及构建体取向(β9-fkbp或fkbp-β9)对与frb-smtrip10 pep86(seq id no：25)的促进性互补作用的影响的图。
115.图49.描绘在hek293裂解物中β9序列截短和延伸以及构建体取向(β9-fkbp或fkbp-β9)对与frb-smtrip10 pep289(seq id no：150)的促进性互补作用的影响的图。(lgtrip 3546(seq id no：51)。
116.图50.描绘在hek293裂解物(图48和图49的概述)中β9序列截短、延伸和构建体取向(β9-fkbp或fkbp-β9)对通过frb-β10(smtrip10 pep86(seq id no：25)或smtrip10pep289(seq id no：150))产生的诱导倍数(促进性互补作用/自发互补作用)的影响的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
117.图51a-图51d.描绘使用用肽加标签的结合部分的示例性蛋白质-蛋白质相互作用测定或分析物检测测定的示意图。
118.图51e-图51h.描绘使用本文所述组分和试剂的示例性免疫测定的示意图：(a)直接免疫测定，(b)间接免疫测定，(c)竞争性直接免疫测定和(d)竞争性间接免疫测定。
119.图52.示例性多重三部分侧向流测定的示意图。例如，这种测定可用于检测病原体。
120.图53.示例性多重三部分侧向流测定的示意图。例如，这种测定可用于检测抗病毒抗体。
121.图54.示例性抗体检测测定的示意图。
122.图55.示例性基于珠粒的测定的示意图。
123.图56.示例性核酸检测测定的示意图。
124.图57.描绘大肠杆菌裂解物中frb-fkbp促进性互补作用的图，其中在由**表示的构建体中接头不存在ai(ala-ile)二肽。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
125.图58.描绘hek293裂解物中frb-fkbp促进性互补作用的图，其中在由**表示的构建体中接头不存在ai序列二肽。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
126.图59.描绘在大肠杆菌裂解物中frb-smtrip10 pep86和c末端延伸的fkbp-smtrip9肽对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
127.图60.描绘在大肠杆菌裂解物中frb-smtrip10 pep289和c末端延伸的fkbp-smtrip9肽对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
128.图61.描绘在hek293裂解物中frb-smtrip10 pep86和c末端延伸的fkbp-smtrip9肽对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))
129.图62.描绘在大肠杆菌裂解物中frb-smtrip10 pep86和fkbp融合物中的smtrip9肽序列截短和延伸对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
130.图63.描绘在大肠杆菌裂解物中frb-smtrip10 pep289和fkbp融合物中的smtrip9肽序列截短和延伸对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(lgtrip 3546(seq id no：51))。
no：51)存在的情况下各种smtrip10肽的滴定结果的表。
150.图83.列出了在恒定的smtrip9 pep286(seq id no：37)和lgtrip 3546(seq id no：51)存在的情况下各种smtrip10肽的滴定结果的表。
151.图84.描绘来自antares型融合物(lgtrip 3546)与smtrip9 pep263(seq id no：35)以及与smtrip10 pep86(seq id no：25)的结合或者与smtrip10 pep86+smtrip9 pep286(seq id no：37)的生物发光的图。
152.图85a-b.描绘来自antares型融合物(lgtrip 3546)(seq id no：51)与smtrip9 pep263(seq id no：35)以及与smtrip pep 86(hibit；seq id no：25)或者与smtrip 10 pep 86(hibit；seq id no：25)+smtrip9 pep286(seq id no：37)的发射光谱的图。
153.图86.描绘在二肽pep263(seq id no：35)存在的情况下，用“暗”二肽272(seq id no：146)滴定lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)的图。
154.图87.比较lgtrip 3546(seq id no：51)和lgbit(seq id no：11)对暗二肽272(seq id no：146)和273(seq id no：298)的抑制作用的图。
155.图88.描绘dark bit167(seq id no：300)对lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)的抑制作用的图。
156.图89.描绘在大肠杆菌裂解物中，fkbp-smtrip9 pep434(seq id no：230)变体与lgtrip 3546(seq id no：51)和frb-hibit(seq id no：25)的互补作用对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。
157.图90.描绘在大肠杆菌裂解物中，smtrip9 pep434(seq id no：230)变体与lgtrip 3546(seq id no：51)和frb-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)的互补作用对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。
158.图91.(a)描绘在hek293裂解物中，smtrip9 pep435(seq id no：231)和smtrip9 pep434(seq id no：230)变体与lgtrip 3546(seq id no：51)和frb-smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)的互补作用对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。(b)描绘在hek293裂解物中，smtrip9 pep435(seq id no：231)和smtrip9 pep434(seq id no：230)变体与lgtrip 3546(seq id no：51)和frb-smtrip10 pep289(seq id no：150)的互补作用对发光复合物形成的frb-fkbp促进作用的图。
159.图92.描绘利用smtrip9s 823和840的frb-fkbp测定筛选的结果的表。
160.图93.列出合成的smtrip9 pep435(seq id no：231)和smtrip9 pep434(seq id no：230)变体与lgtrip 3546(seq id no：51)的kd和bmax的表。
161.图94.wt lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)与pep263(seq id no：35)或pep331(seq id no：301)一起作为生物发光试剂用于检测内源加标签(例如，通过crispr/cas9)的gapdh的图表显示。
162.图95.示例性smtrip10化学缀合物。(a)具有n末端半胱氨酸修饰的smtrip10的实例，所述n末端半胱氨酸修饰用于在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子或用马来酰亚胺(用于与硫醇诸如半胱氨酸反应)或n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)(用于与胺诸如赖氨酸反应)制备的蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的暴露于溶剂的或受保护的半胱氨酸靶标上形成二硫键。(b)具有n末端叠氮基-赖氨酸修饰的示例性smtrip10，所述n-末端叠氮基-赖氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中在蛋白质/肽/
dna和rna寡核苷酸/小分子上分别安装未应变或应变炔烃靶标。(c)具有n末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的示例性smtrip10，所述n末端n-羟基琥珀酰亚胺酯用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核物质(例如，赖氨酸、其它伯胺)的一般缀合。亲核物质可以存在于未修饰的蛋白质/寡聚体/小分子上，或者可出于这种缀合的目的而化学添加。(d)具有n末端炔丙基甘氨酸修饰的示例性smtrip10，所述n末端炔丙基甘氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入叠氮化物、重氮基或四嗪靶标。(e)具有n末端炔丙基甘氨酸修饰和c末端荧光团(例如，bodipy染料)的示例性smtrip10，所述n末端炔丙基甘氨酸修饰用于铜催化或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)。
163.图96.示例性smtrip9 pep286化学缀合物。(a)具有c末端叠氮基-赖氨酸修饰的smtrip9-286的实例，所述c末端叠氮基-赖氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入未应变或应变炔烃靶。(b)具有c末端炔丙基甘氨酸修饰的smtrip9 pep286的实例，所述c末端炔丙基甘氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入叠氮化物、重氮基、四嗪靶标。(c)具有c末端半胱氨酸修饰的smtrip9 pep286的实例，所述c末端半胱氨酸修饰用于在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子或已用马来酰亚胺柄或n-羟基琥珀酰亚胺酯制备的蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的暴露于溶剂的或受保护的半胱氨酸靶上形成二硫键。(d)具有c末端半胱氨酸修饰和n末端bodipy染料的smtrip9 pep286的实例。染料不限于bodipy，可以是任何荧光团、bret配偶体或fret染料/淬灭剂配偶体。染料可与在c末端上制备的缀合柄的任何其它组合一起并入。(e)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep286的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(例如赖氨酸)或蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子的一般缀合。(f)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep286的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(即赖氨酸)或蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子的一般缀合。
164.图97.示例性smtrip9 pep521化学缀合物。(a)具有c末端叠氮基-赖氨酸修饰和n末端bodipy染料的smtrip9 pep521的实例。染料不限于bodipy，可以是任何荧光团、bret配偶体或fret染料/淬灭剂配偶体。染料可与在c末端上制备的缀合柄的任何其它组合一起并入。(b)具有c末端叠氮基-赖氨酸修饰的smtrip9 pep521的实例，所述c末端叠氮基-赖氨酸用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入未应变或应变炔烃靶标。(c)具有c末端炔丙基甘氨酸修饰的smtrip9 pep521的实例，所述c末端炔丙基甘氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入叠氮化物、重氮基、四嗪靶标。(d)具有c末端半胱氨酸修饰的smtrip9 pep521的实例，所述c末端半胱氨酸修饰用于在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子或已用马来酰亚胺柄或nhs-酯制备的蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的暴露于溶剂或受保护的半胱氨酸靶上形成二硫键。(e)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep521的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)用于与蛋白质/肽/dna
和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(即赖氨酸)的一般缀合。(f)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep521的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(即赖氨酸)的一般缀合。
165.图98.示例性smtrip9 pep524化学缀合物。(a)具有c末端叠氮基-赖氨酸修饰和n末端bodipy染料的smtrip9 pep524的实例。染料不限于bodipy，可以是任何荧光团、bret配偶体或fret染料/淬灭剂配偶体。染料可与c末端上的缀合柄的任何其它组合一起并入。(b)具有c末端叠氮基-赖氨酸修饰的smtrip9 pep524的实例，所述c末端叠氮基-赖氨酸修饰用于铜催化的或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入未应变或应变炔烃靶标。(c)具有c末端炔丙基甘氨酸修饰的smtrip9 pep524的实例，所述c末端炔丙基甘氨酸修饰用于铜催化或无铜的1，3-偶极环加成反应(“点击”)，其中以化学或生物学方式在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上分别引入叠氮化物、重氮、四嗪靶标。(d)具有c末端半胱氨酸修饰的smtrip9 pep524的实例，所述c末端半胱氨酸修饰用于在蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子或已用马来酰亚胺柄或nhs-酯制备的蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的暴露于溶剂的或受保护的半胱氨酸靶标上形成二硫键。(e)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep524的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(即赖氨酸)的一般缀合。(f)具有c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯(nhs-酯)的smtrip9 pep524的实例，所述c末端n-羟基琥珀酰亚胺酯用于与蛋白质/肽/dna和rna寡核苷酸/小分子上的亲核靶标(即赖氨酸)一般缀合。
166.图99a-图99b.示例性肽寡聚体探针。展示反应性叠氮基的肽与展示反应性炔基的寡核苷酸缀合，形成示例性肽-寡聚体探针。(a)通过铜“点击”1，3-环加成与含有5’末端炔烃官能度的dna寡聚体缀合的smtrip9 pep286(含叠氮基)的肽寡聚体缀合物。(b)通过铜“点击”1，3-环加成与含有3
’‑
末端炔烃官能度的dna寡聚体缀合的smtrip 10 pep 86(hibit)(含叠氮基)的肽寡聚体缀合物。
167.图100.描绘smtrip9 g147位点饱和变体的筛选的图。
168.图101.描绘smtrip9 k148位点饱和变体的筛选的图。
169.图102.描绘smtrip9 m149位点饱和变体的筛选的图。
170.图103.描绘smtrip9 l150位点饱和变体的筛选的图。
171.图104.描绘smtrip9 f151位点饱和变体的筛选的图。
172.图105.描绘smtrip9 r152位点饱和变体的筛选的图。
173.图106.描绘smtrip9 v153位点饱和变体的筛选的图。
174.图107.描绘smtrip9 t154站点饱和变体的筛选的图。
175.图108.描绘smtrip9 i155位点饱和变体的筛选的图。
176.图109.描绘smtrip9 n156位点饱和变体的筛选的图。
177.图110.描绘smtrip9 s157位点饱和变体的筛选的图。
178.图111.描绘smtrip9 w158位点饱和变体的筛选的图。
179.图112.描绘smtrip9 k149位点饱和变体的筛选的图。
180.图113.具有smtrip9 pep435/434的大肠杆菌裂解物中的frb-fkbp促进性互补作用的结果表。
3546(seq id no：51)的促进性互补作用测量100pm的英夫利昔单抗的信号产生的结合动力学的图。
211.图144.描绘在基于溶液的均相测定中，通过不同的smtrip9 pep(x)-蛋白g变体和tnfa-smtrip 10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)融合蛋白以及纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用测量10nm的英夫利昔单抗的信号产生的图。
212.图145.描绘被采用来使用smtrip 9-g蛋白融合蛋白和表达smtrip10 pep289-egfr(seq id no：150)的hek293细胞开发用于抗egfr生物剂帕尼单抗和西妥昔单抗的基于细胞的均相定量测定的方法的示意图。
213.图146.描绘在基于细胞的均相测定中，通过smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)融合蛋白和表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞以及纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用定量帕尼单抗的图。
214.图147.描绘在基于细胞的均相测定中，通过smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)融合蛋白和表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞以及纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用测量西妥昔单抗的信号产生的实时结合动力学的图。
215.图148.描绘在基于细胞的均相测定中，通过不同的smtrip9pep(x)-蛋白g变体和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用测量1nm帕尼单抗的信号产生的图。
216.图149.描绘在基于细胞的均相测定中，通过不同smtrip9 pep(x)-蛋白g变体和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用对帕尼单抗剂量反应进行定量的图。
217.图150.描绘在基于溶液的均相测定中，使用halotag-smtrip9 pep521(seq id no：268)和halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)化学标记的成对抗体对人il-1β进行定量的图。使用nanotrip化学标记的成对抗体的人肌钙蛋白的实时结合动力学。
218.图151.描绘在基于溶液的均相测定中，使用halotag-smtrip9 pep521(seq id no：268)和halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)化学标记的成对抗体对人肌钙蛋白进行定量的实时结合动力学的图。
219.图152.将负责将蛋白质导向特定细胞区室的特化肽与lgbit-halo标签融合。(a)lgbit-膜传感器：lgbit为绿色，细胞核为蓝色。(b)lgbit-核传感器：lgbit为绿色，细胞核为蓝色。(c)lgbit-线粒体传感器：lgbit为绿色，有丝分裂跟踪器(mitotracker)为红色，细胞核为蓝色。(d)lgbit-er传感器：lgbit为绿色，er标志物为红色，细胞核为蓝色。
220.图153.易位测定。poi被hibit内源性加标签。刺激后，poi易位到不同的细胞区室，例如细胞核。lgbit-核传感器可用来检测该易位事件，因为hibit遇到lgbit产生发光信号。
221.图154.利用野生型lgbit传感器的膜易位测定。用野生型lgbit膜传感器转染pkcα-hibit细胞系。由于lgbit与hibit之间的强相互作用，自发互补作用发生，导致对pma刺激没有反应。
222.图155.利用lgbit*传感器(seq id no：979)的膜易位测定。用不同量的编码lgbit*-膜传感器的dna转染pkcα-hibit细胞系。经pma处理后，pkcα-hibit迁移至质膜，在质膜中锚定有lgbit*-膜传感器。hibit与lgbit*之间的组装产生发光信号，所述信号与膜
上pkcα-hibit的量成比例。该测定灵敏可靠。无论传感器输入量如何，pma滴定都产生相似的ec
50
(ec
50
＝2.0nm)。根据传感器输入的量，响应倍数在12倍与19倍之间变化。
223.图156.利用lgbit*传感器的核易位测定。用编码lgbit*-核传感器的dna转染p65-hibit细胞系。tnfα的添加将p65募集到lgbit*-核传感器定位的细胞核。hibit与lgbit*之间发生互补作用，从而产生光。信号强度反映了p65在细胞核中的浓度。tnfα的滴定产生为0.7ng/ml的ec
50
，其中响应倍数为4。实时测量显示，刺激后需要30分钟才能在细胞核中达到p65的最大积累。
224.图157a-图157b.描绘lgbit突变体与hibit的亲和力和bmax的(a)图和(b)表。
225.图158.描绘lgbit突变体裂解物对hibit的亲和力的图。
226.图159.描绘截短的萤光素酶多肽和肽组分的各种组合在底物存在的情况下产生的相对生物发光的图和表。
227.图160.将lgtrip在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并将pep289加至25um。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20x kd)以及vs-hibit的滴定。
228.图161.将lgtrip在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并将pep289加至25um。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20x kd)以及vs-hibit的滴定。
229.图162.将二肽稀释至5um，并使用tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和0.2nm lgtrip作为稀释剂进行5倍连续稀释。将样品在室温下孵育10分钟，并以一式三份加入到测定板的孔中。将1比1体积∶体积的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和20倍稀释的活细胞基质加入样品中，并在10分钟后在光度计上读取平板。
230.图163.使lgtrip变体在37℃下于含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中生长过夜。将细胞在诱导培养基(含100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中稀释20倍，并在37℃下振荡诱导4小时。将10微升的每种诱导物稀释到250ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中。在2ml裂解缓冲液中进一步稀释80微升裂解物。使用以50um furimazine作为稀释剂的nano-glo，从10μm肽开始进行pep788(seq id 414)的10倍稀释系列。将肽稀释液和裂解物以1∶1 体积∶体积混合，在室温下孵育10分钟，并读取发光。
231.图164.使lgtrip变体在37℃下于含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中生长过夜。将细胞在诱导培养基(含100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中稀释20倍，并在37℃下振荡诱导4小时。将10微升的每种诱导物稀释到250ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中。在2ml裂解缓冲液中进一步稀释80微升裂解物。使用以50um furimazine和50μm pep289(seq id 826)作为稀释剂的nano-glo，从50μm肽开始进行pep759(seq id 496)的5倍稀释系列。将肽稀释液和裂解物以1∶1 体积∶体积混合，在室温下孵育10分钟，并读取发光。
232.图165.使lgtrip变体在37℃下于含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中生长过夜。将细
胞在诱导培养基(含100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中稀释20倍，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物在1x tbs+0.01％bsa中稀释1,000倍。将50微升的每份样品转移到pcr板中，并在热循环仪中于80℃下孵育1.5小时。将对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每份样品转移到测定板中，并与25ul的400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。
233.图166.按照制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。
234.图167.按照制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。
235.图168.按照制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(12.5um)以及vs-hibit的滴定。
236.图169.将magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每份样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在70℃下于热循环仪中孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl的每种稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+400nm pep788(seq id no：414)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。通过非线性回归计算半衰期。
237.图170.使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。将培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升测定试剂加入到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo加入到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。
238.图171.使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨
苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。将培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升测定试剂加入到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo加入到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。
239.图172.使lgtrip变体在37℃下于含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中生长过夜。将细胞在诱导培养基(含100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中稀释20倍，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物在1x tbs+0.01％bsa中稀释1,000倍。将50微升的每份样品转移到pcr板中，并在热循环仪中于70℃下孵育1.5小时。将对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每份样品转移到测定板中，并与25ul的400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞furimazine底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。
240.图173.使lgtrip变体在37℃下于含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中生长过夜。将细胞在诱导培养基(含100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中稀释20倍，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物在1x tbs+0.01％bsa中稀释1,000倍。将50微升的每份样品转移到pcr板中，并在veritas热循环仪中于两个温度梯度下孵育，75-100℃下孵育10分钟或50-75℃下孵育1.5小时。将对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每份样品转移到测定板中，并与25ul的400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞furimazine底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。
241.图174.使magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每份样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在70℃于热循环仪中孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl的每种稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+400nm pep788(seq id no：414)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。
242.图175.根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(12.5um)以及vs-hibit的滴定。
243.图176.根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积
的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(12.5um)以及vs-hibit的滴定。
244.图177.根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。
245.图178.根据制造商的方案，使用promega magnahismagnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。
246.图179.根据制造商的方案，使用promega magnahismagnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20 x kd)以及vs-hibit的滴定。
247.图180.根据制造商的方案，使用promega magnahismagnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20 x kd)以及vs-hibit的滴定。
248.图181.使lgtrip变体培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释，并在25℃下振荡诱导约20小时。将细胞在plb检测试剂(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释1000倍，并裂解20分钟。在nano-glo+50um furimazine+25um pep289中进行smtrip9 pep840的五倍连续稀释，并与lgtrip裂解物以1∶1 体积∶体积混合。将样品在室温下孵育10分钟，并在光度计上进行读取。
249.图182.根据制造商的方案，使用promega magnahismagnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。
250.图183.将magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三
份将每份样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在70℃于热循环仪中孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl的每种稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+200nm pep900(seq id no：907)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。通过非线性回归计算半衰期。
251.图184.使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10s的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。将培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90x稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升测定试剂加入到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo加入到测定板孔中，并在5分钟后在glomax上读取发光。
252.图185.使lgtrip变体培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释，并在25℃下振荡诱导约20小时。将细胞在0.3 x plb测定试剂中稀释5000倍，并裂解20分钟。在nano-glo+50um furimazine中进行利用饱和pep289的二肽pep788、pep900或smtrip9 pep840的五倍连续稀释，并与lgtrip变体裂解物以1∶1 体积∶体积混合。将样品在室温下孵育10分钟，并在光度计上进行读取。通过非线性回归计算bmax。
253.图186.将lgtrip变体在2ml tbs+0.01％bsa中稀释至20nm，并将100ul的每种样品等分到96孔pcr板的双份行(两块板)中。在veritas热循环仪中，在高(75-100℃)或低(50-75℃)温度梯度下将平板孵育3小时。将样品置于70℃，然后在不同的时间点将等分试样移至室温。将样品平衡至室温。用移液管将每个时间点的样品混合，然后以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中(5ul于495ul中)。将25微升每种样品等分到白色测定板中，并加入25ul的200nm的于tbs+0.01％bsa+20x dil lcs中的pep788或pep900。将平板孵育10分钟，然后在gmm+上读取发光。
254.图187.使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10s的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。将培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90x稀释的frb-smtrip10培养物和+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升测定试剂加入到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo加入到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。
255.图188.将lgtrip 3546在optimem+10％fbs中稀释至1nm。在optimem+10％fbs中制备链9肽521和693的12μm溶液。每份链9稀释液用于从20μm开始制备每种链10肽的3倍稀释系列(pep86＝hibit，pep289＝vs hibit，pep691＝hibit rr，pep692＝vshibit rr)。将90μl的每个稀释系列转移至白色测定板，然后加入10μl的1μm lgtrip 3546原液。将平板置于设定为600rpm的轨道振荡器上持续30分钟。制备由10mm dtt和50um furimazine组成的optimem+10％fbs的检测试剂，并向样品中加入11μl。将平板置于轨道振荡器上，并在室温
下混合5分钟。在multi+光度计上读取平板。使用graphpad prism one位点特异性结合计算kd和bmax。
256.图189.蛋白质的纯化。使每种样品的培养物从lb+30ug/ml kan中的分离的菌落开始，并在37℃下生长20小时。用补充有30ug/ml kan、0.1％鼠李糖和0.15％葡萄糖的lb以1∶100(500ul于50ml中)稀释培养物。使培养物在25℃下生长20小时。将细胞旋转并重悬于9ml 100mm hepes ph 7.5+1ml fastbreak裂解缓冲液+200ul rq dna酶i中，并在4℃下置于轨道混合器上30分钟(保存总裂解物的等分试样)。将每种样品旋转(7000rpm，15分钟)以澄清裂解物，并使用magnehis
tm
纯化系统(promega v8550)纯化蛋白质。将1ml magnehis
tm
磁性树脂加入每个澄清的裂解物中，并在轨道混合器上放置10分钟。将每种样品用洗涤缓冲液洗涤三次，然后用500ul的洗脱缓冲液洗脱两次以回收样品。使用10,000mwco透析单元(thermo 88404)将样品透析到1x tbs中，持续2小时。
257.图190.nanoluc(atg-462)与单体lgbit-smbit蛋白质的发光比较。将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。在nano-缓冲液(n113，n112)中，将50ul的每种样品与50ul的50um fz组合，并在加入底物后三分钟在gmm+光度计上测量发光。nanoluc比单体构建体亮2倍。
258.图191.km测定。将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。从50um开始，然后1ml比1ml稀释来制备在nano-缓冲液中的fz的2倍稀释系列(40ul于2ml中)。将50ul的每种样品以一式两份与50ul的滴定系列组合，在室温下孵育3分钟，然后在gmm+上读取发光。
259.图192.与nanoluc(atg-462)相比的单体lgbit-smbit蛋白的稳定性。将每种样品在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm，等分到96孔pcr板的多个孔中，并置于设定有温度梯度的热循环仪中30分钟。孵育30分钟后，将5ul的每种样品与45ul tbs+0.01％bsa组合，加入50ul稀释到nano-缓冲液中的fz，孵育3分钟，并在gmm+光度计上测量发光。温度梯度a：54℃、57℃、60℃、63℃、66℃和70℃。温度梯度b：55℃、60℃、65℃、70℃、75℃和80℃。温度梯度c：65℃、70℃、75℃、80℃、85℃和90℃。
260.图193.热稳定性比较。将每种样品在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm，等分到两个96孔pcr平板的多个孔中，并置于设定有温度梯度的热循环仪中30分钟。(75
°
、80
°
、85
°
、90
°
、95
°
和100℃)。孵育30分钟后，将5ul的每种样品与45ul tbs+0.01％bsa组合，加入50ul稀释到nano-缓冲液中的fz，孵育3分钟，并在gmm+光度计上读取发光。与159s相比，位置159g提供了增强的稳定性。
261.图194.lgbit-smbit变体与nanoluc的稳定性比较。将样品稀释至2nm，等分到96孔pcr板的孔中，并置于设定为60℃的热循环仪中。在不同的时间点，取出等分试样并置于冰上。在所有样品孵育后，使样品平衡至室温，并将5ul的每种样品与45ul tbs+0.01％bsa组合。加入50ul的nano-缓冲液+50um fz，将平板孵育3分钟，然后在gmm+光度计上测量发光。60℃稳定性曲线与温度梯度曲线一致，其中lgbit-smbit比nanoluc略稳定，并且lgbit-hibit比nanoluc稳定得多。
262.图195.单体lgbit-smbit在升高的温度下的稳定性。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后进一步稀释至0.2nm(4ul于4ml中)。将50ul的atg-462或atg-3564与50ul的
nano-缓冲液+50um fz或50ul的tbs+0.01％bsa+20um fz在薄壁pcr托盘的孔中组合，并将托盘置于梯度设定为55
°
、60
°
、65
°
、70
°
、75
°
和80℃的veritas热循环仪中。在不同的时间点，取出样品，在gmm+光度计上测量发光。
263.图196.单体lgbit-smbit在升高的温度下持续30分钟的稳定性。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后进一步稀释至0.2nm(4ul于4ml中)。将50ul的atg-462或atg-3564与50ul的nano-缓冲液+50um fz或50ul的tbs+0.01％bsa+20um fz在薄壁pcr托盘的孔中组合，并将托盘置于梯度设定为55
°
、60
°
、65
°
、70
°
、75
°
和80℃的veritas热循环仪中。在30分钟时测量发光。
264.图197.纯化的突变体的km和vmax的测量。将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。从50um开始(40ul于2ml中)，然后1ml比1ml稀释来制备nano-缓冲液中的fz的2倍稀释系列。将50ul的每种样品以一式两份与50ul的滴定系列组合，在室温下孵育3分钟，并在gmm+光度计上读取发光。
265.图198.热攻击。
266.图199.对于稳定变体的热攻击。将每种样品在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm，等分到两个96孔pcr板的多个孔中，并置于设定有温度梯度的热循环仪中30分钟。(70
°
、75
°
、80
°
、85
°
、90
°
和95℃)。孵育30分钟后，将5ul的每种样品与45ul tbs+0.01％bsa组合，加入50ul稀释到nano-缓冲液中的fz，孵育3分钟，并在gmm+光度计上测量发光。
267.图200.pep521和pep 40与检测蛋白的比较。将每种蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。从20um开始，在tbs+0.01％bsa中制备pep521和pep840的3倍稀释系列。将50ul的每种酶稀释液以一式两份与50ul每种肽的滴定液组合，并在振荡器上孵育10分钟以达到预平衡。通过在tbs+0.01％bsa中将nano-glo活细胞基质(lcs；promega n205)稀释30倍制备测定缓冲液，向每个孔中加入100ul，孵育5分钟，并在gmm+光度计上测量发光。从不含肽的样品中获得背景读数。
268.图201.链9检测蛋白与pep840的比较。将每种蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm。从0.5μm开始，在tbs+0.01％bsa中制备pep840的3倍稀释系列。将50ul的每种酶稀释液一式四份与50ul的每种肽滴定液组合，并在振荡器上孵育10分钟以达到预平衡。通过将nano-glo lcs(promega n205)在tbs+0.01％bsa中稀释30倍来制备测定缓冲液，向每个孔中加入100ul，孵育5分钟，并在gmm+光度计上测量发光。从不含肽的样品中获得背景读数。
269.图202.测试接头系列。在lb+100ug/ml amp中制备每种样品的过夜培养物。第二天，将培养物在lb+0.1％鼠李糖+100ug/ml amp中以1∶20(150ul对3ml)稀释，在37℃下生长4小时，然后用plb裂解缓冲液(0.3x被动裂解缓冲液(promega)+25mm hepes ph 7.5)裂解(500ul裂解物对4.5ml plb裂解缓冲液)。为了进行测定，将裂解物以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中。从10nm开始，制备链9(pep840)的3倍稀释系列，将50ul与50ul的每种样品的稀释的裂解物组合，并在室温下于设定为600rpm的轨道振荡器上孵育20分钟。加入100ul的缓冲液+50um furimazine(n113)，并在gmm+光度计上测量发光。除atg-5485、5aa接头外，每个克隆都产生与atg-4992相似的rlu值。
270.图203.接头比较：8gs(atg-4992)对比11gs(atg-5490)。使用magnehis
tm
纯化系统纯化atg-4992和atg-5490，并在不依赖于co2的培养基+10％fbs中稀释至100nm。从10nm开
始，在nano-缓冲液+50um furimazine中制备pept840的3倍系列稀释液。将50ul的每种酶稀释液一式四份与50ul肽滴定液组合。在gmm+光度计中测量随时间推移的发光。绘制的数据来自50分钟的动力学读数。atg-5490的信号约为atg-4992的约2倍。
271.图204.atg-4992和atg-5490的突变体的kd。制备每种样品在lb+100ug/ml amp中的过夜培养物。第二天，在lb+0.1％鼠李糖+100ug/ml amp中以1∶20(150ul对3ml)稀释培养物，在37℃下生长4小时，并用plb裂解缓冲液进行裂解(500ul裂解物对4.5ml plb裂解缓冲液)。为了进行测定，将裂解物以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中。从40um开始制备链9(pep840)的3倍稀释系列，将50μl与50μl的每种样品的稀释的裂解物组合，并在室温下于设定为600rpm的轨道振荡器上孵育20分钟。100ul的nano-缓冲液+50um furimazine(n113)，并在gmm+光度计上测量发光。
272.图205.atg-4992和atg-5490的突变体的比较。纯化蛋白质(magnehis
tm
纯化系统，promega)，并在不依赖co2的培养基+10％fbs中稀释至100nm。用pep840在nano-缓冲液+50um furimazine中从2nm开始制备3倍稀释系列。将50ul的每种酶稀释液一式三份与50ul的每种肽滴定液在furimazine/nanoglo溶液中组合。每5分钟测量一次发光。从60分钟时间点开始绘制数据。克隆atg-5515和atg-5517具有较低的计算kd值，并且当与pep840配对时显示较高的rlu值，并且信号比背景稍高。
273.图206.生化分析。使用magnehis
tm
蛋白质纯化系统(promega v8500)纯化样品，并将其在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％tergitol中制备vs-hibit肽(pep289)的3倍稀释系列。一个系列从400nm开始制备，另一个系列从20um开始制备。将50ul的每种稀释的酶(0.2nm)与50ul的每种肽滴定液组合，并在振荡器上孵育10分钟。加入100ul在tbs+0.01％bsa中稀释250倍的fz，将平板置于振荡器上5分钟，并在gmm+光度计上测量发光。使用graphpad prism一位点特异性结合回归计算kd和bmax。
274.图207.不同ph下的活性。将纯化的酶的每种样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm，向每个溶液中加入20um vs hibit(pep289)，并在室温下孵育20分钟。将990ul每种ph缓冲液等分到深孔板的孔中，加入10ul furimazine(promega，n113)，以及加入50ul的每种酶/肽稀释液和50ulph缓冲液/furimazine溶液。将样品在室温下孵育12分钟，并在gmm+光度计上测量发光。将数据以ph 8.49的样品作归一化。
275.图208.atg-5823、atg-5824、atg-5825和atg-5146(pep263)的生化比较。使用magehis
tm
纯化系统(promega)纯化蛋白质(atg-5823、atg-5824和atg-5825)。使用具有镍琼脂糖凝胶柱的akta纯化atg-5146。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。从100nm开始，在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中制备pep263的三倍稀释系列。将50ul的每种酶与50ul的肽稀释系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育10分钟。孵育后，将100ul lcs(n205promega)以1∶30稀释到tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。
276.图209.atg-5826和atg-5827与pep86的生化比较。使用magnehis
tm
纯化系统(promega v8500)纯化蛋白质。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中，从1um和
100nm开始制备pep86的两个2倍滴定系列。将50ul的atg-5826和atg-5827与50ul的从1um开始的肽稀释系列组合。将50ul的lgbit蛋白(promega n401c)与从100nm开始的肽滴定系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育10分钟。孵育后，将100ul lcs(n205 promega)以1∶30稀释到tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。
277.图210.atg-5826和atg-5827与pepll4的生化比较。使用magnehis
tm
纯化系统(promega v8500)纯化蛋白质。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。从1mm开始，在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中制备两个pepll4的2倍滴定系列。将50ul的atg-5826、atg-5827和lgbit蛋白(promega n401c)与肽滴定系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育30分钟。孵育后，将100ul lcs(n205 promega)以1∶30稀释到tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。
278.图211.sds page分析。将每种蛋白质在tbs+1x sds上样染料中稀释至0.1ug/ml。将样品加热至70℃，持续5分钟，然后将3ul样品上样到sds page凝胶上。
279.图212.用于检测sars-cov-2的示例性测定形式。
280.图213.用于筛选反应性肽的示例性试剂。sulfose与靶蛋白上的赖氨酸反应，peg6接头和吡啶磺酸(psa)提供溶解性，并且psa具有可用于测量标记密度的uv特征。
281.图214.用于检测sars-cov-2的替代标记策略的加标抗体滴定。
282.图215.纯化的sars-cov-2核衣壳抗原检测。
283.图216.在手持测定中用冻干抗原测定进行测试的样品。将患者鼻拭子放入试剂管中，破坏管底部的箔密封。将含有试剂盖的缓冲液置于含有样品的试剂管上，将其锁定。将缓冲胶囊破裂释放，然后摇动。将试剂管插入手持式光度计中，并对样品进行分析。
284.图217.含氟-fz的单体nanobit。将待测的每种酶稀释到tbs+0.01％bsa中。用fz(n205)或jrw-1677在tbs(从20um开始)或nanoglo(从25um开始)中制备滴定系列。每种底物用tbs+0.01％bsa或nano-缓冲液(promega n112)连续稀释。将50ul的每种酶稀释液与50ul的每种底物滴定液组合，孵育3分钟，然后在gmm+光度计上测量发光。计算了fz和jrw-1667的动力学参数。当使用tbs稀释底物时，与单体nanobit构建体相比时，nanoluc(atg-462)对于fz和jrw-1667产生更高的rlu值(约10-20倍)。对于fz/nanoglo缓冲液，nanoluc和单体构建体显示出相似的rlu值，但只有nanoluc对于jrw-1667显示出增强的发光。尽管单体nanobit构建体对于fz和jrw-1667均显示出较低的rlu值，但两种缓冲液和两种底物的rlu值相似。与nanoglo相比，tbs+0.01％bsa中的km值较低，但一般来说，除atg-3562(单体lgbit-smbit)外，每种条件下的km值都相似，所述atg-3562对于所有测试条件均显示较低的计算km值。
285.图218.halotag-lgbit*-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中halotag-lgbit*的免疫荧光图像显示了其在细胞中的遍在分布。左：仅红色通道，中：仅蓝色通道；右：叠加。
286.图219.细胞核传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中细胞核传感器的免疫荧光图像显示其细胞核定位。左：仅红色通道，中：仅蓝色通道；右：叠加。
287.图220.线粒体传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中线粒体传感器
的免疫荧光图像显示其在线粒体基质中的定位。dna染色呈蓝色。左：仅红色通道，中：仅绿色通道；右：叠加。
288.图221.er传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中内质网传感器(er)的免疫荧光图像显示其er定位。dna染色呈蓝色。左：仅绿色通道；中：仅红色通道；右：叠加。
289.图222.高尔基体传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中高尔基体传感器的免疫荧光图像显示其高尔基体定位。高尔基体-gfp标志物仅对顺式高尔基体染色。我们的高尔基体传感器的一部分未与高尔基体-gfp标志物共定位，表明我们的高尔基体传感器可能存在于顺式和反式高尔基体中。dna染色呈蓝色。左：仅红色通道；中：仅绿色通道；右：叠加。
290.图223.溶酶体传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中溶酶体传感器的免疫荧光图像显示其定位于溶酶体。dna染色呈蓝色。左：仅红色通道，中：仅绿色通道；右：叠加。
291.图224.膜传感器-哺乳动物细胞表达和荧光成像。hela细胞中膜传感器的免疫荧光图像显示其定位于质膜。dna染色呈蓝色。左：仅红色通道，中：仅绿色通道；右：叠加。
292.图225.膜传感器-哺乳动物细胞表达和发光测定。pma刺激下pkcα的易位。用膜传感器瞬时转染pkcα-hibit克隆(hela)。用佛波醇-12-肉豆蔻酸-13乙酸酯(pma)处理转染的细胞，并进行动力学测量。所有3种膜传感器产生相似的ec
50
，表明lgbit变体对hibit的亲和力不影响pkcα的易位事件。
293.图226.膜/halotag-lgbit传感器-哺乳动物细胞表达和发光测定。hibit-lgbit*复合物的可逆性。增加的pma浓度将更多的pkcα募集到质膜，导致更高的发光信号，因为更多的pkcα-hibit与lgbit*膜传感器互补。相反，较少的pkcα在胞质溶胶中积累；因此，当与halotag-lgbit(细胞溶质传感器)配对时，发光信号减弱。
294.图227.pkcα的易位事件。pkcα易位事件的动力学测量。当与膜传感器配对时，可以动态地测量pkcα在质膜上的积累。在pma刺激下，pkcα在t＝16分钟时达到其在质膜上的最大积累。
295.定义
296.尽管与本文所述的方法和材料相似或等同的任何方法和材料可用于本文所述的实施方案的实践或测试，但本文描述了一些优选方法、组合物、装置和材料。然而，在描述本发明的材料和方法之前，应当理解，本发明不限于本文所述的特定分子、组合物、方法或方案，因为这些可以根据常规实验和优化而变化。还应当理解，说明书中使用的术语仅用于描述特定形式或实施方案的目的，并不旨在限制本文所述的实施方案的范围。
297.除非另有定义，否则本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域的普通技术人员通常理解的含义相同的含义。然而，在发生冲突的情况下，以本说明书(包括定义)为准。因此，在本文所述的实施方案的上下文中，采用以下定义。
298.如本文和所附权利要求书中所用，除非上下文另有明确规定，否则单数形式“一个/种(a)”、“一个/种(an)”和“该(the)”包括复数的指代物。因此，例如，提及“肽”是指本领域技术人员已知的一种或多种肽及其等同物，等等。
299.如本文中所用，术语“和/或”包括所列项的任何和所有组合，包括单独列出的任何项。例如，“a、b和/或c”包括a、b、c、ab、ac、bc和abc，其每一个都被认为是由语句“a、b和/或
c”单独描述的。
300.如本文中所用，术语“包含”及其语言变化形式表示所列举的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等的存在，而不排除另外的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等的存在。相反地，术语“由......组成”及其语言变化形式表示所列举的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等的存在，并且除通常伴随的杂质外，排除任何未列举的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等。短语“基本上由......组成”表示所列举的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等，以及不会对组合物、系统或方法的基本性质产生实质性影响的任何另外的一个或多个特征、一个或多个要素、一个或多个方法步骤等。本文中的许多实施方案是使用开放性“包含”语言来描述的。此类实施方案涵盖多个封闭性“由实施方案组成”和/或“基本由实施方案组成”，所述实施方案可替代地使用这样的语言来声明或描述。
301.如本文中所用，术语“基本上”意指所列举的特征、参数和/或值不需要精确地实现，但偏差或变化，包括例如公差、测量误差、测量精度限制和本领域技术人员已知的其它因素，可以以不排除该特征旨在提供的效果的量出现。基本上不存在的特征或特性(例如，基本上不发光)可以是在噪声内、在背景下、在所使用的测定的检测能力之下的特性或特征，或者是显著特征(例如，生物发光蛋白或生物发光复合物的发光强度)的一小部分(例如，＜1％、＜0.1％、＜0.01％、＜0.001％、＜0.00001％、＜0.000001％、＜0.0000001％)。
302.如本文中所用，术语“生物发光”是指通过由酶、蛋白质、蛋白质复合物或其它生物分子(例如，生物发光复合物)催化或实现的化学反应产生和发射光。在典型的实施方案中，生物发光实体(例如，生物发光蛋白或生物发光复合物)的底物被生物发光实体转化为不稳定的形式；底物随后发光。
303.如本文中所用，术语“互补的”是指两种或更多种结构元件(例如，肽、多肽、核酸、小分子等)的能够相互杂交、二聚或以其它方式形成复合物的特征。例如，“互补肽和多肽”能够结合在一起形成复合物。互补元件可能需要辅助(促进作用)来形成复合物(例如，由相互作用元件)，例如，以将元件放置在适当的构象中以实现互补，将元件放置在适当的近处以实现互补，共定位互补元件，降低用于互补的相互作用能量，克服彼此之间的亲和力不足等。
304.如本文中所用，术语“复合物”是指彼此直接和/或间接接触的分子(例如，肽、多肽等)的组装体(assemblage)或聚集体。一方面，“接触”，或者更具体地说，“直接接触”意指两个或更多个分子足够接近，使得吸引性非共价相互作用，诸如范德华力、氢键合、离子和疏水相互作用等，主导分子的相互作用。在这一方面，在测定条件下形成分子(例如，肽和多肽)的复合物，使得所述复合物在热力学上是有利的(例如，与其组分分子的非聚集或非复合状态相比)。如本文中所用，术语“复合物”，除非另有说明，否则是指两种或更多种分子(例如，肽、多肽或其组合)的组装体。
305.如本文中所用，术语“非发光的”是指如下实体(例如，肽、多肽、复合物、蛋白质等)，其表现出(例如，在底物存在的情况下)不发射可检测量的可见光谱中的光的特性。例如，如果实体在给定的测定中未表现出可检测的发光，则所述实体可被称为非发光的。如本文中所用，术语“非发光的”与术语“基本非发光的”同义。在一些实施方案中，如果任何光发射足够小以至于不会对特定测定产生干扰背景，则实体被认为是“不发光的”。
306.如本文中所用，术语“非发光肽”和“非发光多肽”是指基本上不显示发光(例如，在底物存在的情况下)或者当与在标准条件(例如，生理条件、测定条件等)下利用典型仪器(例如，光度计等)测得的显著信号(例如，生物发光复合物)相比时，低于噪声(例如，100倍、200倍、500倍、1x103倍、1x104倍、1x105倍、1x106倍、1x107倍等)的量的肽和多肽。在一些实施方案中，根据本文所述的标准，此类非发光肽和多肽组装形成生物发光复合物。
307.如本文中所用，术语“相互作用元件”是指帮助或促进非发光元件聚集在一起形成生物发光复合物的部分。在一些实施方案中，将一对相互作用元件(又称为“相互作用对”)附接至一对非发光元件(例如，非发光肽)，并且两个相互作用元件之间的吸引相互作用促进生物发光复合物的形成；尽管本发明不限于这种机制，并且实施本发明不需要理解该机制。相互作用元件可通过任何合适的机制(例如，使非发光元件紧密接近，将非发光元件放置在合适的构象中以实现稳定的相互作用，降低复合物形成的活化能，其组合等)促进生物发光复合物的形成。相互作用元件可以是蛋白质、多肽、肽、小分子、辅因子、核酸、脂质、碳水化合物、抗体等。相互作用对可由两个相同的相互作用元件(即，同对(homopair))或两个不同的相互作用元件(即，异对(heteropair))组成。在异对的情况下，相互作用元件可以是相同类型的部分(例如，多肽)，或者可以是两种不同类型的部分(例如，多肽和小分子)。在研究相互作用对形成复合物的一些实施方案中，相互作用对可被称为“靶对”或“目标对”，并且单个相互作用元件被称为“靶元件”(例如，“靶肽”、“靶多肽”等)或“目标元件”(例如，“目标肽”、“目标多肽”等)。
308.如本文中所用，术语“低亲和力”描述了两个或更多个(例如，三个)实体之间的分子间相互作用，除非在比生理或测定条件高得多(例如，2倍、5倍、10倍、100倍、1000倍或更多倍)的浓度下或者借助于来自附接元件(例如，相互作用元件)的第二复合物的形成的促进作用，所述相互作用太弱而不能导致实体之间显著的复合物形成。
309.如本文中所用，术语“高亲和力”描述了两个或更多个(例如三个)实体之间的分子间相互作用，所述相互作用强至足以在生理或测定条件下产生可检测的复合物形成，而无需来自附接元件(例如，相互作用元件)的第二复合物的形成的促进作用。
310.如本文中所用，术语“共定位元件”是指促进非发光元件的共定位的部分。在一些实施方案中，当一组非发光元件以足够的浓度共定位时，则该组非发光元件具有足够的亲和力来形成复合物。在此类实施方案中，一组(例如，一对)共定位元件(也称为“共定位对”)附接至一对非发光元件(例如，非发光肽)，并且两个共定位元件的共定位(例如，在细胞区室内、在组织内、在溶液内、在固体基质支持物上等)促进非发光元件的共定位，从而促进生物发光复合物的形成；尽管本发明不限于这种机制，并且实施本发明不需要理解该机制。在一些实施方案中，由于非发光元件自组装成发光复合物的能力，因此共定位元件不需要直接相互作用来促进复合物的形成。共定位元件可以是蛋白质、多肽、肽、小分子、辅因子、核酸、脂质、碳水化合物、抗体等。共定位对可由两个相同的共定位元件(即，同对)或两个不同的共定位元件(即，异对)组成。在异对的情况下，共定位元件可以是相同类型的部分(例如，多肽)，或者可以是两种不同类型的部分(例如，多肽和小分子)。在一些研究共定位对的定位的实施方案中，共定位对可被称为“靶对”或“目标对”，单个共定位元件被称为“靶元件”(例如，“靶肽”、“靶多肽”等)或“目标元件”(例如，“目标肽”、“目标多肽”等)。
311.如本文中所用，术语“腔肠素”是指天然存在的(“天然的”)腔肠素。如本文中所用，
g.j.bernardes(2015)
″
advances in chemical protein modification.”chem rev 115(5)：2174-2195；通过引用以其整体并入本文。
318.术语“氨基酸类似物”是指其中c末端羧基、n末端氨基和侧链生物活性基团中的一种或多种已被可逆或不可逆地化学封闭或者以其它方式修饰成另一种生物活性基团的天然或非天然氨基酸。例如，天冬氨酸-(β-甲基酯)是天冬氨酸的氨基酸类似物；n-乙基甘氨酸是甘氨酸的氨基酸类似物；或者丙氨酸甲酰胺是丙氨酸的氨基酸类似物。其它氨基酸类似物包括甲硫氨酸亚砜、甲硫氨酸砜、s-(羧基甲基)-半胱氨酸、s-(羧基甲基)-半胱氨酸亚砜和s-(羧基甲基)-半胱氨酸砜。氨基酸类似物可包括具有各种保护基团的氨基酸(isidro-llobet，a.等人(2009)。
″
amino acid-protecting groups.
″
chemical reviews 109(6)：2455-2504；通过引用以其整体并入本文)。
319.如本文中所用，除非另有说明，否则术语“肽”和“多肽”是指通过肽酰胺键(
‑‑
c(o)nh
‑‑
)通过主链连接的两个或更多个氨基酸的聚合物化合物。术语“肽”通常指短氨基酸聚合物(例如，具有少于30个氨基酸的链)，而术语“多肽”通常指较长的氨基酸聚合物(例如，具有多于30个氨基酸的链)。
320.如本文中所用，除非另有说明，否则术语“二肽”是指包含两个肽区段(例如，对应于直接或间接(例如，通过接头(例如，肽接头(例如，1-10个氨基酸(例如，单个甘氨酸))融合/附接的萤光素酶的两条β链(例如，“β9/β10二肽”，对应于ogluc萤光素酶多肽的β9和β10链))的肽或小的多肽(例如，＜70个氨基酸、＜60个氨基酸、＜50个氨基酸等)。
321.如本文中所用，除非另有说明，否则术语“三肽”是指如下的肽或小的多肽(例如，＜100个氨基酸、＜90个氨基酸、＜80个氨基酸等)，其包含三个肽区段(例如，对应于萤光素酶的三条β链(例如，对应于ogluc萤光素酶多肽的β8-10链的“β8-10三肽”)，其直接或间接(例如，通过接头(例如，肽接头(例如，1-10个氨基酸(例如，单个甘氨酸))融合/附接)。
322.如本文中所用，术语“拟肽”和“肽模拟物”是指模拟源自蛋白质或肽的序列的肽样或多肽样分子。拟肽可以仅包含氨基酸类似物、类肽氨基酸和/或非氨基酸成分，或者包含氨基酸类似物、肽样氨基酸和/或非氨基酸成分与氨基酸(例如，天然或非天然氨基酸)的组合。拟肽的实例包括化学修饰的肽/多肽、类肽(侧链附加在肽主链的氮原子上而不是α碳上)、β肽(氨基键合至β碳上而不是α碳上)等。
323.如本文中所用，术语“类肽”是指一类其中侧链在肽主链的氮原子上而非在α-碳上被官能化的拟肽。
324.如本文中所用，术语“人工的”是指由人设计或制备的并且不是天然存在的组合物和系统。例如，人工肽、类肽或核酸是包含非天然序列的肽(例如，与天然存在的蛋白质或其片段没有100％同一性的肽)。
325.如本文中所用，“保守”氨基酸取代是指肽或多肽中的氨基酸被另一个具有相似化学性质(诸如大小或电荷)的氨基酸取代。出于本公开的目的，以下八组中的每一组都包含为彼此的保守取代的氨基酸：
326.1)丙氨酸(a)和甘氨酸(g)；
327.2)天冬氨酸(d)和谷氨酸(e)；
328.3)天冬酰胺(n)和谷氨酰胺(q)；
329.4)精氨酸(r)和赖氨酸(k)；
id no：z具有x个(例如，10个)或更少的取代”。
339.如本文中所用，术语“野生型”是指这样的基因或基因产物(例如，蛋白质、多肽、肽等)，其具有从天然存在的来源分离的该基因或基因产物的特征(例如，序列)，并且在群体中最常见。相反，术语“突变体”或“变体”是指与野生型基因或基因产物相比时，在序列上显示出修改的基因或基因产物。要注意的是，“天然存在的变体”是指存在于自然界中的，但与野生型基因或基因产物相比，序列发生了改变的基因或基因产物；它们不是最常见的序列。“人工变体”是指当与野生型基因或基因产物相比时，序列发生改变，并在自然界中不存在的基因或基因产物。变异基因或基因产物可以是存在于自然界中的天然存在的序列，但不是该基因或基因产物最常见的变体，或者是由人或实验干预产生的“合成的”。
340.如本文中所用，术语“生理条件”涵盖与活细胞相容的任何条件，例如与活细胞相容的温度、ph、盐度、化学组成等主要含水条件。
341.如本文中所用，术语“样品”以其最广泛的含义使用。在某种意义上，其意味着包括从任何来源获得的样本或培养物，以及生物和环境样品。生物样品可从动物(包括人)获得，并且涵盖液体、固体、组织和气体。生物样品包括血液制品，诸如血浆、血清等。样品也可以指细胞裂解物或本文所述的酶、肽和/或多肽的纯化形式。细胞裂解物可包括已经用裂解剂裂解的细胞或裂解物诸如兔网织红细胞或小麦胚芽裂解物。样品还可包括无细胞表达系统。环境样品包括诸如表面物质、土壤、水、晶体和工业样品等的环境材料。然而，此类实例不应被解释为限制适用于本发明的样品类型。
342.如本文中所用，术语“融合”、“融合多肽”和“融合蛋白”是指含有第一种目标蛋白质或多肽(例如，基本上不发光的肽)与第二不同的肽、多肽或蛋白质(例如，相互作用元件)连接的嵌合蛋白。
343.如本文中所用，术语“缀合的”和“缀合”是指两个分子实体的共价附接(例如，合成后和/或在合成生产过程中)。肽或小分子标签与蛋白质或小分子的化学(例如，“通过化学方式”缀合的)或酶促附接是缀合的实例。
344.术语“结合部分”是指独立于不同的表位或抗原结合结构域而特异性结合抗原或表位的结构域。结合部分可以是抗体、抗体片段、结合靶配体的受体结构域、结合免疫球蛋白的蛋白质(例如，蛋白a、蛋白g、蛋白a/g、蛋白l、蛋白m)、结合免疫球蛋白的蛋白质(例如，蛋白a、蛋白g、蛋白a/g、蛋白l、蛋白m)的结合结构域、寡核苷酸探针、肽核酸、darpin、适体、affimer、纯化的蛋白质(分析物本身或与分析物结合的蛋白质)和蛋白质的一个或多个分析物结合结构域等。表a提供了可在本文的方法、系统和测定(例如，免疫测定)中单独或以各种组合使用的示例性结合部分的列表。
345.表a.示例性结合部分
346.[0347][0348]
如本文中所用，术语“抗体”是指完整的抗体分子或其片段(例如，片段诸如fab、fab’和f(ab’)2、可变轻链、可变重链、fv，其可以是多克隆抗体或单克隆抗体或重组抗体、嵌合抗体、人源化抗体、人抗体等。如本文所用，当抗体或其它实体“特异性识别”或“特异性结合”抗原或表位时，其优先识别蛋白质和/或大分子的复杂混合物中的抗原，并以比与未展现抗原或表位的其它实体的亲和力显著更高的亲和力结合抗原或表位。在这点上，“明显更高的亲和力”意指高到足以使得能够使用期望的测定或测量设备检测与实体不同的抗原或表位的亲和力。通常，其意指结合常数(ka)至少为107m-1
(例如，＞107m-1
、＞108m-1
、＞109m-1
、＞10
10
m-1
、＞10
11
m-1
、＞10
12
m-1
、＞10
13
m-1
等)的结合亲和力。在某些此类实施方案中，抗体能够结合不同的抗原，只要不同的抗原包含该特定的表位即可。在某些情况下，例如，来自不同物种的同源蛋白质可包含相同的表位。
[0349]
如本文中所用，术语“抗体片段”是指全长抗体的一部分，包括抗原结合区或可变区的至少一部分。抗体片段包括但不限于fab、fab’、f(ab
′
)2、fv、scfv、fd、可变轻链、可变重链、双链抗体(diabody)和保留完整抗体的可变区的至少一部分的其它抗体片段。参见，例如，hudson等人((2003)nat.med.9：129-134；通过引用以其整体并入本文。在某些实施方案中，抗体片段是通过酶促或化学裂解由重组dna技术或化学多肽合成产生的完整抗体(例如，抗体的木瓜蛋白酶消化和胃蛋白酶消化)产生的。例如，“fab”片段包含一条轻链和一条重链的c
h1
和可变区。fab分子的重链不能与另一个重链分子形成二硫键。“fab”片段包含一条轻链和一条重链，所述重链包含在c
h1
与c
h2
结构域之间延伸的另外的恒定区。fab’片段的两条重链之间可以形成链间二硫键，以形成“f(ab
′
)
2”分子。“fv”片段包含来自重链和轻链两者的可变区，但缺少恒定区。单链fv(scfv)片段包含通过柔性接头连接的重链可变区和轻链可变区，以形成具有抗原结合区的单个多肽链。wo 88/01649和美国专利第4,946,778号和第5,260,203号(通过引用以它们的整体并入本文)中详细论述了示例性单链抗体。在某些情况下，单个可变区(例如，重链可变区或轻链可变区)可具有识别和结合抗原的能力。熟练的技术人员将理解其它抗体片段。
[0350]
如本文中所用，术语“肽标签”是指可以附接(例如，合成后或在合成生产期间)或融合至另一个实体(例如，目标蛋白质、目标分子、相互作用元件、共定位元件等)的肽。肽标
签可以连接或可以不附接至另一个实体。通常，如本文中所用，肽标签能够在适当的条件下与另一个肽标签和多肽形成生物发光复合物。在肽标签附接至另一个实体的实施方案中，将肽标签化学缀合至另一个分子(例如，肽、多肽、核酸、其它小分子或大分子)，化学合成为另一个分子的一部分，或者基因融合至另一个肽或多肽分子，等等。
[0351]
如本文中所用，术语“多肽组分”可与术语“生物发光复合物的多肽组分”同义使用。通常，如本文中所用，多肽组分能够在适当的条件下与一对肽标签形成生物发光复合物。
[0352]
如本文中所用，术语“刺虾萤光素酶”(“an ogluc”)是指具有由深海虾细角刺虾(oplophorus gracilirostris)产生的以及源自其的萤光素酶的显著序列同一性、结构保守性和/或功能活性的发光多肽。特别地，ogluc多肽是指具有刺虾萤光素酶蛋白质复合物的成熟19kda亚基(例如，无信号序列)的显著序列同一性、结构保守性和/或功能活性的发光多肽，诸如seq id no：1(wt ogluc)和3(nanoluc)，所述发光多肽包含10条β链(β1、β2、β3、β4、β5、β6、β7、β8、β9、β10)，并利用诸如腔肠素或腔肠素衍生物等的底物来产生发光。
[0353]
如本文中所用，术语“β9样肽”是指包含ogluc多肽的β(beta)9链的显著序列同一性、结构保守性和/或功能活性的肽(或肽标签)。具体地说，β9样肽是如下的肽，其能够在结构上与缺乏β9链的ogluc多肽互补从而导致与不存在β9样肽时的ogluc多肽相比复合物的发光增强。其它“βx样肽”也可类似命名(例如，β1样、β2样、β3样、β4样、β5样、β6样、β7样、β8样、β9样)。
[0354]
如本文中所用，术语“β10样肽”是指包含ogluc多肽的β(beta)10链的显著序列同一性、结构保守性和/或功能活性的肽(或肽标签)。具体地说，β10样肽是如下的肽，其能够在结构上与缺少β10链的0gluc多肽互补从而导致与不存在β10样肽时的ogluc多肽相比复合物的发光增强。其它“βx样肽”也可类似命名(例如，β1样、β2样、β3样、β4样、β5样、β6样、β7样、β8样、β9样)。
[0355]
如本文中所用，术语“β
1-8
样多肽”是指与ogluc多肽的β(beta)链1-8具有序列和结构相似性，但缺少β(beta)链9和10的多肽。其它“β
y-z
样多肽”也可以类似命名(例如，β
1-4
样多肽、β
2-8
样多肽、β
5-10
样多肽等)。
[0356]
如本文中所用，术语“nanoluc”是指由promega corporation商业生产的并且对应于seq id no：3的人工萤光素酶或生物发光多肽。
[0357]
如本文中所用，术语“lgbit”是指对应于β
1-9
样多肽的多肽，其可用于例如二元互补以形成生物发光复合物，并对应于seq id no：11。
[0358]
如本文中所用，术语“smbit”是指对应于β
10
样肽的肽，其可用于例如二元互补以形成生物发光复合物，但对lgbit具有低亲和力(例如，需要促进作用来形成复合物)，并且对应于seq id no：13。
[0359]
如本文中所用，术语“hibit”是指对应于β
10
样肽的肽，其用于例如二元互补以形成生物发光复合物，但对lgbit具有低亲和力(例如，需要促进作用来形成复合物)，并且对应于seq id no：15。hibit与“smhitrip10”(seq id no：25)和“pep86”具有相同的序列，所述术语可互换使用(也可以是smtrip10 pep86等)。
[0360]
如本文中所用，术语“lgtrip”是指对应于β
1-8
样多肽的多肽，其对应于seq id no：17，并与β9样肽和β
10
样肽一起用于三部分互补以形成生物发光复合物，或者与β
9-10
样二肽
一起用于二元互补以形成生物发光复合物。lgtrip变体包括：lgtrip 2098(具有his标签：seq id no：31；不具有his标签：seq id no：304)和lgtrip 3546(具有his标签：seq id no：51；不具有his标签：seq id no：302)。
[0361]
如本文中所用，术语“smtrip10”是指对应于β
10
样肽的肽，其可用于例如三部分互补，以形成生物发光复合物。
[0362]
如本文中所用，术语“smtrip9”是指对应于β9样肽的肽，其可用于例如三部分互补，以形成生物发光复合物。
具体实施方式
[0363]
本文提供了用于组装三部分或多部分生物发光复合物的生物发光多肽和组合物以及方法。在特定实施方案中，生物发光复合物在三个或更多个肽和/或多肽组分的相互作用时形成。
[0364]
在本文实施方案开发期间进行的实验证明，包含两个小肽元件(例如，β10样肽和β9样肽)和一个多肽元件(例如，β
1-8
样多肽)的三部分萤光素酶组装形成发光复合物。在本文实施方案开发过程中进行的实验进一步证明了生物发光复合物的形成，所述复合物由多达五个萤光素酶的片段(或此类片段的变体)，诸如多肽片段(或其变体)和一个或多个肽、二肽或三肽片段(或此类片段的变体)形成。
[0365]
商购可得的nanoluc萤光素酶(promega corporation)包含10条β(beta)链(β1、β2、β3、β4、β5、β6、β7、β8、β9、β10)。美国专利第9,797,889号(通过引用以其整体并入本文)描述了包含β
1-9
样多肽和β
10
样肽(美国专利第9,797,889号中的实际多肽和肽序列与nanoluc和野生型天然ogluc中的相应序列不同)的互补系统的开发和用途。
[0366]
在本文实施方案的开发过程中进行的实验中，通过去除β9链进一步拆分β
1-9
样多肽。剩余部分(β
1-8
样多肽)在本文中称为lgtrip 2098(seq id no：17；或seq id no：31(具有his标签))。实验试图从lgtrip和对应于β9链(smtrip9 pep245；seq id no：23)和β10链(smtrip10 pep86；hibit，经优化用于高亲和力二部分系统的β10序列；seq id no：15)的两种肽重构发光复合物。实验证明，lgtrip 2098(seq id no：17；或seq id no：31(具有his标签))在大肠杆菌中表达差，不稳定，并且易受表面失活的影响。在本文实施方案的开发过程中进行实验，以开发人工变体，所述人工变体表现出增强的稳定性、增强的表达、增强的活性、增强的分子相互作用等中的一种或多种(例如，全部)，并且能够用于系统中，以与对应于β9(例如，β9样肽(例如，smtrip9 pep245；seq id no：23))和β10(例如，β10样肽(例如，smtrip10 pep86；hibit；seq id no：25))的肽一起重建生物发光复合物。例如，在本文实施方案开发过程中进行的实验证明lgtrip 3092(seq id no：19)或lgtrip 3546(seq id no：51)能够与合适的β9样肽(例如，smtrip9 pep245；seq id no：23)和β10样肽(如smtrip10pep86；hibit；seq id no：25)一起形成发光复合物。在本文实施方案的开发过程中进行实验以开发人工多肽组分(例如，seq id no：19、21、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、65、67、69、71、73、75、77、79、81、83、85、87、89、91、93、95、97、99、101、103、105、107、109、111、113、115、117、119、121、123、125、127、129、131及其附加变体)以及具有增强的用于发光复合物重构的特征的肽标签(例如，表1中列出的肽及其附加变体)。
[0367]
在本文实施方案的开发过程中进行的进一步实验证明，可使用构建体形成基于
nanoluc的生物发光复合物，所述构建体包含其它多肽组分(例如，β
1-5
样、β
1-6
样、β
1-7
样等)和源自本文所述的基于nanoluc、基于nanobit和基于nanotrip的系统、多肽和肽的互补肽(例如，β6样、β7样、β8样、β9样、β
10
样)、二肽(例如，β
6-7
样、β
7-8
样、β
8-9
样、β
9-10
样)、三肽(例如，β
6-8
样、β
7-9
样、β
8-10
样)、多肽(例如，β
6-10
样、β
6-9
样、β
7-10
样等)的相应组合。在本文实施方案的开发过程中进行的实验证明了由两种或更多种(例如2种、3种、4种、5种等)肽和多肽组分形成生物发光复合物，所述肽和多肽组分共同包含萤光素酶构建体的全长(例如，包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间的范围)的与seq id no：788或789的序列同一性的全长萤光素酶多肽)。
[0368]
在一些实施方案中，本文提供了用于从两个肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10))和多肽组分(例如，β
1-8
样多肽(例如，lgtrip))组装生物发光复合物的组合物和方法。
[0369]
在一些实施方案中，本文提供了用于从多肽组分(例如，β
1-5
样多肽、β
1-6
样多肽、β
1-7
样多肽或β
1-8
样多肽)和一种或多种互补肽(例如，β6样、β7样、β8样、β9样、β
10
样)、一种或多种互补二肽(例如，β
6-7
样、β
7-8
样、β
8-9
样、β
9-10
样)、互补三肽(例如，β
6-8
样、β
7-9
样、β
8-10
样)和/或互补多肽(例如，β
6-10
样、β
6-9
样、β
7-10
样等)组装生物发光复合物的组合物和方法。
[0370]
在一些实施方案中，肽标签和多肽组分中的一种或多种(例如，两种、三种、四种、五种等)不是先前存在的蛋白质的片段(例如，不是已知多肽序列的结构互补子序列)。然而，在其它实施方案中，肽标签和多肽组分中的一种或多种可以是已知或现有的蛋白质、多肽或肽的片段。在某些实施方案中，(生物发光复合物的)多肽组分的生物发光活性通过与两个肽标签的结构互补而得以增强(例如，2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、102倍、103倍、104倍、105倍、106倍或更多)。在一些实施方案中，本文提供了肽(肽标签)/多肽元件，其能够组装成生物发光复合物，用于例如检测和监测分子相互作用(例如，蛋白质-蛋白质、蛋白质-dna、蛋白质-rna相互作用、rna-dna、蛋白质-小分子、rna-小分子、dna-dna、rna-rna、pna-dna、pna-rna等)的目的。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)与相互作用元件融合，或以其它方式连接至相互作用元件。在特定的实施方案中，肽/二肽/三肽标签和多肽组分，当用于检测/监测分子相互作用的目的时，如果没有相互作用元件之间的相互作用的促进，不会形成完整的生物发光复合物。然而，在相互作用元件彼此(或与靶分子或复合物)相互作用(例如，结合)时，促进了生物发光复合物的形成。在一些实施方案中，来自生物发光复合物的生物发光信号(或在底物存在的情况下产生这种信号的能力)用作相互作用元件形成复合物的报告子(reporter)。如果形成相互作用复合物，则形成生物发光复合物，并且检测/测量/监测生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。如果相互作用复合物未能形成(例如，由于不利的条件，由于相互作用元件之间不稳定的相互作用，由于不相容的相互作用元件)，则生物发光复合物不形成，并且不产生生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。在一些实施方案中，来自生物发光复合物的生物发光信号(或在底物存在的情况下产生这种信号的能力)用作相互作用元件与靶标结合的报告子。如果发生靶标结合，则形成生物发光复合物，并且检测到/测量到/监测到(例如，在底物存在的情况下)生物发光信号。如果靶标结合未能发生(例如，由于不利的条件、由于相互作用元件与靶标之间不稳定的相互作用、由于靶标的不存在等)，则不会形成生物发光复合物，也不会产生生物发光
信号。
[0371]
在某些实施方案中，相互作用元件是两种目标分子(例如，一种或多种目标蛋白质、一种或多种目标小分子等)。例如，可通过将每一个分子系连至单独的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)，进行测定来检测两个目标分子的相互作用。如果目标分子相互作用(例如，瞬时相互作用、稳定相互作用等)，则肽/二肽/三肽标签以合适的构象紧密接近，并且在生物发光复合物的肽/二肽/三肽标签与多肽组分之间形成生物发光复合物(并且产生/检测生物发光信号(例如，在底物存在的情况下))。在目标分子之间不存在相互作用的情况下，肽/二肽/三肽标签不紧密接近并且/或者不以促进与生物发光复合物的多肽组分形成复合物的取向排列，没有形成生物发光复合物，并且没有产生生物发光信号(在底物存在的情况下)。此类实施方案可用于研究抑制剂对复合物形成的影响、突变对复合物形成的影响、条件(例如，温度、ph度等)对复合物形成的影响、小分子(例如，潜在治疗剂)与靶分子的相互作用等。
[0372]
在一些实施方案中，提供了能够组装成生物发光复合物而无需相互作用元件的促进作用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))。在此类实施方案中，当肽/二肽/三肽标签和多肽组分一起存在于相同的样品、亚细胞区室、细胞、组织等中(例如，共定位)时，将形成生物发光复合物。在一些实施方案中，本文提供了肽/二肽/三肽(标签)/多肽元件，所述肽/二肽/三肽(标签)/多肽元件能够组装成生物发光复合物，以用于检测和监测分子元件(例如，一种或多种蛋白质、一种或多种核酸、一种或多种小分子、脂质、碳水化合物、细胞结构等)的共定位(例如，无分子相互作用)。在一些实施方案中，生物发光复合物由肽/二肽/三肽标签和多肽组分形成，所述肽/二肽/三肽标签和多肽组分共同跨越完全β1样至β10样序列。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签与共定位元件融合或以其它方式连接至共定位元件。在特定的实施方案中，特别是出于检测/监测共定位(例如，无分子相互作用)的目的，肽/二肽/三肽标签和多肽组分能够在没有促进作用(例如，无相互作用元件)的情况下形成生物发光复合物。在共定位元件(例如，融合至肽/二肽/三肽标签的)共定位(例如，在同一细胞内、在同一表面上、在同一细胞区室中、在同一组织内等)时，在存在或不存在共定位元件的相互作用的情况下，促进了生物发光复合物(由肽/二肽/三肽标签和多肽组分)形成。在一些实施方案中，来自生物发光复合物的生物发光信号(或在底物存在的情况下产生这种信号的能力)用作共定位元件共定位的报告子。如果共定位元件共定位，则形成多肽组分和融合至共定位元件的肽/二肽/三肽标签的生物发光复合物，并且检测/测量/监测生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。如果共定位元件不共定位，则不形成生物发光复合物，并且不产生生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。
[0373]
在某些实施方案中，共定位对包括两个目标分子(例如，一个或多个目标蛋白质、一个或多个目标小分子等)。例如，可通过将每一个分子系连至单独的二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)肽，和/或其二肽和三肽)，进行测定来检测两个目标分子的共定位(例如，在细胞内、在细胞区室内、在组织内等)。如果目标分子共定位，则肽标签以合适的构象紧密接近，并且与多肽组分
多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))一起形成生物发光复合物，并且产生/检测生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。在不存在目标分子共定位的情况下，多肽组分和肽/二肽/三肽标签不相互作用形成复合物，并且不产生生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。此类实施方案可用于研究在各种条件下目标分子的共定位。
[0374]
在一些实施方案中，提供了包含二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))的系统、测定和装置，以用于检测样品中的分析物(例如，小分子、肽、蛋白质、抗体、核酸等)。在一些实施方案中，将肽/二肽/三肽标签与识别靶分析物的检测剂/结合剂(例如，结合部分、结合序列等)、多种靶分析物、被靶分析物结合的第二分析物、与第一结合剂结合的第二结合剂等系连或融合。在一些实施方案中，与前述检测/结合剂系连/融合的肽/二肽/三肽标签的各种组合用于检测/定量/鉴定样品中的分析物的测定和装置中。用于测定和装置的示例性系统描述于例如图51-图56中，并且描述于本文中。
[0375]
在一些实施方案中，本文提供了用于从二肽(例如β9/β10样二肽)和多肽组分(例如，β
1-8
样多肽(例如，lgtrip))组装生物发光复合物的组合物和方法。在一些实施方案中，二肽和多肽组分不是先前存在的蛋白质的片段(例如，不是已知多肽序列的结构互补子序列)。然而，在其它实施方案中，二肽和/或多肽组分可以是已知或现有的蛋白质、多肽或肽的片段。在某些实施方案中，(生物发光复合物的)多肽组分的生物发光活性通过与二肽的结构互补而得以增强(例如，2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、102倍、103倍、104倍、105倍、106倍或更多倍)。在一些实施方案中，β
1-8
样多肽显示出比β
1-9
样多肽更低的背景发光。在一些实施方案中，与β
1-9
样多肽相比，β
1-8
样多肽表现出增加的热稳定性和化学稳定性。
[0376]
在一些实施方案中，本文提供了生物发光复合物，包括但不限于包含以下肽、二肽、三肽和多肽组分的组合中的任一种的那些复合物：
[0377]
·
β1-5样多肽+β6样肽+β7样肽+β8样肽+β9样肽+β10样肽；
[0378]
·
β1-5样多肽+β6样肽+β7样肽+β8样肽+β9/10样二肽；
[0379]
·
β1-5样多肽+β6样肽+β7/8样二肽+β9/10样二肽；
[0380]
·
β1-5样多肽+β6/7/8样三肽+β9/10样二肽；
[0381]
·
β1-5样多肽+β6样肽+β7/8/9样三肽+β10样肽；
[0382]
·
β1-6样多肽+β7样肽+β8样肽+β9样肽+β10样肽；
[0383]
·
β1-6样多肽+β7样肽+β8样肽+β9/10样二肽；
[0384]
·
β1-6样多肽+β7/8样二肽+β9/10样二肽；
[0385]
·
β1-6样多肽+β6/7/8样二肽+β9样肽+β10样肽；
[0386]
·
β1-6样多肽+β7/8/9样三肽+β10样肽；
[0387]
·
β1-7样多肽+β8样肽+β9样肽+β10样肽；
[0388]
·
β1-7样多肽+β8样肽+β9/10样二肽；
[0389]
·
β1-7样多肽+8/9样二肽+β10样肽；
[0390]
·
β1-7样多肽+β8/9/10样三肽；
[0391]
·
β1-8样多肽+β9样肽+β10样肽；
[0392]
·
β1-8样多肽+β9/10样二肽；
[0393]
·
β1-5样多肽+β6-10样多肽；
[0394]
·
β1-5样多肽+β6-9样多肽+β10样肽；和
[0395]
·
β1-5样多肽+β7-10样多肽+β6样肽。
[0396]
上述组合不是限制性的，并且肽、二肽、三肽和多肽组分的其它组合也在本文的范围内。
[0397]
在一些实施方案中，β1-5样多肽包含seq id no：788的位置1-102。在一些实施方案中，β1-6样多肽包含seq id no：788的位置1-124。在一些实施方案中，β1-7样多肽包含seq id no：788的位置1-133。在一些实施方案中，β1-8样多肽包含seq id no：788的位置1-148。
[0398]
在一些实施方案中，一组β5-10样肽/二肽/三肽/多肽共同包含seq id no：788或789的位置103-170。在一些实施方案中，一组β6-10样肽/二肽/三肽/多肽共同包含seq id no：788或789的位置125-170。在一些实施方案中，一组β7-10样肽/二肽/三肽/多肽共同包含seq id no：788或789的位置134-170。在一些实施方案中，一组β8-10样肽/二肽/三肽/多肽共同包含seq id no：788或789的位置149-170。
[0399]
在一些实施方案中，生物发光复合物的一种或多种组分跨越本文所述的基本萤光素酶(例如，ogluc、nanoluc、seq id no：788、seq id no：789等)的部分β链。肽、二肽、三肽和多肽组分之间的分离可存在于β链之间的分裂点上，或者可出现在距离由本文序列所鉴定的分裂点的位置-1、位置-2、位置-3、位置-4、位置-5、位置+1、位置+2、位置+3、位置+4、位置+5或更远的位置上。在一些实施方案中，本文所述的跨越基本萤光素酶(例如，ogluc、nanoluc、seq id no：788、seq id no：789等)的全长序列的肽、二肽、三肽和多肽组分能够形成生物发光复合物，即使组分的分裂点不在β链之间亦如此。
[0400]
例如，β5与β6之间的分裂位点可出现在seq id no：788的位置102与位置103之间，或者在一些实施方案中，这种分裂位点可出现在该位置之前或之后最多5个残基的位置(例如，在位置96、位置97、位置98、位置99、位置100、位置101、位置103、位置104、位置105、位置106、位置107之后)。在一些实施方案中，β6与β7之间的分裂位点可出现在seq id no：788的位置124与位置125之间，或者在一些实施方案中，这种分裂位点可出现在该位置之前或之后最多5个残基的位置(例如，在位置118、位置119、位置120、位置121、位置122、位置123、位置125、位置126、位置127、位置128、位置129之后)。在一些实施方案中，β7与β8之间的分裂位点可出现在seq id no：788的位置133与位置134之间，或者在一些实施方案中，这种分裂位点可出现在该位置之前或之后最多5个残基的位置(例如，在位置127、位置128、位置129、位置130、位置131、位置132、位置134、位置135、位置136、位置137、位置138之后)。在一些实施方案中，β8与β9之间的分裂位点可出现在seq id no：788的位置148与位置149之间，或者在一些实施方案中，这种分裂位点可出现在该位置之前或之后最多5个残基的位置(例如，在位置142、位置143、位置144、位置145、位置146、位置147、位置149、位置150、位置151、位置152、位置153之后)。
[0401]
在一些实施方案中，依次相邻地位于基本萤光素酶(例如，ogluc、nanoluc、seq id no：788、seq id no：789等)序列内的两个肽、二肽、三肽和多肽组分包含所述基本序列的该相应部分的所有氨基酸。在一些实施方案中，对应的肽组分、二肽组分、三肽组分和/或多肽
组分中不存在一个或多个(例如，1个、2个、3个、4个、5个或更多个)与基本序列中的分裂点相邻的氨基酸。
[0402]
在一些实施方案中，本文提供了肽，其包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与下列序列之一的序列同一性：
[0403]
·
β6样-gvtpnklnyfgrpyegiavfdg(seq id no：802)；
[0404]
·
β7样-kkitttgtl(seq id no：803
[0405]
·
β8样-wngnkiiderlitpd(seq id no：804
[0406]
·
β9样-gsmlfrvtins(seq id no：805
[0407]
·
β10样(高亲和力)-vsgwrlfkkis(seq id no：806和
[0408]
·
β10样(低亲和力)-vtgyrlfeeil(seq id no：807
[0409]
在一些实施方案中，本文提供了二肽，其包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与下列序列之一的同一性：
[0410]
·
β6/7样-gvtpnklnyfgrpyegiavfdgkkitttgtl(seq id no：808
[0411]
·
β7/8样-kkitttgtlwngnkiiderlitpd(seq id no：809)；
[0412]
·
β8/9样-wngnkiiderlitpdgsmlfrvtins(seq id no：810)；
[0413]
·
β9/10样(高亲和力)-gsmlfrvtinsvsgwrlfkkis(seq id no：811)；和
[0414]
·
β9/10样(低亲和力)-gsmlfrvtinsvtgyrlfeeil(seq id no：812)。
[0415]
在一些实施方案中，本文提供了三肽，其包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与下列序列之一的序列同一性：
[0416]
·
β6/7/8样-gvtpnklnyfgrpyegiavfdgkkitttgtlwngnkiiderlitpd(seq id no：813)；
[0417]
·
β7/8/9样-kkitttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtins(seq id no：814)；
[0418]
·
b8/9/10样(高亲和力)-wngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvsgwrlfkkis(seq id no：815)；和
[0419]
·
b8/9/10样(低亲和力)-wngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvtgyrlfeeil(seq id no：816)。
[0420]
在一些实施方案中，本文提供了多肽，其包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与以下序列之一的序列同一性：
[0421]
·
β1-5样-mvftlddfvgdweqtaaynldqvleqggvssllqnlavsvtpimrivrsgenalkidihviipyeglsadqmaqieevfkvvypvddhhfkvilpygtlvid(seq id no：790)；
[0422]
·
β6-10样(高亲和力)-gvtpnklnyfgrpyegiavfdgkkitttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvsgwrlfkkis(seq id no：794)；
[0423]
·
β6-10样(低亲和力)-gvtpnklnyfgrpyegiavfdgkkitttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvtgyrlfeeil(seq id no：798)；
[0424]
·
β6-9样-gvtpnklnyfgrpyegiavfdgkkitttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtins(seq id no：829)；
[0425]
·
β7-10样(高亲和力)-kkitttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvsgwrlfkkis(seq id no：795)；和
[0426]
·
β7-10样(低亲和力)-kkittttgtlwngnkiiderlitpdgsmlfrvtinsvtgyrlfeeil(seq id no：799)。
[0427]
在一些实施方案中，多肽组分(例如，一组肽/多肽，或生物发光复合物等的)包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与seq id no：788、789、790、791、792和793之一的序列同一性。
[0428]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽组分(例如，标签)(例如，一组肽/多肽，或生物发光复合物等的)共同包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％或100％)的与seq id no：794、795、796、797、798、799、800和801之一的序列同一性。
[0429]
在一些实施方案中，本文提供了成组的上文所列的肽、二肽、三肽和多肽的组分和复合物。在特定的实施方案中，选择跨越基本萤光素酶序列的全部十条β链的组分的组。
[0430]
在一些实施方案中，所述的用于本文的双肽标签系统(例如，β9样肽(例如，smtrip9)、β10样肽(例如，smtrip10)和多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip)))的相互作用、共定位、检测以及其它方法、测定和技术也可用于本文所述的双肽系统(例如，β9/10样二肽和多肽组分)。在一些实施方案中，二肽对多肽组分具有高亲和力；在此类实施方案中，当二肽和多肽组分接触(例如，共定位，添加到样品中，等等)而无促进作用时，形成生物发光复合物。在一些实施方案中，二肽对多肽组分具有低亲和力；在此类实施方案中，当二肽和多肽组分接触(例如，共定位，加入样品样品中，等等)而无促进作用时，不会形成生物发光复合物。如同本文中的双肽标签系统(例如，β9样肽(例如，smtrip9)、β10样肽(例如，smtrip10)和多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip)))一样，可以针对不同的应用选择具有不同亲和力的二肽/多肽对。在一些实施方案中，在美国专利第9,797,890号(通过引用以其整体并入本文)中描述了用于双组分互补系统的系统、方法和测定，并且所有此类系统、方法和测定都可与本文所述的二肽/多肽系统一起使用。
[0431]
在一些实施方案中，本文所述的用于双肽标签系统(例如，β9样肽(例如，smtrip9)、β10样肽(例如，smtrip10)和多肽组分((例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip)))的相互作用、共定位、检测以及其它方法、测定和技术也可用于包含如本文所述的肽、二肽、三肽和多肽的任何合适组合的系统。在一些实施方案中，组分彼此具有高亲和力；在此类实施方案中，当组分接触(例如，共定位，加入到样品中，等等)而无促进作用时，形成生物发光复合物。在一些实施方案中，组分中的一种或多种对另外的组分中的一种或多种具有低亲和力；在此类实施方案中，当组分接触(例如，共定位，加入到样品中，等等)而无促进作用时，不会形成生物发光复合物。如同本文中的双肽标签系统(例如，β9样肽(例如，smtrip9)、β10样肽(例如，smtrip10)和多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip)))一样，可针对不同应用为本文所述的另外的系统提供不同的亲和力。在一些实施方案中，美国专利第9,797,890号(通过引用以其整体并入本文)中描述了用于双组分互补系统的系统、方法和测定，并且所有此类系统、方法和测定都可用于本文所述的各种肽、二肽、三肽和多肽系统。
[0432]
在一些实施方案中，本文提供了可互换的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)和/或其二肽和三肽)和
多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))的互补小组，所述互补小组在由其形成生物发光复合物时具有可变的亲和力和发光度(例如，高亲和力/高发光度，中等亲和力/高发光度，低亲和力/中度发光度，等等)。利用肽/二肽/三肽标签和多肽组分的不同组合提供了可适应系统，所述系统包括在较低至较高的范围内的亲和力、发光度、表达水平、稳定性、溶解度和其它可变特征的各种组。这种适应性允许对待针对一种或多种特定目标分子和/或待研究的条件进行微调(fine-tuned)的分析物、分子相互作用、共定位和/或其它特征进行检测/监测/鉴定/定量，并扩大了可被检测/监测/鉴定/定量的分子相互作用和/或共定位的范围，以包括具有非常高或非常低的亲和力的相互作用。本文还提供了籍以开发和测试非发光元件和成组的非发光元件的方法。
[0433]
在一些实施方案中，由于本文中标签(例如，肽标签)的尺寸小(例如，与较大的多肽和蛋白质相比)，因此它们对变性具有抗性(它们没有功能所需的三级结构)。
[0434]
在一些实施方案中，可以基于待研究的目标分子或蛋白质选择肽/二肽/三肽标签和多肽组分。在一些实施方案中，不同的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))可能需要相互作用复合物(例如，相互作用元件的复合物)的不同的强度、持续时间和/或稳定性，来导致生物发光复合物形成。在一些实施方案中，需要高度稳定的相互作用复合物来产生可检测的生物发光信号(例如，在底物存在的情况下)。在其它实施方案中，甚至微弱或短暂的相互作用复合物也会导致生物发光复合物形成。在其它实施方案中，只要肽/二肽/三肽标签和多肽组分是共定位的，即使在相互作用复合物不存在的情况下将形成生物发光复合物。在一些实施方案中，相互作用复合物的强度或程度与所得生物发光信号的强度成正比。一些肽/二肽/三肽标签/多肽组分组在与具有高毫摩尔解离常数(例如，kd＞100mm)的相互作用复合物组合时产生可检测的信号。其它肽/二肽/三肽标签/多肽组分组需要具有低毫摩尔(例如，kd＜100mm)、微摩尔(例如，kd＜1mm)、纳摩尔(例如，kd＜1μm)或甚至皮摩尔(例如，kd＜1nm)的解离常数的相互作用对，以便产生具有可检测信号的生物发光复合物。
[0435]
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签和/或多肽组分不是先前存在的蛋白质(例如，先前存在的生物发光蛋白质)的片段。在一些实施方案中，用于形成复合物的肽/二肽/三肽标签和多肽组分都不是先前存在的蛋白质(例如，相同的先前存在的蛋白质、先前存在的生物发光蛋白质等)的片段。在一些实施方案中，组装在一起形成生物发光复合物的肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10)；β9/β10样二肽；等等)和多肽组分(例如，β
1-8
样多肽(例如，lgtrip))都不是先前存在的蛋白质(例如，相同的先前存在的蛋白质、先前存在的生物发光蛋白质等)的片段。在一些实施方案中，用于本发明的实施方案的生物发光复合物的肽/二肽/三肽标签或多肽组分不是先前存在的蛋白质的子序列。在一些实施方案中，用于本文所述的实施方案的非发光元件不包含先前存在的蛋白质的结构互补子序列。
[0436]
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)在分离时(例如，在底物存在或不存在的情况下)是不发光的或基本上不发光的。在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签，当在多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8
样多肽(例如，lgtrip))不存在的情况下缔合在一起时(例如，在底物存在或不存在的情况下)是不发光的或基本上不发光的。在一些实施方案中，多肽组分在分离时是不发光的或基本上不发光的(例如，在底物存在或不存在的情况下)。在一些实施方案中，单个肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分在第二或第三或第四肽/二肽/三肽标签不存在的情况下(例如，在底物的存在或不存在情况下)是不发光的或基本不发光的。在某些实施方案中，当置于合适的条件(例如，生理条件)时，多个肽/二肽/三肽标签和多肽组分相互作用形成生物发光复合物，并在底物存在的情况下产生生物发光信号。
[0437]
在某些实施方案中，将相互作用元件和/或共定位元件与肽/二肽/三肽标签进行附接、融合、连接、联接等。在典型的实施方案中，第一肽/二肽/三肽标签与第一相互作用元件(或第一共定位元件)相互附接，并将第二肽/二肽/三肽标签与第二相互作用元件(或第二共定位元件)相互附接。肽/二肽/三肽标签与相互作用元件(或共定位元件)的附接可通过任何合适的机制、化学物质、接头等来实现。相互作用元件(或共定位元件)与肽/二肽/三肽标签通常通过共价连接来附接，但也提供了两个元件的非共价连接。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签与相互作用元件(或共定位元件)直接连接，在其它实施方案中，它们通过接头连接。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签与相互作用元件(或共定位元件)被作为基因/重组融合物提供。在一些实施方案中，利用本文的肽/二肽/三肽标签内源性加标签(例如，在内源调节控制下)，允许用本文所述的工具监测正常细胞功能。例如，目标蛋白质可用高亲和力β9/β10样二肽内源性加标签(例如，使用crispr/cas9)，然后在细胞、动物、裂解物等中监测与lgtrip(或其变体)的自发互补作用。在其它实施方案中，肽标签与相互作用元件(或共定位元件)通过化学修饰/缀合，诸如通过天然化学连接、staudinger连接、“无痕迹”staudinger连接、酰胺偶联、采用活化酯的方法、靶向赖氨酸、酪氨酸和半胱氨酸残基的方法、亚胺键形成(利用和不利用原硼酸)、硼酸/二醇相互作用、二硫键形成、铜/无铜叠氮化物、重氮基和四嗪“点击”化学、紫外线促进的硫醇烯缀合、双吖丙啶光标记(diazirine photolabeling)、diels-alder环加成、复分解反应、suzuki交叉偶联、噻唑烷(步骤-4(step-4))偶联、链霉亲和素/生物素互补、halotag/氯代烷烃底物互补等来连接。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签和相互作用元件(或共定位元件)是合成(例如，固态合成、液相合成等)产生的。在一些实施方案中，通过任何合适的方式产生(例如，合成或重组方式)或获得(例如，从粗裂解物、提取的蛋白质、纯化的蛋白质等)相互作用元件(或共定位元件)。
[0438]
在其中相互作用元件(或共定位元件)为肽或多肽的一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和相互作用元件(或共定位元件)包含在单个氨基酸链内。在一些实施方案中，单个氨基酸链包含肽/二肽/三肽标签和相互作用元件(或共定位元件)、由其组成或基本上由其组成。在一些实施方案中，单个氨基酸链包含肽/二肽/三肽标签、相互作用元件(或共定位元件)、任选的一个或多个n末端序列、c末端序列、调控元件(例如，启动子、翻译起始位点等)和接头序列、由其组成或基本由其组成。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签和相互作用元件(或共定位元件)包含在融合多肽中。在一些实施方案中，分别表达肽/二肽/三肽标签与相互作用元件(或共定位元件)的第一融合物和肽/二肽/
三肽标签和相互作用元件(或共定位元件)的第二融合物；然而，在其它实施方案中，表达包含两种所述相互作用(或共定位)和肽/二肽/三肽标签或由所述两种相互作用(或共定位)和肽/二肽/三肽标签组成的融合蛋白。
[0439]
在一些实施方案中，在同一细胞中表达第一融合蛋白以及第二融合蛋白，所述第一融合蛋白包含第一肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和第一相互作用元件，所述第二融合蛋白包含第二肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和第二相互作用元件。在一些实施方案中，在同一细胞中表达第一融合蛋白以及第二融合蛋白，所述第一融合蛋白包含第一肽/二肽/三肽标签和第一共定位元件，所述第二融合蛋白包含第二肽/二肽/三肽标签和第二共定位元件。在一些实施方案中，从细胞中纯化并且/或者分离第一融合蛋白和第二融合蛋白。在一些实施方案中，在细胞内测定融合蛋白的相互作用和/或共定位。在一些实施方案中，在细胞的裂解物中测定融合蛋白的相互作用和/或共定位。在其它实施方案中，在单独的细胞中表达第一融合蛋白和第二融合蛋白，并将其组合(例如，在纯化和/或分离后，在细胞或细胞的部分融合后，通过将融合蛋白从一个细胞转移到另一个细胞，或通过将一种或多种融合蛋白分泌到细胞外介质中)用于信号检测。在一些实施方案中，在细胞裂解物(例如，兔网织红细胞裂解物)或无细胞系统中表达一种或多种融合蛋白。在一些实施方案中，从病毒或其它细胞病原体的基因组中表达一种或多种融合蛋白。在一些实施方案中，将用于(与第一融合蛋白和第二融合蛋白)形成复合物的多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))和任何其它肽/二肽/三肽组分(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)在同一细胞或细胞裂解物中表达为含标签的融合蛋白之一或两者。在一些实施方案中，将用于与肽/二肽/三肽标签(在第一融合蛋白和第二融合蛋白内)形成复合物的肽/二肽/三肽/多肽组分在不同的细胞或细胞裂解物中表达为含肽-标签的融合蛋白之一或两者。在一些实施方案中，将用于与肽/二肽/三肽标签(在第一融合蛋白和第二融合蛋白内)形成复合物的肽/二肽/三肽/多肽组分添加到包含含肽-标签的融合蛋白的细胞、细胞裂解物或其它样品中。
[0440]
在一些实施方案中，本文的系统(例如，肽/二肽/三肽标签、肽/二肽/三肽/多肽组分、底物、载体等)和方法可用于样品分析(例如，共定位、分子相互作用、靶标等的检测/定量/鉴定/监测)。在一些实施方案中，将本文的系统的一个或多个组分添加到样品中，并且/或者提供于样品中或在样品中表达。可用于本文的实施方案的合适样品包括但不限于：血液、血浆、血清、尿液、唾液、细胞、细胞裂解物、组织、组织匀浆物、纯化的核酸、粪便、阴道分泌物、脑脊液、尿囊液、水、生物膜、土壤、灰尘、食物、饮料、农产品、植物等。
[0441]
在某些实施方案中，提供了核酸、dna、rna、载体等，所述核酸、dna、rna、载体等编码本文所述的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))、融合多肽、融合蛋白等。此类核酸和载体可用于表达、转化、转染、注射等。
[0442]
在一些实施方案中，通过接头连接肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样
肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和相互作用元件、共定位元件或结合剂。在一些实施方案中，接头连接信号元件和相互作用元件或共定位元件，同时在元件之间提供所需量的空间/距离。在一些实施方案中，接头允许信号元件和相互作用元件同时形成它们各自的复合物(例如，发光复合物和相互作用复合物)。在一些实施方案中，接头协助相互作用元件促进发光复合物的形成。在一些实施方案中，当形成相互作用复合物时，将每个肽/二肽/三肽标签与它们各自的相互作用元件连接的接头以适当的距离和构象定位肽标签，以形成生物发光复合物。在一些实施方案中，相互作用或共定位元件和肽/二肽/三肽标签通过接头保持非常接近(例如，＜4个单体单元)。在一些实施方案中，接头在肽标签与相互作用元件之间提供了期望量的距离(例如，1个、2个、3个、4个、5个、6个...10个...20个或更多个单体单元)(例如，以防止肽/二肽/三肽标签与相互作用或共定位元件之间不期望的相互作用，出于空间考虑，以在形成相互作用复合物时允许非发光元件的正确取向，以允许复合物形成从相互作用复合物传播到发光复合物，等等)。在某些实施方案中，接头在肽/二肽/三肽标签与相互作用元件之间提供适当的附接化学(attachment chemistry)。接头还可改进制备肽/二肽/三肽标签和相互作用或共定位元件的合成过程(例如，允许它们作为单个单元合成，从而允许两个元件的合成后连接等)。
[0443]
在一些实施方案中，接头是能够将肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)或多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))与相互作用元件或共定位元件连接、联接或系连的任何合适的化学部分。在一些实施方案中，接头是一种或多种重复或非重复单体单元的聚合物(例如，核酸、氨基酸、含碳聚合物、碳链等)。当肽/二肽/三肽标签和相互作用元件、共定位元件或结合剂是融合蛋白的一部分时，接头(当存在时)通常是氨基酸链。当肽/二肽/三肽标签和相互作用元件、共定位元件或结合剂在单个元件表达后系连在一起时，接头可以包含任何化学部分，其在任一末端处具有分别与肽标签和相互作用元件或共定位元件上的官能团反应的官能(或反应性)基团。能够系连信号和相互作用元件、共定位元件和/或结合剂的任何合适的部分都可用作接头。
[0444]
可使用多种接头。在一些实施方案中，接头是单个共价键。在一些实施方案中，接头包括具有1-20个非氢原子(例如，c、n、p、o和s)的直链或支链、环状或杂环、饱和或不饱和结构，并且由烷基、醚、硫醚、亚胺、羧酸、胺、酯、甲酰胺、磺酰胺、酰肼键和芳族或杂芳族键的任意组合组成。在一些实施方案中，接头长于20个非氢原子(例如21个非氢原子、25个非氢原子、30个非氢原子、40个非氢原子、50个非氢原子、100个非氢原子等)。在一些实施方案中，接头包含1-50个选自c、n、p、o和s的组的非氢原子(除了氢原子以外)(例如1个、2个、3个、4个、5个、6个、7个、8个、9个、10个、11个、12个、13个、14个、15个、16个、17个、18个、19个、20个、21个、22个、23个、24个、25个、26个、27个、28个、29个、30个、31个、32个、33个、34个、35个、36个、37个、38个、39个、40，41个、42个、43个、44个、45个、46个、47个、48个、49个或50个非氢原子)。
[0445]
本文实施方案的范围不受可用接头类型的限制。肽/二肽/三肽标签、多肽组分和相互作用元件、共定位元件或结合剂直接连接(例如，接头由单个共价键组成)，或者通过合适的接头连接。实施方案不限于任何特定的接头基团。设想了多种接头基团，合适的接头可包括但不限于烷基、亚甲基碳链、醚、聚醚、烷基酰胺接头、肽接头、经修饰的肽接头、聚(乙
二醇)(peg)接头、链霉抗生物素蛋白-生物素或抗生物素蛋白-生物素接头、聚氨基酸(例如聚赖氨酸)、官能化的peg、多糖、糖胺聚糖、树枝状聚合物(wo93/06868和tomalia等人，angew.chem.int.ed.engl.29：138-175(1990)中，通过引用以其整体并入本文)、peg螯合剂聚合物(w94/08629、wo94/09056和wo96/26754，通过引用以其整体并入本文))、寡核苷酸接头、磷脂衍生物、烯基链、炔基链、二硫化物或其组合。在一些实施方案中，接头是可裂解的(例如，酶促(例如，tev蛋白酶位点)、化学、光诱导的等)。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))、识别元件、相互作用元件、共定位元件、结合剂、分析物、底物等附接(例如，通过任何合适的化学物质)至固体表面或基质，或者包含在固体表面或基质内。在一些实施方案中，一个或多个系统组分附接(例如，通过任何合适的化学物质)至固体表面或基质，或者包含在固体表面或基质中，并且向固体表面或基质中加入(例如，在溶液中(例如，在样品中))其它组分。合适的固体表面包括但不限于：珠粒(例如，磁珠)、碎片、管、板、颗粒、膜、纸等。在一些实施方案中，固体表面/基质由任何合适的材料制成，所述材料为诸如：ahlstrom cytosep、硝酸纤维素、醋酸纤维素、纤维素(例如，whatman fta-dmpk-a、b、c卡；whatman et 3/chr；whatman protein saver 903卡；whatman 1级滤纸；whatman fta elute；ahlstrom 226样本采集纸；等)、noviplex血浆制备卡、聚丙烯膜、pvdf、硝酸纤维素膜(millipore nitrocellular hi flow plus)聚四氟乙烯膜、混合纤维素酯、玻璃纤维介质(例如，whatman uniflter plates玻璃纤维滤膜、agilent干燥的基质点样卡、ahlstrom 8950级等)、塑料(例如，聚酯、聚丙烯、polythersulfene、聚(甲基丙烯酸酯)、丙烯酸聚合物、聚四氟乙烯等)、天然和合成聚合物(例如，聚合物的混合物、共嵌段聚合物等)、糖类(例如，普鲁兰糖、海藻糖、麦芽糖、蔗糖、纤维素等)、聚酰胺(例如，天然的(例如，羊毛、丝绸等)、合成的(例如，芳族聚酰胺、尼龙等)，等等)、金属(例如，铝、镉、铬、钴、铜、铁、锰、镍、铂、钯、铑、银、金、锡、钛、钨、钒、锌等)、合金(例如，铝合金(例如，al-li、镍铝合金、硬铝、镁诺克斯合金(magnox)、扎马克压铸锌合金(zamak)等)、铁合金(例如，钢、不锈钢、外科用不锈钢、硅钢、工具钢、铸铁、镜铁等)、钴合金(例如，钨铬钴合金、talonite等)、镍合金(例如，德国银、铬镍合金、μ金属、蒙乃尔合金、镍铬合金、镍铬硅(nicrosil)、镍硅(nisil)、镍钛诺等)、铜合金(例如，铍铜、金合金(bilion)、黄铜、青铜、磷青铜、康铜、白铜、钟形金属、德瓦达铜铝锌合金(devarda
′
s alloy)、仿金合金、镍银、北欧金(nordic gold)、高锌黄铜(prince
′
s metal)、图帕伽(tumbaga)等)、银合金(例如，标准纯银等)、锡合金(例如，铜锡合金(britannium)、白镴(pewter)、焊剂等)、金合金(金银合金、白金等)、汞合金等)、elispot板、免疫测定板，组织培养板等。
[0446]
在一些实施方案中，为发光复合物的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)，和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))提供了低于100％的与现有的萤光素酶(例如，如美国专利申请2010/0281552和美国专利申请2012/0174242中所述的萤火虫萤光素酶、海肾萤光素酶、刺虾萤光素酶、增强型刺虾萤光素酶，所述美国专利申请通过引用以其整体并入本文)的任何部分的序列同一性和/或相似性。某些实施方案涉及肽/二肽/三肽标签和多肽组分的生物发光复合物的形成，所述肽/二肽/三肽
标签和多肽组分与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的全部或一部分(例如，8个或更多个氨基酸，对于肽，少于约25个氨基酸)具有低于100％的序列同一性。某些实施方案涉及由肽/二肽/三肽标签和多肽组分形成生物发光复合物，所述肽/二肽/三肽标签和多肽组分与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的全部或一部分(例如，8个或更多个氨基酸，对于肽，少于约25个氨基酸)具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性。在一些实施方案中，为肽/二肽/三肽标签和多肽组分提供了低于100％的与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)一部分(例如，8个或更多个氨基酸，对于肽，少于约25个氨基酸)的序列相似性。在一些实施方案中，为肽/二肽/三肽标签和多肽组分提供了低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)一部分(例如，8个或更多个氨基酸，对于肽，少于约25个氨基酸)的序列相似性。在一些实施方案中，提供了肽/二肽/三肽标签，其与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nan oluc序列)的约25个氨基酸或更少的部分具有低于100％的序列同一性和/或相似性，此类肽中的两个肽当在适当条件下与多肽组分组合(例如，通过相互作用对稳定，通过共定位元件接近，等等)时形成生物发光复合物，所述多肽组分与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的另一部分具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性和/或相似性。在一些实施方案中，提供了肽/二肽/三肽标签，其与seq id no：1(例如，完整的野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整的nanoluc序列)的约25个氨基酸或更少部分具有低于100％的序列同一性和/或相似性，其中一对此类肽标签在适当条件下与多肽组分组合(例如，通过相互作用对稳定，通过共定位元件接近等)时形成生物发光复合物，所述多肽组分与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的另一部分具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性和/或与相似性。在一些实施方案中，提供了肽/二肽/三肽标签，其与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的约25个氨基酸或更少的部分具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性和/或与相似性，其中一对此类肽在适当条件下与多肽组合(例如，通过相互作用对稳定，通过共定位元件接近，等等)时形成生物发光复合物，所述多肽与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的另一部分具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性和/或与相似性。类似地，所提供的多肽组分与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/
或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的部分具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性或相似性，其中此类多肽组分，当在适当的条件下与一对肽标签组合时形成生物发光复合物，所述肽标签与seq id no：1(例如，完整野生型刺虾萤光素酶序列)和/或seq id no：3(例如，完整nanoluc序列)的另一部分具有低于100％，但任选地高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性和/或相似性。在一些实施方案中，提供了与seq id no：6、seq id no：7、seq id no：9和/或seq id no：10具有低于100％的序列同一性或相似性的肽标签。在一些实施方案中，提供了肽标签，所述肽标签与seq id no：6、seq id no：7、se q id no：9和/或seq id no：10具有低于100％，但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了肽标签，所述肽标签与seq id no：23、seq id no：25和/或seq id no：29具有低于100％的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了肽标签，所述肽标签与seq id no：23、seq id no：25和/或seq id no：29具有低于100％、但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了多肽组分，所述多肽组分与seq id no：5和/或seq id no：8具有低于100％的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了多肽组分，所述多肽组分与seq id no：17和/或seq id no：27具有低于100％的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了多肽组分，所述多肽组分与seq id no：5、seq id no：8和/或seq id no：27具有低于100％但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，提供了多肽组分，所述多肽组分与seq id no：17具有低于100％但高于40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的序列同一性或相似性。
[0447]
在一些实施方案中，本文的组、试剂盒或系统中的一种或多种(例如，全部)肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))包含100％的与萤光素酶(例如，seq id no：1、seq id no：3等)的一部分的序列同一性。
[0448]
在一些实施方案中，本发明的实施方案中使用的肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10)；β9/β10样二肽；等等)包括自seq id no：6、seq id no：7、seq id no：9、seq id no：10、seq id no：23、seq id no：25、seq id no：29具有一个或多个氨基酸取代、缺失或添加的肽。在一些实施方案中，肽标签包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：13的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，肽标签相对于seq id no：13包含6个或更少(例如，6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，肽标签包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞
85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：25的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，肽标签相对于seq id no：25包含6个或更少(例如，6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，肽标签包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：23的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，肽标签相对于seq id no：23包含6个或更少(例如，6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，肽标签包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：25的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，肽标签相对于seq id no：25包含6个或更少(例如，6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。
[0449]
在一些实施方案中，本发明的实施方案中使用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))包括本文中和本文提供的表中公开的肽、二肽、三肽和多肽。在一些实施方案中，本发明的实施方案中使用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))相对于本文中和本文提供的表中公开的肽、二肽、三肽和多肽，包含一个或多个氨基酸取代、缺失或添加。在一些实施方案中，本发明的实施方案中使用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与本文中和本文提供的表中公开的肽、二肽、三肽和多肽的序列同一性或相似性。
[0450]
在一些实施方案中，本文实施方案中使用的二肽和三肽包含本文所述和/或本文表中所列的肽的任何合适的组合。
[0451]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)或多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))连接(例如，通过化学方式)或融合至一个或多个附加元件(例如，识别元件、相互作用元件、共定位元件、可检测元件(例如，荧光团(例如，以便于bret))、目标蛋白质、halotag等)。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签或多肽组分连接或融合至cyofp(例如，在antares构建体诸如美国专利第9,908,918号(通过引用以其整体并入本文)中描述的那些中)或其它荧光蛋白(例如，以便于bret)。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签或多肽组分包含一种或多种化学修饰和/或非天然氨基酸或氨基酸类似物，以促进多肽组分与附加元件的化学缀合。在一些实施方案中，本文提供了与受体荧光蛋白融合的单个肽/二肽/三肽标签或多肽组分。在一些实施方案中，两种或更多种肽/二肽/三肽和/或多肽组分融合至受体荧光蛋白(例如，夹心融合
物)。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签或多肽组分融合至两种或更多种受体荧光蛋白(例如，夹心融合)。在一些实施方案中，lgtrip多肽(例如，本文所述的β
1-8
样多肽)融合至单个荧光蛋白(例如，cyofp)或者被置于夹心融合物中的两个荧光蛋白(例如，cyofp的两个拷贝)之间。
[0452]
在一些实施方案中，本发明中使用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)并入了适于与附加元件(例如，识别元件、相互作用元件等)化学缀合的反应性基团。这些反应性基团可存在于序列的n末端、c末端或序列内部。这些反应性基团可以任选地用接头附接至肽。在一些情况下，这些具有反应性基团的肽/二肽/三肽可使用标准合成法合成，并且并入具有所需基团的非天然氨基酸上。在一些情况下，反应性基团可存在于天然氨基酸(例如半胱氨酸的巯基)上。旨在与具有反应性基团的肽标签反应的附加元件可以是蛋白质、抗体、核酸、小分子诸如药物或荧光团或表面。肽/二肽/三肽标签可并入反应性基团，所述反应性基团被设计成与反应性配偶体特异性反应，所述反应性配偶体已被使用生物正交或点击化学以化学或生物学方式引入到附加元件上。示例性点击反应是铜催化的点击，其中肽标签具有炔烃或叠氮化物，并且附加元件具有互补基团。在合适的铜催化剂存在的情况下，将这两种种类混合在一起，可使肽通过三唑与附加元件共价缀合。还报道了许多其它生物正交反应(例如patterson，d.m.等人(2014)。
″
finding the right(bioorthogonal)chemistry.
″
acs chemical biology 9(3)：592-605.)，并且并入互补反应性种类的肽标签和附加元件是本发明的实施方案。
[0453]
本发明的另一个实施方案是具有与天然存在的氨基酸反应的反应性基团的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和/或多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))。示例性反应性基团包括用于与半胱氨酸反应的马来酰亚胺和用于与赖氨酸反应的琥珀酰亚胺酯。反应基团的更全面的列表可见于koniev，o和a.wagner(2015).
″
developments and recent advancements in the field of endogenous amino acid selective bond forming reactions for bioeonjugation.
″
chem soc rev 44：5495-5551中。这些反应性基团可通过肽合成或通过肽标签的其它化学修饰以化学或生物学方式引入到肽/二肽/三肽/多肽上。在一些实施方案中，肽标签以受保护的形式存在(isidro-llobet，a.等人(2009).
″
amino acid-protecting groups.
″
chemical reviews 109(6)：2455-2504；通过引用以其整体并入本文)，从而防止肽/二肽/三肽/多肽本身与反应性基团反应。这些反应基团可以以选择性方式或以随机方式与蛋白质反应，产生一种缀合物或缀合物的混合物。在一些实施方案中，在本发明中可以成功使用确定的单一缀合物或混合物。
[0454]
图95-图98中显示了本文描述的具有适合于与附加元件(例如，识别元件、相互作用元件等)化学缀合的反应性基团的肽(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10)；β9/β10样二肽；等等)的实例。反应基团和肽/二肽/三肽/多肽的其它组合也在本文的范围内。
[0455]
在一些实施方案中，本文描述的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组
分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))融合或缀合至可检测元件诸如荧光团或荧光蛋白。在此类实施方案中，互补形成生物发光复合物，以及由此产生的生物发光，导致附接的可检测元件(例如，荧光团或荧光蛋白)的bret和激发/发射。在此类实施方案中，生物发光复合物是bret能量供体，并且附接至复合物组分(例如，肽标签或多肽组分)的可检测元件(例如，荧光团或荧光蛋白)是bret能量受体。
[0456]
与本文所述的三部分/多部分互补系统一起用于bret系统的合适的荧光团包括但不限于：呫吨衍生物(例如，萤光素、罗丹明、oregon green、曙红、德克萨斯红(texas red)等)、青色素衍生物(例如，青色素、吲哚羰花青、氧杂羰花青、硫羰花青(thiacarbocyanine)、部花青等)、萘衍生物(例如，丹磺酰基和普罗丹衍生物)、噁二唑衍生物(例如，吡啶噁唑(pyridyloxazole)、硝基苯并噁二唑、苯并噁二唑等)、芘衍生物(例如，级联蓝)、噁嗪衍生物(例如，nile red、nile blue、甲酚紫、噁嗪170等)、吖啶衍生物(例如，原黄素(proflavin)、吖啶橙、吖啶黄等)、芳基次甲基衍生物(例如，金胺、结晶紫、孔雀石绿等)、四吡咯衍生物(例如，卟吩、酞菁、胆红素等)、cf染料(biotium)、bodipy(invitrogen)、alexa flour(invitrogen)、dylight fluor(thermo scientific，pierce)、atto和tracy(sigma aldrich)、fluoprobes(interchim)、dy和megastokes(dyomics)、sulfo cy染料(cyandye，llc)、setau和square染料(seta biomedicals)、quasar和cal fluor染料(biosearch technologies)、surelight染料(apc、rpe、percp、藻胆体)(columbia biosciences)、apc、apcxl、rpe、bpe(phyco-biotech)、自发荧光蛋白(例如，yfp、rfp、mcherry、mkate)、量子点纳米晶体等。在一些实施方案中，荧光团是罗丹明类似物(例如，羧基罗丹明类似物)，诸如第13/682,589号美国专利申请序列(通过引用以其整体并入本文)中描述的那些。
[0457]
在其它实施方案中，本文描述的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))融合或缀合至可检测元件诸如荧光团或荧光蛋白(例如，绿色荧光蛋白、增强型gfp(egfp)、青色荧光蛋白(cfp)、黄色荧光蛋白(yfp)及其变体。在其它实施方案中，本文所述的肽标签或多肽组分融合或缀合至青色可激发的橙红色荧光蛋白(cyofp)，诸如美国专利第9,908,918号(通过引用以其整体并入本文)中所述的那些。在一些实施方案中，在美国专利第9,908,918号中描述的cyofp和bret系统可与本文所述的肽标签和/或多肽组分(例如，cyofp-(β9样肽)、cyofp-(β
10
样肽)、cyofp-(β
1-8
样多肽)、cyofp-(β
9-10
样肽)、cyofp-(β9样肽)-cyofp、cyofp-(β
10
样肽)-cyofp、cyofp-(β
1-8
样多肽)-cyofp、cyofp-(β
9-10
样肽)-cyofp，等等)一起使用。在一些实施方案中，此类包含与本文的肽/二肽/三肽标签和/或多肽组分连接的cyofp的系统在本文中可被称为“antares构建体”或“antares系统”。此类bret系统在某些成像应用中特别有用(schaub，f.x.等人(2015)
″
fluorophore-nanoluc bret reporters enable sensitive in vivo optical imaging and flow cytometry for monitoring tumorigenesis.”cancer research 75(23)：5023-5033；通过引用以其整体并入本文)。
[0458]
在其它实施方案中，本文描述的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))连接至荧光团
(例如，直接地或通过接头)以用于组成型bret系统(例如，antares样系统)。在组成型bret系统中，发射光谱从生物发光光谱向荧光团的光谱移动(例如，为了更好的灵敏度、更低的散射、期望的发射波长等)。在其它实施方案中，本文所述的肽/二肽/三肽标签和/或多肽组分用作功能性传感器(例如，用于监测细胞/细胞内/细胞间过程(例如，用于检测钙通量或电压)(suzuki，k.等人(2016).
″
five colour variants of bright luminescent protein for real-time multicolour bioimaging.
″
nature communications 7：13718.；inagaki，s.等人(2017).
″
genetically encoded bioluminescent voltage indicator for multi-purpose use in wide range of bioimaging.
″
sci rep 7：42398；通过引用以其整体并入本文))，用于成像，用于光遗传学，等等)。
[0459]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))中的两种或更多种附接至可进入多个构象的单个相互作用元件。在一种构象中，肽/二肽/三肽标签和多肽不能形成发光复合物。在改变构象时，即响应于刺激，肽/二肽/三肽标签被带入一种构象，在该构象中它们可以形成生物发光复合物。例如，smtrip9肽和smtrip10肽可以缀合至钙调蛋白，使得它们即使在lgtrip和furimazine存在的情况下也不会形成发光复合物。当暴露于钙时，钙调蛋白的构象变化将smtrip9肽和smtrip10肽带入一个位置，由此在furimazine存在的情况下添加lgtrip可使复合物生物发光。许多其它用于钙和其它刺激(ph、电压等)的生物传感器在文献中是已知的。
[0460]
在一些实施方案中，本文的系统可用于多重分析物检测。在一些实施方案中，本发明中使用的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)缀合至相互作用元件和报告元件两者。在一些实施方案中，相互作用元件是抗体等，并且报告元件是小分子荧光团。在一些实施方案中，将针对不同病原体(例如，寨卡病毒、登革热病毒等)的抗体缀合至肽/二肽/三肽标签(例如，smtrip9肽)和具有不同且可区分的波长的荧光团。在该实施方案中，在抗体与其抗原结合时形成的发光复合物由于生物发光共振能量转移而以结合的荧光团的发射波长发射光。这允许抗体全部存在于同一孔、装置等中，并且通过所形成的发光复合物发出的光的颜色来确定所检测抗原的身份。
[0461]
在一些实施方案中，本发明的实施方案中使用的多肽组分(例如β1-8样多肽(例如，lgtrip))包括具有自seq id no：5和/或seq id no：8的一个或多个氨基酸取代、缺失或添加的多肽。在一些实施方案中，多肽组分包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：11的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：11包含100个或更少(例如，100个、90个、80个、70个、60个、50个、40个、30个、25个、20个、15个、10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，多肽组分包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：17的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17包含100个或更少(例如，100个、90个、80个、70个、60个、50个、40个、30
个、25个、20个、15个、10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，多肽组分包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17、seq id no：21和/或seq id no：302包含100个或更少(例如，100个、90个、80个、70个、60个、50个、40个、30个、25个、20个、15个、10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，多肽组分包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：788的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：788包含100个或更少(例如，100个、90个、80个、70个、60个、50个、40个、30个、25个、20个、15个、10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。在一些实施方案中，多肽组分包含至少40％(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞98％、＞99％)的与seq id no：789的序列同一性或相似性。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：789包含100个或更少(例如，100个、90个、80个、70个、60个、50个、40个、30个、25个、20个、15个、10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或其间的范围)的取代(例如，保守取代、半保守取代、非保守取代等)。
[0462]
在一些实施方案中，多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))连接(例如，通过化学方式)或融合至一个或多个附加元件(例如，识别元件、相互作用元件、共定位元件、可检测元件(例如，荧光团(例如，以促进bret))、目标蛋白质、halotag等)。在一些实施方案中，多肽组分连接或融合至cyofp(例如，在antares构建体，诸如美国专利第9,908,918中描述的那些中；通过引用以其整体并入本文)或其它荧光蛋白(例如，以便于bret)。在一些实施方案中，多肽组分包含一种或多种化学修饰和/或非天然氨基酸或氨基酸类似物，以促进多肽组分与附加元件的化学缀合。
[0463]
在一些实施方案中，肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10)；β9/β10样二肽；等等)和/或肽组分与seq id no：1、seq id no：3、seq id no：5、seq id no：7、seq id no：9、seq id no：11、seq id no：13、seq id no：17、seq id no：21、seq id no：23、seq id no：25、seq id no：27、seq id no：29、seq id no：51、seq id no：302(或其任意组合)中的一个或多个(例如，全部)不同并且/或者不是其精确的子序列。在其它实施方案中，肽标签和/或肽组分与seq id no：1、seq id no：3、seq id no：5、seq id no：7、seq id no：9、seq id no：11、seq id no：13、seq id no：17、seq id no：21、seq id no：23、seq id no：25、seq id no：27和/或seq id no：29、seq id no：51、seq id no：302(或其任意组合)中的一个或多个(例如，全部)相同并且/或者为其精确的子序列。
[0464]
在一些实施方案中，多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip))对应于seq id no：3的一部分并包含与所述部分的基本序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞99％、100％)。例如，在一些实施方案中，多肽组分对应于seq id no：3的位置1、位置2、位置3、位置4、位置5、位置6、位置7、位置8、位置9、位置10、位置11或12至位置142、位置143、位置144、位置145、位
置146、位置147、位置148、位置149、位置150、位置152、位置153(例如，位置1-148)并包含与所述位置的基本序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞99％、100％)。
[0465]
在一些实施方案中，肽标签(β10样肽(例如，smtrip10))对应于seq id no：3的一部分并包含与所述部分的基本序列同一性(例如，＞40％、＞50％、＞60％、＞70％、＞80％、＞90％、100％)。例如，在一些实施方案中，肽标签对应于seq id no：3的位置154、位置155、位置156、位置157、位置158、位置159、位置160、位置161、位置162、位置163、位置163或位置164至166、位置167、位置168、位置169、位置170或位置171(例如，位置160-171)并包含与所述位置的基本序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞99％、100％)。
[0466]
在一些实施方案中，肽标签(β9样肽(例如，smtrip9))对应于seq id no：3的一部分并包含与所述部分的基本序列同一性(例如，＞40％、＞50％、＞60％、＞70％、＞80％、＞90％、100％)。例如，在一些实施方案中，肽标签对应于seq id no：3的位置142、位置143、位置144、位置145、位置146、位置147、位置148、位置149、位置150、位置152、位置153至位置154、位置155、位置156、位置157、位置158、位置159、位置160、位置161、位置162、位置163、位置163或位置164并包含与所述位置的基本序列同一性(例如，＞40％、＞45％、＞50％、＞55％、＞60％、＞65％、＞70％、＞75％、＞80％、＞85％、＞90％、＞95％、＞99％、100％)。
[0467]
在一些实施方案中，多肽组分例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip))、第一肽标签(β9样肽(例如，smtrip9))和第二肽标签(β10样肽(例如，smtrip10))一起对应于seq id no：3的长度的至少90％，并包含与所述seq id no：3的长度的至少90％的基本序列同一性(例如，＞40％、＞50％、＞60％、＞70％、＞80％、＞90％、100％)。
[0468]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))相对于seq id no：1和/或seq id no：3.包含一个或多个取代。例如，在一些实施方案中，多肽组分包含40％或更高(例如，40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、99％)的与seq id no：3或其一部分(例如，seq id no：11、seq id no：17等)的序列同一性，但相对于seq id no：17在位置4、位置30、位置42和/或位置106中的一个或多个位置处包含取代。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17包含e4d取代。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17在位置30处包含a、d、e、g、k、l、m、n、q、s、t、v或y。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17在位置42处包a含a、c、f、g、i、l、m、s、t或v。在一些实施方案中，多肽组分相对于seq id no：17在位置106处包含d、k或q。
[0469]
在一些实施方案中，多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))是人工序列，其包含70％或更高(例如，75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间的范围)的与seq id no：19、21、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、65、67、69、71、73、75、77、79、81、83、85、87、89、91、93、95、97、99、101、103、105、107、109、111、113、115、117、119、121、123、125、127、129和131中的一个或多个(或其rβ1-5样部分、β1-6样部分或β1-7样部分)的序列同一性和/或序列相似性。在一些实施方案中，多肽组分是人工序列，其包含seq id no：19、21、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、65、
67、69、71、73、75、77、79、81、83、85、87、89、91、93、95、97、99、101、103、105、107、109、111、113、115、117、119、121、123、125、127、129和131之一(或其rβ1-5样部分、β1-6样部分或β1-7样部分)的全部或一部分(例如，50个氨基酸、60个氨基酸、70个氨基酸、80个氨基酸、90个氨基酸、100个氨基酸、110个氨基酸、120个氨基酸、130个氨基酸、140个或更多个，或其间的范围)。在一些实施方案中，多肽组分是由seq id no：19、21、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、65、67、69、71、73、75、77、79、81、83、85、87、89、91、93、95、97、99、101、103、105、107、109、111、113、115、117、119、121、123、125、127、129和131之一(或其rβ1-5样部分、β1-6部分或β1-7样部分)组成的序列。
[0470]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签((例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)是人工序列或其二肽/三肽组合，所述人工序列包含70％或更高(例如，75％、80％、85％、90％、95％、100％或其间的范围)的与表1、表9、表10中所列的肽序列中的一个或多个的同一性和/或序列相似性。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签组分是人工序列或其二肽/三肽组合，所述人工序列包含表1、表9、表10中所列的肽序列之一的全部或一部分(例如，5个氨基酸、6个氨基酸、7个氨基酸、8个氨基酸、9个氨基酸、10个氨基酸、11个氨基酸、12个氨基酸、13个氨基酸、14个或更多，或其间的范围)。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签组分是由表1、表9、表10中所列的肽序列之一组成的序列或其二肽/三肽组合。
[0471]
尽管在本文中被称为肽/二肽/三肽，例如β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽，但在一些实施方案中，在本文范围内的生物发光复合物的肽/二肽/三肽组分中的一者或多者不附接于相互作用元件、共定位元件、结合剂、目标蛋白质、目标分子或任何其它部分。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽组分中的一者或两者与多肽和其它肽/二肽/三肽组分相互作用以形成发光复合物，而不与另一种元件融合或以其它方式与其系连。
[0472]
在一些实施方案中，发光复合物、共定位元件和/或相互作用元件的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))包括合成的肽/多肽、含有一种或多种非天然氨基酸的肽/多肽、含有一种或多种氨基酸类似物的肽/多肽、肽/多肽模拟物、缀合的合成肽(例如，缀合至官能团(例如，荧光团、发光底物等))，等等。
[0473]
本文提供了可用于包括基础研究、医学研究、分子诊断等在内的多种领域的组合物和方法。尽管本文所述的试剂和测定不限于任何特定的应用，并且任何有用的应用都应被视为在本发明的范围内，但以下是利用了当前要求保护的发明的示例性测定、试剂盒、领域、实验设置等。
[0474]
利用本文实施方案的典型应用包括监测/检测蛋白质二聚化(例如，异二聚体、同二聚体)、蛋白质-蛋白质相互作用、蛋白质-rna相互作用、蛋白质-dna相互作用、与靶标结合的抗体(或其它识别元件)、核酸杂交、蛋白质-小分子相互作用、分析物定量或检测、或者分子实体的任何其它组合。在示例性实施方案中，第一目标实体附接至第一肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)，并且第二目标实体附接至第二肽/二肽/三肽标签(例如，
β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)。如果在特定的测定条件下(例如，在发光复合物的多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))和腔肠素或腔肠素类似物底物存在的情况下)产生可检测的信号，则推断第一实体和第二实体的相互作用和/或共定位。此类测定可用于在任何合适的条件下(例如，体外、体内、原位、整个动物等)监测分子相互作用和/或定位，并可用于例如药物发现、阐明分子途径、研究复合物组装的平衡或动力学方面、高通量筛选、接近传感器(proximity sensor)等。
[0475]
在一些实施方案中，本文提供的系统和方法可用于一种或多种分析物、分析物的共定位和/或分析物的分子相互作用的检测、定量、分析、表征等。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)系连/融合至分析物。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签系连/融合至与靶分析物结合的识别元件剂。
[0476]
本文中的实施方案中使用(例如，被分析)的合适的分析物包括但不限于：核酸(例如，dna、rna、mirna等)、蛋白质(例如：细菌抗原、病毒抗原、生物标志物、抗体等)、小分子、毒素、生物标志物、环境或食物污染物、表面活性剂、病原体(例如，病毒抗原和蛋白质、细菌抗原和蛋白质等)、药物(例如，治疗药物、滥用药物等)、维生素、细胞因子、抗体(例如，自身抗体、传染病暴露、治疗药物监测、抗hla移植排斥反应等)、细胞、细胞受体蛋白、基于生物标志物的诊断剂、无细胞核酸和非细胞游离核酸(例如，dna、rna、mrna、mirna等)、核酸snp、提取的核酸、非扩增的核酸样品、基因组dna、ssdna、细菌抗性基因、免疫复合物(例如，抗原：抗体复合物；抗原：补体复合物等)、血糖、激素、代谢产物、微生物、寄生虫、酶、转录因子、金属离子/重金属等。
[0477]
本文中的实施方案中使用(例如，与肽标签融合/系连，与分析物结合等)的合适的识别元件或结合部分，包括但不限于：抗体(例如，单克隆抗体、多克隆抗体、重组抗体、动物来源的抗体、自身抗体、生物治疗剂等)、抗体可变重链，抗体可变轻链，抗体结合片段(fab)[f(ab)
′
2]，骆驼科动物抗体、单链可变片段(scfv)、单体蛋白、受体结构域、亲合体(affibody)、单体(monobody)、天然和衍生的核酸适体(例如，rna适体、dna适体、化学修饰的适体等)、肽核酸(pna)、锁核酸(lna)、己糖醇核酸(hna)、蛋白a、蛋白g、蛋白l、蛋白m和/或其结构域、序列特异性寡核苷酸探针(例如，dna探针、rna探针等)、小分子药物、抗体-寡核苷酸缀合物、锚蛋白重复蛋白(darpin)、纳米抗体、affimer、adhiron、anticalin、噬菌体、磁性颗粒(例如，直接标记的或用加标签的识别元件标记的)、直接标记的或用加标签的识别元件、链霉抗生物素蛋白、抗原等标记的纳米颗粒(例如，聚苯乙烯纳米球等)。
[0478]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))连接至寡核苷酸识别元件或结合部分。此类构建体可用于核酸(如dna、rna等)互补和/或检测。示例性肽/寡聚体探针是如图99所描绘的。在此类示例性构建体中，包含反应性基团(例如，叠氮基(例如，n末端、c末端、内部等)或本文中的其它反应性基团)的肽/二肽/三肽缀合至寡核苷酸，所述寡核苷酸包含互补反应性基团(例如，炔烃基团(例如，5
’‑
末端、3
’‑
末端、内部等)或本文中的其它反应性基团)。在示例性实施方案中，肽寡核苷酸探针通过以下方式制备：将组分和试剂(例
如，寡核苷酸(1mg，161nmol，于水中)、乙酸三乙基铵缓冲液(40ul，1m，于水中)、氨基胍盐酸盐(8ul，50mm，于水中)、肽(2.8mg，1.93umol，于dmso中)、铜(ii)tbta溶液(10mm，于1∶1的水/dmso中)、抗坏血酸溶液(50mm，于水中)，终体积为300ul，1∶1 水∶dmso)组合；涡旋并在60℃下加热30分钟；使用illustra nap-5柱进行过滤；将缓冲液换成不含rna酶和dna酶的te缓冲液；以及在-20℃下储存。在监测/检测分子相互作用的实施方案中，选择彼此具有亲和力的肽/二肽/三肽标签和多肽组分，使得在相关联的第一实体与第二实体相互作用(例如，结合)时，信号的显著增强是可检测/可测量的。在一些实施方案中，一种或两种(或更多种)肽/二肽/三肽标签对另一种肽标签和/或多肽组分具有足够低的亲和力，使得在相关联的第一实体与第二实体之间不存在相互作用(例如结合)的情况下仅检测到背景发光。在其它实施方案中，肽/二肽/三肽标签和多肽组分将形成复合物，并在相关联的第一实体与第二实体之间不存在相互作用的情况下产生信号，但所述信号在所述关联的第一实体与第二实体相互作用(例如，结合)时增加(例如，2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、102倍、103倍、104倍、105倍、106倍或更多倍或其间的范围)。
[0479]
在其中监测/检测共定位的实施方案中，选择彼此具有亲和力的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))，使得来自发光复合物的信号即使在相关联的第一实体与第二实体不存在相互作用(例如，结合)的情况下也是可检测/可测量的。在此类实施方案中，如果相关联的第一实体和第二实体共同定位(例如，在同一组织中，在同一细胞中，在同一亚细胞区室中，等等)，则肽/二肽/三肽标签和多肽组分将形成复合物并发射信号(在腔肠素或腔肠素类似物存在的情况下)，无论第一实体和第二实体是否相互作用。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签中的两种或更多种(例如，两种，全部)对另外的组分具有足够高的亲和力，使得在相关联的第一实体与第二实体之间不存在相互作用(例如，结合)的情况下检测到发光。在一些实施方案中，在第一实体与第二实体相互作用时，未检测到信号的显著增强。在其它实施方案中，肽/二肽/三肽标签和多肽组分将形成复合物，并在相关联的第一实体与第二实体之间不存在相互作用的情况下产生信号，但所述信号在所述相关联的第一实体与第二实体相互作用(例如，结合)时增加(例如，2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、102倍、103倍、104倍、105倍、106倍或更多倍或其间的范围)。
[0480]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和具有已知特征(例如，光谱特性、相互亲和力等)的多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于阐明目标相互作用对的亲和力或理解目标相互作用对的相互作用。在其它实施方案中，使用良好表征的相互作用对来确定一组肽/二肽/三肽标签和多肽组分的一种或多种元件的特征(例如，光谱特征、相互亲和力等)。在一些实施方案中，具有已知的特征(例如，光谱特征、相互亲和力等)的肽/二肽/三肽标签和多肽组分用于表征/监测目标共定位对的共定位(例如，在期望的条件下)。
[0481]
本文所述的实施方案可用于药物筛选和/或药物开发。例如，在一种或多种相关条件(例如，生理条件、疾病条件等)下，监测小分子药物或整个小分子文库与目标靶蛋白(例如，治疗靶标)的相互作用。这种测定可包括附接至药物候选物(或候选物库)的第一肽/二
肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如smtrip9)和/或β10样肽(例如smtrip10)和/或其二肽和三肽)和附接至治疗靶标的第二肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)；在多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))和底物存在时的发光表明候选物与靶标的相互作用和/或共定位。
[0482]
本文的一些实施方案在诊断或犯罪场景(criminal setting)中用于监测药物(例如，人中滥用的药物)以及用于在生物样品中进行患者的治疗药物监测。例如，两个识别药物分析物的加有肽/二肽/三肽标签的结合部分(例如，单独用肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样(例如，smtrip9)，和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)加标签的结合部分)促进了此类实施方案。在一些实施方案中，在本文所述的系统中利用加有肽/二肽/三肽标签的靶标来鉴定样品中未加标签的靶标的竞争性置换测定用于本文的实施方案。一些实施方案可用于检测环境污染，例如被特定药物或其它特定污染物(例如，小分子污染物)污染的土壤样品、供水等。
[0483]
在其它实施方案中，测定(例如，通过生物发光信号的增益或损失)药物(例如，小分子药物)或整个药物(例如，小分子)库增强或抑制两个实体(例如，受体和配体、蛋白质-蛋白质等)之间的相互作用的能力。在一些实施方案中，药物筛选应用以高通量形式进行，以允许检测数千或数万个不同分子与靶标的结合，或者测试这些分子对其它实体的结合的影响。
[0484]
在一些实施方案中，本文提供了在活生物体(例如，细菌、酵母、真核生物、哺乳动物、灵长类动物、人等)和/或细胞中检测分子相互作用。在一些实施方案中，融合至相互作用(靶标)多肽的pep肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)在细胞或整个生物体中共表达，并且在多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))和底物(例如，腔肠素或腔肠素类似物)存在的情况下检测到信号，其中信号与相互作用复合物的形成相关。在一些实施方案中，用一种或多种编码包含肽标签和相互作用元件的融合物的载体瞬时和/或稳定地转化或转染细胞。在一些实施方案中，crispr用于产生表达包含肽/二肽/三肽标签和相互作用元件的融合物的细胞。在一些实施方案中，由crispr产生的融合物(例如，细胞靶标与本文所述的肽/二肽/三肽或多肽的)替代内源蛋白质(例如，非融合细胞靶标)，并以与内源蛋白质相似的方式受到调节。在一些实施方案中，这种内源加标签用于监测内源加标签的蛋白质的水平，特别是在复杂的系统诸如活细胞、完整生物体等中。在一些实施方案中，产生了转基因生物，其编码进行本文所述的测定所必需的融合物(例如，包含肽标签和相互作用元件的融合物)。在其它实施方案中，载体被注射到整个生物体中。
[0485]
在一些实施方案中，本文提供了在活生物体(例如，细菌、酵母、真核生物、哺乳动物、灵长类动物、人等)和/或细胞中的分子共定位的检测。在一些实施方案中，融合至共定位(靶标)多肽的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)在细胞或整个生物体中共表达，并且在多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))和底物(例如，腔肠素或腔肠素类似物)存在的情况下检测信号，其中信号与共定位元件的共定
位相关。在一些实施方案中，用一种或多种编码包含肽标签和共定位元件的融合物的载体瞬时和/或稳定地转化或转染细胞。在一些实施方案中，crispr用于产生表达包含肽标签和共定位元件的融合物的细胞。在一些实施方案中，产生转基因生物，其编码进行本文所述测定所必需的融合物(例如，包含肽标签和共定位元件的融合物)。在其它实施方案中，载体被注射到整个生物体中。
[0486]
在某些实施方案中，使用基因转移技术或其它工程技术对细胞进行工程改造，以表达一种或多种肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)、多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8多样(例如，lgtrip))或其融合物(例如，与细胞靶标的)。例如，可使用基因编辑方法诸如crispr(规律间隔成簇短回文重复序列)对细胞进行基因工程改造，以表达一种或多种肽/二肽/三肽标签、多肽组分或其融合物(例如，与细胞靶标的)。如本文中所用，术语“crispr”或“crispr-cas9”是指各种crispr-cas9和-cpf1(和其它)系统，所述系统可被编程以靶向基因组的特定区段并在精确的位置编辑dna。crispr-cas9基因编辑系统基于来自ii型原核生物的规律间隔成簇短回文重复序列(crispr)适应性免疫系统的rna引导的cas9核酸酶(参见，例如，jinek等人，science，337：816(2012)；gasiunas等人，proc.natl.acad.set u.s.a.，109，e2579(2012)；garneau等人，nature，468：67(2010)；deveau等人，annu.rev.microbiol，64：475(2010)；horvath和barrangou，science，327：167(2010)；makarova等人，nat.rev.microbiol.，9，467(2011)；bhaya等人，annu.rev.genet.，45，273(2011)以及cong等人，science，339：819-823(2013)；通过引用以其整体并入本文)。crispr基因编辑系统已经被开发出来，使得能够对真核细胞中特定目标基因进行靶向修饰(参见，例如，cong等人，同上；xiao-jie等人，j.med.genet.，52(5)：289-96(2015)；美国专利8,697,359；xie等人，genome res.，24(9)：1526-1533(2014)；huang等人，stem cells，33(5)：1470-1479(2015)；smith等人，molecular therapy，23(3)：570-577(2015)；和美国专利申请公布2014/0068797；通过引用以其整体并入本文)。利用crispr技术进行基因编辑的方法描述于例如barrangou等人，science 315，1709-1712(2007)；bolotin等人，microbiology，151，2551-2561(2005)；brouns等人，science 321，960-964(2008)；cong等人，同上；deltcheva等人，nature 471，602-607(2011)；gasiunas等人，同上；hale等人，cell 139，945-956(2009)；jinek等人，science 337，816-821(2012)；makarova等人，biology direct 2006，1：7(2006)；mali等人，science 339，823-826(2013)；marraffini等人，science 322，1843-1845(2008)；mojica等人，j mol evol 60，174-182(2005)；pourcel等人，microbiology 151，653-663(2005)；和sapranauskas等人，nucl.acids res.39，gkr606-gkr9282(2011)中，所述文献通过引用以其整体并入本文。
[0487]
在一些实施方案中，一种或多种肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)被用作蛋白质标签(例如，在细胞内、在整个动物内)。在此类实施方案中，一种或多种肽/二肽/三肽标签的互补组分(例如，多肽成分、另一肽/二肽/三肽标签、底物)被应用于系统(例如，细胞、动物等)(例如，作为试剂的一部分)来检测/定量加标签的蛋白的存在。
[0488]
在一些实施方案中，本文的肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9)和β10样肽(例如，smtrip10))的小尺寸对于蛋白质加标签是有用的。
[0489]
在一些实施方案中，本文的生物发光复合物的组分(例如，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)、多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))足够稳定，以在合适的缓冲液中长时间存在(例如，在腔肠素或腔肠素类似物(例如，furimazine)底物存在的情况下)。在某些实施方案中，本文的生物发光复合物的组分(例如，肽/二肽/三肽标签、多肽组分等)在互补组分不存在的情况下(例如，甚至在腔肠素或腔肠素类似物(例如，furimazine)底物存在的情况下)表现出最小的可检测发光。在一些实施方案中，利用优化的缓冲液条件来满足蛋白质加标签所必需的标准。
[0490]
本文提供的组合物和方法以及基于此的任何一种或多种技术可用于多种应用和领域。
[0491]
本文提供了用于设计和/或优化肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))以及由其形成的生物发光复合物的方法。与本文描述的实施方案和/或其小组一致的用于设计非发光对/组的任何合适的方法都在本文的范围内。在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签和多肽组分及其组合的特征通过取代(例如，天然氨基酸、非天然氨基酸、氨基酸类似物等的取代)来优化；此类特征包括但不限于结构稳定性(例如，肽/二肽/三肽标签或多肽组分的、复合物等的)、表达、粘性(例如，对管、孔等的)、亮度(或由其形成的复合物)、对生物发光复合物的其它组分的亲和力、溶解度、热和化学稳定性、低自发光等。
[0492]
在某些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))被从头设计成单独不发光，但在缔合时显示发光。在此类实施方案中，非发光元件之间的相互作用强度不足以在促进生物发光复合物形成的相互作用元件不存在的情况下产生生物发光信号。在其它实施方案中，例如，使用生物发光蛋白作为起点，合理地设计肽/二肽/三肽标签和多肽组分和/或其生物发光复合物。例如，此类方法可包括：(a)比对三种或更多种相关蛋白质的序列；(b)确定相关蛋白质的共有序列；(c)提供生物发光蛋白的片段(例如，一种或多种肽/二肽/三肽和多肽)，所述生物发光蛋白与从其确定共有序列的蛋白相关，其中所述片段单独基本上不发光，但在片段相互作用时显示发光；以及(d)测试片段在未缔合时的发光缺失和非发光对缔合时的发光。在一些实施方案中，在一个或多个位置(例如，在体外、在计算机中，等等)对片段进行突变，其中所述突变改变片段的序列并导致特征的优化。
[0493]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签为
‘
暗肽’或与另外的肽标签和多肽组分(例如，以低亲和力或高亲和力)形成复合物，但产生最少的发光或不发光的肽标签。在一些实施方案中，高亲和力暗肽/二肽/三肽可用于生物传感器或测量抑制剂的反向互补或信号增益测定。在一些实施方案中，低亲和力暗肽/二肽/三肽用于减弱复合物的背景发光，以检测高亲和力亮肽/二肽/三肽标签与复合物的结合。
[0494]
在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签是“淬灭剂肽”，或包含淬灭剂部分(例如，dab)的肽，并且淬灭剂吸收由多肽组分(例如，独立于互补肽/二肽/三肽标签产生的信号)和/或生物发光复合物中的任一者或两者产生的光/能量。
[0495]
在一些实施方案中，本文的发光复合物可用于利用复合物与荧光团(例如，小分子荧光团、荧光蛋白(例如，cyofp))之间的bret的系统、方法、测定、装置等。在一些实施方案中，荧光团(例如，小分子荧光团、荧光蛋白(例如，cyofp))连接或融合至分析物、细胞靶标等。在一些实施方案中，荧光团(例如，小分子荧光团、荧光蛋白(例如，cyofp))连接或融合至肽/二肽/三肽标签和/或多肽组分。在一些实施方案中，能量从生物发光复合物转移到能量受体。在某些实施方案中，能量受体是荧光团或其它可检测的发色团。合适的荧光团包括但不限于：呫吨衍生物(例如，萤光素、罗丹明、oregon green、曙红、texas red等)、青色素衍生物(例如，青色素、吲哚羰花青、氧杂羰花青、硫羰花青(thiacarbocyanine)、部花青等)、萘衍生物(例如，丹磺酰基和普罗丹衍生物)、噁二唑衍生物(例如，吡啶噁唑(pyridyloxazole)、硝基苯并噁二唑、苯并噁二唑等)、芘衍生物(例如，级联蓝)、噁嗪衍生物(例如，nile red、nile blue、甲酚紫、噁嗪170等)、吖啶衍生物(例如，原黄素(proflavin)、吖啶橙、吖啶黄等)、芳基次甲基衍生物(例如，金胺、结晶紫、孔雀石绿等)、四吡咯衍生物(例如，卟吩、酞菁、胆红素等)、cf染料(biotium)、bodipy(invitrogen)、alexa flour(invitrogen)、dylight fluor(thermo scientific，pierce)、atto和tracy(sigma aldrich)、fluoprobes(interchim)、dy和megastokes(dyomics)、sulfo cy染料(cyandye，llc)、setau和square染料(seta biomedicals)、quasar和cal fluor染料(biosearch technologies)、surelight染料(apc、rpe、percp、藻胆体)(columbia biosciences)、apc、apcxl、rpe、bpe(phyco-biotech)、自发荧光蛋白(例如，yfp、rfp、mcherry、mkate)、量子点纳米晶体等。在一些实施方案中，荧光团是罗丹明类似物(例如，羧基罗丹明类似物)，诸如第13/682,589号美国专利申请序列(通过引用以其整体并入本文)中描述的那些。在一些实施方案中，荧光团是小分子荧光团；本文列举荧光团的实施方案可以理解为或限于小分子荧光团。在一些实施方案中，荧光团是荧光蛋白(例如，cyofp、gfp、cfp等；本文列举荧光团的实施方案可以理解为或限于荧光蛋白(例如，cyofp、gfp、cfp等)。
[0496]
在各种实施方案中，本文所述的生物发光复合物及其组分可用于各种不同的免疫测定概念。例如，在一些实施方案中，肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)系连/融合至一抗或二抗，以提供检测特定分析物的方法。作为另一个实例，肽标签系连/融合至抗体结合蛋白(例如，蛋白a或蛋白g)，并用于检测与特定分析物(例如，其中分析物与互补肽标签结合)结合的特定抗体。作为另一个实例，肽/二肽/三肽标签系连/融合至链霉抗生物素蛋白，并用于检测结合至特定分析物(例如，其中分析物结合至互补肽标签)的特定生物素化抗体。作为又一个实例，肽/二肽/三肽标签系连/融合至一抗和二抗，其中一抗识别特定的分析物，二抗识别一抗。作为又一个实例，肽/二肽/三肽标签系连/融合至分析物，并用于竞争性夹心elisa形式。肽/二肽/三肽标签系连/融合至分析物，也可用于检测能够结合分析物的抗体。
[0497]
本文的各种实施方案用于通过免疫测定进行的小分子检测。示例性实施方案包括使用用本文所述的第一肽/二肽/三肽标签直接标记的小分子(例如，与目标小分子相同或相似)，以及与本文所述的肽/二肽/三肽融合或连接的目标小分子的结合部分。在多肽组分和底物(例如，腔肠素或腔肠素类似物)存在的情况下，系统产生生物发光信号。当系统暴露于样品(例如，生物样品、环境样品等)时，如果小分子靶标存在于样品中，则生物发光信号
将减弱(标记的小分子将从复合物中竞争出来，从而在一些情况下，允许对小分子靶标定量)。此类测定的替代配置也在本文的范围内。在一些实施方案中，目标小分子是毒素(例如，真菌毒素等)、代谢产物(例如，氨基酸、葡萄糖分子、脂肪酸、核苷酸、胆固醇、类固醇等)、维生素(例如，维生素a、维生素b1、维生素b2、维生素b3、维生素b5、维生素b7、维生素b9、维生素b12、维生素c、维生素d、维生素e、维生素h或维生素k等)、辅酶或辅因子(例如，辅酶a、辅酶b、辅酶m、辅酶q、胞苷三磷酸、乙酰辅酶a、还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(nadh)、烟酰胺腺嘌呤(nad+)、核苷酸腺苷单磷酸、核苷酸腺苷三磷酸、谷胱甘肽、血红素、硫辛酰胺、钼蝶呤(molybdopterin)、3
′‑
磷酸腺苷-5
′‑
磷磺酸盐、吡咯喹啉醌、四氢生物蝶呤等)、生物标志物或抗原(例如，促红细胞生成素(epo)、铁蛋白、叶酸、血红蛋白、碱性磷酸酶、转铁蛋白、载脂蛋白e、ck、ckmb、甲状旁腺激素、胰岛素、胆固醇酯转移蛋白(cetp)、细胞因子、细胞色素c、载脂蛋白ai、载脂蛋白aii、载脂蛋白bi、载脂蛋白b-100、载脂蛋白b48、载脂蛋白cii、载脂蛋白ciii、载脂蛋白e、甘油三酯、hd胆固醇、ldl胆固醇、卵磷脂胆固醇酰基转移酶、对乙酰氧酶(paraxonase)、丙氨酸氨基转移酶(alt)、天冬氨酸转移酶(ast)、cea、her-2、膀胱肿瘤抗原、甲状腺球蛋白、甲胎蛋白、psa、ca 125、ca 19.9、ca 15.3、瘦素、催乳素、骨桥蛋白、cd 98、fascin、肌钙蛋白i、cd20、her2、cd33、egfr、vegfa等)、药物(大麻素(例如，四氢大麻酚(thc)、大麻二酚(cbd)和大麻酚(cbn)等)、阿片样物质(例如，海洛因、鸦片、芬太尼等)、兴奋剂(例如，可卡因，苯丙胺、甲基苯丙胺等)、娱乐用药(club drug)(例如mdma，氟硝西泮、γ-羟基丁酸酯等)、解离药物(例如，氯胺酮、苯环利定、丹参(salvia)、右美沙芬等)、致幻剂(例如，lsd、墨斯卡林、赛洛西宾等)、炸药(例如，2，4，6-三硝基甲苯(tnt)和六氢-1，3，5-三硝基-1，3，5-三嗪(rdx)、季戊四醇四硝酸酯(petn)等)、有毒化学品(例如，塔崩(ga)、沙林(gb)、索曼(gd)、环沙林(gf)、2-(二甲基氨基)乙基n，n-二甲基磷酰胺基氟酸酯(gv)、ve、vg、vm、vp、vr、vs或vx神经剂)等。
[0498]
本文描述的系统和方法可用于多种应用和形式。下面是利用本文所述的系统的方法和形式的非穷举示例性实例。
[0499]
·
在一些实施方案中，本文提供了用于动态蛋白质-蛋白质相互作用分析的细胞内双蛋白系统，其中smtrip肽标记的蛋白质通过常规转染表达为融合物，或者通过crispr表达为内源性加标签的蛋白质；通过共转染lgtrip，提供表达lgtrip的稳定细胞系，或者在检测试剂中提供lgtrip并将其添加到表达smtrip标记蛋白质的裂解细胞中，可将lgtrip用作检测试剂(图51a)。
[0500]
·
在一些实施方案中，本文提供了用于动态蛋白质-蛋白质相互作用分析的细胞内三蛋白系统，其中smtrip标记的和lgtrip标记的蛋白质通过常规转染表达为融合物，或者表达为通过crispr产生的内源性加标签的蛋白质(图51b)。
[0501]
·
在一些实施方案中，本文提供了用于信号增益测定(例如非细胞的诊断测试，等等)的测量具有结合部分a和结合部分b(参见表a；纯化的基因融合物或化学缀合的smtrip9或smtrip10肽)的分析物x的靶特异性测定(图51c)。
[0502]
·
在一些实施方案中，本文提供了用于通过信号损失进行分析物测量的靶标特异性竞争测定(例如，非细胞的诊断测试，等等)(图51d)。这种系统使用纯化的结合部分a(例如，纯化的基因融合物或包含合成的smtrip9或smtrip10肽的化学缀合物)，其结合加标签的靶分析物，以在lgtrip和腔肠素底物或腔肠素类似物存在的情况下产生光，所述腔肠素
底物或腔肠素类似物可以作为检测试剂的一部分提供。在样品分析物x存在的情况下，smtrip9或smtrip10肽将与样品分析物x竞争，导致信号损失，所述信号损失是对样品中存在样品分析物所特有的，所述与分析物的浓度成比例。
[0503]
·
在一些实施方案中，两个或三个肽标签肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))连接(或融合)至识别元件，所述识别元件为相同靶分析物上的邻近但不重叠(互斥或分离)的表位的识别元件。由发光复合物产生的信号(例如，在底物存在的情况下)指示靶分析物的存在。
[0504]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于免疫测定或各种形式。本文中采用肽/二肽/三肽标签和多肽组分的免疫测定不限于全长抗体，并且还可使用抗体片段或非抗体结合部分(例如，darpin、适体、affimer等)。在示例性直接免疫测定(例如，参见图51e)中，用β9样肽标签(例如，smtrip9)和β10样肽标签(例如，smtrip10)标记针对分析物的两种单克隆或重组抗体(mab或rab)；将发光复合物的多肽组分(例如，β1-8样多肽(如，lgtrip))包括在内作为检测试剂的一部分(例如，与底物一起)。对于示例性间接免疫测定法(参见，例如，图51f)，将用β9样肽标签(例如，smtrip9)和β10样肽标签(smtrip10)标记的通用试剂与任何对分析物特异的配对抗体系统(例如，mab或rab+生物素-pab，生物素-mab或生物素-rab等)组合使用；将发光复合物的多肽组分包括在内作为检测试剂的一部分(例如，与底物一起)。通过用第一肽标签(β9样肽(例如，smtrip9)或β10样肽(例如，smtrip10))标记一种抗体并用第二肽标签(β10样肽(例如，smtrip10)或β9样肽(例如，smtrip9))标记分析物来提供示例性竞争直接免疫测定(例如，参见图51g)；将发光复合物的多肽组分(如β1-8样多肽(例如，lgtrip))包括在内作为检测试剂的一部分(例如，与底物一起)；信号缺失表明存在未标记的靶分析物。为了提供竞争性间接免疫测定(参见，例如，图51h)，用第一肽标签(β9样肽(例如，smtrip9)或β10样肽(例如，smtrip10))标记一种抗体，用第二肽标签(β10样肽(例如，smtrip10)或β9样肽(例如，smtrip9))标记通用结合试剂(例如，链霉抗生物素蛋白)，并用通用结合试剂的结合部分(例如，生物素)标记分析物；将发光复合物的多肽组分包括在内作为检测试剂的一部分(例如，与底物一起)；信号缺失表明存在未标记的测试分析物。利用本文所述的其它肽/二肽/三肽/多肽组合的替代免疫测定法也在本发明的范围内。
[0505]
·
在一些实施方案中，本文提供了使用肽/二肽/三肽标签标记的肽(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)识别元件和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))作为检测试剂的组分(例如，与发光复合物的底物一起)的均相测定。
[0506]
·
在一些实施方案中，本文提供了利用肽/二肽/三肽标签标记的(例如，smtrip9、smtrip10等)和/或多肽组分标记的(例如，lgtrip变体)识别元件的均相测定。在一些实施方案中，提供了用于单种分析物或多种分析物的检测/定量的均相测定。
[0507]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β
9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于夹心杂交测定(例如，非靶扩增的、扩增的，等等)。
[0508]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于检测液体/溶液相或固相中的一种或多种分析物。
[0509]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于基于表面的测定(例如，基于平板的(例如，微量滴定板)、基于纸的(例如，whatman蛋白保存903卡(whatman protein saver 903cards))、基于塑料的、基于拭子的、基于比色杯的、基于膜的(例如，pvdf、硝酸纤维素等)，等等。
[0510]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于侧向流和其它基于毛细管驱动的方法。在一些实施方案中，此类侧向流测定允许分析物(例如，病原体)的多重检测/鉴定/表征。在一些实施方案中，侧向流测定可用于进行本文所述的免疫测定。
[0511]
ο图52中描绘了在直接免疫测定中使用三部分抗体融合物检测和鉴定病原体的示例性多重三部分侧向流测定。在该实施例中，将一组各自与肽标签(例如，β10样肽(例如，smtrip10))融合的单克隆或重组抗体(mab或rab)添加到液体样品中，使样品通过包含第二组各自与肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9))融合的mab或rab的检测窗，所述第二组抗体被固定在检测窗内的泳道中，并且每种抗体识别与液体样品中的mab或rab之一相同的靶标上的不同表位。当液体样品在多肽组分和底物存在(例如，预装载在检测窗中的、与样品一起添加的、单独加入装置中的，等等)的情况下通过检测窗时，特定泳道中的发光指示mab或rab与靶标上的单独表位的结合，从而提供靶标的检测和鉴定。上述测定及其利用本文系统和方法的替代方案可用于提供各种检测小组(detection panel)(例如，呼吸小组：链球菌属(streptococcus)、假单胞菌属(pseudomonas)、分枝杆菌属(mycobacterium)、葡萄球菌属(staphylococcus)；泌尿道小组：大肠杆菌(e.coli)、克雷伯氏菌属(klebsiella)、肠杆菌属(enterobacter)、链球菌属；食源性小组：志贺氏菌属(shigella)、弯曲杆菌属(campylobacter)、沙门菌属(salmonella)、大肠杆菌、李斯特菌属(listeria)；废水管理：大肠菌组；一种类型细菌内的菌株鉴定小组；等等)，以及用于其它应用(例如，毒素检测)。
[0512]
ο图53描绘了用于在直接免疫测定中使用三部分抗体融合物检测和鉴定抗病毒抗体(例如，用于疾病诊断)的示例性多重三部分侧向流测定。在该实例中，将样品添加到侧向流动装置中，并使其流入缀合区(例如，垫)。缀合区包含系连或融合至第一肽标签(例如，β10样肽(例如，smtrip10))的通用抗体结合剂(例如，蛋白l)。如果抗体存在于样品中，它们将被标记的抗体结合剂结合。所述装置的检测窗包括单独的泳道，每个泳道包含系连或融合至第二肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9))的不同的固定化病毒抗原。当标记的抗体从缀合区流入检测窗时，抗体将与合适的抗原结合，使肽标签靠近，并在多肽组分和底物
(例如，预装载在检测窗中的，与样品一起添加的，单独添加到装置中的，等等)存在的情况下产生发光信号。这种装置和测定将允许使用单个装置/测定来检测和区分多种病毒和病毒感染。例如，寨卡病毒、登革热和奇昆古病毒(chicungkunga)都可通过使用单一测试独立地检测出来。
[0513]
·
在一些实施方案中，对于溶液相测定，以基于平板的形式进行上述侧向流测定的细节(例如，在与图谱一起提供的孔中利用结合部分的组合)。在一些实施方案中，以多重点印迹/点阵列测定形式进行这种测定。在一些实施方案中，本文以特定形式(例如，侧向流动)描述的任何多重测定也可以以本文描述的或本领域理解的替代形式(例如，斑点印迹、点阵列等)进行。
[0514]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于基于气溶胶的检测(例如，(1)蛋白酶裂解细胞，(2)喷洒检测试剂，(3)可视化检测/定量)。
[0515]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于核酸的等温扩增。
[0516]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于核酸的快速循环pcr检测。
[0517]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于检测蛋白质-蛋白质相互作用(例如，两种蛋白质之间，3种蛋白质之间，等等)。
[0518]
·
在一些实施方案中，使用固定或便携式设备和读取器、光度计板读取器或手持式读取器、智能手机照相机或ccd照相机等来执行本文所述的测定和方法的分析。
[0519]
·
在一些实施方案中，通过光度计或基于成像的技术，经由通过识别元件的信号增益来检测/定量分析物。
[0520]
·
在一些实施方案中，通过光度计或基于成像的技术，经由通过竞争性置换的信号损失来检测/定量测量分析物。
[0521]
·
在一些实施方案中，本文的系统和方法允许在每个识别元件上有多个标签(通过遗传或者通过化学缀合)，从而通过增加每个识别元件的肽标签的化学计量来提供信号放大。
[0522]
·
在一些实施方案中，本文的系统和方法可用于检测非均相溶液中的天然蛋白质。
[0523]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于核酸检测，
例如，加有肽标签的互补识别元件与串联的核酸靶序列杂交。
[0524]
·
在一些实施方案中，本文提供了用于检测抗体(例如，作为分析物的抗体)的测定。图54中描绘了一种这样的测定。第一肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9))融合或系连至抗体结合蛋白(例如，蛋白l)，第二肽标签(例如，β10样肽(例如，smtrip10))融合或系连至抗体对其具有特异性的分析物；将发光复合物的多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip))包括在内来作为检测试剂的一部分(例如，与底物一起)；样品中分析物特异性抗体的存在导致复合物的形成和发光。
[0525]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于利用生物发光或bret的fish样应用以用于检测/定量。
[0526]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于核酸(例如，单链和/或双链dna和/或rna)的检测，通过例如核酸的无扩增检测。例如，如图56所描绘的，一对肽标签标记的核酸探针，当与核酸靶标上的邻近位置杂交时，将允许形成发光复合物，这通过与核酸靶标的互补作用来促进。这种测定可以在固体表面上、溶液中、针对单个核酸靶标进行，或者可以是多重的(例如，使用阵列)。
[0527]
·
在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于芯片实验室和/或微流体应用。
[0528]
·
在一些实施方案中，本文的系统和方法可用于非均相测定，诸如免疫测定(例如，pcr扩增与均相免疫测定分析组合)。
[0529]
在一些实施方案中，提供了基于肽/二肽/三肽的传感器，所述传感器需要化学(例如，去除封闭部分)或酶促(例如，蛋白水解切割)事件来使肽标签能够形成生物发光复合物。例如，需要蛋白酶来将封闭的二肽(例如，不能形成生物发光复合物)切割成两个能够互补的非封闭肽。在一些实施方案中，本文的肽/二肽/三肽标签(例如，β6样肽、β7样肽、β8样肽、β9样肽(例如，smtrip9)和/或β10样肽(例如，smtrip10)，和/或其二肽和三肽)和多肽组分(例如，β1-5样多肽、β1-6样多肽、β1-7样多肽、β1-8样多肽(例如，lgtrip))用于基于珠粒的测定，所述测定利用磁性富集来提高测定灵敏度。图55中描绘了一种这样的测定。在这样的测定中，磁性颗粒缀合至第一肽标签(例如，β9样肽(例如，smtrip9))和针对分析物上第一表位的第一结合剂；非磁性颗粒(例如，聚苯乙烯颗粒)缀合至第二肽标签(例如，β10样肽(例如，smtrip10))和针对分析物上的第一表位或第二表位的第二结合剂。将珠粒与样品以及发光复合物的多肽组分(例如，β1-8样多肽(例如，lgtrip))组合。磁分离用于捕获磁性珠粒和结合到其上的样品的任何组分或其它试剂。然后，在发光复合物的基质存在的情况下，检测磁性捕获的元件的发光。如果样品中存在分析物，则磁性和非磁性珠粒都将被捕获，导致发光复合物的捕获。在分析物不存在的情况下，非磁性珠粒将不被捕获，并且不会形成发光复合物。上述应用和形式是示例性而非限制性的。与本文的描述一致的其它实施方案在
本发明的范围内。本文描述了包含肽、二肽和多肽的系统和利用肽、二肽和多肽的方法，以及通过其互补作用形成的生物发光复合物，所述肽、二肽和多肽与商业萤光素酶和/或来自细角刺虾的天然萤光素酶的部分具有结构(尽管不一定是序列同一性)和功能相关性。特别是，提供了β
1-8
样多肽(例如，lgtrip)与β9样肽(例如，smtrip9)和β
10
样肽(例如，smtrip10)或β
9/10
样二肽之间的互补作用的详细描述。然而，本文的实施方案不限于β
1-8
样多肽(例如，lgtrip)和β9样肽(例如，smtrip9)和β
10
样肽(例如，smtrip10)或β
9/10
样二肽之间的互补作用。在一些实施方案中，提供了与商业萤光素酶和/或来自细角刺虾的天然萤光素酶的部分具有结构(尽管不一定是序列同一性)和功能相关性的肽、二肽和多肽。例如，本文还提供了用于β
1-5
样多肽与β
6-10
样多肽之间；β
1-2
样二肽与β
3-10
样多肽之间；β1样肽、β2样肽与β
3-10
样多肽之间；β
7-8
样二肽与β
9-10/1-6
样多肽融合物之间；在β
1-7
样多肽与β8样肽、β9样肽与β
10
样肽之间；和/或β
1-6
样多肽与β7样肽、β8样肽、β9样和β
10
样肽之间的互补作用的系统和方法。
[0530]
在一些实施方案中，本文的肽、二肽、三肽和/或多肽可用于易位测定。在一些实施方案中，易位测定由以下两个组分组成：互补多肽传感器(例如，基于lgbit的、基于lgtrip的，等等)和加有肽/二肽/三肽标签的目标蛋白质(poi)。产生了多种定位于诸如质膜、细胞核、线粒体和内质网(er)等的特定细胞区室的lgbit传感器(图152)。这些lgbit传感器可通过转染或建立稳定的细胞系来引入细胞。poi是用与多肽(例如，lgbit)互补的肽/二肽/三肽内源性标记的。在刺激下，poi转移到多肽(例如，lgbit)传感器所在的不同细胞区室，发生互补作用，导致肽/多肽复合物(例如，hibit
·
lgbit)的组装以产生发光信号(图153)。因此，poi的易位活性是通过发光输出定量测量的。在实施例89中描述了在易位测定的实施方案的开发过程中进行的实验。
[0531]
如本文进一步所述，易位测定可被设计为模块化系统的一部分，所述模块化系统包括例如以下组件：1)从内源基因座表达hibit标记的蛋白质的细胞系；和2)lgbit定位传感器。这种原理设计允许发光信号与特定细胞位置处的靶蛋白的存在相关联。传感器可以包括与lgbit亲和变体以及halotag融合的定位特异性序列，用于靶区室的验证和成像。定位特异性序列可以是来源于已知蛋白质细胞标志物的短肽。在一些实施方案中，当短肽的特异性不足以将lgbit传感器排除在选择的细胞区室之外时，可使用全长蛋白标志物与传感器融合。编码lgbit定位传感器的dna序列可被克隆到环状双链dna质粒中，所述质粒可被递送到hibit细胞系中。在一些实施方案中，递送方法可以是通过使用fugene hd转染试剂的基于脂质的转染，或通过使用慢病毒颗粒或bacmam的病毒转导。在一些实施方案中，当转染/转导时，用激动剂处理细胞，并且hibit标记的蛋白质易位到lgbit传感器所在的细胞区室；互补发生并产生发光。在一些实施方案中，激动剂是刺激靶蛋白易位的小分子。
[0532]
实验
[0533]
实施例1
[0534]
(lgbit)的进一步截短形式由肽激活
[0535]
将lgbit(背景和在互补smtrip10 pep86存在的情况下)(seq id no：15，25)与进一步截短的多肽(lgtrip 2098，seq id no：17)的发光进行比较，所述进一步截短的多肽缺乏全长萤光素酶的β10链和β9链两者(背景和在互补pep263(seq.id 35)存在的情况下)(图1)。
[0536]
使具有lgbit(seq id no：11)或lgtrip 2098(seq id no：17)的大肠杆菌krx在50ml的体积中在30℃(275rpm)下于lb+amp(50ug/ml)中从单个菌落生长20小时。从这些培养物中，将100倍的稀释液制成相同的培养基，并使培养物在37c(275rpm)下生长3小时，然后冷却至25℃，然后加入鼠李糖(蛋白质过表达的诱导剂)至终浓度为0.2％。然后使培养物在25℃(275rpm)下生长(诱导)22小时，此时收获培养物，将所得沉淀物在-20℃下储存直至处理。为了溶解细胞，从-20℃取出沉淀，重新悬浮在50ml的pbs(ph 7.2)中，并经过3个连续的冻融循环(-70℃至22℃)，离心以产生可溶性部分，然后保持低温(在冰上)直至分析。将裂解物和一种或多种肽(终浓度为25nm)在25℃下一起孵育10分钟，然后加入试剂。添加试剂后，将平板在35℃下再孵育5分钟，并使用tecan infinite f500板读数器随时间推移读取以测量发光(rlu)。
[0537]
在本文实施方案的开发过程中进行的实验证明，lgbit(seq id no：11)和lgtrip 2098(seq id no：17)都产生一定的背景发光，但lgbit的水平高得多。数据显示，lgbit和lgtrip 2098在它们各自的互补肽存在的情况下都产生更多的发光。lgtrip 2098在肽存在的情况下信号增益的幅度更大。这些数据表明，进一步截短的lgbit(以及a51g取代)被单一互补肽激活，该互补肽对应于从lgtrip 2098中缺失的β10和9β链。
[0538]
实施例2
[0539]
lgtrip 2098由一对单独的β9和β10样肽激活
[0540]
在对应于全长萤光素酶(smtrip10 pep86(seq id no：25)和smtrip9 pep245)(seq id no：23)的β10和β9部分的单独的肽存在的情况下随时间推移监测lgtrip 2098(seq id no：31)的发光(图2)。使用与实施例1中类似的实验方案；然而，使用了10x浓缩的裂解物，以500nm使用肽smtrip10 pep86和smtrip9 pep245，并且将0.001％prionex加入到反应中。在本文实施方案的开发过程中进行的实验证明，通过添加smtrip10 pep86和smtrip9 pep245激活了lgtrip 2098(seq id no：31)。未添加肽或仅添加所述肽之一的对照在平板读数器背景附近产生。
[0541]
实施例3
[0542]
lgtrip诱变-第1轮(发光)
[0543]
将用于测序的过夜培养物用于接种培养物(30ul细胞，于3ml培养基+0.1％鼠李糖+0.15％葡萄糖中)。使细胞在25℃下过夜生长20小时。将10ul细胞稀释至250ul被动裂解缓冲液(plb)中，并让其裂解5分钟。将裂解物混合，然后以1∶100稀释至plb裂解缓冲液(0.3x plb，25mm hepes ph 7.5，0.001u/ml rq dna酶1(10ul于990ul中)中。将50ul稀释的裂解物与50ul缓冲液+2um pep263(smtrip9-10二肽)(seq id no：35)(终浓度为1um(饱和二肽浓度))混合。将样品孵育5分钟，在multi+(gmm+)光度计上进行读取，并以lgtrip 2098(seq id no：31)作归一化(表2)。
[0544]
表2.lgtrip变体相较于lgtrip 2098的相对发光度。
[0545][0546]
实施例4
[0547]
lgtrip诱变-第1轮(稳定性)
[0548]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定hislink纯化的lgtrip突变体的稳定性。将lgtrip 2098(seq id no：31)、lgtrip 2098(rh)(seq id no：31)(柱纯化的lgtrip 2098)、#10、#14、#16、#19、#22、#35、#38、#39和#42多肽(表3)以1∶1000稀释至plb裂解缓冲液中(2ul至2ml中)。将100ul的每种样品转移到96孔pcr托盘中的一列孔中。将样品在37℃孵育，并且在不同时间点取出等分试样。热处理完成后，将样品置于冰上。处理完所有样品后，将pcr托盘平衡至室温。将样品混合，然后在plb裂解缓冲液中以1∶100稀释(5ul至495ul缓冲液中)。将50ul每种样品与50ul缓冲剂+2um pep263混合。将平板孵育5分钟，然后在gmm+上进行读取。结果描绘于图3中。稳定性研究将lgtrip 2098(seq id no：31)的位置42鉴定为用于进一步分析的目标位置。
[0549]
表3.lgtrip突变体(相对于lgtrip 2098的突变)的实验命名法。
[0550]
克隆#序列#10q42l#14i44v，e63d，l142q#16l30s#19n17d#22y16c，i56t#35l142q#38t2s，m106k#39e4d，v27a#42e4d
[0551]
实施例5
[0552]
位置42的位点饱和度(发光)
[0553]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以优化lgtrip 2098(seq id no：31)的位置42处的氨基酸的同一性(图4)。为每种样品制备大肠杆菌培养物(3ml)，并使其在lb培养基+100ug/ml氨苄青霉素中于37℃下生长过夜。然后将培养物一式四份以20x浓度稀释(10μl于200μl中)至诱导培养基(lb+氨苄青霉素+0.1％鼠李糖)中。使样品在37℃下生长6
小时。然后用0.3x plb，25mm hepes(ph 7.5)和0.001u/ml rq1 dna酶裂解样品(10μl细胞至250μl裂解缓冲液中)。然后，将50μl裂解物与50μl缓冲液+50μm furimazine+20nm二肽263(seq id no：35)组合。在bmg clariostar光度计上测量样品。将rlu值以lgtrip 2098(seq id no：31)作归一化。(图4)
[0554]
实施例6
[0555]
纯化的lgtrip位置42突变体的37℃稳定性
[0556]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定lgtrip 2098突变体中位置42的稳定性(图5)。将多肽在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每种样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于37℃下孵育。在不同的时间点取出样品，置于冰上，然后让其平衡至室温。将样品在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl每份稀释的样品与50μl的50μm furimazine+6μm的于缓冲液中的pep263(seq id no：35)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。通过非线性回归计算半衰期(图5)。
[0557]
实施例7
[0558]
lgtrip的位点饱和度
[0559]
在本文实施方案的开发过程中进行了实验，以优化lgtrip 2098(seq id no：31)的不同位置处的氨基酸的同一性(图6)。为每种样品制备大肠杆菌培养物(3ml)，并使其在lb培养基+100μg/ml氨苄青霉素中于37℃下生长过夜。然后将培养物一式四份在诱导培养基(lb+氨苄青霉素+0.1％鼠李糖)中稀释至20x浓度(10μl于200μl中)。使样品在37℃下生长6小时。然后用0.3x plb+25mm hepes ph7.5+0.001u/ml dna酶(10μl细胞对250μl裂解缓冲液)裂解样品。然后，将50μl裂解物与50μl缓冲液+50μm furimazine+20nm二肽263(seq id no：35)组合。在bmg clariostar光度计上测量样品。将rlu值以lgtrip 2098(seq id no：31)作归一化(图6)。
[0560]
实施例8
[0561]
lgtrip 3092模板上的突变
[0562]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定相对于lgtrip3092(seq id no：19)变体的各种氨基酸取代的效果(表4)。为每种样品制备大肠杆菌培养物(3ml)，并使其在lb培养基+100ug/ml氨苄青霉素中于37℃下生长过夜。然后将培养物一式四份在诱导培养基(lb+氨苄青霉素+0.1％鼠李糖)中稀释至20x浓度(10μl于200μl中)。使样品在37℃下生长6小时。然后用0.3x plb+25mm hepes(ph 7.5)+0.001u/ml dna酶裂解样品。(10μl细胞对250μl裂解缓冲液)。然后将50μl裂解物与50μl缓冲液+50μm furimazine+2nm二肽263(seq id no：35)组合。将突变体裂解物在plb中以1∶100进一步稀释(5μl于495μl中)。将50μl稀释的裂解物加入到50μl缓冲液+50μm furimazine+6μm pep263或50μl tbs+20μm lcs(furimazine)+6μm pep263(seq id no：35)中。孵育10分钟后，在gmm+上测量样品。将rlu以lgtrip 3092(seq id no：19)作归一化
[0563]
表4.lgtrip变体相较于lgtrip 3092的相对发光度。
[0564][0565]
实施例9
[0566]
lgtrip 3092模板的位点饱和度
[0567]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以优化lgtrip 3092(seq id no：19)的不同位置处的氨基酸的同一性。为每种样品制备大肠杆菌培养物(3ml)，并使其在lb培养基+100ug/ml氨苄青霉素中于37℃下生长过夜。然后将培养物一式四份在诱导培养基(lb+氨苄青霉素+0.1％鼠李糖)中稀释至20x浓度(10μl于200μl中)。使样品在37℃下生长6小时。然后用0.3x plb+25mm hepes(ph 7.5)+0.001u/ml dna酶(10μl细胞至250μl裂解缓冲液中)裂解样品。然后将50μl裂解物与50μl缓冲液+50μm furimazine+2nm二肽263(最终为lnm)组合。在bmg clariostar光度计上测量样品。将rlu值以lgtrip 3092作归一化(图7)。
[0568]
实施例10
[0569]
lgtrip 2098和lgtrip 3092相较于lgbit的稳定性
[0570]
在本文实施方案的开发过程中进行了实验，以比较lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3092(seq id no：33)与lgbit(seq id no：11)中位置的稳定性(图8)。将纯化的lgtrip 2098、lgtrip 3092和lgbit样品在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。将100μl的每种样品等分至200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于37℃下孵育。在不同的时间点取出样品并置于冰上。将样品平衡至室温，然后在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl的每种样品用50μl的于缓冲液中的50μm furimazine+6μm的pep263(seq id no：35)进行稀释。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取(图8)。
[0571]
实施例11
[0572]
lgtrip变体在42℃和60℃下的稳定性
[0573]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较lgtrip变体在42℃和60℃下的稳定性(图9)。将lgtrip变体样品在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。将100μl等分试样加入
200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于42℃或60℃孵育。在不同的时间点取出样品并置于冰上。将样品平衡至室温，然后在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl的每份稀释的样品与50μl的于缓冲液中的50um furimazine+6μm pep263(seq id no：35)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取(图9)。
[0574]
实施例12
[0575]
lgtrip变体对smtrip9和smtrip10的亲和力
[0576]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定各种lgtrip变体对smtrip9样肽和smtrip10样肽的亲和力(图10)。
[0577]
对于smtrip9 pep286(seq id no：37)滴定，将纯化的lgtrip样品在tbs+0.01％bsa+0.005％igepal中稀释至2nm。制备含有tbs+0.01％bsa+0.005％igepal+20μm furimazine+200μm smtrip 10 pep 86(smhitrip；seq id no：25)的测定试剂。将4um的smtrip9 pep286(seq id no：37)加入到测定试剂中，然后在含有furimazine+200μm smtrip10 pep86(hibit；seq id no：15)的测定试剂中连续稀释(500μl对500μl)。将25ul的每份肽滴定液加入25ul稀释的lgtrip溶液中。在10分钟和15分钟时，在平板读数器上读取发光。
[0578]
对于smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)滴定，将纯化的lgtrip样品在tbs+0.01％bsa+0.005％igepal中稀释至2nm。制备含有tbs+0.01％bsa+0.005％igepal+20μm furimazine+4μm smtrip9 pep286(seq id no：37)的测定试剂。然后向测定试剂中加入200um的smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)，然后在含有furimazine+4μm smtrip9 pep286(seq id no：37)的测定试剂中连续稀释(500μl对500μl)。将25ul的每份肽滴定液加入25ul稀释的lgtrip溶液中。在10分钟和15分钟时，在平板读数器上读取发光。
[0579]
实施例13
[0580]
lgtrip变体的稳定性(60℃)
[0581]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较lgtrip变体在60℃下的稳定性(图11)。将纯化的lgtrip突变体在tbs+0.01％bsa稀释至20nm。将100μl的每种样品等分到200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于60℃下孵育，然后在不同时间点取出，置于冰上，平衡至室温，然后在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl的每种稀释的样品与50μl的于缓冲液中的50μm furimazine+6μm pep263(seq id no：35)混合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。使用graphpad prism非线性回归(将单相衰减平台设置为0)计算半衰期。
[0582]
实施例14
[0583]
lgbit和lgtrip变体的动力学特征的比较
[0584]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较各种lgtrip变体与萤光素酶(seq id no：3)和lgbit(seq id no：11)/hibit(smtrip10 pep86)(seq id no：25)双组分系统的动力学特征(图12)。将nanoluc、lgbit、lgtrip 2098(seq id no：31)、lgtrip 3092(seq id no：33)和lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.005％igepal中稀释至20μm。将样品以1∶100(2μl于198μl中)稀释，然后以1∶1000(10μl于
no：19)。使用lgtrip 3092(seq id no：19)作为模板重复筛选，所得克隆是lgtrip 3546(seq id no：51)。
[0595]
实施例17
[0596]
lgtrip克隆的纯化
[0597]
在lb+0.1％鼠李糖+0.15％葡萄糖+amp中诱导50ml lgtrip突变体的培养物。将培养物旋转并重新悬浮在4.5ml hepes(ph7.5)+0.001u/ml dna酶中。加入500ul fastbreak
tm
细胞裂解试剂(promega；v8571)，并将样品在旋转混合器上于4℃下孵育1小时。旋转样品以清除裂解物，并将上清液转移到新管中。使用hislink
tm spin蛋白纯化系统，将500ul hislink
tm
蛋白纯化树脂(promega；v8821)加入到样品中，在旋转混合器上于4℃下孵育2小时，用hislink洗涤/结合缓冲液洗涤，并用洗脱缓冲液洗脱。将载玻片-a-lyzer透析柱用于将缓冲液交换至tbs。
[0598]
实施例18
[0599]
稳定性比较
[0600]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较lgbit(seq id no：11)和lgtrip 2098(seq id no：31)随时间推移的活性的稳定性(图14)。将纯化的lgtrip 2098和lgbit在tbs+0.01％bsa或0.3x plb+25mm hepes ph 7.5中稀释至20nm。将100μl的每种样品等分至200μl薄壁pcr管中。在热循环仪中于37℃下孵育样品，在不同时间点取出，并置于冰上。将样品平衡至室温，然后将每种样品在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl的每份稀释的样品与50μl的50μm furimazine+6μm的于缓冲液中的pep263(seq id no：35)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。使用graphpad prism非线性回归(将单相衰减平台设置为0)计算半衰期。
[0601]
实施例19
[0602]
lgtrip在tbs+最小bsa载体中的稳定性
[0603]
在本文实施方案的开发过程中进行了实验，以确定tbs中的(seq id no：3)、lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)以及最小bsa载体随时间推移的活性的稳定性(图15)。将nanoluc、lgbit和lgtrip 3546在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。将100μl的每种物质等分至200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于60℃下孵育，在不同时间点取出，并置于冰上。将样品平衡至室温，并在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将50μl的每种稀释的样品与50μl的于缓冲液中的50μm furimazine+6μm pep263(seq id no：35)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。使用graphpad prism非线性回归(将单相衰减平台设置为0)计算半衰期。
[0604]
实施例20
[0605]
盐对活性的影响
[0606]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定盐浓度对(seq id no：3)、lgbit(seq id no：11)、lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)的活性的影响(图16)。
[0607]
为了测试盐存在下的活性，将每种酶在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol稀释至
lum，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中进一步稀释至2nm。将4um的pep 263(seq id no：35)加入到lgbit、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(seq id no：31)中并孵育30分钟。从5m的于25mm tris ph 7.5+0.01％tergitol中的nacl开始，为每种样品制备两倍滴定系列。向滴定系列的每种样品中加入10um furimazine，将5ul的每种酶或酶+pep263(seq id no：35)与45ul的每种底物添加剂混合物组合。将平板孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0608]
为了测试长期暴露于盐中的影响，将每种酶稀释至1um，并从5m的于25mm tris ph 7.5+0.01％tergitol中的nacl开始制备两倍滴定系列。将2ul的每种酶加入到198ul的nacl滴定液(每种酶最终为10nm)中。“无”添加剂对照为tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol。将样品孵育26小时。孵育后，将样品以1∶10,000稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(10ul于990中，两次)。在第二次稀释中，将4um pep263(seq id no：35)添加到lgtrip 2098(seq id no：31)、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgbit(seq id no：11)中。将50ul的每种样品与50ul的缓冲液+50um furimazine组合。将平板孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0609]
实施例21
[0610]
尿素对活性的影响
[0611]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定尿素浓度对nanoluc(seq id no：3)、lgbit(seq id no：11)、lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)的活性的影响(图17)。
[0612]
为了测试尿素存在下的活性，将每种酶在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至1um，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中进一步稀释至2nm。将4um的pep263(seq id no：35)加入到lgbit(seq id no：11)、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(seq id no：31)中并孵育30分钟。从10m的于25mm tris ph 7.5+0.01％tergitol中的尿素开始，为每种样品制备了两倍滴定系列。向滴定系列的每种样品中加入10um furimazine，将5ul的每种酶或酶+pep263(seq id no：35)与45ul的每种底物添加剂混合物组合。将平板孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0613]
为了测试长期暴露于尿素的影响，将每种酶稀释至1um，并从10m的于25mm tris ph 7.5+0.01％tergitol中的尿素开始制备两倍滴定系列。将2ul的每种酶加入到198ul的尿素滴定液中(每种酶的终浓度为10nm)。“无”添加剂对照为tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol。将样品孵育26小时。孵育后，将样品以1∶10,000稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(10ul于990ul中，两次)。在第二次稀释中，将4um pep263(seq id no：35)添加到lgtrip 2098(seq id no：31)、lgtrip 3546(seq id no：51)和lgbit(seq id no：11)中。将50ul的每种样品与50ul的缓冲液+50um furimazine组合。将平板孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0614]
结果表明，与lgtrip 3546相比，nanoluc和nanobit更容易被尿素灭活，而lgtrip 2098受尿素影响最小。暴露结果表明，lgtrip 3546、lgtrip 2098和lgbit在用尿素长期处理后恢复了活性，表明这些多肽的活性可能受到污染蛋白质的负面影响，并且这些污染物的变性增强了活性。
[0615]
实施例22
[0616]
ph值对活性的影响
[0617]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定ph值对(seq id no：3)、lgbit(seq id no：11)、lgtrip 2098(wt)(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)的活性的影响(图18)。
[0618]
制备了通用缓冲液，其含有25mm的以下每一种：柠檬酸钠、mes、pipes、hepes、taps和于0.5％tergitol中的硫脲。将缓冲液分成8份20ml的等份，加入naoh或hcl，形成ph滴定系列。
[0619]
为了测试ph值对活性的影响，将每种酶稀释至1um，然后在3ml的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.4nm。向lgbit、lgtrip 2098和lgtrip 3546中加入4um pep263(seq id no：35)。用于每个所测ph缓冲液的测定试剂(表5)(20ul于980缓冲液中的furimazine)。将10ul的每种酶/肽稀释液与50ul的测定试剂组合。将平板孵育3分钟，并在gmm+上进行读取。
[0620]
表5.缓冲液。
[0621][0622]
为了测试长时间暴露于不同ph的影响，将每种酶在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至1um，然后在每种缓冲液中稀释至20nm。t＝0混合样品，然后以1∶10稀释至200mm hepes ph 7.5+0.01％bsa+0.01％tergitol中，并于4℃下储存。t＝8混合样品，然后以1∶10稀释至200mm hepes ph 7.5+0.01％bsa+0.01％tergitol中，于4℃下储存。t＝24混合样品，然后以1∶10稀释至200mm hepes ph 7.5+0.01％bsa+0.01％tergitol中，于4℃下储存。为了进行测定，将lgtrip和lgbit在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+4um smtrip10 pep286(seq id no：35)中以1∶10稀释，并将nanoluc稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中。用40ul缓冲液+40um furimazine稀释40ul的每种样品，孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0623]
结果表明，lgtrip对宽的ph范围具有抗性。
[0624]
实施例23
[0625]
自发光
[0626]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)的自发光。将每种在dpbs+0.01％bsa中稀释至3um。在dpbs+0.01％bsa(300ul对700ul)中制备每种的三倍系列稀释液，并置于96孔板的孔中。平板的最后一行包含furimazine对照(n＝12)。将50ul的每种滴定液(或对照)与50ul缓冲液+50um furimazine组合，孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。与lgbit相比，lgtrip(即，lgtrip 3546)的自发光显著减弱(图19)。
[0627]
实施例24
[0628]
lgtrip与β9/β10二肽的互补作用
[0629]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定β9/β10二肽(例如，pep263)(seq id no：35)与lgtrip 3546(seq id no：51)或lgbit(seq id no：11)形成生物发光复合物的能力。将这种复合物的发光与lgtrip 3546与β9/β10二肽和lgbit与smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)或二肽pep263(seq id no：35)的复合物的发光进行比较(图20)。将smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)和pep263(seq id no：35)在h2o中稀释至2nm。从300nm开始，在tbs+0.01％bsa中制备每种肽的3倍稀释系列。在缓冲液+50um furimazine(试剂)中制备200nm lgtrip 3546和lgbit的溶液。将50ul的每种滴定液与50ul的每种试剂混合，孵育5分钟后读取发光。信号/背景通过用肽依赖性rlu的量除以背景读数来计算。结果表明二肽的kd为hibit的约2-3倍，这是低肽浓度下rlu低的原因。lgbit的背景将信号减弱到背景。lgbit/二肽和lgtrip/二肽的rlu值相等。
[0630]
实施例25
[0631]
lgtrip 2098和lgtrip 3546与smtrip10和smtrip9互补作用的比较
[0632]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以证明由雷帕霉素诱导的smtrip9 pep245结合的fkbp与smtrip10 pep86结合的frb的结合所促进的lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)分别与smtrip10和smtrip9肽的互补作用(图21)。将fkbp-smtrip9 pep245、smtrip10 pep86-frb和lgtrip 3546或lgtrip 2098瞬时转染入hek293细胞(20,000个细胞/孔/96孔板)。将样品暴露于雷帕霉素(以诱导fkbp/frb复合物形成)和10μm furimazine的系列稀释液中，并测量发光。结果表明，smtrip10 pep86对lgtrip 3546的亲和力为对lgtrip 2098的亲和力的约1/10。
[0633]
实施例26
[0634]
各种smtrip10序列的亲和力
[0635]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，在各种smtrip10 pep286(hibit；seq id no：25)序列与lgtrip 3546(seq id no：51)/smtrip9 pep286(seq id no：37)之间形成发光复合物(图22)。将酶在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol(2x制成2nm)中制备系列稀释液(100ul至900ul中)，并将2nm样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol(500ul至4.5ml中)。从100um开始，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um的smtrip9 pep286(seq id no：37)中制备每份smtrip10样肽的2倍稀释系列。将50ul的稀释的lgtrip 3546(seq id no：51)与50ul的肽滴定液组合，并在室温下孵育10分钟。向每种样品中加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine，将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0636]
实施例27
[0637]
反向二肽
[0638]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以比较具有相反β链顺序的二肽(例如，β9-β10对β10-β9)激活互补多肽的能力(图23)。将lgtrip 3546(seq id no：51)和lgtrip 2098(seq id no：31)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备(100ul至900ul中)每种的系列稀释液。将2nm样品以1∶10稀释
至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(500ul至4.5ml中)。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备每种二肽(pep326(seq id no：179)和pep263(seq id no：35))的20um原液。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备(250ul于250ul中)每种肽的2x系列稀释液。将50ul稀释的lgtrip 2098和lgtrip 3546与50ul的每个肽系列组合，并在室温下孵育20分钟。加入100ul的于tbs(20um)中的lcs(活细胞基质；promega目录号n205)，并将样品孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0639]
实施例28
[0640]
由smtrip9(seq id no：23)和smhitrip(seq id no：25)或smbit(seq id no：13)组成的二肽针对smtrip10组分的比较
[0641]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以比较包含smhitrip(seq id no：25)或smbit(seq id no：13)序列的二肽激活互补多肽的能力(图24)。将lgbit、lgtrip 2098和lgtrip 2899(seq id no：364)在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm。将多肽进一步以1∶100稀释到缓冲液+50um furimazine(30ul于3ml中)中。将pep263(seq id no：35)和pep274(seq id no：147)在tbs+0.01％bsa中稀释至5um。将50ul的每份lgbit/lgtrip稀释液与50ul的肽稀释液组合，孵育5分钟，然后在gmm+上读取。
[0642]
实施例29
[0643]
lgtrip 3546的c末端的添加/缺失
[0644]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定对肽标签的c末端添加/缺失和/或相应的添加/缺失对互补作用和发光的影响(图25)。表6列出了示例性测试肽和多肽。
[0645]
表6.肽标签和包含添加/缺失的多肽组分
[0646][0647]
使添加/缺失多肽在50ml培养物中生长，沉淀，并重新悬浮在10ml的100mm hepes ph 7.5+0.001u/ml dna酶中。加入1ml的快速裂解细胞裂解试剂(promega corporation)和
1ml的hislink树脂(promega corporation)，并在旋转摇床上于4℃下孵育3小时。使树脂沉降，并用100mm hepes ph 7.5+10mm咪唑洗涤样品4次。将多肽在500ul hislink洗脱缓冲液中洗脱两次。使用热透析管来平衡至1xtbs。
[0648]
将酶在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，并且在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备系列稀释液(100ul至900ul中)。将2nm样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol(500ul至4.5ml中)中。根据表7，将smtrip9样肽和smtrip10样肽与多肽互补物组合，并在室温下孵育10分钟。加入100ul tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine，孵育10分钟，然后在gmm+上读取。
[0649]
表7.测试多肽/肽组合。
[0650][0651]
实施例30
[0652]
多肽/肽和/或肽/肽重叠
[0653]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定多肽组分与对应于β链的肽之间或两种肽之间的序列重叠(图26)。在此类实验中，多肽组分和肽或者两种肽各自包含对应于基本萤光素酶中的相同氨基酸的氨基酸。
[0654]
将多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备系列稀释液(100ul至900ul中)。将2nm的每份多肽样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(500至4.5ml中)。根据表8，组合多肽和肽，即，50ul的每种lgtrip突变体与50ul的肽。将反应物在室温下孵育10分钟。接着，加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine，将反应物再孵育10分钟，然后在gmm+光度计上进行读取。
[0655]
表8.测试多肽/肽组合。
[0656][0657]
实施例31
[0658]
β9肽的同一性改变了β10肽的亲和力
[0659]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定多肽组分与对应于β链的肽之间或两种肽之间的序列重叠(图27)。这些结果表明β9链肽(smtrip9)的序列可以影响β10链肽(smtrip10)的亲和力。
[0660]
smtrip9滴定
[0661]
将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol稀释至200nm，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备系列稀释液(100ul至900ul中)。将2nm多肽样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(500至4.5ml中)。
[0662]
从20um开始，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+100um的smtrip10 pep86(seq id no：25)中制备每种smtrip9肽的2倍稀释系列。将50ul稀释的lgtrip 3546(seq id no：51)与50ul的每种肽滴定液组合。将反应物在室温下孵育10分钟。加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine，将反应物再孵育10分钟，并在gmm+上进行读取。
[0663]
smtrip10滴定
[0664]
将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备系列稀释液(100ul至900ul中)。将2nm多肽样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(500至4.5ml中)。
[0665]
从100um开始，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um的smtrip9样肽中制备smtrip10 pep86(seq id no：25)的2倍稀释系列。将50ul稀释的lgtrip 3546与50ul的每种肽滴定液组合。将反应物在室温下孵育10分钟。加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％
tergitol+20um furimazine，将反应物再孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0666]
结果(图27)
[0667]
在恒定的smtrip10 ep86(seq id 15)存在的情况下滴定smtrip 9肽变体(图27a)，然后在饱和量的每种smtrip9变体肽存在的情况下滴定smtrip10 pep86。(图27b)这表明smtrip10序列的亲和力可以根据smtrip9序列而改变。实验证明，β9样肽(例如，smtrip9)的同一性可以影响β10样肽(例如，smtrip10)对多肽组分的亲和力。smtrip9 pep293(seq id no：154)和smtrip9 pep294(seq id no：155)序列与lgtrip 3546(seq id no：51)的c末端有重叠，并显示与smtrip9 pep286(seq id no：37)(无重叠)相比，亲和力降低，但smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)对lgtrip 3546的亲和力也降低。smtrip9 pep298(seq id no：158)和smtrip9 pep299(seq id no：159)序列与lgtrip 3546的c末端和smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)的n末端重叠，并降低smtrip10 pep86(hibit)对lgtrip 3546的亲和力。
[0668]
实施例32
[0669]
β10肽同一性对β10肽组分对多肽和β9肽的亲和力的影响。
[0670]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定多肽组分与对应于β链的肽之间或两种肽之间的序列重叠或序列间隙如何影响β10样肽(例如，smtrip10)的亲和力(图28)。将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备系列稀释液(100ul至900ul中)。将2nm多肽样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中(500于4.5ml中)。从100um开始，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um的smtrip9 pep286(seq id no：37)中制备每种smtrip10样肽的2倍稀释系列。将50ul稀释的lgtrip 3546与50ul的每种肽滴定液组合。将反应物在室温下孵育10分钟。加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine，将反应物再孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0671]
实施例33
[0672]
在各种饱和β10样肽存在的情况下，测量β9样肽的亲和力
[0673]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定在恒定浓度的各种β10样肽(例如，smtrip10)和lgtrip 3546(seq id no：51)存在的情况下，β9样肽(例如，smtrip9)的亲和力如何受到影响(图29)。将多肽组分lgtrip 3546在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至200nm，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol(2x制成2nm)中制备系列稀释液(100ul至900ul中)，并将2nm样品以1∶10稀释至tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol(500ul至4.5ml中)。从20um开始，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+100um的每种smtrip10样肽中制备每种β9样肽(smtrip9 pep286(seq id no：37)和smtrip9 pep287(seq id no：148))的2倍稀释系列。将50ul稀释的lgtrip 3546(seq id no：51)与50ul的每种肽滴定液组合。将反应物在室温下孵育10分钟，加入100ul的tbs+0.01％bsa+0.01％tegitol+20um furimazine，将反应物再孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。
[0674]
实施例34
[0675]
构建体取向在hek293细胞中对促进性互补作用的影响
[0676]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定相互作用元件(frb和fkbp)相对于肽标签的取向对与lgtrip 3546(seq id no：51)的互补作用的影响(图30)。大于100,
000rlu的未诱导信号表示背景污染，这会降低明显的响应倍数。
[0677]
使hek293细胞在37℃和5％co2下生长过夜。使用fugene方案，用每孔3ug dna(smtrip9 pep245-fkbp、fkbp-smtrip9 pep245、smtrip10 pep86-fkbp、fkbp-smtrip10 pep86、smtrip9 pep245-frb、frb-smtrip9 pep245、smtrip10 pep86-frb或frb-smtrip10 pep86构建体)转染细胞。将细胞在dpbs清洗。加入1ml dpbs，将细胞在-80c冷冻约10分钟，并在室温下解冻。通过离心10分钟清洁裂解物，将其在tbs+200nm lgtrip(+/-30nm rap)中以1∶10稀释，并在室温下孵育30分钟。将50ul的每种样品与50ul的tbs+20um furimazine组合，并在5分钟时读取发光。
[0678]
实施例35
[0679]
构建体取向在大肠杆菌中对促进性互补作用的影响
[0680]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以确定相互作用元件(frb和fkbp)相对于肽标签的取向对与lgtrip 3546(seq id no：51)的互补作用的影响(图31)。
[0681]
在lb+100ug/ml氨苄青霉素中制备每种构建体的过夜培养物。将培养物以1∶100稀释到诱导培养基(lb+amp+0.1％鼠李糖+0.15％葡萄糖)中，使细胞在25℃下生长20小时，并用plb裂解缓冲液(0.3x plb，25mm hepes ph 7.5，0.001u/ul rq1 dna酶；250ul的细胞，750ul plb)裂解15分钟。将细胞5倍稀释到不依赖于co2的培养基+10％fbs中，所述培养基含有200nm lgtrip 3546和+/-30nm rap。将反应物在室温下孵育30分钟，与等体积的nanoglo+50um furimazine组合(50ul对50ul)，孵育5分钟，然后在gmm+上进行读取
[0682]
实施例36
[0683]
各种β10样肽的kd测定
[0684]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以用lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)测量各种β10样肽的kd值(图32)。将20um smtrip9 pep286(seq id no：37)在tbs+0.005％+0.01％bsa中制成溶液。制备smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)、smtrip10 pep288(seq id no：149)、smtrip10 pep289(seq id no：150)和smtrip10 pep290(seq id no：151)的3x系列稀释液(150ul于350ul tbs+0.01％bsa+286溶液中，从100um开始)。在tbs+0.01％bsa中制备20nm lgtrip 3546溶液，然后在tbs+0.01％bsa中以1∶10稀释。将25ul的每种肽溶液与2.5ul lgtrip 3546溶液组合。将反应物孵育10分钟，加入28ul tbs+20um lcs(promega目录编号n205)，孵育10分钟，然后在gmm+上读取。该实验表明，与smtrip10 pep86(hibit)相比，在seq id no：25的n末端添加“v”或“vs”增加了smtrip10样肽的亲和力。
[0685]
实施例37
[0686]
多肽/β9分裂点对萤光素酶光输出的影响
[0687]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以分析在多肽组分与smtrip9样肽之间移动分裂位点的影响(图33)。将具有各种c末端延伸或缺失的多肽组分在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并向每种组分中加入50um smtrip10 pep86(seq id no：25)。将smtrip9 pep286(seq id no：37)加入至在smtrip10pep86+lgtrip溶液中为10um，并将样品孵育10分钟。以1∶1加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂，并读取发光。所有合成的smtrip9肽都含有n末端溶解度标签sswkr。
[0688]
实施例38
[0689]
lgtrip c末端与smtrip9 pep286之间的序列间隙和重叠对萤光素酶光输出的影响
[0690]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以分析多肽组分与smtrip9样肽之间的间隙和/或重叠的影响(图34)。将具有各种c末端延伸或缺失的多肽组分在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并向每种组分中加入50um smtrip10 pep86(seq id no：25)。将10um的smtrip9 pep286加入到smtrip10 pep86+lgtrip溶液中，并将反应物孵育10分钟。以1∶1加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂，并读取发光。
[0691]
实施例39
[0692]
smtrip9与lgtrip 3546和smtrip10 pep 86(hibit)的序列间隙和重叠对萤光素酶光输出的影响
[0693]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以分析smtrip9样肽与多肽组分(例如，lgtrip)和/或smtrip10样肽之间的间隙和/或重叠的影响(图35)。将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并向每种中加入50um smtrip10 pep86(seq id no：25)。在smtrip10 pep86+lgtrip溶液中加入smtrip9 pep286(seq id no：37)至10um，并将样品孵育10分钟。以1∶1加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂，并读取发光。所有合成的smtrip9肽都含有n末端溶解度标签，sswkr。
[0694]
实施例40
[0695]
smtrip9肽长度变体的生化分析(kd和bmax)
[0696]
在本文的实施方案的开发过程中进行实验，以分析不同长度的smtrip9肽与lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：15)的互补作用(图36-37)。
[0697]
smtrip9滴定(图36)
[0698]
将lgtrip 3546(seq id no：51)多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备100um smtrip10 pep86。将20um的每种smtrip9样肽溶液加入到smtrip10 pep86溶液中。使用smtrip10 pep86溶液作为稀释剂，制备每种smtrip9肽溶液的2x系列稀释液。将肽稀释液和lgtrip 3546溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂(1∶1)，并检测发光。
[0699]
hibit(smtrip10)滴定(图37)
[0700]
将lgtrip 3546(seq id no：51)多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。对于待测试的每一种smtrip9样肽，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备20um smtrip9样肽溶液。将100um的smtrip10 pep86溶液加入到每种smtrip9样肽溶液中。使用每种smtrip9样肽溶液作为稀释剂，制备smtrip10 pep86的2x系列稀释液。将肽稀释液和lgtrip 3546溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂(1∶1)，并检测发光。
[0701]
实施例41
[0702]
smtrip9 pep286点突变体的生化亲和力和bmax
[0703]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以分析smtrip9 pep286(seq id no：37)点突变体对lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)的亲和力。将lgtrip 3546多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备100um smtrip10 pep86。将20um的每种smtrip9样肽溶液加入到smtrip10 pep86溶液中。使用smtrip10 pep86溶液作为稀释剂，制备每种smtrip9样肽溶液的2x系列稀释液。将等体积的肽稀释液和lgtrip溶液组合并孵育10分钟。加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂(1∶1，体积∶体积)，并检测发光(图38)以测定每种smtrip9样肽的kd和bmax。
[0704]
实施例42
[0705]
smtrip9溶解度标签对生化亲和力和bmax的影响
[0706]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以分析具有备选溶解度标签的smtrip9样肽的亲和力(图39)。将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备100um smtrip10/pep86溶液。在smtrip10pep86溶液中制备每种smtrip9样肽的20um溶液。使用smtrip10pep86溶液作为稀释剂，制备每种smtrip9样肽的2x系列稀释液。将等体积的肽稀释液与lgtrip 3546溶液组合，并将反应物孵育10分钟。将tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂以1∶1 体积∶体积加入到反应中，孵育10分钟后读取发光。
[0707]
实施例43
[0708]
c末端延伸序列
[0709]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以分析具有c末端序列延伸的smtrip9样肽的亲和力(图40)。
[0710]
smtrip9肽滴定
[0711]
将lgtrip 3546(seq id no：51)多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备100um smtrip10 pep86。将20um的每种smtrip9样肽溶液加入到smtrip10 pep86溶液中。使用smtrip10 pep86溶液作为稀释剂，制备每种smtrip9样肽溶液的2x系列稀释液。将肽稀释液和lgtrip 3546溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂(1∶1)，并检测发光。
[0712]
smtrip10 pep 86(hibit)滴定
[0713]
将lgtrip 3546(seq id no：51)多肽在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。对于待测试的smtrip9样肽，在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备20um smtrip9样肽溶液。将100um的smtrip10 pep86(seq id no：25)溶液加入到每个smtrip9样溶液中。使用每种smtrip9样肽溶液作为稀释剂，制备smtrip10 pep86的2x系列稀释液。将肽稀释液和lgtrip 3546溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine检测试剂(1∶1)，并检测发光。
[0714]
实施例44
[0715]
在krx大肠杆菌裂解物中使用frb-smtrip10变体和融合有fkbp的smtrip9 pep245测量frb-fkbp促进性互补作用
[0716]
使frb-smtrip10变体、fkbp-smtrip9 pep245和smtrip9 pep245-fkbp的过夜培养
物在来自甘油原液的lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长。将细胞在lb+0.15％葡萄糖+0.1％鼠李糖+amp中以1∶100稀释，并在25℃下振荡20小时。将培养物在plb中以1∶4稀释，并在室温下孵育15分钟以裂解细胞。将smtrip9/smtrip10肽组合以1∶1(体积∶体积)混合。将混合物以1∶5稀释至含有或未含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip 3546(seq id no：51)中，并将反应物在室温下孵育30分钟。将每种反应物与50ul的缓冲液+50um furimazine组合，并在5分钟时测量发光。诱导倍数(+rap信号/-rap信号)的结果如图41所示。frb-smtrip10变体肽构建体具有不同的接头长度、接头含量(有或没有丙氨酸-异亮氨酸)，并且含有或缺少六组氨酸标签。
[0717]
实施例45
[0718]
在hek裂解物中使用frb-smtrip10变体和fkbp融合的smtrip9 pep245测量frb-fkbp的促进性互补作用
[0719]
使frb-smtrip10变体、fkbp-smtrip9 pep245和smtrip9 pep245-fkbp的过夜培养物在37℃和5％co2下生长。使用fugene方案，用1ug dna(fkbp或frb构建体)/孔转染细胞。将细胞在1ml dpbs中洗涤。加入1ml dpbs，将培养物在-80℃冷冻10分钟。将培养物在室温下解冻以裂解细胞。通过离心10分钟清洁裂解物，并在plb中稀释2倍。将smtrip9/smtrip10肽组合以1∶1(体积∶体积)混合。将混合物以1∶5稀释至含有或未含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip 3546(seq id no：51)中，并将反应物在室温下孵育30分钟。将每份反应物与50ul的缓冲液+50um furimazine组合，并在5分钟时测量发光。诱导倍数(+rap信号/-rap信号)的结果如图42所示。frb-smtrip10变体肽构建体具有不同的接头长度、接头含量(有或没有丙氨酸-异亮氨酸)，并且含有或缺少六组氨酸标签。
[0720]
实施例46
[0721]
在krx大肠杆菌裂解物中，使用frb-smtrip10 pep86(hibit)/smtrip10 pep289(vs-hibit)和在两个方向上与fkbp融合的smtrip9序列来测量frb-fkbp促进性互补作用
[0722]
使frb-smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)或frb-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)和与fkbp融合的smtrip9样肽序列的过夜培养物在来自甘油原液的lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长。将细胞在lb+0.15％葡萄糖+0.1％鼠李糖+amp中以1∶100稀释，并在25℃下振荡20小时。将培养物在plb中以1∶4稀释，并在室温下孵育15分钟以裂解。将smtrip9/smtrip10肽组合以1∶1(体积∶体积)混合。将混合物以1∶5稀释至含有或未含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip 3546(seq id no：51)中，并将反应物在室温下孵育30分钟。将每种反应物与50ul的缓冲液+50um furimazine组合，并在5分钟时测量发光。结果如图43-47所示。
[0723]
实施例47
[0724]
在hek裂解物中使用frb-smtrip10 pep86(hibit)/smtrip10 pep289(vs-hibit)和在两个方向上与fkbp融合的smtrip9序列来测量frb-fkbp促进性互补作用
[0725]
使frb-smtrip10 pep86(hibit；seq id no：25)或frb-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)和与fkbp融合的smtrip9样肽序列的过夜培养物在37℃和5％co2下生长。使用fugene方案，用1ug dna(fkbp或frb构建体)/孔转染细胞。将细胞在1ml dpbs中洗涤。加入1ml dpbs，并将培养物在-80℃下冷冻10分钟。将培养物在室温下解冻以裂解细
id no：25)。在smtrip10 pep86溶液中制备每种smtrip9样肽的20um溶液。使用smtrip10 pep86溶液作为稀释剂，制备每种smtrip9样肽的2x系列稀释液。将肽稀释液与lgtrip 3546(seq id no：51)溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。以1∶1加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine(fz)检测试剂。在10分钟时读取发光。
[0737]
smtrip10 pep86(hibit)滴定
[0738]
将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备20um的smtrip9样肽溶液。将smtrip10 pep86在每种smtrip9样肽溶液中加入到100um。使用smtrip9样肽溶液作为稀释剂，制备每种smtrip10 pep86(seq id no：25)的2x系列稀释液。将肽稀释液与lgtrip 3546(seq id no：51)溶液以1∶1组合，并孵育10分钟。以1∶1加入tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20um furimazine(fz)检测试剂。在10分钟时读取发光。
[0739]
实施例51
[0740]
合成smtrip9肽的溶解度
[0741]
除非另有说明，否则合成肽由peptide2.0合成，其中末端封闭(n末端乙酰化和c末端酰胺化)。将肽溶解在无核酸酶的水中至约1mm，并在4℃下在旋转器上混合30分钟。以最高速度离心10分钟后，将肽在水中以1∶50稀释，并在nanodrop上定量。将肽于-20℃下储存直至使用。如果肽在3次冷冻/解冻循环后仍保留在溶液中，则认为肽是可溶的，其中将肽在22℃水浴中解冻，保持在4℃，并在-20℃下冷冻。合成肽的溶解度如图77所示。
[0742]
实施例52
[0743]
环形排列的lgbit
[0744]
smtrip9/pep286对smtrip10 pep 86(hibit)-lgtrip 3546融合物的亲和力和和bmax
[0745]
产生包含与lgtrip 3546(seq id no：51)的前面融合的smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)序列的融合多肽，并进行实验以监测smtrip10 pep86 hibit-lgtrip融合物与smtrip9 pep286(seq id no：37)的复合物形成和发光(图78)。
[0746]
使过夜培养物在来自甘油原液的lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长。将细胞在lb+0.15％葡萄糖+0.1％鼠李糖+amp中以1∶100稀释，并在25℃下振荡20小时。在fastbreak中裂解800μl培养物，并使用hislink方案纯化每种smtrip10 pep86-lgtrip融合物。从10um开始，在含0.2nm smtrip10 pep86-lgtrip融合物(atg 3745(seq id no：211)或atg 3746(seq id no：213))的tbs+0.01％tergitol+0.01％bsa中制备2倍smtrip9 pep286(seq id no：37)系列稀释液。将反应物在室温下预孵育10分钟。以1∶1(体积∶体积)向样品中加入tbs+0.01％tergitol+0.01％bsa和20um furimazine(fz)。在10分钟时，在光度计上读取发光。
[0747]
smtrip9/pep 759对各种smtrip10 pep 86(hibit)-lgtrip 3546融合物的亲和力
[0748]
使用1x tbs+0.01％bsa，从诱导的细胞培养物的沉淀物中，将沉淀物重悬于原始培养体积的1/10中(例如，将50ml培养物重悬于5ml中)。使用100份fast缓冲液、10份不含rna酶的rq1 dna酶和1份1m dtt(例如，650μl fast缓冲液+65μl不含rna酶的rq1 dna酶，和6.5μl 1m dtt或同等比例)制备裂解缓冲液。将1份裂解缓冲液加入到15ml
管中的9份细胞悬浮液(例如33.3μl裂解缓冲液+300ul混悬液)中。在混合(使用旋转振荡器)的同时在4℃下孵育30分钟。在1x tbs+0.01％bsa中制备pep 759的4μm溶液。一式三份将50ul的4μm pep759加入到96孔板中的50μl的每种裂解物中。将50μl的每种裂解物一式三份分别与50μl的1x tbs+0.01％bsa缓冲液混合。通过将100份缓冲液与1份furimazine(例如10ml缓冲液+100ulfurimazine)混合制备试剂。向每个孔中加入100ul试剂。使用multi仪动力学循环测量发光。约29分钟后比较发光测量值。将具有pep759的样品的发光读数除以没有pep759的相同裂解物的相应测量值。结果如图78b所示。使用两批培养物来产生数据：一批来自50ml培养物的诱导(右侧，atg-4808至atg-4632并包括atg-4632)，另一批来自3ml培养物的诱导(左侧，从atg-4815开始至atg-3746并包括atg-3746)。在两个测试中都存在一些构建体(atg-2623、atg-3745、atg-3746、atg-4632)。
[0749]
实施例53
[0750]
去垢剂滴定
[0751]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定各种去垢剂对nanoluc(seq id no：3)、lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)与二肽pep263(seq id no：35)的复合物的影响。
[0752]
暴露实验
[0753]
将500ul的20mm sds或2mm cdta或5％tergitol加入到深孔板中。在tbs+0.01％bsa中制备每种去垢剂的3x系列稀释液(150ul于350ul中)。将100ul的每种稀释液与100ul的2nm nanoluc、lgbit或lgtrip组合，并将样品孵育18小时。将样品在tbs+0.01％bsa中以1∶100稀释(5ul于495ul中)。一式三份将50ul的每种样品与50ul的tbs+0.01％bsa+20um furimazine(fz)(对于nanoluc)或tbs+0.01％bsa+20um furimazine(fz)+2um pep263(对于lgbit和lgtrip)组合。加入试剂后3分钟，在gmm+上读取样品的发光。对去垢剂的长期暴露对lgbit、lgtrip 3546和nanoluc的结果如图79所示。
[0754]
活性实验
[0755]
在tbs+0.01％bsa中制备20ml 20um fz。将2ml 20mm sds和2mm cdta和5％tergitol加入到深孔板中。向每种样品(8ul)中加入20um fz。在20um fz溶液中制备每种去垢剂的2x系列稀释液(1ml比1ml)。制备了于tbs+0.01％bsa中的400pm的nanoluc溶液。制备了于tbs+0.01％bsa中的400pm的lgbit+1um pep 263(seq id no：35)溶液。制备了于tbs+0.01％bsa中的400pm的lgtrip3546(seq id no：51)+1um pep263(seq id no：35)溶液。将50ul的每种酶溶液与50ul的去污剂滴定液组合，置于光度计中，在室温下孵育3分钟后进行读取。在去垢剂存在的情况下的lgbit、lgtrip和nanoluc活性结果如图80所示。
[0756]
实施例54
[0757]
frb-fkbp促进的复合物形成的可逆性
[0758]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以证明生物发光复合物形成的可逆性。从hek293细胞的t75生长瓶中吸取培养基。用10mldpbs洗涤细胞，并通过加入3ml tryple express胰蛋白酶进行胰蛋白酶处理。在37℃下孵育3分钟后，向烧瓶中加入10ml生长培养基(dmdm+10％fbs)，用移液管混合细胞。将细胞以200rpm沉淀5分钟。将培养基吸出并用新
鲜培养基替换。将细胞在t20细胞计数仪上计数，并稀释至200,000个细胞/ml。向六孔板的每个孔中加入3ml细胞悬浮液。使细胞在37℃和5％co2下生长过夜。为了转染细胞，将每种构建体的dna稀释至100ng/ul的浓度，并且对于每种构建体(fkbp-smbit、frb-lgbit、frb-smtrip10 pep86(hibit)、fkbp-smtrip9 pep245)，向终体积为155ul的optimem中加入3.3ug dna。向稀释的dna中加入9.9ul的fugenehd，并孵育15分钟。然后将150ul的每种dna复合物加入到铺在6孔板中的细胞中。使细胞在37℃和5％co2下生长过夜。抽吸培养基后，用dpbs(life technologies目录号14190)洗涤细胞一次，然后在-80℃下冷冻在新鲜的1ml dpbs中。然后将样品解冻以溶解细胞。将nanobit(fkbp-smbit+frb-lgbit)和nanotrip(frb-smtrip10 pep86(hibit)+fkbp-smtrip9 pep245+200nm纯化的lgtrip 3546(seq id no：51))的frb和fkbp构建体组合，并与30nm雷帕霉素一起孵育30分钟。从10mm开始，在dmso中制备fk506的稀释系列。在dmso中进行3倍系列稀释(30ul至70ul中)。将200ul的每种frb-fkbp组合等分到96孔pcr托盘中的8个孔中。加入2ul fk506稀释系列后，将每种样品在37℃孵育6小时。将50ul的每种样品与50ul的tbs+0.01％bsa+20um ffurimazine(fz)组合，孵育3分钟，并在gmm+上进行读取。结果如图81所示。
[0759]
实施例55
[0760]
用smtrip10肽进行lgtrip/smtrip9滴定
[0761]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以分析利用各种smtrip10肽进行的lgtrip 3546(seq id no：51)和smtrip9 pep286(seq id no：37)的滴定。将数据以smtrip10 pep86(hibit)值作归一化。smtrip10 pep86(hibit)为smhitrip10(seq id no：25)。
[0762]
将肽原液在水中稀释至250um。在optimem+10％fbs中制备了smtrip9 pep286(seq id no：37)溶液(在终反应中为10um)。在含有smtrip9 pep286的optimem溶液中对每种smtrip10肽进行2倍系列稀释。smtrip10肽的最高浓度为15um(反应中的终浓度)。在optimem+10％fbs中制备lgtrip 3546(seq id no：51)的10x原液(1nm)，并将10ul加入到90ul的每种smtrip10肽滴定液中。将样品在设定为500rpm的轨道振荡器上孵育30分钟。制备2ml检测试剂(optimem+10％fbs+20ul 1m dtt+80ul的5mm furimazine)。将10ul检测试剂添加到每一lgtrip 3546：肽溶液中，并将平板置于轨道振荡器上。在5分钟和10分钟时读取板。smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)和smtrip10 pep289(seq id no：150)被用作4个板中每一个的对照。结果如图82-图83所示。
[0763]
实施例56
[0764]
antares构建体
[0765]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以在antares bret系统的背景中显示本文所述的互补系统，所述antares bret系统包含一种或多种与本文所述系统的组分连接的cyofp荧光蛋白。
[0766]
使用hislink树脂纯化样品：加入10ml的100mm hepes ph 7.5、1ml的fastbreak细胞裂解试剂和50u dna酶，将样品置于旋转混合器上进行45分钟，然后以7,000rpm旋转20分钟。接着，向每种样品中加入1ml的hislink树脂，将样品用5ml结合洗涤缓冲液洗涤3次，用300ul洗脱缓冲液进行洗脱，并针对tbs透析(2小时，更换tbs，再进行2小时)。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至100nm，然后通过将4ul添加至996ul tbs+0.01％bsa中进一步稀释至
0.4nm。通过将300ul转移至700ul来制备3倍系列稀释液。在tbs+0.01％bsa中制备10ml的2um二肽pep263(seq id no：35)。在tbs+0.01％bsa中制备10ml的400pm smtrip10 pep86(seq id no：25)。制备10ml的1um smtrip9 pep286(seq id no：37)和10umsmtrip10 pep86。将50ul的每种酶与tbs或二肽溶液组合(将所有样品以一式三份加至两个平板上)。将与lgbit和lgtrip 3546的antares融合物样品与smtrip9 pep286+smtrip10 pep86组合。将样品在室温下孵育1小时。将100ul的20um furimazine加入到tbs+0.01％bsa+2mm att中。将平板孵育3分钟，然后在gmm+上进行读取。结果如图84-85所示。
[0767]
实施例57
[0768]“暗”二肽272
[0769]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以在0.1nm pep 263存在的情况下，将具有“暗”二肽272(seq id no：146)的滴定系列与lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)进行比较。将lgbit和lgtrip 3456在tbs+0.01％bsa和+/-0.4nm的二肽pep263(seq id no：35)中稀释至200nm，并孵育10分钟。从40nm(在该浓度下，lgbit在高浓度下表现出抑制作用，因此kd值无法计算；对于lgbit，从4nm pep272开始产生新的滴定系列，以获得kd值)开始制备二肽pep272的3倍稀释系列。将50ul的肽稀释系列加入测定板中，然后加入50ul的lgbit和lgtrip 3546稀释液。将样品在室温下孵育1小时。加入100ul的nanoglo+50um furimazine(fz)后，将平板孵育5分钟，在gmm+上读取发光。结果如图86所示。
[0770]
实施例58
[0771]
暗二肽pep272与pep273的比较
[0772]
将lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)在含有+/-0.4nm的二肽pep263(seq id no：35)或+/-0.4nm二肽pep264(seq id no：299)的tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，并孵育10分钟。使用二肽pep263稀释液作为pep272的稀释液以及二肽pep264稀释液作为pep273的稀释液，从40nm开始制备二肽pep272(seq id no：146)和二肽pep273(seq id no：298)的3倍稀释液系列。将50ul的lgbit和lgtrip 3546稀释液与50ul的pep272/273滴定系列组合，在室温下孵育2小时。在加入100ul的缓冲液+50um fz后，将平板在室温下孵育5分钟，并在gmm+上读取发光。结果如图87所示。
[0773]
实施例59
[0774]
darkbit pep167
[0775]
制备含有200nm lgbit(seq id no：11)和lgtrip 3546(seq id no：51)的溶液。将0.2nm smtrip10 pep86(smhitrip；seq id no：25)添加到lgbit溶液中，并将1um的smtrip9 pep286(seq id no：37)和200nm的smtrip10 pep86添加到lgtrip 3546溶液中。从12um开始，在tbs+0.01％bsa中制备暗点(dark bit)(pep167)(seq id no：300)滴定液。将50ul的暗点滴定液与50ul的lgbit或lgtrip3546/pep167稀释液组合，并孵育1小时。加入100ul的缓冲液+50um furimazine(fz)后，将平板孵育10分钟，并在gmm+上读取发光。结果如图88所示。
[0776]
实施例60
[0777]
smtrip9 pep435/434变体在大肠杆菌裂解物中的frb-fkbp促进性互补作用
[0778]
使培养物在来自甘油原液的lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜，并将细胞在lb+0.15％葡萄糖+0.1％鼠李糖+amp中以1∶100稀释。在25℃下振荡20小时后，将细胞在plb中
以1∶4稀释，并在室温下孵育15分钟以裂解。将目标smtrip9/smtrip10肽组合的裂解物以1∶1体积∶体积混合，并在含有或未含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip 3546(seq id no：51)中以1∶5稀释。将样品在室温下孵育30分钟，并与含有50um furimazine的缓冲液以1∶1(体积∶体积)组合。在5分钟时读取发光。结果如图89-90所示。
[0779]
实施例61
[0780]
frb-fkbp促进性互补作用
[0781]
smtrip9 pep435和pep434变体在hek裂解物中的frb-fkbp促进性互补作用
[0782]
将600,000个细胞添加到dmem+1％fbs中的6孔板的每个孔中。使细胞在37℃和5％co2下生长过夜，并使用fugene方案用每孔3μg dna(fkbp或frb构建体)进行转染。在37℃和5％co2下孵育过夜后，用dpbs洗涤细胞。抽吸后，向每个孔中加入1ml新鲜dpbs，并将平板在-80℃下冷冻约10分钟。将平板在室温下解冻以裂解细胞，通过离心10分钟并除去上清液来清洁裂解物。将裂解物在plb中稀释2倍，并将目标smtrip9/smtrip10肽组合以1∶1(体积∶体积)混合。然后将混合物在含有或未含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip 3546(seq id no：51)中以1∶5稀释。将样品在室温下孵育30分钟，并与含有50um furimazine的缓冲液以1∶1 体积∶体积组合。在5分钟时读取发光。结果如图91所示。
[0783]
利用smtrip9s 823和840进行的frb-fkbp测定筛选
[0784]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10s的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中过夜生长。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。在25℃下振荡诱导培养物约20小时。用444nm lgtrip 3546，90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升测定试剂添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nanoglo加入到测定板孔中，并且5分钟后在glomax上读取发光。结果如图92所示。
[0785]
实施例62
[0786]
pep434和pep435变体kd的测定
[0787]
将lgtrip 3546(seq id no：51)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm。用100um smtrip10 pep86(seq id no：25)在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中制备每种smtrip9样肽的20um溶液。使用100um smtrip10 pep86溶液作为稀释剂，对每种smtrip9样肽进行2倍系列稀释。将肽稀释液与lgtrip 3546溶液以1∶1(体积∶体积)组合并孵育10分钟。将tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+20umfurimazine(fz)检测试剂以1∶1 体积∶体积加入到lgtrip/肽溶液中，并在10分钟时读取发光。结果如图93所示。
[0788]
实施例63
[0789]
使用lgtrip 3546检测加有crispr标签的二肽gapdh
[0790]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以证明lgtrip 2098(seq id no：31)和lgtrip 3546(seq id no：51)均可用作生物发光试剂，用于检测内源性加标签的gapdh(加有smtrip 10 pep 86(smhitrip；seq id no：25)标签的)。
[0791]
使用crispr/cas9编辑hela细胞，以表达与指定的肽c末端融合的内源性gapdh。将经编辑的hela细胞以约20,000个细胞/孔的密度接种在100μl的dmem/10％fbs中的纯白色
测定板中。然后将细胞在100μl含有hibit裂解缓冲液和200nm lgtrip的hibit裂解缓冲液(promega)存在的情况下孵育10分钟。使用discover记录发光，积分时间为0.5s。根据制造商的方案，使用glo luminescent细胞活力测定(promega)来测定相对细胞数。数据表示为以细胞数作归一化的平均相对光单位，其中可变性表示为标准偏差。
[0792]
结果如图94所示。
[0793]
实施例64
[0794]
smtrip9的位点饱和筛选
[0795]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以鉴定smtrip9中的有益氨基酸取代。
[0796]
遗传位点饱和文库是使用在smtrip9中指定位置处具有随机密码子的引物产生的。将krx大肠杆菌用混合的遗传变体转化，铺在lb+氨苄青霉素琼脂上，并在37℃下生长过夜。挑取单个菌落，并放入含lb+100ug/ml氨苄青霉素的96孔培养板中。使培养物在37℃下振荡生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。在25℃下振荡诱导培养物约20小时。通过将444nm lgtrip(seq id no：51)、90倍稀释的frb-vs-hibit培养物和+/-35nm雷帕霉素加入到含有0.3x被动裂解缓冲液(plb)和dna酶的25mm hepes中来制备测定试剂。将90微升测定试剂添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的缓冲液加入到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。
[0797]
结果如图100-112所示。
[0798]
实施例65
[0799]
smtrip9 pep435/434变体在大肠杆菌裂解物中的frb-fkbp促进性互补作用
[0800]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10s的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中过夜生长。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。在25℃下振荡诱导培养物约20小时。将培养物在plb中以1∶4稀释，并在室温下孵育15分钟以裂解细胞。对于目标组合，将smtrip9和smtrip10稀释液以1∶1(体积∶体积)混合。将混合物以1∶5稀释至含有或不含30nm雷帕霉素的plb+200nm lgtrip中。将样品在室温下孵育30分钟。将50微升含有50um furimazine的缓冲液加入到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。结果如图113-115所示。
[0801]
实施例66
[0802]
利用组合smtrip9变体的frb-fkbp促进性互补测定筛选
[0803]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10s的培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中过夜生长。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。在25℃下振荡诱导培养物约20小时。用444nm lgtrip，90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素来制备plb测定试剂。将90微升测定试剂添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul加入到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的缓冲液加入
到测定板孔中，并在5分钟后在光度计上读取发光。结果如图116-122所示。
[0804]
实施例67
[0805]
smtrip9合成肽的kd和bmax的测定
[0806]
将lgtrip在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并将pep289添加至25um。该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1体积∶体积的比例加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)以及vs-hibit的滴定。结果如图123-130所示。
[0807]
实施例68
[0808]
合成smtrip9肽的溶解度测定
[0809]
除非另有说明，合成肽从peptide2.0开始排序，其中末端封闭(n末端乙酰化和c末端酰胺化)。将肽溶解在无核酸酶的水中，并在-20℃储存。将原液在22℃水浴中解冻，离心，并保持在4℃直至使用。结果如图131所示。
[0810]
实施例69
[0811]
smtrip9合成肽与pep289的生化共滴定
[0812]
将lgtrip在含有0.3x被动裂解缓冲液(plb)和dna酶的25mm hepes中稀释至200nm。将smtrip9肽和pep289稀释至100um，并在plb中连续共滴定6倍。将样品在室温下孵育10分钟。将大多数浓缩样品在plb中稀释50-100倍。将样品一式三份等分至测定板中，并以1∶1 体积∶体积与缓冲液+50um furimazine混合。10分钟后在clariostar或仪上读取发光。结果如图132-133所示。
[0813]
实施例70
[0814]
smtrip9和smtrip 10合成肽的生化共滴定
[0815]
将lgtrip在含有0.3x被动裂解缓冲液(plb)和dna酶的25mm hepes中稀释至200nm。将smtrip9和smtrip10肽稀释至100um，并在plb中连续共滴定6倍。将样品在室温下孵育10分钟。将大多数浓缩样品在plb中稀释50-100倍。将样品一式三份等分至测定板中，并以1∶1 体积∶体积与缓冲液+50um furimazine混合。10分钟后在clariostar或仪上读取发光。结果如图134所示。
[0816]
实施例71
[0817]
pep521和替代smtrip 10合成肽的生化共滴定
[0818]
将lgtrip在含有0.3x被动裂解缓冲液(plb)和dna酶的25mm hepes中稀释至200nm。将smtrip10肽和pep521稀释至100um，并在plb中连续共滴定6倍。将样品在室温下孵育10分钟。将大多数浓缩样品在plb中稀释50-100倍。将样品一式三份等分至测定板中，并以1∶1 体积∶体积与缓冲液+50um furimazine混合。10分钟后在clariostar或仪上读取发光。结果如图135所示。
[0819]
实施例72
[0820]
从lgtrip 3546模板中去除链(纯化)
[0821]
使来自每个克隆的单个菌落在lb+100ug/ml氨苄青霉素中于37℃下生长18小时。将过夜培养物以1∶100稀释到50ml的terrific液体培养基+0.1％鼠李糖+100ug/ml氨苄青霉素中。在15℃下生长48小时后，将细胞沉淀并重新悬浮于10ml的100mm hepes ph 7.5+0.001u/ml dna酶中。向每种样品中加入1ml裂解缓冲液，然后将样品在旋转混合器上于4℃下孵育1小时。通过以7000rpm离心10分钟来制备澄清的裂解物。
[0822]
使用magnehis纯化系统纯化链：向每种样品中加入300ul magnehis树脂(promega)，然后将样品混合20次，并放置在磁性支架上。除去上清液，然后用柱洗涤缓冲液洗涤树脂两次。将样品在600ul洗脱缓冲液中洗脱。然后将样品置于透析仪中，与tbs交换。通过如图136中描绘的sds page观察到链去除蛋白的鉴定。
[0823]
实施例73
[0824]
具有不同肽组合的链去除蛋白
[0825]
将200μl的optimem+10％fbs加入到多孔板的多个孔中。将肽组合添加至10μm的最终浓度，其中每种肽组合用每种链去除蛋白分别进行测定。在optimem+10％fbs中，将每条链去除蛋白稀释至20nm(lgtrip 3546为2nm)。将20μl的每条链去除肽添加到指定的肽组合中，混合样品，并将45μl一式三份等分到白色测定板(costar 3600)的孔中。室温下孵育15分钟后，向每种样品中加入5μl检测试剂(100um fz(promega lcs n205))。将样品置于轨道振荡器上持续30秒，然后每2分钟测量一次发光，持续1小时。发光被报告为动力学读数的峰值高度。背景是optimem+10％fbs+检测试剂。
[0826]
如图137所示，当作为单独的肽加入时，链去除蛋白7、8、9、10没有高于背景的信号。三种肽组合中的两种给出为背景的约2倍的信号((8+9)二肽+7+10)或((7+8)二肽+9+10)。3种肽组合中的一种给出为背景的约10倍的信号((9+10)二肽+7+8)。(10+9)+(7+8)的两个二肽组合给出高出背景约4.5log的信号。给出最大信号的肽组合可能具有最高的亲和力。较低亲和力的组合可在促进性互补作用测定中产生光。图137d证明了具有替代分裂位点的肽(例如，中β链)能够形成生物发光复合物。
[0827]
实施例74
[0828]
从lgtrip 3546模板中去除链6、链7、链8、链9或链10(纯化)
[0829]
将400μl的optimem+10％fbs加入到深孔96孔板的多个孔中。将肽组合添加至终浓度为10μm，用atg-3929或lgtrip分别测定每种肽。然后将肽溶液分份。向其中一个肽等分试样中，将20ul的20nm atg-3929或2nm lgtrip加入到指定的肽组合中，混合样品，并将45μl的+/-肽样品一式三份等分到白色测定板(costar 3600)的孔中。在室温下孵育15分钟后，向每种样品中加入5μl检测试剂(100um fz于optimem+10％fbs(promega lcs n205)中)。将样品在轨道振荡器上放置5分钟。每种样品的背景是optimem+10％fbs+肽稀释液+检测试剂。
[0830]
如图138所示，具有链(9+10)+(7+8)+6的样品atg-3929显示为背景的约2倍的信号。另一方面，具有两个肽(6+7+8)+(9+10)的样品显示为背景的约300倍。
[0831]
请注意，对于具有超过3种肽的样品，自发互补作用是不可见的。有可能亲和力不够高，肽的亲和力不够高，以至不能产生光。有可能的是，如果肽通过与融合配偶体的促进性互补作用而聚集在一起，就有可能获得信号。
[0832]
实施例75
[0833]
二肽滴定
[0834]
将二肽稀释至5um，并使用tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和0.2nm lgtrip作为稀释剂进行5倍连续稀释。样品在室温下孵育10分钟，并一式三份加入到测定板的孔中。将1比1体积∶体积的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和20x稀释的活细胞基质加入样品中，并在10分钟后在glomax光度计上读取平板。图139a-图139b显示了来自二肽滴定的kd和bmax值。
[0835]
哺乳动物细胞中二元nanotrip的倍数反应
[0836]
从细胞的汇合烧瓶中取出生长培养基。(hek293和hela)。用10ml dpbs洗涤细胞，然后向细胞中加入3ml tryple express胰蛋白酶。将细胞在37℃下孵育3分钟。加入10ml生长培养基，然后将细胞以200rcf旋转5分钟。更换培养基，并将细胞重悬于10ml生长培养基中。对细胞进行计数并将其稀释至200,000/ml。将100ul细胞接种到白色测定板的每个孔中，并在37℃下用co2培养过夜。第二天，将来自lgtrip(3546)和每个方向上的各种二肽的frb和fkbp融合物的100ng/ul dna组合。263份样品在载体dna中以1∶10稀释或10ng/ul开始。然后将dna样品连续稀释到载体dna(10ul对90μl，于100ng/ul载体dna中)中。接下来，将20ul的每份dna稀释液加入83ul的optimem中。将样品混合，然后向每种样品中加入6.6ul viafect转染剂。将样品在室温下孵育20分钟，然后针对每个frb-fkbp取向，将5ul转染复合物添加到6个细胞孔中。然后使平板在37℃和co2下生长过夜。第二天，将雷帕霉素(rap)添加到每样品3个孔中，终浓度为100nm。将样品置于轨道振荡器上1分钟，然后在37c下孵育30分钟。孵育后，向每种样品(+rap和-rap)中加入100ul nanoglo+50um fz，然后将样品置于轨道振荡器上进行5分钟。使用glomax discover光度计获取发光测量值。通过将+rap样品的rlu值除以-rap样品的rlu值来计算响应倍数。结果如图139c-图139e所示。与具有较高亲和力的样品相比，对lgtrip亲和力较低的二肽融合物产生更大的响应倍数。
[0837]
实施例76
[0838]
使用三部分融合蛋白开发抗tnfa生物制剂的三部分定量测定
[0839]
英夫利昔单抗(remicade)、阿达木单抗(humira)和依那西普(enbrel)是tnfa抑制剂，它们都结合人tnfa，并且都含有人igg1 fc。通过表达和纯化smtrip9-或smtrip 10-蛋白g和tnfa融合蛋白(其用作tnfa抑制剂的结合组分)，开发了针对所有3种tnfa抑制剂的定量测定(图140)。蛋白g融合蛋白将与tnfa抑制剂的保守igg1 fc区结合。所述抑制剂将与tnfa融合蛋白结合，使smtrip9和smtrip10非常接近。在lgtrip存在的情况下，生物发光复合物将形成，从而产生与tnfa抑制剂的存在量成比例的信号。所有的报告标签构型都是用smtrip9或smtrip10进行测试的，所述smtrip9或smtrip10通过4gly-ser或15gly-ser接头在蛋白g和tnfa的n末端或c末端上表达。从所有方向筛选得到的最佳配对是smtrip 9-15 gly/ser-蛋白g与tnfa-15gly/ser-smtrip10。
[0840]
制备融合蛋白的方法
[0841]
表达并纯化了融合蛋白，所述融合蛋白包含smtrip9 pep521(seq id no：268)序列，随后是15个甘氨酸-丝氨酸重复序列的接头，该接头与蛋白g的n末端融合。还表达和纯化了第二融合蛋白，所述第二融合蛋白包含smtrip10 pep289(seq id no：150)序列，其融合至人tnfa的c末端，由15个甘氨酸-丝氨酸重复序列的接头隔开。在含有氨苄青霉素(100ug/ml)的lb平板上产生来自krx转化的大肠杆菌细胞的甘油贮存物的划线平板，并使
其在37℃下孵育过夜。将单个菌落接种到3ml soc培养基+amp中，并在37℃下振荡(275rpm)孵育过夜。裂解细胞并收集质粒dna。用100ng质粒dna转化shuffle感受态大肠杆菌细胞，将其铺在预热的选择平板上，并使其在30℃下孵育过夜。选择菌落并接种到50ml体积的含有氨苄青霉素的lb培养基中。将培养物在37℃下振荡培养过夜，然后以1∶100稀释到500ml含氨苄青霉素的lb培养基中。使这些烧瓶在37℃下孵育，同时振荡，直至od600达到0.6-0.8。通过添加终浓度为1mm的iptg诱导细胞，并使其在25℃下振荡孵育过夜。收集细胞，离心，并在4℃下于混合的情况下重悬于50ml提取和裂解缓冲液中。进行三次冷冻/解冻循环，然后加入rqi dna酶。将全部裂解物转移到think50ml离心管中，并在4℃下以10,000xg旋转30分钟。加入20mm咪唑/350mm nacl，然后将其装载到镍柱上。在5步洗脱过程中，随着咪唑的增加，融合蛋白被洗涤并洗脱出柱子。将样品针对tbs进行透析，并将最终的储备蛋白在-20℃下储存在50％的于tbs中的甘油中。
[0842]
实施例77
[0843]
使用smtrip9 pep521-蛋白g和tnfa-smtrip10 pep289融合蛋白对tnfa抑制剂英夫利昔单抗、阿达木单抗和依那西普进行均相定量分析
[0844]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定nanotrip融合蛋白在均相测定中定量tnfa抑制剂的能力。结果表明，蛋白g和tnfa nanotrip融合蛋白与lgtrip一起显示出对定量英夫利昔单抗、阿达木单抗和依那西普的高度灵敏性和宽范围。
[0845]
在测定缓冲液中产生tnfa抑制剂的2x原液，以1∶2连续稀释以产生剂量反应，并以50ul/孔加入到非结合表面处理的96孔固体-白色平板(costar 3600)中。在测定缓冲液中制备2x纯化lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度1um)+smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)(最终为10nm)+tnfa-smtrip10 pep289(seq id no：150)(最终为10nm)，并以50ul/孔加入。使平板在室温下孵育90分钟。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中，获得为10um的终浓度，使其孵育约5分钟，并使用discover测量萤光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品每板一式三份进行测试，n＝3个独立实验运行。对图141中显示的数据进行了检测限(lod)、定量限(loq)和定量上限(uloq)分析。
[0846]
实施例78
[0847]
对诸如人血清和尿液等的复杂样品基质中英夫利昔单抗的均相定量分析
[0848]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定在均相测定中，在正常人igg贫化血清、正常汇集人ab血清和汇集的正常人尿液的复杂样品基质存在的情况下，nanotrip融合蛋白定量英夫利昔单抗的能力。结果表明，nanotrip系统很大程度上不受尿液和血清蛋白存在的影响，但内源性igg除外。
[0849]
通过用测定缓冲液稀释，形成含有20nm英夫利昔单抗的存在待测人样品基质的2x原液，并将50ul/孔加入经非结合表面处理的96孔固体白板(costar 3600)中。在测定缓冲液中产生纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)(最终为10nm)+tnfa-smtrip10 pep289(seq id no：150)(最终为10nm)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。使平板在室温下孵育90分钟。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中，获得为10um的终浓度，使其孵育约5分钟，并使
用discover测量萤光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。图142所示的数据显示为信号/背景。
[0850]
实施例79
[0851]
在溶液相均相测定中，在100pm英夫利昔单抗存在的情况下，通过smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)和tnfa-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)融合蛋白以及纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用进行的信号产生的动力学分析。
[0852]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以测定蛋白g/tnfa nanotrip系统的结合动力学，从而在溶液相均相分析中定量100pm英夫利昔单抗。结果表明，信号产生是立即和持续的，表明融合蛋白与英夫利昔单抗以及lgtrip与smtrip9和smtrip10融合蛋白的快速结合动力学。
[0853]
在测定缓冲液中产生2x英夫利昔单抗原液(最终为100pm)，并以50ul/孔加入到非结合表面处理的96孔固体-白色平板(costar 3600)中。在测定缓冲液中制备纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)(最终为10nm)+tnfa-smtrip10 pep289(seq id no：150)(最终为10nm)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中，终浓度为10um。加入所有试剂，并将板立即放在discover上，以读取随时间推移的发光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。
[0854]
结果如图143所示。
[0855]
实施例80
[0856]
在溶液相均相测定中，测试smtrip9-蛋白g变体通过与tnfa-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)融合蛋白纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用来测量英夫利昔单抗的能力
[0857]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定在溶液相均相测定中，作为与蛋白g的融合蛋白表达的其它smtrip9变体通过与tnfa-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)融合蛋白纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用测量英夫利昔单抗的能力。结果显示所有测试的smtrip9 pep(x)-蛋白g变体都能够产生信号。
[0858]
在测定缓冲液中产生英夫利昔单抗的2x原液(最终为10nm)，并以50ul/孔加入到经非结合表面处理的96孔纯白色平板(costar 3600)中。在测定缓冲液中制备纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep(x)-蛋白g(最终为10nm)+tnfa-smtrip10 pep289(seq id no：150)(最终为10nm)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。使平板在室温下孵育90分钟。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中至终浓度为10um，使其孵育约5分钟，并使用discover测量发光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。结果如图144所示。
[0859]
实施例81
[0860]
均相定量英夫利昔单抗测试smtrip9 pep(x)-蛋白g变体和tnfa-smtrip10 pep289融合蛋白
[0861]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以证明在溶液相均相测定中，不同smtrip9 pep(x)-蛋白g变体通过与tnfa-smtrip10 pep289(vs-hibit；seq id no：150)融合蛋白以及纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的促进性互补作用定量英夫利昔单抗的能力。结果显示所有smtrip9变体都能够定量英夫利昔单抗。
[0862]
在测定缓冲液中产生英夫利昔单抗的2x原液(终浓度为10nm)，并以50ul/孔加入到经非结合表面处理的96孔纯白色平板(costar 3600)中。在测定缓冲液中制备纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep(x)-蛋白g(最终为10nm)+tnfa-smtrip10 pep289(seq id no：150)(最终为10nm)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。使平板在室温下孵育90分钟。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中至终浓度为10um，使其孵育约5分钟，并使用discover测量发光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。
[0863]
实施例82
[0864]
在基于细胞的测定中使用三部分融合蛋白开发用于抗egfr生物制剂的三部分定量测定。
[0865]
我们开发了用于帕尼单抗和西妥昔单抗的定量的、基于细胞的测定，其代表了相分离或类似表面化学的测定。通过使用将结合egfr抑制剂的保守人igg fc区的纯化的smtrip9-蛋白g融合蛋白，所述抑制剂将结合在细胞表面表达的smtrip10-egfr融合蛋白，这使得smtrip 9和smtrip10紧密接近。在lgtrip存在的情况下，生物发光复合物将形成，从而产生与存在的egfr抑制剂的量成比例的信号。所有的报告标签构型都是用在蛋白g的n或c末端或egfr的n末端上表达的具有4gly-ser接头或15gly-ser接头的smtrip9或smtrip10进行测试的。从所有方向筛选得到的最佳配对是smtrip9-4gly/ser-蛋白g与egfr-15gly/ser-smtrip10。
[0866]
结果如图145所示。
[0867]
实施例83
[0868]
在基于细胞的均相测定中，通过与smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)融合蛋白和具有纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用定量帕尼单抗。
[0869]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以在基于细胞的均相测定中确定nanotrip融合蛋白定量egfr抑制剂帕尼单抗的能力。结果表明，smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)纯化的蛋白、表达smtrip10 pep289-egfr(seq id no：150)的细胞和lgtrip 3546(seq id no：51)对于定量帕尼单抗表现出极高的灵敏度和极大的范围。
[0870]
在湿润的组织培养箱中，在37℃/5％co2下将hek293细胞保持在补充有10％胎牛血清(fbs，hyclone)的生长培养基(dmem)中。通过首先将smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的表达构建体以1∶10的质量比稀释到含有载体dna(pgem-3zf(-))的opti-mem中来进行瞬时反向转染。转染剂：dna复合物是通过以1∶3的比例(mg dna/ml fugene hd)加入fugene hd转染剂，然后在室温下孵育15分钟来制备的。然后将所得的转
染：dna复合物与hek293细胞悬浮液(2
×
10^5个细胞/ml)在生长培养基中以1∶20(体积/体积)的比例混合，然后在湿润的组织培养箱中于37℃/5％co2下孵育18-20小时。
[0871]
将表达smtrip10 pep289-egfr(seq id no：150)融合蛋白的hek293细胞使用胰蛋白酶-edta来收获，在生长培养基中洗涤，并以4.5x105个细胞/ml的浓度重悬于opti-mem中。将50ul细胞/孔(20,000个细胞/孔)加入到非结合表面、纯白色96孔板(costar 3600)中。在opti-mem中产生帕尼单抗的4x原液，将所述原液于opti-mem中连续稀释以产生剂量反应，并以25ul/孔加入。在opti-mem中制备了纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)(最终为5nm)的4x预混合物，并以25ul/孔加入。使平板在37℃下孵育1小时将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液，以25ul/孔加入到平板中，终浓度为10um，并在discover上测量发光。将样品一式三份进行测试。n＝3个独立实验。
[0872]
结果如图146所示。
[0873]
实施例84
[0874]
在基于细胞的均相测定中，在剂量递增的西妥昔单抗存在的情况下，通过smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)纯化的融合蛋白和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的hek293细胞的促进性互补作用进行的信号产生的实时结合动学分析。
[0875]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定在基于细胞的均相测定中蛋白g/egfr nanotrip系统定量西妥昔单抗的结合动力学。结果表明，随着萤光素酶复合物的形成，发光信号随时间而增加。信号产生也是剂量依赖性的。
[0876]
在湿润的组织培养箱中，在37℃/5％co2下将hek293细胞保持在补充有10％胎牛血清(fbs，hyclone)的生长培养基(dmem)中。通过首先将smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的表达构建体以1∶10的质量比稀释到含有载体dna(pgem-3zf(-))的opti-mem中来进行瞬时反向转染。转染剂：dna复合物是通过以1∶3的比例(mg dna/ml fugene hd)加入fugene hd转染剂，然后在室温下孵育15分钟来制备的。然后将所得转染：dna复合物与hek293细胞悬浮液(2x105个细胞/ml)在生长培养基中以1∶20(体积/体积)的比例混合，然后在湿润的组织培养箱中于37℃/5％co2下孵育18-20小时。
[0877]
将表达smtrip10 pep289-egfr融合蛋白的hek293细胞用胰蛋白酶-edta来收获，在生长培养基中洗涤，并以4.5x105个细胞/ml的浓度重悬于opti-mem中。将50ul的细胞/孔(20,000个细胞/孔)加入到非结合表面、纯白色96孔板(costar 3600)中。在opti-mem中产生了西妥昔单抗的4x原液，并以25ul/孔加入。在opti-mem中产生了纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为10um)+smtrip9 pep521-蛋白g(seq id no：268)(最终为780pm)的4x预混合物，并以25ul/孔加入。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中，终浓度为10um。加入所有试剂，并将平板立即放在discover上，以读取随时间推移的发光。将样品一式三份进行测试。
[0878]
结果如图147所示。
[0879]
实施例85
[0880]
在基于细胞的均相测定中，测试smtrip9-蛋白g变体通过和与纯化的lgtrip 3546
(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用测量帕尼单抗的能力。
[0881]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定在基于细胞的均相测定中，作为与蛋白g的融合蛋白表达的其它smtrip9变体通过和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用测量帕尼单抗的能力。结果表明，所有测试的smtrip9 pep(x)-蛋白g变体都能够产生信号。
[0882]
在湿润的组织培养箱中，在37℃/5％co2下将hek293细胞保持在补充有10％胎牛血清(fbs，hyclone)的生长培养基(dmem)中。通过首先将smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的表达构建体以1∶10的质量比稀释到含有载体dna(pgem-3zf(-))的opti-mem中来进行瞬时反向转染。转染剂：dna复合物是通过以1∶3的比例(mg dna/ml fugene hd)加入fugene hd转染剂，然后在室温下孵育15分钟来制备的。然后将所得的转染：dna复合物与hek293细胞悬浮液(2
×
10^5个细胞/ml)在生长培养基中以1∶20(体积/体积)的比例混合，然后在湿润的组织培养箱中于37℃/5％co2下孵育18-20小时。
[0883]
将表达smtrip10 pep289-egfr(seq id no：150)融合蛋白的hek293细胞用胰蛋白酶-edta来收获，在生长培养基中洗涤，并以4.5x105个细胞/ml的浓度重悬于opti-mem。将50ul的细胞/孔(20,000个细胞/孔)加入到非结合表面、纯白色96孔板(costar 3600)中。在opti-mem中产生了帕尼单抗(最终为1nm)的4x原液，并以25ul/孔加入。在opti-mem中产生了纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep(x)-蛋白g(最终为10nm)的4x预混合物，并以25ul/孔加入。使平板在37℃下孵育1小时。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液，以25ul/孔加入到平板中，终浓度为10um，并在discover上测量发光。将样品一式三份进行测试。n＝3个独立实验。结果如图148所示。
[0884]
实施例86
[0885]
在基于细胞的均相测定中，测试smtrip9-蛋白g变体通过和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用测量帕尼单抗的能力。
[0886]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以确定在基于细胞的均相测定中，作为与蛋白g的融合蛋白表达的其它smtrip9变体通过和与纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)配对的表达smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的细胞的促进性互补作用测量帕尼单抗的能力。结果表明，所有测试的smtrip9 pep(x)-蛋白g变体都能够在剂量反应分析中定量帕尼单抗。
[0887]
在湿润的组织培养箱中，在37℃/5％co2下将hek293细胞保持在补充有10％胎牛血清(fbs，hyclone)的生长培养基(dmem)中。通过首先将smtrip10 pep289-egfr(vs-hibit；seq id no：150)的表达构建体以1∶10的质量比稀释到含有载体dna(pgem-3zf(-))的opti-mem中来进行瞬时反向转染。转染剂：dna复合物是通过以1∶3的比例(mg dna/ml fugene hd)加入fugene hd转染剂，然后在室温下孵育15分钟来制备的。然后将所得转染：dna复合物与hek293细胞悬浮液(2x105个细胞/ml)在生长培养基中以1∶20(体积/体积)的比例混合，然后在湿润的组织培养箱中于37℃/5％co2下孵育18-20小时。
[0888]
将表达smtrip10 pep289-egfr(seq id no：150)融合蛋白的hek293细胞使用胰蛋
白酶-edta来收获，在生长培养基中洗涤，并以4.5
×
105个细胞/ml的浓度重悬于opti-mem中。将50ul的细胞/孔(20,000个细胞/孔)加入到非结合表面、纯白色96孔板(costar 3600)中。在opti-mem中产生了帕尼单抗(最终为1nm)的4x原液，并以25ul/孔加入。在opti-mem中产生了纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep(x)-蛋白g(最终为10nm)的4x预混合物，并以25ul/孔加入。使平板在37℃下孵育1小时将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液，以25ul/孔加入到平板中，终浓度为10um，并在discover上测量发光。将样品一式三份进行测试。结果如图149所示。
[0889]
实施例87
[0890]
使用nanotrip化学标记的配对抗体定量人il-1β
[0891]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以证明已与nanotrip肽化学缀合的配对单克隆抗体用于定量人il-1β的用途。该模型系统由两种在不同表位处识别il-1β的小鼠单克隆抗体组成。halotag-smtrip9 pep521(seq id no：268)与所述抗体之一化学缀合，并且halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)与另一抗体化学缀合。在il-1β存在的情况下，所述两种抗体与il-1β结合，从而使所述两种标签非常接近。lgtrip 3546(seq id no：51)的添加完成互补，并产生发光信号。
[0892]
表达并纯化halotag-smtrip9和halotag-smtrip10融合蛋白。将抗il-1β小鼠单克隆抗体克隆508a 4a2(thermo)用halotag-smtrip9pep521(seq id no：268)标记，并且将抗il-1β小鼠单克隆抗体克隆508a 7g8(thermo)用halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)标记。通过首先使用zeba柱将缓冲液交换成10mm nahco3(ph 8.5)来制备未标记的抗体。然后用20倍过量的琥珀酰亚胺酯(04)配体(promega)激发抗体，并将其在室温下孵育2小时。使用zeba柱进行2次缓冲液交换，以去除游离的接头。在混合的同时，将激发抗体与4倍过量的halotag-smtrip9或halotag-smtrip10在4c下孵育过夜。将树脂用于去除任何游离的融合蛋白。
[0893]
在测定缓冲液中产生重组人il-1β的2x原液，将其以1∶2连续稀释以产生剂量反应，并以50ul/孔加入到非结合表面处理的96孔纯白色平板(costar 3600)中。在测定缓冲液中制备了纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep521标记的4a2克隆(seq id no：268)(最终为100ng/ml)+smtrip10 pep289标记的7g8克隆(seq id no：150)(最终为100ng/ml)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔添加到平板中至终浓度为10um，并使用discover实时测量发光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。显示的数据是在20分钟时间点读取的信号。
[0894]
结果如图150所示。
[0895]
实施例88
[0896]
使用nanotrip化学标记的配对抗体研究人肌钙蛋白的实时结合动力学
[0897]
在本文实施方案的开发过程中进行实验，以证明已与nanotrip肽化学缀合的配对单克隆抗体用于定量人肌钙蛋白的用途。该模型系统由两种在不同表位处识别肌钙蛋白的小鼠单克隆抗体组成。halotag-smtrip9 pep521(seq id no：268)与所述抗体之一化学缀
合，并且halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)与另一抗体化学缀合。在肌钙蛋白存在的情况下，所述两种抗体与肌钙蛋白结合，从而使所述两个标签非常接近。lgtrip 3546(seq id no：51)的加入完成互补，并产生发光信号。
[0898]
表达并纯化halotag-smtrip9和halotag-smtrip10融合蛋白。将抗肌钙蛋白小鼠单克隆抗体10-t79c(fitzgerald)用halotag-smtrip10 pep289(seq id no：150)标记，并且将抗肌钙蛋白小鼠单克隆抗体10-t79f(fitzgerald)用halotag-smtrip9 pep521(seq id no：268)标记。通过首先使用zeba柱将缓冲液交换成10mm nahco3(ph 8.5)来制备未标记的抗体。然后用20倍过量的琥珀酰亚胺酯(04)配体(promega)激发抗体，并将其在室温下孵育2小时。使用zeba柱进行2次缓冲液交换，以去除游离的接头。在混合的同时，将激发抗体与4倍过量的halotag-smtrip9或halotag-smtrip10在4℃下孵育过夜。将树脂用于去除任何游离的融合蛋白。
[0899]
在检测缓冲液中产生重组人肌钙蛋白(最终为1ug/ml)的2x原液，并以50ul/孔加入到非结合表面处理的96孔纯白色平板(costar 3600)中。在检测缓冲液中制备纯化的lgtrip 3546(seq id no：51)(终浓度为1um)+smtrip9 pep521标记的10-t79f克隆(seq id no：268)(最终为1ug/ml)+smtrip10 pep289标记的10-t79c克隆(seq id no：150)(最终为1ug/ml)的2x预混合物，并以50ul/孔加入。将测定缓冲液中的nano-活细胞基质的5x原液以25ul/孔加入到平板中至终浓度为10um，并使用discover实时测量发光。测定缓冲液由在pbs(ph 7.0)中稀释至最终为0.01％的于pbs中的bsa的封闭bsa(10％)(thermo)组成。将样品一式三份进行测试。
[0900]
结果如图151所示。
[0901]
实施例89
[0902]
易位测定
[0903]
hibit表现出非常高的对lgbit多肽(kd＝1nm)和其它类似的互补多肽的亲和力。两个片段之间的强相互作用将在没有任何刺激的情况下驱动互补作用(图154)，这不适用于易位测定。进行了一项研究，以确定易位测定的两个组分(例如，肽和多肽)之间的最佳亲和力。发现最佳亲和力在280nm至1300nm的范围内。lgbit(e11k/i44m/n135v/l150s)中的四重突变，称为lgbit*，将其与hibit的相互作用减弱约1000倍(kd＝1296nm)，使得hibit/lgbit*对非常适合易位测定。设计并测试了两种不同的易位测定。
[0904]
开发了测量在pma刺激下pkcα从胞质溶胶易位至质膜的膜易位测定(membrane translocation assay)。在hela细胞中，pkcα在c末端处被hibit内源性加标签。分离经编辑的细胞的克隆，选择具有最高发光信号的最佳克隆来进行测定。使用转染法将lgbit＊-膜传感器引入克隆。pma的加入将pkcα-hibit募集至质膜上，在质膜上hibit与lgbit＊相遇，从而产生光。取决于转染的lgbit＊的量，pma的滴定在响应方面产生12至19倍的增加(图155)。
[0905]
开发了测量在tnfα刺激下p65从胞质溶胶向细胞核的移动的核易位测定。类似于膜易位测定，建立了核易位测定。具体而言，在hela细胞中，p65在c末端处被内源性加标签，并且lgbit＊-核传感器通过转染方法被引入p65-hibit细胞系。tnfα的处理促进p65-hibit向细胞核易位，在细胞核中hibit与lgbit＊之间发生互补作用，从而产生发光信号。tnfα的
滴定导致响应增加至4倍(图156a)。所述测定允许实时测量蛋白质易位。如图156b所示，在tnfα的刺激下，p65迁移到细胞核大约需要30分钟，这与文献中的发现一致。
[0906]
实施例90
[0907]
lgbit突变体与hibit的kd和bmax值比较
[0908]
从1.22um开始，在optimem+10％fbs中制备hibit肽的溶液。将肽稀释液连续3倍稀释至optimem+10％fbs中。(300ul于700ul中)。将纯化的lgbit或lgbit突变体稀释至optimem+10％fbs中，直至2nm的浓度。将90ul肽溶液与10ul lgbit稀释液(最终为0.2nm lgbit)组合。将样品在轨道振荡器上孵育30分钟，然后加入11ul的100um的于optimem+10％fbs中的furimazine。将样品置于轨道振荡器上5分钟，然后使用glomax multi+光度计读取发光。使用一位点特异性结合非线性回归，用graphpad prism计算bmax和kd(图157a-图157b)。
[0909]
实施例91
[0910]
lgbit突变体裂解物对hibit的亲和力
[0911]
在37℃下生长lgbit和每种lgbit突变体的过夜培养物。将每种培养物以1∶100稀释至lb+0.1％鼠李糖和0.15％葡萄糖中。在25℃下生长20小时通过用plb裂解缓冲液稀释等体积的诱导培养物来制备每种培养物的裂解物。(plb裂解缓冲液为0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)。然后将每种裂解物以10,000倍稀释至plb裂解缓冲液中。将起始于300nm的合成hibit肽的稀释系列制备成测定缓冲液+50um furimazine。将50ul每种稀释的裂解物与50ul的肽/滴定液组合。将样品孵育3分钟，然后在multi+光度计上读取样品的发光(图158)。
[0912]
实施例92
[0913]
来自截短的lgtrip3546与互补多肽的复合物的生物发光
[0914]
将495ul optimem+10％fbs等分至深孔板中。将肽846和847在500ul optimem+10％fbs中稀释至20um。为每种肽制备两倍系列稀释液。然后将200ul的每个稀释系列转移至新的一行，然后将atg-3929(最终2nm)添加到846滴定系列中，并将atg-4794添加到847滴定中。作为对照，将250nm pep 263添加到0.2nm的lgtrip 3546中。将50ul的每个样品一式三份等分至白色测定板中，然后在振荡的条件下将板孵育10分钟。在孵育6ul的10x fz lcs(167ul的lcs于833ul的optimem+10％fbs中)后。将样品在定轨振荡器上混合30秒，然后立即读取读数，并在此之后数次，以获得每种条件下的峰值发光。846+atg-3929和847+atg-4794的混合物在1.25um肽浓度处达到峰值。结果如图159所示。
[0915]
实施例93
[0916]
b9滴定
[0917]
将lgtrip在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并添加pep289至25um。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20x kd)和vs-hibit的滴定。结果如图160所示。
[0918]
实施例94
[0919]
pep289滴定
[0920]
将lgtrip在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol中稀释至0.2nm，并添加pep289至25um。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(20x kd)和vs-hibit的滴定。结果如图161所示。
[0921]
实施例95
[0922]
二肽亲和力测定
[0923]
将二肽pep263、pep788和pep900稀释至5um，并使用tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和0.2nm lgtrip作为稀释剂进行5倍连续稀释。将样品在室温下孵育10分钟，并一式三份加入到检测板中。将1比1体积：体积的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol和20x稀释的活细胞furimazine基质加入样品中，并在10分钟后在光度计上读取平板。结果如图162所示。
[0924]
实施例96
[0925]
利用lgtrip变体和pep788的bmax测定
[0926]
使lgtrip变体在含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中于37℃生长过夜。将细胞稀释20倍至诱导培养基(含有100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中，并在37℃下振荡诱导4小时。将10微升每种诱导样品稀释到250ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中。在2ml裂解缓冲液中进一步稀释80微升裂解物。使用nano-glo和50um furimazine作为稀释剂以10μm肽开始进行pep788(seq id 414)的10倍稀释系列。将肽稀释液和裂解物以1∶1 体积∶体积混合，在室温下孵育10分钟，并读取发光。结果如图163所示。
[0927]
实施例97
[0928]
利用lgtrip变体和pep759进行的bmax测定
[0929]
使lgtrip变体在含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中于37℃生长过夜。将细胞稀释20倍至诱导培养基(含有100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中，并在37℃下振荡诱导4小时。将10微升每种诱导样品稀释到250ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中。在2ml裂解缓冲液中进一步稀释80微升裂解物。使用nano-glo以及50um furimazine和50μm pep289(seq id 826)作为稀释剂以50μm肽开始进行pep759(seq id 496)的5倍稀释系列。将肽稀释液和裂解物以1∶1 体积∶体积混合，在室温下孵育10分钟，并读取发光。结果如图164所示。
[0930]
实施例98
[0931]
lgtrip变体的热稳定性
[0932]
使lgtrip变体在含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中于37℃生长过夜。将细胞稀释20倍至诱导培养基(含有100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物稀释1,000倍至1x tbs+0.01％bsa中。将50微升的每个样品转移到pcr板中，并在热循环仪中于80℃下孵育1.5小时。对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每个样品转移到测定板
中，并与25ul的400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞furimazine底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。结果如图165所示。
[0933]
实施例99
[0934]
lgtrip变体与pep788的kd和bmax测定
[0935]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep788中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)和vs-hibit的滴定。结果如图166所示。
[0936]
实施例100
[0937]
lgtrip变体与pep840的kd和bmax测定
[0938]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep840中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)和vs-hibit的滴定。结果如图167所示。
[0939]
实施例101
[0940]
lgtrip变体与pep289和饱和pep840的kd和bmax测定
[0941]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289+12.5um pep840中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibit kd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)和vs-hibit的滴定。结果如图168所示。
[0942]
实施例102
[0943]
lgtrip变体的半衰期测定
[0944]
将magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每个样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于70℃下孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl每份稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+400nm pep788(seq id no：414)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。通过非线性回归计算半衰期。结果如图169所示。
[0945]
实施例103
[0946]
利用lgtrip变体进行的雷帕霉素测定
[0947]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10的培养物在37℃下在lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90
倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升的测定试剂添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul添加到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo添加到测定板孔中，并5分钟后在光度计上读取发光。结果如图170-图171所示。
[0948]
实施例104
[0949]
lgtrip变体的裂解物的热稳定性
[0950]
使lgtrip变体在含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中于37℃生长过夜。将细胞稀释20倍至诱导培养基(含有100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物稀释1,000倍至1x tbs+0.01％bsa中。将50微升的每个样品转移到pcr板中，并在热循环仪中于70℃下孵育1.5小时。将对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每种样品转移到测定板中，并与25μl 400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。结果如图172所示。
[0951]
实施例105
[0952]
不同温度梯度下的lgtrip变体的裂解物的热稳定性
[0953]
使lgtrip变体在含有100ug/ml氨苄青霉素的lb中于37℃生长过夜。将细胞稀释20倍至诱导培养基(含有100ug/ml氨苄青霉素和0.1％鼠李糖w/v的lb)中，并在25℃下振荡诱导20小时。将20微升每种诱导物稀释到40ul裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并在室温下裂解15分钟。将裂解物稀释1,000倍至1x tbs+0.01％bsa中。将50微升的每种样品转移到pcr板中，并在veritas热循环仪中在两个温度梯度下孵育，75-100℃孵育10分钟或者50-75℃孵育1.5小时。将对照组在冰上孵育。将样品平衡至室温，并以1∶100稀释至1x tbs+0.01％bsa中。将25微升的每个样品转移到测定板中，并与25ul的400nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞furimazine底物中的pep788(seq id 414)混合。将样品在室温下孵育10分钟，并读取发光。结果如图173所示。
[0954]
实施例106
[0955]
纯化的lgtrip变体的热稳定性
[0956]
将magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每个样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于70℃下孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl每份稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+400nm pep788(seq id no：414)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。结果如图174所示。
[0957]
实施例107
[0958]
lgtrip变体与pep521和饱和vs-hibit的kd和bmax测定
[0959]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep521中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样
品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。结果如图175所示。
[0960]
实施例108
[0961]
lgtrip变体与pep840和饱和vs-hibit的kd和bmax测定
[0962]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep840中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。结果如图176所示。
[0963]
实施例109
[0964]
smtrip9变体与lgtrip变体atg-3546或atg-5146和饱和pep289的kd和bmax测定
[0965]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip atg-3546和atg-5146，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。结果如图177和图178所示。
[0966]
实施例109
[0967]
pep289与lgtrip变体atg-3546或atg-5146和饱和smtrip9的kd和bmax测定
[0968]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip atg-3546和atg-5146，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。为了测定vs-hibitkd，遵循相同的方案，但利用饱和smtrip9(25um)和vs-hibit的滴定。结果如图179和图180所示。
[0969]
实施例110
[0970]
利用pep840滴定对lgtrip变体的裂解物进行kd和bmax测定
[0971]
使lgtrip培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20的比例稀释，并在25℃下振荡诱导约20小时。将细胞在plb测定试剂(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中稀释1000倍，并裂解20分钟。在nanoglo+50um furimazine+25um pep289中进行smtrip9 pep840的五倍系列稀释，并将其与lgtrip裂解物以1∶1体积∶体积混合。将样品在室温下孵育10分钟，并在光度计上进行读数。结果如图181所示。
[0972]
实施例111
[0973]
利用pep840滴定对纯化的lgtrip变体进行kd和bmax测定
[0974]
根据制造商的方案，使用promega magnehis
tm
蛋白质纯化系统纯化lgtrip变体，并在tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol+25um pep289中稀释至0.2nm。将该溶液用作smtrip9肽的5倍连续稀释系列的稀释剂。将样品在室温下平衡10分钟，并以一式三份等分至测定板中。将含有20um furimazine的tbs+0.01％bsa+0.01％tergitol以1∶1 体积∶体积比加入样品中。将平板孵育10分钟，并读取发光。结果如图182所示。
[0975]
实施例112
[0976]
纯化的lgtrip变体的半衰期测定
[0977]
将magnehis纯化的lgtrip变体在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。以一式三份将每个样品的100μl等分试样装载到200μl薄壁pcr管中。将样品在热循环仪中于70℃下孵育。在不同的时间点取出样品，并平衡至室温。将样品在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm(5μl于495μl中)。将25μl每份稀释的样品与25μl tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞底物furimazine+200nm pep900(seq id no：907)组合。将样品孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。通过非线性回归计算半衰期。结果如图183所示。
[0978]
实施例113
[0979]
利用lgtrip变体atg-3546和atg-5146进行的雷帕霉素测定
[0980]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10的培养物在37℃下于lb+100μg/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100μg/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm magnehis纯化的lgtrip变体、90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升的测定试剂添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul添加到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo添加到测定板孔中，并5分钟后在光度计上读取发光。结果如图184所示。
[0981]
实施例114
[0982]
legtrip变体的裂解物与pep788、pep900或pep840的bmax测定
[0983]
使lgtrip变体培养物在37℃下于lb+100ug/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100ug/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释，并在25℃下振荡诱导约20小时。将细胞在0.3x plb检测试剂中稀释5000倍，并裂解20分钟。在nano-glo+50μm furimazine中进行利用饱和pep289对二肽pep788、pep900或smtrip9 pep840的五倍系列稀释，并与lgtrip裂解物以1∶1体积∶体积混合。将样品在室温下孵育10分钟，并在光度计上进行读数。通过非线性回归计算bmax。结果如图185所示。
[0984]
实施例115
[0985]
不同温度梯度下lgtrip变体的热稳定性
[0986]
将lgtrip变体在2ml tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。将100ul每种样品等分到96孔pcr板的一式两份的排中(制备两个平板)。在veritas热循环仪中，在高(75-100℃)或低(50-75℃)温度梯度下孵育平板3小时。将样品置于70℃下，然后在不同的时间点将等分试样移至室温。在每个时间点用移液管混合样品，然后以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中。(5ul至495ul中)。然后将25ul的每种样品等分至白色测定板中。加入25ul 200nm的于tbs+0.01％bsa+20倍稀释的活细胞furimaizine底物中的pep788或pep900。将平板孵育10分钟，然后在gmm+上进行读取。结果如图186所示。
[0987]
实施例116
[0988]
利用lgtrip变体进行的雷帕霉素测定
[0989]
使fkbp_smtrip9变体和frb-smtrip10的培养物在37℃下于lb+100μg/ml氨苄青霉素中生长过夜。将细胞在含有0.15％葡萄糖、0.1％鼠李糖和100μg/ml氨苄青霉素的lb中以1∶20稀释。培养物在25℃下振荡诱导约20小时。用444nm的magnehis纯化的lgtrip变体、90倍稀释的frb-smtrip10培养物、+/-35nm雷帕霉素制备plb测定试剂。将90微升的测定试剂
添加到96孔测定板的每个孔中。将fkbp_smtrip9培养物在plb中以1∶10稀释，并将10ul添加到测定板中。将样品在室温下孵育30分钟。将100微升含有50um furimazine的nano-glo添加到测定板孔中，5分钟后在光度计上读取发光。结果如图187所示。
[0990]
实施例117
[0991]
pep691和pep692的kd和bmax测定
[0992]
将lgtrip 3546在optimem+10％fbs中稀释至1nm。在optimem+10％fbs中制备链9肽521和693的12μm溶液。从20μm开始，每份链9稀释液用于制备每份链10肽的3倍稀释系列。(pep86＝hibit，pep289＝vs hibit，pep691＝hibit rr，pep692＝vshibit rr)。将90μl的每个稀释系列转移至白色测定板，然后加入10μl的1μm lgtrip 3546原液。将平板放在设定为600rpm的轨道振荡器上30分钟。制备由10mm dtt和50um furimazine组成的optimem+10％fbs的检测试剂，并向样品中加入11μl。将平板放在轨道振荡器上，并在室温下混合5分钟。在multi+光度计上读取平板读数。使用graphpad prism one位点特异性结合计算kd和bmax。结果如图188所示。
[0993]
实施例118
[0994]
单体lgbit-smbit克隆的纯化
[0995]
使每个单体lgbit-smbit克隆的分离菌落的50ml培养物在37℃下于lb+30ug/ml卡那霉素中生长20小时。然后在补充有30ug/ml卡那霉素、0.1％鼠李糖和0.15％葡萄糖的lb中以1∶100(500ul于50ml中)稀释培养物，并使其在25℃下生长20小时。将培养物离心并重新悬浮于9ml的100mm hepes ph 7.5+1ml fastbreak
tm
细胞裂解试剂(promega；v8571)+200ul rq dna酶1(promega)中。将样品在4℃下于轨道混合器上孵育30分钟。为“总裂解物”样品保存一份等分试样。将样品离心至裂解物澄清(7000rpm，持续15分钟)，并将上清液转移至新管中。使用hislink
tm spin蛋白质纯化系统(promega；v8550)，将1ml hislink
tm
蛋白纯化树脂加入到每个澄清的裂解物中，在4℃下于轨道混合器上孵育10分钟，用hislink洗涤/结合缓冲液洗涤3次，并用500ul洗脱缓冲液洗脱两次以回收样品。
[0996]
图189显示了来自每个单体lgbit-smbit克隆的可溶性和纯化蛋白的量，并且表12列出了所用的构建体。
[0997]
表12.构建体
[0998][0999]
实施例119
[1000]
单体lgbit-smbit克隆的发光测定
[1001]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。然后将稀释的蛋白质与50ul的于缓冲液(promega；n112)中的furimazine(promega；n113)组合。加入底物后3分钟，在gmm+上读取发光。
[1002]
图190表明nanoluc(atg-462)比单体lgbit-smbit蛋白质亮2倍。
[1003]
实施例120
[1004]
单体lgbit-smbit克隆的底物利用
[1005]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。从50um(40ul于2ml中)开始，然后1ml比1ml，在缓冲液(promega；n112)中制备furimazine(promega；n113)的2倍稀释系列。将50ul的每种纯化的单体lgbit-smbit一式两份与50ul的经滴定的底物系列混合。将样品在室温下孵育3分钟，并在gmm上读取发光。
[1006]
图191表明，每种单体lgbit-smbit蛋白都类似地利用furimazine。
[1007]
实施例121
[1008]
温度梯度
[1009]
在本文实施方案的开发期间进行实验以确定温度对单体lgbit-smbit变体的影响。
[1010]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm。然后将每份稀释的样品等分至96孔pcr板的多个孔中。将平板置于将温度梯度设定为以下温度梯度设置的热循环仪中30分钟：
[1011]
温度梯度a：54℃、57℃、60℃、63℃、66℃、70℃，
[1012]
温度梯度b：55℃、60℃、65℃、70℃、75℃、80℃，或
[1013]
温度梯度c：65℃、70℃、75℃、80℃、85℃、90℃。
[1014]
30分钟孵育后，将5μl各样品与45μl的tbs+0.01％bsa组合，加入50μl的于缓冲液中的furimazine，在室温下孵育3分钟，并在gmm+上检测发光。
[1015]
图192表明单体lgbit-smbit蛋白与nanoluc(atg-462)相比明显更稳定。
[1016]
实施例122
[1017]
温度攻击
[1018]
在本文实施方案的开发期间进行实验以确定高温对单体lgbit-smbit变体的影响。
[1019]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm。然后将每份稀释的样品等分至96孔pcr板的多个孔中。将平板置于温度梯度设定为75℃、80℃、85℃、90℃、95℃、100℃的热循环仪中30分钟。
[1020]
30分钟孵育后，将5μl各样品与45μl的tbs+0.01％bsa组合，加入50μl的于缓冲液中的furimazine，在室温下孵育3分钟，并在gmm+上检测发光。
[1021]
图193表明在单体lgbit-smbit蛋白质中159g的氨基酸改变(atg-3563)相对于159s的氨基酸改变(atg-3564)提供了增强的热稳定性，与nanoluc(atg-462)相比，明显更加稳定。
[1022]
实施例123
[1023]
单体lgbit-smbit在60℃下的稳定性
[1024]
在本文实施方案的开发期间进行实验以确定单体lgbit-smbit变体在60℃下的稳定性。
[1025]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm。然后将每份稀释的样品等分到96孔pcr板的多个孔中，并放置在设定为60℃的热循环仪中。在不同的时间点，取出等分样品并保持在冰上。收集所有样品时间点后，将样品平衡至室温。
[1026]
一旦达到平衡，将5ul的每种样品与45ul的tbs+0.01％bsa组合，加入50ul的于缓冲液中的furimazine，在室温下孵育3分钟，并在gmm+上检测发光。
[1027]
图194显示了与温度梯度测定一致的结果。单体lgbit-smbit变体比nanoluc更稳定。
[1028]
实施例124
[1029]
单体lgbit-smbit与试剂在升高的温度下的稳定性
[1030]
在本文实施方案的开发期间进行实验以确定在升高的温下单体lgbit-smbit变体与试剂的稳定性。
[1031]
将来自实施例118的纯化的单体lgbit-smbit蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后进一步稀释至0.2nm(4μl于4ml中)。将50ul的atg-462或atg-3564与50ul的50um的于nanoglo
tm
中的furimazine或50ul的20um的于tbs+0.01％bsa中的furimazine混合，并置于薄壁96孔pcr板的孔中。将托盘置于温度梯度设定为55℃、60℃、65℃、70℃、75℃、80℃的veritas热循环仪中。在不同的时间点(图195)或30分钟(图196)后，取出等分试样，并在gmm+上检测发光。
[1032]
实施例125
[1033]
nanoluc变体的kd和vmax测定
[1034]
将纯化的nanoluc变体在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。furimazine在缓冲液中的2倍稀释系列的始于50μm(40μl于2ml中)，然后进行1ml比1ml的稀释。将50ul样品(以一式两份)与50ul滴定系列混合。室温下将样品孵育3分钟，并在gmm+上检测发光(图197)。
[1035]
实施例126
[1036]
nanoluc变体的温度攻击
[1037]
在本文实施方案的开发期间进行了实验以确定高温对nanoluc变体的影响。
[1038]
将纯化的nanoluc变体蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至2nm。然后将每份稀释的样品等分至两个96孔pcr板的多个孔中。将平板置于温度梯度设定为60℃、65℃、70℃、75℃、80℃、85℃的热循环仪中30分钟。
[1039]
孵育30分钟后，将5ul每种样品与45ul tbs+0.01％bsa组合，加入50ul的于缓冲液的furimazine，在室温下孵育3分钟，并在gmm+上检测发光(图198)。
[1040]
在更高的温度梯度70℃、75℃、80℃、85℃、90℃、95℃下重复温度攻击，其中在上述温度攻击中鉴定出最稳定的克隆(图199)。
[1041]
实施例127
[1042]
用于基于细胞的易位测定的融合物的背景下关于atg-5333和atg-5344筛选的变体
[1043]
a)发光检测
[1044]
从单集落开始培养每种变体，将单集落挑取到96孔板的孔中的200ul lb+氨苄青霉素培养基中，并在37℃振荡生长20小时。第二天，通过将10ul培养物稀释到200ul lb+100ug/ml氨苄青霉素+0.1％鼠李糖中并在37℃下生长3小时来制备诱导培养物。如下从诱导的培养物中制备裂解物：将10ul细胞转移到190ul被动裂解缓冲液(plb)(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并孵育5分钟。将50ul裂解物转移到两个测定板中，然后加入50ul plb测定缓冲液+20um furimazine和6um或0.2um(最终为3um或0.1um)pep289。将测定板孵育5分钟，然后测量发光。通过将3um样品的rlu除以0.1um样品的rlu值来计算比率。
[1045]
表13.关于atg-5333的变体
[1046]
atg#3um0.1um比率53381.10.303.7
53401.30.502.654071.92.700.754080.30.065.054111.41.401.054133.62.981.254141.090.542.054161.340.284.854171.620.802.054181.610.772.154191.470.364.154200.630.106.354211.971.401.4
[1047]
表14.关于atg-5344的变体
[1048]
atg#3um0.1um比率53381.10.303.753401.30.502.654071.92.700.754080.30.065.054111.41.401.054133.62.981.254141.090.542.054161.340.284.854171.620.802.054181.610.772.154191.470.364.154200.630.106.354211.971.401.4
[1049]
b)使用pep289计算kd和bmax
[1050]
用每种变体的100ul过夜培养物接种2ml诱导培养基(lb+100ug/ml amp+0.1％鼠李糖)。使细胞在37℃下生长3小时。将250ul细胞稀释在5ml plb中，并在室温下孵育约10分钟。制备20ml的20um的于plb(80ul)中的fz，并在fz试剂(50um溶于2ml中)中制备三个3倍滴定系列的pep289(10ul 5mm样品于990ul中，然后300ul于700ul中，然后组合3倍稀释系列)。将50ul细胞裂解物与50ul pep289滴定液组合，孵育5分钟，然后在gmm+上读取发光。
[1051]
表15.lgbit突变体的计算的bmax和kd
[1052]
atg#序列bmaxkd5333lgbit
′
115339k11n0.5813.05340r152q0.92.35341v135a0.32.3
5408n156d0.420.25409h57q0.882.25432l3h0.244.05433t13s0.423.85434p93h0.751.05435f120l0.302.55437s157r1.00.65438h86l0.821.15439m149v0.0751.35456k11l0.30.65457k11r0.671.05458k11y0.41.25459k11n+r152q0.416.95460k11n+n156d0.325.95491k11q0.90.65492k11m0.30.65493k11h0.72.85494k11f0.32.25495k11w0.22.75505v135a+r152q2.01.25506v135a+r152q+n156d1.54.15507p93h+v135a1.90.55508p93h+r152q0.83.05509p93h+r152q+n156d0.76.85510p93h+n135a+r152q1.71.55511p93h+n135g+r152q0.93.9
[1053]
实施例128
[1054]
atg-5534模板的位点饱和
[1055]
在本文实施方案的开发期间进行了实验以优化atg-5534(seq id no：978)的不同位置处的氨基酸的身份。
[1056]
a)从单菌落开始培养大肠杆菌，将单菌落挑取到96孔板的孔中的200ul lb+氨苄青霉素培养基中，并在37℃振荡生长20小时。第二天，通过将10ul培养物稀释到200ul lb+100ug/ml氨苄青霉素+0.1％鼠李糖中并在37℃下生长3小时来制备诱导培养物。如下从诱导的培养物制备裂解物：将10ul细胞转移到190ul plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中，并孵育5分钟。将50ul裂解物转移到两个测定板中，然后加入50ul plb测定缓冲液+20um furimazine和6um或0.2um(最终为3um或0.1um)pep289。将测定板孵育5分钟，然后测量发光。测定每种突变体的bmax和kd值。
[1057]
表16.lgbit突变体atg-5810的位置44处的位点饱和的计算的bmax和kd
[1058]
atg#突变体bmaxkd
5654m44v1.80.45655m44i4.30.135676m44k0.0319.45677m44e0.0215.75678m44a0.42.15679m44c0.41.15680m44w0.40.15681m44g0.111.95682m44h0.42.55683m44s0.22.95684m44q0.40.85685m44r0.0010.05686m44t0.41.35687m44y0.21.15688m44l0.90.85689m44p0.03.45690m44f0.81.0
[1059]
b)大肠杆菌与哺乳动物细胞中的比较
[1060]
i)大肠杆菌(kd和bmax)
[1061]
将2ml诱导培养基(lb+100ug/ml amp+0.1％鼠李糖)接种100ul每种突变体的过夜培养物。使细胞在37℃于试管中生长3小时。将250ul细胞稀释在5ml plb裂解缓冲液中，并在室温下孵育约10分钟。制备20ml的20um的于plb裂解缓冲液(80ul)中的furimazine，以及三个3倍滴定系列的于furimazine试剂(50um于2ml中)中的pep289(10ul的于990ul中的5mm样品，然后300ul于700ul中，组合3倍稀释系列)。将50ul细胞裂解物与50ul pep289滴定液混合，在室温下孵育5分钟，然后在gmm+上读取发光。
[1062]
ii)哺乳动物细胞表达
[1063]
a)转染方案：吸取在t-150烧瓶中生长至汇合的hela细胞(pkcα-hibit克隆)的培养基，并用10ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpbs，并加入4ml tryple express胰蛋白酶(life technologies 12604)。将细胞在37℃下孵育2-3分钟，然后重悬于16ml生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。将细胞以200rpm旋转5分钟，吸取上清液，加入20ml dmem+10％fbs。对细胞进行计数，然后稀释至1,000,000个细胞/ml。将1ml细胞和3ml dmem+10％fbs铺板在6cm培养皿中，并孵育24小时。
[1064]
b)转染复合物：对于每份待测试的dna样品，加入与400ul optimem(life technologies 11058)、30μl fugenehd转染试剂(promega e2311)组合并混合的10ug dna(1ug编码膜传感器的dna和9ug载体dna)(promega e4882)，并在环境温度下孵育10分钟。将转染复合物加入铺板的细胞中，并孵育24小时。
[1065]
c)基于细胞的发光测定：从转染细胞hela细胞中吸取培养基，然后用5ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpbs，并加入0.75ml tryple express胰蛋白酶
(life technologies 12604)。将细胞在37℃下孵育2-3分钟，然后重悬于4ml生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。将100μl每种样品加入白色96孔测定板(corning 3917)的每个孔中。对于每种样品，总共使用30个孔，每行10个孔，共3行。将细胞再孵育16-24小时。
[1066]
第二天早上，将生长培养基吸出并替换为90μl含有1.1x活细胞底物(promega n2012)的不依赖于co2的培养基(life technologies 18045)+10％fbs，孵育10分钟，并将10μl滴定的pma化合物添加到每个孔中。(参见，例如图225-227)。在设定为37℃和超过1小时过程的动力学运行的glomaxmulti+光度计上检测发光。除非另有说明，否则报道的发光是动力学运行的峰高。
[1067]
表17.以atg-5534作归一化的rlu、s/b、bmax和kd值。
[1068][1069]
实施例129
[1070]
链9检测多肽
[1071]
通过将链10序列置于lgtrip多肽的n-末端来制备多肽构建体。这种构型在链9序列存在时产生增加的发光。在本文实施方案的开发过程中进行了实验，以确定被测试的链9肽(pep521和pep840)的检测限。
[1072]
a)具有pep521和pep840的链9检测蛋白
[1073]
将每种链9检测蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至20nm。从20um开始，将pep521和pep840的3倍稀释系列在tbs+0.01％bsa中进行稀释。将50ul的每种酶的稀释液以一式两份与50ul的每种肽的滴定液混合，并在振荡器上孵育10分钟以达到预平衡。通过将nano-glo活细胞基质(furimazine；promega；n205)在tbs+0.01％bsa中稀释30倍来制备测定缓冲液，向每个孔中加入100ul测定缓冲液，在室温下孵育5分钟，然后在gmm+上读取发光。背景读数是从不含肽的样品中获得的。
[1074]
图200显示所有三种链9检测蛋白与pep840的结合比与pep521的结合更紧密。
[1075]
b)具有pep840的链9检测蛋白
[1076]
将每种链9检测蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm。从0.5um开始，在tbs+0.01％bsa中进行稀释pep840的3倍稀释系列。将50ul的每种酶稀释液以一式四份与50ul的每种肽滴定液组合，并在振荡器上孵育10分钟以进行预平衡。通过将nano-glo活细胞基质(furimazine；promega；n205)在tbs+0.01％bsa中稀释30倍来制备测定缓冲液，向每个孔中加入100ul测定缓冲液，在室温下孵育5分钟，然后在gmm+上读取发光。背景读数是从不含肽的样品中获得的。
[1077]
关于图20，左边的图显示了在50nm的三种链9检测构建体存在的情况下链9肽840的滴定。右边的图显示了每种链9检测蛋白的背景(无肽840)和每个链9检测蛋白的0.1nm肽840下的信号背景比。
[1078]
实施例130
[1079]
接头测试系列
[1080]
a)在lb+0.1％鼠李糖+100u/ml氨苄青霉素中以1∶20(150μl对3ml)稀释环状排列的链9检测变体的过夜培养物，在37℃下生长4小时，然后在plb裂解缓冲液(0.3x plb+25mm hepes ph 7.5)中进行裂解(500ul裂解物对4.5ml plb裂解缓冲液)。为了进行测定，将裂解物以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中。从10nm开始，制备pep840(链9)的3倍稀释系列。将50ul的每种稀释的裂解物与50ul的肽滴定液组合，并在设定为600rpm的振荡器上于室温下孵育20分钟。向每个孔中加入100ul nano-缓冲液+50um furimazine，然后在gmm+上读取发光。用于每种测试的构建体的接头是：atg-4992，8gs；atg-5485，5gs；atg-5486，6gs；atg-5487，7gs；atg-5488，9gs；atg-5489，10gs；和atg-5490，11gs。
[1081]
图202显示，除atg-5485外，每个具有5aa接头的克隆都产生与atg-4992相似的发光。实验证明，链10与lgtrip之间的接头长度在链9序列的检测中未起重要作用。
[1082]
b)8gs接头(atg-4992)对比11gs(atg-5490)接头
[1083]
使用magnehis纯化系统纯化atg-4992和atg-5490蛋白。(promega)。将4992和5490的纯化蛋白在不依赖于co2的培养基+10％fbs中稀释至100nm。从10nm开始，在nano-缓冲液+50um furimazine(promega n113)中制备pep840的3倍系列稀释液。将50ul每种酶稀释液以一式四份与50ul肽滴定液组合。在gmm+光度计上测量随时间推移的发光。
[1084]
图203显示，绘制的数据来自50分钟动力学读数，并且具有较长接头的5490提供了比4992多2倍的发光。
[1085]
实施例131
[1086]
atg-4992和atg-5490变体的kd的测定
[1087]
在lb+100ug/ml氨苄青霉素中制备每种变体的过夜培养物。第二天，在lb+0.1％鼠李糖+100ug/ml氨苄青霉素中以1∶20(150ul比3ml)稀释培养物。使培养物在37℃下生长4小时，然后用plb裂解缓冲液(0.3x plb(promega)+25mm hepes ph 7.5)裂解(500ul裂解物比4.5ml plb裂解缓冲液)。为了进行测定，将裂解物以1∶100稀释到tbs+0.01％bsa中。从40um开始，制备链9(pep840)的3倍稀释系列。将50ul滴定系列与50ul每种稀释的裂解物组合，在室温下于设定为600rpm的轨道振荡器上孵育20分钟，加入100ul nano-缓冲液+50um furimazine(promega；n113)，并在gmm+上读取发光。结果如图204所示。
[1088]
实施例132
[1089]
atg-4992与atg-5490变体的比较
[1090]
使用magnehis纯化系统纯化atg-4992和atg-5490变体蛋白。(promega)。然后将纯化的蛋白质在不依赖于co2的培养基+10％fbs中稀释至100nm。从2nm开始，在nano-缓冲液+50um furimazine(promega n113)中制备pep840的3倍系列稀释液。将50ul的每种酶稀释液以一式三份与50ul的肽滴定液组合。在gmm+光度计上每5分钟测量一次发光。结果在图205中描述为从60分钟时间点绘制的数据，并且表明变体5515和5517具有较低的计算kd值(实施例131)，并且当与pep840配对时显示较高的rlu信号对背景值。
[1091]
实施例133
[1092]
atg-4166变体的筛选
[1093]
表18.不同主链中的lgbit序列。(用于蛋白质纯化或传感器融合的c-末端his标签(ph结构域-gssg-halotag-gssg-lgbit突变体)。
[1094][1095]
i)bmax和kd测定
[1096]
使用magnehis纯化系统纯化atg-4166变体蛋白。(promega)。然后将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。在tbs+0.01％tergitol中制备pep289(vs-hibit)的3倍系列稀释液，其中一个系列始于400nm，另一个始于20um。将50ul的每种酶稀释液(0.2nm)与50ul的肽滴定液组合，并在振荡器上孵育10分钟。加入100ul在tbs+0.0.1％tergitol中稀释250倍的furimazine(n113)，并将样品再次置于振荡器上进行5分钟。在gmm+光度计上测量发光。计算bmax和kd，结果如206所示。
[1097]
ii)不同ph下的活性
[1098]
将atg-4166变体蛋白在tbs+0.01％bsa中稀释至0.2nm。将20um pep289(vs-hibit)加入到每份变体蛋白样品中，并在室温下孵育20分钟。将990ul的每种ph缓冲溶液加入深孔板的孔中。向每个孔中加入10ul furimazine(n113)，并向每个孔中加入50ul的各种变体蛋白质/肽样品。将平板在室温下孵育12分钟，并在gmm+光度计上测量发光。计算活性，结果如图207所示。
[1099]
ph缓冲液系列制备：在400ml水中混合下表中列出的组分。将30ml缓冲液添加到12个50ml的管中，并使用naoh或hcl来产生必需的ph值。
[1100]
表19.通用ph缓冲液的配制
[1101][1102]
实施例134
[1103]
atg-5823、atg-5824和atg-5825变体的筛选
[1104]
使用magne his纯化系统(promega)纯化变体蛋白(atg-5823、atg-5824和atg-5825)。使用具有镍琼脂糖凝胶柱的akta纯化atg-5146。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。从100nm开始，在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中制备pep263的三倍稀释系列。将50ul的每种酶与50ul的肽稀释系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育10分钟。孵育后，将100ul的lcs(n205；promega)以1∶30稀释至tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。计算bmax和kd，并且图208所示的结果表明这些变体的bmax和kd相似。
[1105]
实施例135
[1106]
atg-5826和atg-5827变体的筛选
[1107]
i.pep86
[1108]
使用magnehis纯化系统(promega v8500)纯化变体蛋白(atg-5826和atg-5827)。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中，从1um和100nm开始制备pep86的两个2倍滴定系列。将50ul的atg-5826和atg-5827与50ul的始于1um的肽稀释系列组合。将50ul的lgbit蛋白(promega；n401c)与始于100nm的肽滴定系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育10分钟。孵育后，将100ul的lcs(n205；promega)以1∶30稀释到tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。计算bmax和kd，并且图209所示的结果表明这些变体的bmax和kd相似。链9的具有760序列的克隆显示出显著更高的kd。这表明诸如这两种含有760序列的变体等变体具有更高的kd值。
[1109]
ii.pep114
[1110]
使用magehis纯化系统(promega v8500)纯化变体蛋白(atg-5826和atg-5827)。首先将纯化的蛋白质在tbs+0.01％bsa中稀释至200nm，然后在tbs+0.01％bsa中进一步稀释至0.2nm。从1mm开始，在tbs+0.01％bsa+0.02％tergitol中制备pep114的两个2倍滴定系列。将50ul的atg-5826、atg-5827和lgbit蛋白(promega n401c)与肽滴定系列组合。将样品在轨道振荡器(600rpm)上孵育30分钟。孵育后，将100ul的lcs(n205 promega)以1∶30稀释到tbs+0.01％bsa中，并加入到每种样品中。将样品在室温下孵育3分钟，然后在glomaxmulti+上测量发光。计算bmax和kd，并且图210所示的结果表明与pep86相比的bmax值的类似趋势(atg-5826＞lgbit＞atg-5827)。与lgbit/pep114相比，atg-5826和atg-5827
均具有略微较低的计算的kd值，但与lgbit/hibit(pep86)相比，具有显著较高的kd值。
[1111]
实施例136
[1112]
atg-5823、atg-5824、atg-5825、atg-5826和atg-5827变体的sds-page
[1113]
将每种变体蛋白在tbs+1x sds上样染料中稀释至0.1ug/ml。将样品加热至70℃持续5分钟，然后将3ul(0.3ug)上样至sds page凝胶(biorad criterion)。结果如图211所示。
[1114]
实施例137
[1115]
使用3种标记方法进行加标抗体滴定：
[1116]
nanotrip、巯基-trip标记和nhs-ca-halotag-trip标记
[1117]
图212提供了每种标记方法的演示。
[1118]
i)nanotrip-基因融合
[1119]
在pbs+0.01％bsa或pbs+20％人血清中制备始于4ug/ml的两倍抗体滴定液，留下第24孔作为“无抗体”对照。(合并等量的sino抗体d1-d5)。将50ul的每种抗体滴定液一式三份加入白色测定板的孔中。制备每种组合的预混合物，每种组合具有每种链9和链10蛋白以及2μm的lgtrip。将125ng/ml用于atg-5547和atg-5546，并且将500ng/ml用于atg-5541。将50ul的每种组合(atg-5546+atg-5541或atg5547+atg-5541)的预混合物加入到抗体滴定液中，并在室温下孵育60分钟。通过在pbs+0.01％bsa中以1∶30稀释活细胞基质(n205)来制备检测试剂，并向每个样品中加入100ul。将平板孵育3分钟，然后在glomax discover上测量发光。将rlu读数除以“无抗体”对照以获得信号/背景读数。
[1120]
ii)巯基-trip和nhs-ca-halotag-trip标记
[1121]
图214证明了三种不同的nanotrip检测方法能够检测sars-cov/cov2抗体。
[1122]
sino biologicals(sars-cov/sars-cov2刺突)抗体：
[1123]
d140150-d001ha14ma0604d240150-d002ha14fe2802d340150-d003ha14fe2803d440150-d004ma14ap0203d540150-d005ha14fe2502
[1124]
将约50ul在0.01％pbsa中制备的2x rbd试剂+2x lgtrip加入到96孔测定板的孔中。对于nhs-ca-halotag-trip标记，将rbd试剂制备成8ng/ml rbd-halotag-hibit+16ng/ml rbd-halotag-smtrip9(pep840)+1um lgtrip atg-5146的终浓度/孔。对于巯基-trip标记，将rbd试剂制备成15ng/ml rbd-hibit+15ng/ml sulfose-peg6-rbd-smtrip9(pep840)-psa(图213)+1um lgtrip atg-5146的终浓度/孔。将50ul在0.01％pbsa或稀释在0.01％pbsa中的20％血清中制备的2x混合抗体加入每种样品中，并孵育45分钟。在0.01％pbsa中制备20um活细胞基质，向每个孔中加入100ul，并在光度计上读取总发光。
[1125]
实施例138
[1126]
sars-cov-2核衣壳滴定
[1127]
分别用halotag-smtrip9(pep840)和halotag-vshibit标记抗核衣壳抗体克隆9547(meridian biosciences)和抗核衣壳抗体克隆9548(meridian biosciences)。将25ul/孔的ab+lgtrip atg-5146的4x混合物加入到非结合表面的固体白色96孔微量滴定板
(costar 3600)的孔中，以达到30ng/ml ab-smtrip9+60ng/ml ab-hibit+1um lgtrip atg-5146的终浓度/孔。将25ul/孔的4x重组核壳蛋白溶液(meridian biosciences目录号9560)加入到每个孔中，然后加入50ul/孔的活细胞底物2x溶液，以达到10um底物的终浓度/孔。将平板孵育15分钟，并在glowmax光度计上测量总发光。
[1128]
图215证明了三元nanoluc标记的抗体检测sars-cov-2核壳蛋白。
[1129]
实施例139
[1130]
鼻咽拭子样品中sars-cov-2核壳蛋白的护理点拭子
[1131]
产生含有120ng/ml抗核衣壳抗体halotag-smtrip9、240ng/ml抗核衣壳抗体halotag-hibit、4um lgtrip atg-5146、40um的于乙醇中的furimazine、1.2mm偶氮-硫代胸腺嘧啶(att)、1.2mm抗坏血酸、0.6％普鲁兰多糖(pullulan)w/v、4.8mm hepes缓冲液ph 8.0、21.6mm甘氨酸、4.8mm组氨酸、6mg/ml蔗糖和0.0024％聚山梨醇酯80的原液。将100ul原液分配到塑料拭子夹套中，并装载到冻干器(virtis genesis 12el)上，其中搁板(shelve)被预设为4.0℃。在系统抽真空后，在-25℃与+25℃的搁板温度之间进行冻干过程。冰升华相持续8小时，并且结合水解吸相持续16小时。在冻干过程结束时，用n
°
回填拭子，并通过手动插入第二个塑料拭子夹套来密封。
[1132]
然后用100ul鼻咽拭子样品+300μl含0.01％bsa的pbs将含有冻干测定试剂的拭子再水合。在15分钟、30分钟、45分钟和60分钟时，在手持发光计(prom4ega)上测量总发光，并作图。
[1133]
图216显示了3个pcr确认为阴性(ns46、ns47和ns52)和3个pcr确认为阳性的样品(ps46、ps49和ps56)的结果。
[1134]
实施例140
[1135]
含氟-fz的单体nanobit
[1136]
将待测的每种酶稀释到tbs+0.01％bsa中。利用furimazine(n205)或jrw-1677的滴定系列由tbs(始于20um)或缓冲液(始于25um；promega n112)制备。用tbs+0.01％bsa或缓冲液连续稀释每种底物。将50ul的每种酶稀释液与50ul的每种底物滴定液组合。将平板孵育3分钟，然后在gmm+光度计上测量发光。graphpad prism用于使用michaelis-menten最小平方拟合生成非线性回归。
[1137]
图217提供furimazine和jrw-1667的动力学参数(vmax和千米)。当使用tbs稀释底物时，与单体nanobit构建体相比，nanoluc(atg-462)对于furimazine和jrw-1667两者产生更高的rlu值(约10-20倍)。nanoluc和单体构建体在furimazin/缓冲液中显示出相似的rlu值，但只有nanoluc对于jrw-1667显示出改善的发光。尽管对于furimazine和jrw-1667两者，单体nanobit构建体都显示出较低的rlu值，但两种缓冲液和两种底物的rlu值相似。
[1138]
与nanoglo相比，tbs+0.01％bsa中的km值较低，但除atg-3562(单体lgbit-smbit)外，每种条件下的km值通常相似，这表明对于所有测试条件计算的km较低。
[1139]
实施例141
[1140]
哺乳动物细胞表达和萤光成像
[1141]
转染方案：制备细胞：从在t-75烧瓶中生长至汇合的hela细胞中吸取培养基，并用
10ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpbs并加入2ml tryple express胰蛋白酶(life technologies 12604)。在37℃下孵育细胞2-3分钟，然后将细胞重悬于8ml的生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。以200rpm旋转细胞5分钟。吸取上清液并加入10ml的dmem+10％fbs。计数细胞，然后稀释至100,000个细胞/ml。将3ml细胞铺板至6孔板的每个孔中。孵育细胞24小时。
[1142]
转染复合物：对于每份待测试的dna样品，将2.5μg的dna(0.25μg编码传感器的dna，和2.25μg的运载体dna)(promega e4882)与100ul的optimem(life technologies 11058)组合并混合。接着加入7.5μl的fugene hd转染试剂(promega e2311)并在环境温度下孵育转染复合物10分钟。向含有铺板的细胞的每个孔中加入转染复合物。孵育细胞24小时。
[1143]
荧光成像：将转染的细胞重新铺板到8孔室载玻片(mattek玻璃底)上。从转染的细胞hela细胞中吸取培养基，并用3ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpbs并加入0.5ml的tryple express胰蛋白酶(life technologies 12604)。在37℃下孵育细胞2-3分钟，然后将细胞重悬于3ml生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。计数细胞，然后稀释至每毫升50,000个细胞/ml。每个孔涂铺500μl。对于通过bacmam转导递送的细胞标志物，在铺板3小时后，添加10％(v/v)的celllight质膜-gfp(thermo fisher c10607)或celllight高尔基体-gfp(thermo fisher c10592)或celllight溶酶体-gfp(thermo fisher c10507)。将细胞再孵育16-24小时。
[1144]
第二天早上，吸取生长培养基，并替换为400μl fluorobrite dmem+10％fbs(life technologies a1896701)+10％fbs。在fluorobrite dmem+10％fbs中制备janelia fluor 549 halotag(promega ga1110)的5倍稀释液，并向每个孔中添加100μl。孵育30分钟。用500μl fluorobrite dmem+10％fbs洗涤细胞30分钟。将细胞用合适的细胞标志物染色。染色程序遵循制造商建议。用mitotracker green fm(thermo fisher m7514)对线粒体进行染色。用er-tracker red(thermo fisher e34250)对内质网进行染色。用核探针nucblue live readyprobes试剂(thermo fisher r37605)对细胞进行复染。用c2激光扫描共聚焦显微镜(nikon)对细胞进行成像。
[1145]
结果示于图218-图224的图像中。
[1146]
实施例142
[1147]
哺乳动物细胞表达和发光测定
[1148]
转染方案：制备细胞：从在t-150烧瓶中生长至汇合的hela细胞(pkcα-hibit克隆)中吸取培养基，并用10ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpb s并加入4ml tryple express胰蛋白酶(life technologies 12604)。在37℃下孵育细胞2-3分钟，然后将细胞重悬于16ml生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。以200rpm旋转细胞5分钟。吸取上清液并加入20ml的dmem+10％fbs。计数细胞，然后稀释至1,000,000个细胞/ml。将1ml细胞和3ml dmem+10％fbs铺板在6cm培养皿中。孵育细胞24小时。
[1149]
转染复合物：对于每份待测试的dna样品，将10ug的dna(1ug编码传感器的dna，和9ug的运载体dna)(promega e4882)与400ul的optimem(life technologies 11058)组合并混合。接着加入30μl的fugene hd转染试剂(promega e2311)并在环境温度下孵育转染复合
物10分钟。向含有铺板的细胞的6cm培养皿中加入转染复合物。孵育细胞24小时。
[1150]
基于细胞的发光测定：将转染的细胞重新铺板至白色96孔测定板上。从6cm培养皿中的转染的细胞hela细胞中吸取培养基，并用5ml dpbs洗涤细胞。(life technologies 14190)。吸取dpbs并加入0.75ml的tryple express胰蛋白酶(life technologies 12604)。在37℃下孵育细胞2-3分钟，然后将细胞重悬于4ml的生长培养基(dmem life technologies 11995)+10％fbs(vwr 89510-194)中。将100μl的每种样品铺板在白色96孔测定板的30个孔中。将细胞再孵育16-24小时。
[1151]
第二天早上，吸取生长培养基，并替换为90μl的含有1.1x nanoglo活细胞底物(promega n2012)的不依赖于co2的培养基(life technologies 18045)+10％fbs。孵育10分钟。向每个孔中加入10μl经滴定的pma化合物。(图中显示了终pma浓度)。将平板置于设定为37℃的glomaxmulti+光度计中，并在1小时的过程中进行动力学分析。除非另有说明，否则报道的发光是动力学运行的峰高。
[1152]
结果示于图225-图227中。
[1153]
实施例143
[1154]
lgtrip 3546优化
[1155]
在本文实施方案的开发过程中进行了实验，以优化lgtrip 3546(seq id no：51)的不同位置处的氨基酸的身份，如下文表20中所示。为每个样品制备大肠杆菌培养物(200μl)，并在37℃下于lb培养基+100μg/ml氨苄青霉素中生长过夜。然后将培养物一式四份在诱导培养基(lb+氨苄青霉素+0.1％鼠李糖)中稀释至20x浓度(10μl于200μl中)。使样品在37℃下生长3小时。然后用0.3x plb+25mm hepes ph 7.5+0.001u/ml dna酶裂解样品(10μl细胞对250μl裂解缓冲液)。然后将50μl裂解物与50μl缓冲液+50μm furimazine+50nm二肽788(seq id no：51)组合。在bmg clariostar光度计上测量样品。将rlu值以lgtrip 3546(seq id no：51)作归一化。
[1156]
表20.用于lgtrip 3546优化的氨基酸取代
[1157]
[1158][1159][1160]
序列
[1161]
下列多肽序列各自包含n末端甲硫氨酸残基或相应的atg密码子；缺少n末端甲硫
氨酸残基或相应的atg密码子的多肽序列也在本文的范围内，并通过引用并入本文。
[1162]
下列肽序列(和表1的肽序列)各自缺少n末端甲硫氨酸残基；包含n末端甲硫氨酸残基的肽序列也在本文的范围内，并通过引用并入本文。
[1163]
本文描述的一些实施方案参考了表1中的加有his标签(或加有非his标签的)序列；利用序列的加有非his标签(或加有his标签的)形式的替代实施方案(出现在表1中，或者未列出)都在本文的范围内。
[1164]
表1.示例性肽、二肽和多肽序列。
[1165]
[1166]
[1167]
[1168]
[1169]
[1170]
[1171]
[1172]
[1173]
[1174]
[1175]
[1176]
[1177]
[1178]
[1179]
[1180]
[1181]
[1182]
[1183]
[1184]
[1185]
[1186]
[1187]
[1188]
[1189]
[1190]
[1191]
[1192]
[1193]
[1194]
[1195]
[1196]
[1197]
[1198]
[1199]
[1200]
[1201]
[1202]
[1203]
[1204]
[1205]
[1206]
[1207]
[1208]
[1209]
[1210][1211]
表9.示例性的肽序列。
[1212]
[1213]
[1214]
[1215]
[1216]
[1217]
[1218][1219]
表10.示例性的萤光素酶基础序列
[1220]
[1221][1222]
表11.示例性多肽
[1223][1224]
5333上的突变
[1225]
atg-5538(i41t)核苷酸(seq id no：934)
[1226]
[1227][1228]
atg-5538(i41t)氨基酸(seq id no：935)
[1229][1230]
atg-5339(k11n)核苷酸(seq id no：936)
[1231][1232]
atg-5339(k11n)氨基酸(seq id no：937)
[1233][1234]
atg-5340(r152q)核苷酸(seq id no：938)
[1235][1236]
atg-5340氨基酸(seq id no：939)
[1237][1238]
atg-5407 v135a核苷酸(seq id no：940)
[1239]
[1240][1241]
atg-5407 v135a氨基酸(seq id no：941)
[1242][1243]
atg-5408 d156n核苷酸(seq id no：942)
[1244][1245]
atg-5408 d156n氨基酸(seq id no：943)
[1246][1247][1248]
atg-5409 h57q核苷酸(seq id no：944)
[1249][1250]
atg-5409 h57q氨基酸(seq id no：945)
[1251][1252]
atg-5411 n33k+i155v核苷酸(seq id no：946)
[1253][1254][1255]
atg-5411 n33k+i155v氨基酸(seq id no：947)
[1256][1257]
atg-5412 i54v+l127a核苷酸(seq id no：948)
[1258][1259]
atg-5412 i54v+l127a氨基酸(seq id no：949)
[1260][1261][1262]
atg-5413 m44l+v135a核苷酸(seq id no：950)
[1263][1264]
atg-5413 m44l+v135a氨基酸(seq id no：951)
[1265][1266]
atg-5414 v119a核苷酸(seq id no：952)
[1267][1268][1269]
atg-5414 v119a(氨基酸)(seq id no：953)
[1270][1271]
atg-5416 d9a+h57q核苷酸(seq id no：954)
[1272][1273]
atg-5416 d9a+h57q(氨基酸)(seq id no：955)
[1274][1275][1276]
atg-5417 n33d+i41t核苷酸(seq id no：956)
[1277][1278]
atg-5417 n33d+i41t氨基酸(seq id no：957)
[1279][1280]
atg-5418 q32r+i155t核苷酸(seq id no：958)
[1281][1282][1283]
atg-5418 q32r+i155t氨基酸(seq id no：959)
[1284][1285]
atg-5419 d19v+m106t+v120l核苷酸(seq id no：960)
[1286][1287]
atg-5419 d19v+m106t+v120l氨基酸(seq id no：961)
[1288][1289]
atg-5420 i41n+e63g核苷酸(seq id no：962)
[1290][1291]
atg-5420 i41n+e63g氨基酸(seq id no：963)
[1292][1293]
atg-5421 n50s核苷酸(seq id no：964)
[1294][1295][1296]
atg-5421 n50s氨基酸(seq id no：965)
[1297][1298]
atg-5432 l3h核苷酸(seq id no：966)
[1299][1300]
atg-5432氨基酸(seq id no：967)
[1301][1302]
atg-5433 t13s核苷酸(seq id no：968)
[1303][1304]
atg-5433 t13s氨基酸(seq id no：969)
[1305][1306]
atg-5434 p93h核苷酸(seq id no：970)
[1307][1308][1309]
atg-5434 p93h氨基酸(seq id no：117)
[1310][1311]
atg-5435 f120l核苷酸(seq id no：118)
[1312][1313]
atg-5435 f120l氨基酸(seq id no：119)
[1314][1315]
atg-5437 s157r核苷酸(seq id no：120)
[1316]
[1317][1318]
atg-5437 s157r氨基酸(seq id no：121)
[1319][1320]
atg-5438 h86l核苷酸(seq id no：122)
[1321][1322]
atg-5438 h86l氨基酸(seq id no：123)
[1323][1324]
atg-5439 m149v核苷酸(seq id no：124)
[1325][1326]
atg-5439 m149v氨基酸(seq id no：125)
[1327][1328]
atg-5440 i59v核苷酸(seq id no：126)
[1329]
[1330][1331]
atg-5440 i59v氨基酸(seq id no：127)
[1332][1333]
atg-5441 d19a核苷酸(seq id no：128)
[1334][1335]
atg-5441 d19a氨基酸(seq id no：129)
[1336][1337]
atg-5442 q69l+t144s核苷酸(seq id no：130)
[1338][1339]
atg-5442 q69l+t144s氨基酸(seq id no：131)
[1340][1341]
atg-5456 k11y核苷酸(seq id no：132)
[1342][1343][1344]
atg-5456 k11y核苷酸氨基酸(seq id no：596)
[1345][1346]
atg-5457 k11r核苷酸(seq id no：597)
[1347][1348]
atg-5457 k11r氨基酸(seq id no：598)
[1349][1350][1351]
atg-5458 k11l核苷酸(seq id no：599)
[1352][1353]
atg-5458 k11l氨基酸(seq id no：600)
[1354][1355]
atg-5459 r152q核苷酸(seq id no：601)
[1356][1357][1358]
atg-5459 r152q氨基酸(seq id no：602)
[1359][1360]
atg-5460 n156d核苷酸(seq id no：603)
[1361][1362]
atg-5460 n156d氨基酸(seq id no：604)
[1363][1364][1365]
atg-5491 k11q核苷酸(seq id no：605)
[1366][1367]
atg-5491 k11 q氨基酸(seq id no：606)
[1368][1369]
atg-5492 k11m核苷酸(seq id no：607)
[1370][1371][1372]
atg-5492 k11m氨基酸(seq id no：608)
[1373][1374]
atg-5493 k11h核苷酸(seq id no：609)
[1375][1376]
atg-5493 k11h氨基酸(seq id no：610)
[1377][1378][1379]
atg-5494 k11f核苷酸(seq id no：611)
[1380][1381]
atg-5494 k11f氨基酸(seq id no：612)
[1382][1383]
atg-5495 k11w核苷酸(seq id no：613)
[1384][1385][1386]
atg-5495 k11w氨基酸(seq id no：614)
[1387][1388]
atg-5505 v135a+r152q核苷酸(seq id no：615)
[1389][1390]
atg-5505 v135a+r152q氨基酸(seq id no：616)
[1391][1392]
atg-5506 v135a+r152q+n156d核苷酸(seq id no：617)
[1393][1394]
atg-5506 v135a+r152q+n156d氨基酸(seq id no：618)
[1395][1396]
atg-5507 p93h+v135a核苷酸(seq id no：619)
[1397][1398][1399]
atg-5507 p93h+v135a氨基酸(seq id no：620)
[1400][1401]
atg-5508 p93h+r152q核苷酸(seq id no：621)
[1402][1403]
atg-5508 p93h+r152q氨基酸(seq id no：622)
[1404][1405]
atg-5509 p93h+r152q+n156d核苷酸(seq id no：623)
[1406][1407]
atg-5509 p93h+r152q+n156d氨基酸(seq id no：624)
[1408][1409]
atg-5510 p93h+v135a+r152q核苷酸(seq id no：625)
[1410][1411][1412]
atg-5510 p93h+v135a+r152q氨基酸(seq id no：626)
[1413][1414]
atg-5511 p93h+v135g+r152q核苷酸(seq id no：627)
[1415][1416]
atg-5511 p93h+v135g+r152q氨基酸(seq id no：628)
[1417][1418]
5344上的突变
[1419]
atg-5534 p93h+v135a+r152q(经密码子优化的5510)核苷酸(seq id no：629)
[1420][1421]
atg-5534 p93h+v135a+r152q(经密码子优化的5510)氨基酸(seq id no：630)
[1422][1423]
atg-5535 p93h+v135a+r152q+n156d核苷酸(seq id no：631)
[1424][1425][1426]
atg-5535 p93h+v135a+r152q+n156d氨基酸(seq id no：632)
[1427][1428]
atg-5536 e4d+v135a+r152q核苷酸(seq id no：633)
[1429][1430]
atg-5536 e4d+v135a+r152q氨基酸(seq id no：634)
[1431][1432][1433]
atg-5537 e4d+q42m+p93h+v135a+r152q核苷酸(seq id no：635)
[1434][1435]
atg-5537 e4d+q42m+p93h+v135a+r152q氨基酸(seq id no：636)
[1436][1437]
5534上的突变
[1438]
atg-5652 5534+y16f q20p q152h核苷酸(seq id no：637)
[1439][1440][1441]
atg-5652 5534+y16f q20p q152h氨基酸(seq id no：638)
[1442][1443]
atg-5653 5534+m106r，y114f，e4e核苷酸(seq id no：639)
[1444][1445]
atg-5653 5534+m106r，y114f，e4e氨基酸(seq id no：640)
[1446][1447][1448]
atg-5654 5534+m44v核苷酸(seq id no：641)
[1449][1450]
atg-5654 5534+m44v(氨基酸)(seq id no：642)
[1451][1452]
atg-5655 5534+m44i核苷酸(seq id no：643)
[1453][1454][1455]
atg-5655 5534+m44i氨基酸(seq id no：644)
[1456][1457]
atg-5656 5534+a35a，p40p，m106r核苷酸(seq id no：645)
[1458][1459]
atg-5656 5534+a35a，p40p，m106r氨基酸(seq id no：646)
[1460][1461][1462]
atg-5657 5534+m106t核苷酸(seq id no：647)
[1463][1464]
atg-5657 5534+m106t氨基酸(seq id no：648)
[1465][1466]
atg-5659 5534+m106k+l30l+k1 36e核苷酸(seq id no：649)
[1467][1468][1469]
atg-5659 5534+m106k+l30l+k136e氨基酸(seq id no：650)
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