一种莲雾果皮中花色素的提取方法
【技术领域】
[0001] 本发明属于农产品深加工技术领域，具体涉及一种莲雾果皮中花色素的提取方 法。
【背景技术】
[0002] 食用色素可分为天然色素和化工合成色素两大类。合成色素因其廉价、稳定、易着 色等特性广泛地应用于现代食品工业中，但许多研究表明其具有致癌、损害人体亚细胞结 构、干扰多种活性酶的正常功能等危害。而天然色素具有抗氧化、清除自由基、抗突变、抗 癌、抗病毒、降脂等生物活性，在预防心血管疾病、糖尿病及癌症中起关键作用。因此，天然 色素的应用与开发越来越受到关注和重视。
[0003] 莲雾〔通(BI. ) Merr. et Perry〕是新兴的热带果树，鲜果 售价高，使其受热区果农喜爱，近年来在热区发展较快。莲雾果实成熟时果皮具深红、粉红、 青绿、白色等不同颜色，其中粉红种和深红种果实成熟时均富含花色素苷，是开发天然色素 的良好材料。目前有对紫薯、葡萄等果蔬中花色素的提取进行研究，但还未有对莲雾中花色 素的开发利用进行研究的报道。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的在于提供一种莲雾果皮中花色素的提取方法，以弥补目前莲雾果皮 中花色素研究利用的空白，为果蔬类花色素的开发利用提供了一条新途径。
[0005] 为实现上述目的，本发明采用如下技术方案： 一种莲雾果皮中花色素的提取方法，其具体步骤为：取成熟莲雾果实，洗净后晾干表面 水分，用刨刀刨取果皮，然后将果皮于粉碎机内粉碎，再按料液比1:50在粉碎后的果皮中 加入提取液浸提1-2次，浸提温度为50°C，每次浸提40min。
[0006] 所述成熟莲雾果实的果皮颜色为深红色或粉红色；所述深红色的色泽指标为L(亮 度指标）：15~35, h° (色度角）：2~5, a (红绿色指标）：15~30, b (黄蓝指标）：1. 5~3. 5 ;所述 粉红色的色泽指标为 L :40~60, h° :10~20, a :30~50, b :7~10。
[0007] 所用提取液是将柠檬酸与无水乙醇混合而成；提取液中柠檬酸的质量浓度为 2. 5%〇
[0008] 本发明的显著优点在于:本发明方法简单易行，成本低廉，可有效提取莲雾果皮中 的花色素，其提取率可达12. 950mg/100g，可实现小规模制备及工业化生产；且所用提取液 简单易得，无毒安全，能较好的保持花色素的稳定性。
[0009] 本发明弥补了目前莲雾果皮中花色素研究利用的空白，所得花色素可进一步作为 天然色素使用，为果蔬类花色素的开发利用提供了 一条新途径。
【附图说明】
[0010] 图1为不同提取液对提取效果的影响。
[0011] 图2为提取液中不同乙醇浓度对提取效果的影响。
[0012] 图3为不同超声功率对提取效果的影响。
[0013] 图4为不同提取时间对提取效果的影响。
[0014] 图5为不同提取温度对提取效果的影响。
[0015] 图6为不同料液比对提取效果的影响。
[0016] 图7为不同提取次数对提取效果的影响。
[0017] 注：图中大写字母不同表示差异极显著（P〈0. 01)，小写字母不同表示差异显著 (P〈0. 05)，相同字母表示差异不显著（P>0. 05)。
【具体实施方式】
[0018] 为了使本发明所述的内容更加便于理解，下面结合【具体实施方式】对本发明所述的 技术方案做进一步的说明，但是本发明不仅限于此。
[0019] 1材料与方法 1. 1材料 以'紫红'莲雾成熟果实果皮为试验材料(其色泽指标为L :15~35, h° :2~5, a :15~30， b :1. 5~3. 5)，采自漳州市东山县圆发莲雾种植场，洗净后晾干表面水分，用刨刀刨取果皮， 然后将果皮于粉碎机内粉碎备用。
[0020] 盐酸、甲醇、无水乙醇、柠檬酸、丙酮等均为分析纯试剂。主要仪器为Lambda 35紫 外可见光分光光度计（Perkin Elmer股份有限公司）、SK5210超声波清洗器(上海科导超声 仪器有限公司）、粉碎机、XMTD-8222水浴锅(上海精宏实验设备有限公司）等。
[0021] 1.2 方法 1. 2. 1单因素试验 称取一定量莲雾果皮，按单因素实验设计的提取液、提取液浓度、超声功率、提取时间、 提取温度、料液比对莲雾果皮进行提取。各提取液的提取效率用花色素含量表示： 花色素苷含量（mg/100g) =AXVX 1000X455. 2X100/29600XdXm， 式中：A :最大吸收波长处吸光度值；V :定容体积（L) ; 1000 :g换算成mg扩大的数； 455. 2 :矢车菊素-3-葡萄糖苷的分子质量（g/mol) ;29600 :矢车菊素-3-葡萄糖苷的浓度 比吸收系数（L/mol cm) ;d :比色杯光径（cm) ;m :鲜质量（g)。
[0022] I. 2. I. 1提取液对提取效果的影响 称取8份莲雾果皮于15mL离心管中，每份5g，分别加入A :1%盐酸-甲醇（pH 2. 65)、B : 1%盐酸-无水乙醇（pH 2. 71)、C :2. 5%柠檬酸-甲醇（w/v，pH 2. 65)、D :2. 5%柠檬酸-无水 乙醇（w/v，pH 2. 85)、E :1% 盐酸-95% 乙醇（pH 3.01)、F :甲醇（pH 6.98)、G :无水乙醇（pH 7. 02)、H :80%丙酮（pH 7. 01)提取液各10mL，30°C下100W功率超声浸提30min，过滤后滤 液定容至25mL。
[0023] 1. 2. 1. 2提取液中不同乙醇浓度对提取效果的影响 称取6份莲雾果皮于15mL离心管中，每份5g，分别加入IOmL 2. 5%梓檬酸-无水乙醇、 2. 5%梓樣酸-90%乙醇、2. 5%梓樣酸-80%乙醇、2. 5%梓樣酸-70%乙醇、2. 5%梓樣酸-60% 乙醇、2. 5%柠檬酸-50%乙醇，30°C下100W功率超声浸提30min，过滤后滤液定容至25mL。
[0024] 1. 2. 1. 3超声功率对提取效果的影响 称取5份莲雾果皮于15mL离心管中，每份5g，各加入IOmL 2. 5%梓檬酸-无水乙醇， 30°C下分别在0W、80W、120W、160W、200W功率超声浸提30min，过滤后滤液定容至25mL。
[0025] I. 2. L 4提取时间对提取效果的影响 称取6份莲雾果皮于15mL离心管中，每份5g，各加入IOmL 2. 5%梓檬酸-无水乙醇， 30°C下分别浸提 10min、20min、30min、40min、50min、60min，过滤后滤液定容至 25mL。
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