本发明属于生物,涉及塞内卡病毒a猪源fab抗体及其竞争elisa检测方法。
背景技术:
1、塞内卡病毒a(senecavirus a,sva)是小rna病毒科(picornaviridae)塞内卡病毒属(senecavirus)的唯一成员,是引起猪出现水泡性病变的病原。sva是一种无囊膜的单股正链rna病毒,其基因组全长约7.3 kb,依次由5′-非翻译区(untranslated region,utr)(0.66 kb)、开放阅读框(open reading frame ,orf)(6.54 kb)和3′-utr(0.07kb)组成。sva的orf编码一个大的多聚蛋白前体,然后经蛋白酶剪切后形成4种结构蛋白(vp4,vp2,vp3和vp1)和8种非结构蛋白(l,2a,2b,2c,3a,3b,3c和3d)。sva感染导致的临床症状包括在猪鼻镜、口腔上皮及蹄冠处出现水疱、溃烂从而导致跛行,在小日龄仔猪中会引起嗜睡、腹泻、神经系统症状和急性死亡,0~3日龄的仔猪死亡率高达40%~80%,4~7日龄的仔猪死亡率达0~30%。sva感染引起的临床症状与口蹄疫、猪水泡病、水疱性口炎引起的病变相似,在临床上难以区分。自2014年10月以来多个国家均暴发了sva疫情,且流行范围不断扩大,给养猪业造成了重大的经济损失。因此,建立快速、特异的诊断方法对预防和控制sva感染是必要的。
2、目前, sva诊断方法主要有逆转录-pcr(rt-pcr)、病毒中和试验(vnt)、间接荧光抗体试验(ifa)、酶联免疫吸附试验(elisa)等。相比之下,elisa方法简单、快速且易于操作。然而,这些elisa方法所使用的抗体多为鼠源单克隆抗体或兔多克隆抗体。兔多克隆抗体和鼠源单克隆抗体的制备不仅费时费力,需要扑杀动物,而且制备的多克隆抗体和单克隆抗体属于兔源或鼠源抗体,其识别的表位与本动物抗体识别的抗原表位可能存在差异,致使基于这种抗体所建方法的特异性和敏感性亟待提高。近年来,基于单细胞技术与流式分选技术相结合的单克隆抗体制备技术(即单个b细胞抗体技术)进一步优化了抗体制备技术领域的发展,使人们获得针对某抗原的本动物源性单克隆抗体成为可能。该技术核心是从免疫或感染动物中(组织或外周血)分离抗原特异性的 b 细胞,然后通过单细胞 pcr 技术从单个抗体分泌b 细胞中扩增抗体重链和轻链,然后在哺乳动物细胞内表达获得具有生物活性的单克隆抗体。该技术获得的抗体具有抗体的重链和轻链天然配对的特性,这对于抗体的特异性和亲和力至关重要,且该方法具有基因多样性好、效率高、全天然源性的特点。该技术已经应用于寻找人类一些重要传染病的中和抗体,如艾滋病、流感等。
3、fab抗体是免疫球蛋白igg的抗原结合片段,其由完整的轻链(可变区vl和恒定区cl)和部分重链结构(可变区vh和一个恒定区片段ch1)组成,轻链与重链通过一个二硫键连接,其长度相当于全长抗体的1/3,无fc段,体积较小,不易形成空间位阻效应。因此,相较于全长igg来说,fab抗体具有组织穿透性强、更易到达病灶、免疫原性低等优点,且没有fc片段,不会产生抗体依赖性介导的细胞毒性或补体依赖性细胞毒性等。在利用单个b 细胞抗体技术获得本动物源抗体的基础上,以fab抗体建立sva的elisa抗体检测方法未见报道。
技术实现思路
1、本发明的目的是提供一种塞内卡病毒a猪源fab抗体及其竞争elisa检测方法。
2、本发明塞内卡病毒a猪源fab抗体,猪源fab抗体重链可变区和轻链可变区的氨基酸序列如下:
3、重链可变区(seq id no .4):
4、eeklvesggglvqpggslrlscvgsgftfrstsinwvrqapgkglewlayigssglgtgyadsvkgrftisrdnsqntaylqinslrtedtaryycargcgnsaacaldlwgpgvevvv
5、轻链可变区(seq id no .7):
6、aiqltqspaslaaslgdtvsitcrasqsvssnldwyqqqpgkapklliysvstlqsgvpfrfkgsgsgtdftltisglqaedvatyychqhnstpygfgagtklelkradakpsvfifppskeqlatptvsvvclinnffpreisvkwkvdgvvqssghpdsvteqdskdsty
7、编码重链可变区基因的核苷酸序列如seq id no.2,编码轻链可变区基因的核苷酸序列如seq id no.8。
8、所述抗塞内卡病毒猪源fab基因工程抗体重链的氨基酸序列如seq id no .3所示;所述抗塞内卡病毒猪源fab基因工程抗体轻链的氨基酸序列seq id no .6所示。
9、本发明还提供了塞内卡病毒a猪源fab抗体在制备检测塞内卡病毒的试剂或试剂盒中的应用。
10、本发明还提供了基于塞内卡病毒a猪源fab抗体的竞争elisa检测方法,包括以下步骤:
11、(1)包被:将塞内卡病毒a抗原用pbs稀释至1 μg/ml,取100 μl/孔加入酶标板,4℃静置过夜,pbst洗板3次,拍干;
12、(2)封闭:配置含1% bsa与5%蔗糖的pbst溶液,100 μl/孔,37℃封闭 1 h;
13、(3)检测:分别取1:10稀释的待检血清、标准阴性血清、标准阳性血清与稀释至0.5μg/ml的猪源fab抗体混匀后转移至酶标板,100 μl/孔,37℃孵育1 h,pbst洗板3次,拍干;加入酶标亲和素,100 μl/孔,37℃孵育30 min ,pbst洗板3次,拍干;酶标亲和素为链霉亲和素-hrp,链霉亲和素-hrp的稀释比为1:30000;
14、(4)显色:tmb显色,100 μl/孔,37℃避光孵育15 min;终止并读取450 nm处的吸光值;
15、(5)判定结果:计算抑制百分率pi,以47%的pi为临界值,当待测血清pi<47%,检测结果为阴性,当待测血清pi≥47%,检测结果为阴性。
16、本发明构建了轻链和重链天然配对的猪源fab抗体,并利用该抗体建立了sva竞争elisa检测方法,并对其敏感性、特异性、重复性、与病毒中和试验(vnt)符合率进行测定。结果表明:成功制备了1株sva中和性的fab基因工程抗体,命名为1m33fab株,与sva之间有较高的亲和力;确定c-elisa方法的sva粒子最佳包被浓度为1 μg/ml、竞争抗体bio-1m33fab最适工作浓度为0.5 μg/ml、待检血清样本最佳稀释比例为1:10、酶标亲和素最佳稀释比为1:30 000;确定抑制百分率pi为47%时,敏感性和特异性最高,分别为96.88%和100%,且与常见的主要猪病毒病阳性血清不发生反应;批内变异系数范围为1.12%~7.34%、批间变异系数范围为1.19%~11.72%,表明重复性较好;利用该方法和vnt检测同时检测了224份临床猪血清样本,符合率为93.75%。