用于微量或降解基因组DNA的甲基化文库制备方法及其试剂盒与流程

文档序号:40778486发布日期:2025-01-24 21:18阅读:8来源:国知局
用于微量或降解基因组DNA的甲基化文库制备方法及其试剂盒与流程

本技术涉及甲基化测序,特别是微量或降解基因组dna的甲基化文库制备。本技术还涉及用于微量或降解基因组dna的甲基化文库的试剂盒。本技术的方法和试剂盒特别适用于对甲基化目标区域进行测序分析,且该方法和试剂盒适合微量或降解性严重的样本的文库构建。


背景技术:

1、第二代高通量测序也称为下一代测序技术,可以实现一次对几十万到几百万条核酸分子进行序列测定。现阶段,二代测序在科研上主要应用于基因组测序、转录组测序、群体测序、扩增子测序、宏基因组测序、重测序等。而临床方面,在辅助生殖,如非侵入性产前检查(non-invasive prenatal test,nipt);遗传性疾病,如遗传性致病突变筛查;肿瘤研究,如早期诊断,用药指导,预后判断等中发挥着越来越重要的作用。

2、dna甲基化是基因组dna的一种主要表观遗传修饰形式。近年来的大量研究表明,dna异常甲基化与肿瘤的发生、发展、细胞癌变有着密切的联系。甲基化测序的一个金标准是全基因组重亚硫酸盐测序(whole genome bisulfite sequencing,wgbs),简称bs-seq。其检测原理是用重亚硫酸盐处理,将基因组中未发生甲基化的c碱基转换成u,进行pcr扩增后变成t,与原本具有甲基化修饰的c碱基区分开来,再结合高通量测序技术,与参考序列比对,即可判断cpg/chg/chh位点是否发生甲基化。要实现这一过程,首先需要对基因组进行文库构建,加上适合的接头,然后在测序平台上进行测序。而根据重亚硫酸盐在文库构建过程中加入的不同顺序,可以文库构建分成转化前建库(pre-bs)和转化后建库(post-bs)。pre-bs建库方式需要比较高的投入量,且构建的文库多为at偏好,容易丧失cpg含量较为密集的区域,丢失重要表观遗传信息。而post-bs建库方式,因对dna先进行重亚硫酸盐处理,接着使用连接或pcr的方式进行建库,样本起始量要求低,能够满足多种样本类型如cfdna(cell free dna)、ffpe dna等特殊样本的测序需求。

3、而市场上有诸多测序平台,illumina平台凭借其超低的测序成本和可以接受的读长,成为了目前最主流的二代测序公司。本发明开发了一种低样本起始量下进行wgbs文库构建的方法。其产物可以用于杂交捕获,数据利用率很高。


技术实现思路

1、本技术的目的在于提供一种用于微量或降解基因组dna的甲基化文库制备方法及其试剂盒。在文库构建过程中,对用到的接头进行了改进,流程上进行了优化,使得其可用于全基因组重亚硫酸盐测序(wgbs)和用于杂交快速建库。本技术的dna文库制备方法,同时也可以用于甲基化目标区域测序。在杂交捕获流程中进行验证,取得很好的效果,且测序指标优于市面上转化后建库试剂盒的效果(去重后有效测序深度等重要指标,见附图)。同时该方法也能适合微量或降解性严重的样本的文库构建,最低起始量低至1ng。

2、本技术的具体技术方案如下:

3、1.构建全基因组甲基化文库的方法,包括以下步骤:

4、(1)从生物样本中提取并分离目的基因组dna;

5、(2)对提取后的基因组dna进行重亚硫酸盐转化;

6、(3)在基因组dna片段的5'端加上一个磷酸;

7、(4)用连接酶将接头1连接至基因组dna片段的一端,对连接有接头1的所述基因组dna片段进行捕获和纯化;

8、(5)再次用连接酶将接头2连接到基因组dna片段的另一端,对连接有接头1和2的所述基因组dna片段进行捕获和纯化;

9、(6)通过pcr扩增文库并纯化产物得到全基因组甲基化文库;

10、其中所述接头1和接头2的长度分别为30-50个核苷酸,优选所述接头1和接头2的长度分别为32-45个核苷酸,更优选所述接头1和接头2的长度分别为33-42个核苷酸;

11、所述生物样本可以是新鲜组织、ffpe样本即福尔马林固定石蜡包埋样本或血浆。

12、2.根据项1所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中所述步骤(4)和步骤(5)中的捕获和纯化步骤是用磁珠或纯化柱完成的;所述纯化柱优选为zymo的货号为c1003-50的纯化柱。

13、3.根据项1或2所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中,当所述生物样本为新鲜组织或ffpe样本即福尔马林固定石蜡包埋样本时,在步骤(1)中还有对基因组dna进行片段化的步骤;进行片段化的方法选自雾化、超声片段化、或hydroshear处理。

14、4.根据项3所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中在所述片段化步骤中,将所述基因组dna打断至300-400bp的片段;步骤(6)中的所述纯化步骤用磁珠纯化。

15、5.根据项1-4中任一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中,所述步骤(4)中的所述接头1含有seq id no:1和seq id no:2所示的核苷酸序列、或由如seq id no:1和seq id no:2所示的核苷酸序列组成;所述步骤(5)中的所述接头2含有seq id no:3和seqid no:4所示的核苷酸序列、或由如seq id no:3和seq id no:4所示的核苷酸序列组成。

16、6.根据项5所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中:

17、seq id no:1所示序列的5’端被磷酸化;seq id no:2的5’端不被磷酸化,3’端被封闭基团封闭;所述封闭基团优选为碳间隔、双脱氧核苷酸等;

18、seq id no:3所示序列的5’端被磷酸化;seq id no:4的5’端不被磷酸化,3’端不被封闭基团封闭。

19、7.根据项1-6任一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中在步骤(3)中含有dna变性步骤。

20、8.根据项1-7中任一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其用于纳克级别的基因组dna,优选1ng-20ng,更优选1ng-10ng,更优选1ng-5ng,更优选1ng-3ng,最优选1ng。

21、9.根据项1-4中任一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中步骤(4)和(5)中磁珠的用量为0.8-2倍,优选为1-1.2倍。

22、10.根据项1-4中任一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中步骤(4)和(5)中所用的连接酶选自以下一种或多种:nad-依赖性连接酶,比如taq dna连接酶、丝状栖热菌(thermus filiformis)dna连接酶、大肠杆菌(e.coli)dna连接酶、tth dna连接酶、水管致黑栖热菌(thermus scotoductus)dna连接酶(i和ii)、热稳定连接酶、ampligase热稳定dna连接酶、vanc-型连接酶和9°n dna连接酶;和atp-依赖性连接酶,其包括t4rna连接酶在内、t4 dna连接酶、t3 dna连接酶、t7 dna连接酶、pfu dna连接酶、dna连接酶1、dna连接酶iii和dna连接酶iv。

23、11.根据项10所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中步骤(4)和(5)中所用的连接酶为t4 dna连接酶。

24、12.根据项1~4中任意一项所述构建全基因组甲基化文库的方法,其中,所述步骤(6)中,在通过pcr扩增文库并纯化产物后,还包括质量检测的步骤:检测扩增后的产物片段长度,当产物片段长度为150bp-400bp,则得到的产物为全基因组甲基化文库;优选产物片段长度为150-300bp。

25、13.一种全基因组甲基化文库建库试剂盒,其用于如项1~12任意一项所述的构建全基因组甲基化文库的方法;

26、包括目的基因组dna的提取和分离试剂、重亚硫酸盐转化试剂、核酸5’端磷酸化试剂、接头1和接头2寡核苷酸、接头序列连接试剂、磁珠、pcr扩增试剂。

27、14.一种基因组甲基化目标区域测序方法,其包括以下步骤:

28、(1)采用如项1~12任意一项所述的构建全基因组甲基化文库的方法进行建库;

29、(2)文库样本与探针杂交捕获;

30、(3)捕获后pcr扩增、纯化和质检。

31、15.用于构建dna文库的接头,其包含如seq id no:1-4任一项或多项所述的核苷酸序列,或由如seq id no:1-4任一项或多项所述的核苷酸序列组成。

32、16.根据项15所述的用于构建dna文库的接头,其中所述文库是全基因组甲基化文库。

33、17.根据项15所述的用于构建dna文库的接头,其中所述文库是微量文库;优选所述文库是微量dna全基因组甲基化文库。

34、技术效果

35、本技术提供了一种用于甲基化全基因组建库(wgbs)和甲基化目标区域建库的方法,可用于二代文库制备。此方法可以实现:1)快速且得率很高的wgbs建库和甲基化目标区域建库,并能应用于杂交捕获流程,杂交捕获相较于市面上常用试剂盒,可以达到更高的数据利用率;2)低起始量建库(可用于1ng建库);3)成本低,操作流程简单;4)适用于所有的样本类型dna,如新鲜组织基因组、ffpe样本(formalin-fixed and parrffin embedded,即福尔马林固定石蜡包埋样本)基因组,血浆游离dna等;5)有很高的数据利用率,对于甲基化目标区域测序能带来更高的分子多样性。

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