本发明属于基因工程,具体涉及一种基于crispr/cas9敲除14-3-3ε基因的lmh细胞系的构建方法。
背景技术:
1、14-3-3ε属于14-3-3蛋白家族。14-3-3蛋白家族包含7个成员(β、ε、η、γ、θ、σ和ζ),是目前最常见的接头蛋白之一,可调节蛋白磷酸化,参与磷酸化蛋白的信号转导。在真核细胞中,14-3-3蛋白家族作为关键调节因子参与细胞的多种生理过程,如调节细胞周期、细胞内蛋白的转录、细胞凋亡、细胞自噬、细胞迁移、细胞骨架重塑、dna损伤反应以及dna复制等。作为重要的宿主细胞蛋白,14-3-3蛋白家族在一些病毒的感染致病中发挥了非常重要的作用。其中,家族成员14-3-3ε可通过与病毒蛋白互作,进而参与调控某些病毒的感染与复制,如猪繁殖与呼吸障碍综合症病毒(prrsv)、2型腺相关病毒(aav-2)、登革热病毒(dv)以及鸡新城疫病毒(ndv)等。基于宿主蛋白14-3-3ε参与多种病毒的感染与复制,因此,对14-3-3ε的生物学研究将是今后研究病毒感染致病机制的一大重点。现有技术cn113186187a中公开了基于crsipr技术构建14-3-3ε基因敲除细胞株的方法及其应用,其中首次在鸡成纤维细胞系df-1细胞基因组上敲除14-3-3ε基因,使得14-3-3ε蛋白的表达完全丧失,获得14-3-3ε敲除的df-1细胞株,且敲除细胞株活性、生长速度等方面均与对照细胞无明显差异,该技术主要是为了构建df-1敲除的细胞模型,但是其构建的细胞系对于病毒感染复制功能没有深入研究。
2、crispr/cas系统是一种最早发现于古细菌的病毒防御机制系统,对病毒的感染和外来dna的入侵起防御和保护作用。crispr/cas9基因编辑系统主要由rna导向的cas9核酸内切酶、一条导向rna(sgrna)和反式激活rna(tracrrna)组成。在该系统中,crrna(crispr-derivedrna)通过碱基互补配对与tracrrna结合形成双链rna后,引导cas9蛋白识别靶标序列3’端的pam序列(ngg),并剪切dna,造成dna双链断裂(dsb,double strandbreak)。随后细胞内的dna损伤修复机制启动修复功能,导致碱基随机缺失或插入,从而达到移码突变、沉默基因表达的效果,最终实现目的基因的敲除。由于该技术成本低廉、快速、操作简单且等优点,目前已被大量广泛运用。
技术实现思路
1、发明目的:针对现有技术中存在的不足,本发明提供一种利用crispr/cas9基因编辑技术构建一个鸡源14-3-3ε基因敲除的lmh细胞系,该细胞系的构建为探究鸡源14-3-3ε的生物学功能与解析14-3-3ε基因在fadv-4以及其他lmh细胞易感病毒的感染复制提供了细胞基础,也为其作用机制研究打下了基础。同时,该敲除细胞系也为高效扩增fadv-4提供细胞基础,解决现有的在fadv-4疫苗生产中无法获得高滴度fadv-4的问题。本发明还提供所述的鸡源14-3-3ε基因敲除的lmh细胞系及应用。
2、技术方案:为了实现上述目的,本发明所述一种基于crispr/cas9敲除14-3-3ε基因的lmh细胞系的构建方法,包括以下步骤:
3、(1)设计特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna,所述sgrna位于鸡源14-3-3ε基因的第二个外显子区域,且靶序列唯一;
4、(2)构建含有cas9蛋白基因和上述特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna的敲除质粒;
5、(3)将步骤(2)构建的敲除质粒对lmh细胞进行转染,进行筛选培养后,获得14-3-3ε基因敲除的lmh细胞株,经鉴定后,扩大培养,最终获得14-3-3ε敲除的lmh细胞系。
6、其中,步骤(1)中所述sgrna-5的靶位点位于14-3-3ε基因的第二个外显子,该外显子序列如seq id no.1所示。
7、其中,步骤(1)中所述特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna的编码链及互补链其序列如seq id no.2-3所示。
8、其中,步骤(2)中所述敲除质粒中含有cas9蛋白和上述特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna,或者含有携带编码cas9蛋白的编码序列和编码sgrna的编码序列。
9、其中,步骤(2)中所述敲除质粒中cas9蛋白基因和sgrna序列位于同一载体上,所述载体为lenticrispr v2。
10、作为优选,步骤(2)构建用于靶向敲除鸡源14-3-3ε基因的crispr/cas9基因编辑系统,crispr/cas9基因编辑系统中含有cas9蛋白和上述特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna编码链和互补链,或者含有携带编码cas9蛋白的编码序列和靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna编码序列;在本发明构建的crispr/cas9基因编辑系统中,cas9蛋白基因和sgrna序列位于同一载体上,所用的载体为lenticrispr v2,构建后的载体命名为lenticrispr v2-14-3-3ε-sgrna。
11、其中,步骤(3)中构建的含有cas9蛋白基因和上述特异性靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna的敲除质粒利用转染试剂对lmh细胞进行转染,通过crispr/cas9基因编辑系统实现对lmh细胞中14-3-3ε基因的沉默,利用含有嘌呤霉素细胞培养液进行筛选培养后,通过细胞亚克隆获得14-3-3ε基因敲除的单克隆lmh细胞株,经鉴定后,扩大培养,最终获得鸡源14-3-3ε敲除的lmh细胞系。
12、作为优选,步骤(3)中将构建的靶向鸡源14-3-3ε基因的敲除载体lenticrisprv2-14-3-3ε-sgrna转染至处于生长对数期的lmh细胞中;利用crispr/cas9基因编辑系统使得目的基因沉默,随后通过药物筛选杀死阴性细胞,再通过亚克隆的方法获得14-3-3ε基因敲除的单个细胞株,扩大培养并鉴定,最终获得14-3-3ε-ko lmh细胞系。
13、其中,步骤(3)中所述的敲除细胞系为敲除鸡源14-3-3ε基因的lmh细胞系(鸡肝癌细胞系)。
14、进一步地,本发明中靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna制备方法为:包括将合成的sgrna编码链和互补链退火形成双链sgrna,利用bsmbi限制性内切酶酶切lenticrispr v2载体,将双链sgrna连接至载体t7启动子下游构建获得敲除载体lenticrispr v2-14-3-3ε-sgrna,制备获得14-3-3ε-ko的细胞系,细胞系为敲除鸡源14-3-3ε基因的lmh细胞系。
15、本发明所述的构建方法所构建的鸡源14-3-3ε敲除的lmh细胞系。
16、本发明所述的构建方法所构建的鸡源14-3-3ε敲除的lmh细胞系在高效扩增fadv-4中的应用。
17、进一步地,本发明所述鸡源14-3-3ε基因在调控lmh细胞的血清4型禽腺病毒(fadv-4)以及其他lmh细胞易感病毒感染复制中的应用。
18、进一步地,所述鸡源14-3-3ε基因的敲除或者沉默在促进血清4型禽腺病毒(fadv-4)在lmh细胞中感染复制中的应用。
19、本发明利用crispr/cas9基因编辑技术构建一个鸡源14-3-3ε基因敲除的lmh细胞系。本发明设计了特定的靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna,并构建至含有cas9基因的lenticrispr v2质粒中获得敲除质粒,将构建的敲除质粒转染至lmh细胞中,利用crispr/cas9系统对靶标序列进行切割,促使靶标基因沉默,再结合药物筛选、细胞亚克隆以及western blot鉴定,最终获得14-3-3ε敲除的lmh细胞系(14-3-3ε-ko lmh细胞系)。
20、本发明通过将靶向鸡源14-3-3ε基因的sgrna插入载体lenticrispr v2,并转染lmh细胞,通过药物筛选,有限稀释及亚克隆,最终获得敲除鸡源14-3-3ε基因的lmh细胞系,并发现该敲除细胞系的生长活性与正常lmh细胞无明显差异,且发现可有效促进fadv-4的感染复制。本发明该敲除的细胞系不仅可应用于fadv-4等病毒的高效扩增,而且可应用于探究鸡源14-3-3ε蛋白的生物功能。因此,本发明具有一定的市场应用价值。
21、本发明通过crispr/cas9基因编辑技术,利用药物筛选和细胞亚克隆的方法,成功获得鸡源14-3-3ε基因敲除的lmh细胞系(14-3-3ε-ko lmh细胞系),并发现该敲除细胞系的生长活性与正常lmh细胞无明显差异,且发现14-3-3ε-ko lmh细胞系能够有效促进血清4型禽腺病毒(fadv-4)的感染复制。本发明为探究鸡源14-3-3ε生物学功能以及解析14-3-3ε在fadv-4以及其他lmh细胞易感病毒的感染复制中的作用打下了基础,提供了生物材料。
22、本发明通过设计针对靶标蛋白基因的sgrna,且靶标序列唯一。利用crispr/cas 9基因编辑技术对lmh细胞中鸡源14-3-3ε基因进行切割,以达到14-3-3ε基因的移码和沉默,最终实现14-3-3ε基因的敲除。本发明前期设计了5个靶向不同位置的sgrna来进行敲除细胞系的构建,最后发现本发明中的sgrna-5(表1)才能起到了敲除效果。
23、本发明的技术操作简单、快速、高效且成本低廉,并且结合药物筛选和细胞亚克隆技术,获得了14-3-3ε基因完全敲除且稳定的细胞系。目前尚未有鸡源14-3-3ε参与fadv-4感染复制的相关报道,也没有鸡源14-3-3ε应用于fadv-4高效扩增的报道,本发明首次成功获得鸡源14-3-3ε基因敲除的lmh细胞系(14-3-3ε-ko lmh细胞系),并发现该敲除细胞系的生长活性与正常lmh细胞无明显差异,且发现14-3-3ε-ko lmh细胞系能够有效促进血清4型禽腺病毒(fadv-4)的感染复制。
24、有益效果:与现有技术相比,本发明具有以下优点:
25、本发明首次实现了基于crispr/cas9靶向14-3-3ε-ko的lmh细胞系构建,本发明还提出了构建一种基于crispr/cas9基因编辑技术靶向敲除鸡源14-3-3ε基因的方法,基于本发明建立的14-3-3ε-ko lmh细胞系可以有效促进fadv-4的感染复制,并发现该敲除细胞系的生长活性与正常lmh细胞无明显差异。本发明为探究鸡源14-3-3ε的生物学功能与解析14-3-3ε基因在fadv-4以及其他lmh细胞易感病毒的感染复制中的作用机制打下了基础;同时,该敲除细胞系为进一步高效扩增fadv-4以制备高效价fadv-4疫苗提供细胞支持,因此本发明具有较好的应用研究价值。