小麦株高性状相关SNP位点及其应用

小麦株高性状相关snp位点及其应用
技术领域
1.本发明属于分子生物学技术领域，尤其涉及一种与小麦株高相关的snp位点及其应用。


背景技术：

2.小麦(triticum aestivum l)是是我国第二大粮食作物。持续确保小麦的稳产和高产是科学育种界面临的主要挑战之一。株高是小麦非常重要的农艺性状，在小麦生产过程中,株高过高易倒伏，过度矮化易早衰，选育适宜株高小麦与高产和稳产密切相关。因此，挖掘调控株高的优异等位变异并开发功能标记在小麦株高改良和小麦高产稳产育种中具有重要的应用价值。
3.目前，研究者已经定位了大量调控株高的qtl。吴铮等研究基于55k芯片标记,以znl12号和7as为亲本创制了一套dh群体材料(含有178个株系)作为定位群体,利用覆盖小麦全部21条染色体的55k标记构建了遗传图谱，与株高紧密连锁的qtl有17个。韩玉洲等研究前期利用小麦品种群体,通过关联分析鉴定到一个小麦株高主效qtl qph.nau
‑
5b，qph.nau
‑
5b不同等位变异效应强弱不同,其中来源于吉春1016和郑麦9023的等位变异平均降秆效应显著大于南大2419的等位变异。
4.目前虽有大量株高相关qtl被鉴定到，但大多qtl的遗传效应仍不清楚。


技术实现要素：

5.本发明要解决的技术问题是提供一种小麦株高性状相关snp位点及其应用。
6.为解决上述技术问题，本发明所采取的技术方案如下。
7.一种用于鉴定或辅助鉴定小麦株高性状的试剂盒，用于检测小麦基因组中如下snp位点的单核苷酸多态性，所述snp位点对应于seq id no.1所示序列自5’末端第2666位碱基。
8.作为本发明的一种优选技术方案，所述snp位点处的核苷酸为g或a；所述snp位点处的核苷酸为g/g纯合时，相对应的基因型是甲；所述snp位点处的核苷酸为a/a纯合时，相对应的基因型是乙。
9.作为本发明的一种优选技术方案，所述试剂盒包含序列表中seq id no.2和seq id no.3组成的引物对1f和1r，和/或序列表中seq id no.4和seq id no.5组成的引物对2f和2r。
10.一种用于鉴定或辅助鉴定小麦株高性状的引物，用于检测小麦基因组中如下snp位点的单核苷酸多态性，所述的snp位点对应于seq id no.1所示序列自5’末端第2666位碱基；所述snp位点处的核苷酸为g或a；所述snp位点处的核苷酸为g/g纯合时，相对应的基因型是甲；所述snp位点处的核苷酸为a/a纯合时，相对应的基因型是乙。
11.作为本发明的一种优选技术方案，所述引物为序列表中seq id no.2和seq id no.3组成的引物对1f和1r，和/或序列表中seq id no.4和seq id no.5组成的引物对2f和
2r。
12.一种用于鉴定或辅助鉴定小麦株高性状的分子标记，其核苷酸序列为seq id no.1中5’末端2636
‑
2877位序列，和/或其核苷酸序列为seq id no.1中5’末端2497
‑
3553位序列。
13.上述试剂盒、引物、分子标记在鉴定或辅助鉴定小麦株高性状中的用途。
14.上述试剂盒、引物、分子标记在小麦育种中的应用。
15.一种鉴定或辅助鉴定小麦株高性状的方法，包括如下步骤：
16.a、对待测小麦基因组dna中任意一段包含如下snp位点的dna片段进行pcr扩增，并将该pcr扩增产物进行酶切鉴定；所述snp位点对应于seq id no.1所示序列自5’末端第2666位碱基；
17.b、确定待测小麦的基因型，所述snp位点处的核苷酸为g/g纯合时，相对应的基因型是甲；所述snp位点处的核苷酸为a/a纯合时，相对应的基因型是乙；
18.c、根据待测小麦基因型按照如下标准确定待测小麦的株高性状：基因型甲纯合小麦的株高大于/候选大于基因型乙纯合小麦的株高。
19.作为本发明的一种优选技术方案，步骤a中：所述的pcr扩增的dna片段为seq id no.1中5’末端2636
‑
2877bp；所述的pcr扩增的特异性引物对为seq id no.2和seq id no.3组成的引物对1f和1r，seq id no.4和seq id no.5组成的引物对2f和2r；所述的酶切包括以下步骤：以小麦基因组dna为模板，以引物1f和1r为引物对扩增得到pcr产物；将此pcr产物稀释10倍，以其作为模板，以引物2f和2r为引物对扩增得到pcr产物；用限制性内切酶sali酶切pcr产物；步骤b中：若pcr产物不能被切开，则该核苷酸多态性位点为g/g，基因型为甲；若pcr产物可以被切开，则该核苷酸多态性位点为a/a，基因型为乙。
20.采用上述技术方案所产生的有益效果在于：本发明通过对小麦自然变异群体中tabhlh92
‑
5b基因启动子、内含子、外显子、3'utr的遗传变异分析，发现有9个snp，根据tabhlh92
‑
5b两种单倍型在2666bp位点处的snp(g/a)，设计caps和dcaps引物，该snp存在两种基因型：基因型甲(g)、基因型乙(a)。通过关联分析证明，这两种单倍型的纯合类型中，株高高矮为：基因型甲纯合的小麦>基因型乙纯合的小麦。实验证明，通过检测所述snp，即可找到株高相对较高的小麦。本发明为小麦的分子标记辅助选择育种提供了一个新方法，在培育高产小麦品种和研究中具有重要意义。
附图说明
21.图1是本发明的snp开发dcaps标记酶切产物电泳检测结果；其中，泳道m为分子量标准；泳道a为被sali切开的条带，泳道g为不能被sali切开的条带。
具体实施方式
22.以下实施例详细说明了本发明。本发明所使用的各种原料及各项设备均为常规市售产品，均能够通过市场购买直接获得。
23.应当理解，当在本技术说明书和所附权利要求书中使用时，术语“包括”指示所描述特征、整体、步骤、操作、元素的存在，但并不排除一个或多个其它特征、整体、步骤、操作、元素的存在或添加。
24.还应当理解，在本技术说明书和所附权利要求书中使用的术语“和/或”是指相关联列出的项中的一个或多个的任何组合以及所有可能组合，并且包括这些组合。
25.如在本技术说明书和所附权利要求书中所使用的那样，术语“如果”可以依据上下文被解释为“当...时”或“一旦”或“响应于确定”或“响应于检测到”。类似地，短语“如果确定”或“如果检测到[所描述条件或事件]”可以依据上下文被解释为意指“一旦确定”或“响应于确定”或“一旦检测到[所描述条件或事件]”或“响应于检测到[所描述条件或事件]”。
[0026]
另外，在本技术说明书和所附权利要求书的描述中，术语“第一”、“第二”、“第三”等仅用于区分描述，而不能理解为指示或暗示相对重要性。
[0027]
在本技术说明书中描述的参考“一个实施例”或“一些实施例”等意味着在本技术的一个或多个实施例中包括结合该实施例描述的特定特征、结构或特点。由此，在本说明书中的不同之处出现的语句“在一个实施例中”、“在一些实施例中”、“在其他一些实施例中”、“在另外一些实施例中”等不是必然都参考相同的实施例，而是意味着“一个或多个但不是所有的实施例”，除非是以其他方式另外特别强调。术语“包括”、“包含”、“具有”及它们的变形都意味着“包括但不限于”，除非是以其他方式另外特别强调。
[0028]
下述实施例中所用的小麦材料均来自国家作物种质库(http://icscaas.com.cn/jiguoku/zhongzhiku.htm)，材料信息见中国作物种质信息网，网址：http://icgr.caas.net.cn。
[0029]
实施例1与小麦株高相关的snp及其pcr
‑
酶切多态性检测
[0030]
1、扩增含小麦该snp的基因组片段的特异引物及序列分析
[0031]
在小麦基因组上的基因tabhlh92
‑
5b内含子区发现1个snp，对应于序列表中seq id no：1自5’末端的第2666位；该位点在小麦自然变异群体中存在两种基因型：基因型甲：g、基因型乙：a。
[0032]
根据小麦不同基因组的序列差异，设计特异性引物pcr扩增分别包含该snp位点在内的dna片段：
[0033]
f1：ggataacgacgaggattctaaaattagttct(seq id no：2)；
[0034]
r1：agtgcgagtagacccccttcaaatttc(seq id no：3)；
[0035]
f2：aattgctgaagggacatattaattcagtcg(seq id no：4)；
[0036]
r2：tggccctgcagattttataacatgtaaact(seq id no：5)；
[0037]
以f1和r1为引物对pcr扩增的靶序列如序列表的序列1所示的2497
‑
3553位序列；以f2和r2为引物对pcr扩增的靶序列如序列表的序列1所示的2636
‑
2877位序列。酶切分析显示，该多态性可分别被sali识别。
[0038]
2、pcr
‑
酶切多态性检测及基因分型方法的建立
[0039]
1)提取待测小麦的基因组dna；
[0040]
2)以步骤1)的基因组dna为模板，用引物f1和r1进行pcr扩增，pcr扩增的体系(10μl)为：ddh2o 7.4μl、10
×
pcr buffer 1μl、引物f1(5μmol/l)和引物r1(5μmol/l)各0.2μl、dntp(2.5μmol/l)0.6μl，taq酶0.1μl、模板(20ng/μl)0.5μl。
[0041]
pcr扩增条件为94℃5min；94℃30s，60℃30s，72℃30s，30次循环；72℃10min，16℃保存。
[0042]
3)将步骤2)的pcr产物稀释10倍，以其为模板，用引物f2和r2进行pcr扩增，pcr扩
增的体系(10μl)为：ddh2o 7.4μl、10
×
pcr buffer 1μl、引物f2(5μmol/l)和引物r2(5μmol/l)各0.2μl、dntp(2.5μmol/l)0.6μl，taq酶0.1μl、模板(20ng/μl)0.5μl。
[0043]
pcr扩增条件为94℃5min；94℃30s，60℃30s，72℃10s，32次循环；72℃10min，16℃保存。
[0044]
4)将步骤3)得到的pcr产物用sali酶切，获得酶切产物，进行4％琼脂糖凝胶电泳检测，记录pcr产物是否被切为两个片段，并根据如下方法判断并记录待测小麦在所述位点的情况：
[0045]
若所述酶切产物为两个片段，则待测小麦在所述位点为a纯合(表示为a/a)的小麦(图1中的泳道a)；
[0046]
若所述酶切产物为一个片段，则待测小麦在所述位点为g纯合(表示为g/g)的小麦(图1中的泳道g)。
[0047]
5)根据步骤4)的结果，将小麦分为在所述位点的情况为如下i、ii两种类型：
[0048]
i：g/g(即基因型甲纯合)；
[0049]
ii：a/a(即基因型乙纯合)；
[0050]
所述“/”前为一条同源染色体上的情况，所述“/”后为另一条同源染色体上的情况。
[0051]
3、利用dcaps标记对自然群体进行分型并与株高性状进行关联分析。
[0052]
以323份六倍体小麦组成的自然群体中各小麦分别作为待测小麦，按照步骤2的方法进行分型，随机对部分小麦的扩增产物进行测序验证，结果如表1所示。
[0053]
表1小麦自然群体中所述多态性位点的情况
[0054]
[0055]
[0056]
[0057][0058]
实施例2
[0059]
2015年，在中国农业科学院作物科学研究所实验农场(北京顺义)的旱地、水地、旱热、水热，2016年在中国农业科学院作物科学研究所实验农场(北京顺义和昌平)的旱地、水地、旱热、水热种植上述自然群体小麦，调查各小麦品种的株高，用tassel2.1软件对株高和所述多态性位点的情况进行关联分析，选择混合线性模型+群体结构(mlm+(q+k))方法进行分析，以p<0.05为显著性水平，结果如表2所示。
[0060]
表2自然群体中tabhlh92
‑
5b基因多态性位点的情况与株高的关联分析结果
[0061][0062]
表2的关联分析结果表明，表1所示的323份六倍体小麦组成的自然群体形成的两种类型的株高差异均达到显著水平(p<0.05)。其中，类型i的小麦株高高于类型ii的小麦株高。10个环境中，类型i的小麦材料的株高分别较ii的小麦高11.602cm、11.346cm、9.470cm、11.568cm、10.368cm、9.832cm、10.431cm、8.530cm、10.564cm、8.184cm。对自然群体的研究表明，类型i是提高小麦株高的优异基因型。
[0063]
在上述实施例中，对各个实施例的描述都各有侧重，某个实施例中没有详述或记载的部分，可以参见其它实施例的相关描述。
[0064]
综上实施例可见，本发明通过对小麦自然变异群体中tabhlh92
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5b基因启动子、内含子、外显子、3'utr的遗传变异分析，发现有9个snp，根据tabhlh92
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5b两种单倍型在2666bp位点处的snp(g/a)，设计caps和dcaps引物，该snp存在两种基因型：基因型甲(g)、基因型乙(a)。通过关联分析证明，这两种单倍型的纯合类型中，株高高矮为：基因型甲纯合的小麦>基因型乙纯合的小麦。实验证明，通过检测所述snp，即可找到株高相对较高的小麦。本发明为小麦的分子标记辅助选择育种提供了一个新方法，在培育高产小麦品种和研究中具有重要意义。
[0065]
以上所述实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的精神和范围，均应包含在本发明的保护范围之内。